miRNAは停留精巣と遊走精巣を区別するマーカーとして使用できるか (miRNA)
未下降精巣および引込精巣に関連するmiRNAs
背景:停留精巣(UDT)は男児に多く見られる。未治療のUDTは不妊症(IF)、精巣癌(TC)、精巣捻転(TT)などのリスクを伴う。移動性精巣(RT)は陰嚢から一時的に上行する。UDTは早期の手術的矯正が必要である一方、RTは定期的な経過観察のみで済む。これらの鑑別は困難であり、臨床バイオマーカーの有用性が期待される。本研究の目的は、鑑別が困難なmiRNAを、UDTとRTの鑑別診断におけるバイオマーカーとして検討することであった。
方法:この前向き研究では、UDT(手術群)の男児10名、RT(経過観察群)9名、対照群9名を対象とした。保護者の同意を得て血清サンプルを採取し、リアルタイムPCRによりmiR-210、miR-34c、miR-449aの発現を評価した。群間比較では、パラメトリックデータには一元配置分散分析(ANOVA)、ノンパラメトリックデータにはクラスカル・ウォリス検定を用い、事後多重比較にはダン・ボンフェローニ補正を適用した。相関分析にはスピアマンの順位相関係数を用いた。p値<0.05を有意とした。
調査の概要
詳細な説明
導入 停留精巣(UDT)は最も一般的な先天性男性奇形であり、満期産児の1.0〜4.6%、早産児では最大45%に影響を及ぼす[1]。 UDTは先天性または後天性であり、先天性症例における自然下降は6か月以降まれである[2]。 1歳を超えて未治療のUDTは、間質線維症、精子形成の退化、および不妊リスクの増加につながる[3-5]。 さらに、未治療のUDTは精巣癌(TC)および精巣捻転(TT)のリスクを伴う。 これらの合併症を予防するためには、早期診断と治療が重要である。
真の停留精巣(UDT)と移動性精巣(RT)を区別することは臨床的に困難である。 真のUDTは一貫して陰嚢が空で、精巣が下降しない状態を伴う。 対照的に、RTは自然に下降するか、手動で還納できるが、再上昇する可能性がある。 RTの治療は精巣が陰嚢外に留まる時間に依存する。 UDTをRTと誤診すると、治療の遅れと避けられない合併症のリスクがある。 したがって、UDTとRTを区別するための信頼できる指標が重要である。
マイクロRNA(miRNA)は、転写後に遺伝子発現を調節する約22ヌクレオチドの非コードRNAである[6]。 miRNAは、様々な種において精子形成(SP)、初期胚発生、精子機能、および受精を調節することが知られている[7]。 真のUDTにおけるSPの障害が予想されることから、UDTとmiRNAの関係が探究されてきた。 研究により、UDTにおけるmiRNAレベルの変化が示されている:miR-210はアップレギュレーションされる[8]一方で、miR-449aおよびmiR-34cはダウンレギュレーションされる[9-11]。 重要なことに、移動性精巣(RT)症例におけるmiRNAの変化に関するデータは現在不足している。 理論的には、RTではSPは障害されないと予想される。したがって、SPの状態を反映するmiRNAの変化は、RTとUDTを区別し、手術対経過観察の決定を導く可能性がある。 本研究は、前向きにUDT、RT、および正常対照群間のmiRNA変化を比較した。
- 材料と方法 2.1. サンプルサイズ 本研究は、UDT、RT、および正常対照群間のmiRNA変化を比較するための前向き比較試験として設計された。 サンプルサイズはG*Power 3.1.9.6により決定された。 3群を比較したmiR-34cの一元配置分散分析の検出力分析では、過去の研究[10]からの効果量(f=1.2955357)が用いられた。 99%の検出力と1%の誤差率を達成するためには、合計24のサンプルサイズが必要であった。 信頼性を高めるため、本研究では最終的に30人の患者を登録し、10人ずつ3群に分けた。
2.2. 患者集団 当初、当院泌尿器科クリニック(2022年3月から2023年3月の期間)から、停留精巣(UDT)の男児10人、移動性精巣(RT)の男児10人、および健康なボランティア(対照)10人が登録された。 しかし、採血のための親の拒否により、1人のRT患者と1人の対照患者が除外された。 触知可能な(片側または両側)UDT症例のみが含まれ、非触知型は除外された。 正確なRT診断を確保するため、初期の医師による検査は3体位(仰臥位、半仰臥位、立位)で実施され、その後1か月間の親による検査(1日2回)が行われた。 精巣が時間の50%以上を陰嚢内で過ごしたRT患者のみが含まれた。 除外基準には、既往の鼠径部/陰嚢手術、不完全なデータセット、または不適切な血清サンプルも含まれた。
2.3. 患者データと対照サンプルの収集 詳細な患者歴、身体検査、および定期的な生化学検査が実施された。 誤解釈を防ぐため、UDTの血液サンプルは手術前に採取された。 全群からの血液は5 mLの生化学用チューブに採取され、3000 rpmで10分間遠心分離された。 得られた粒子を含まない血清は1.5 mLチューブに移され、分析まで-80℃で保存された。
2.4. リアルタイムPCRによるmiR-210、miR-449a、miR-34cの発現レベルの検証 泌尿器科クリニックからの血清サンプルは、Quick-cfRNA™ Serum & Plasma Kit(Zymo Research)によるRNA分離が行われた。 抽出されたmiRNAは、miRNA All-In-One cDNA Synthesis Kit(ABMGood)によりcDNAに逆転写された。 cDNAの品質と量は、リアルタイムPCR前にBioSpec-nano装置(島津製作所)を用いた分光光度法で評価された。 miRNA発現分析は、Rotor Gene Q(Qiagen)装置により実施された。 miR-210、miR-449a、およびmiR-34cのレベルは、すぐに使用できるプライマーとBlasTaq™ 2X qPCR MasterMix(ABMGood)を用いて定量された。
2.5. 統計解析 データの正規性はShapiro-Wilk検定により、分散の等質性はLevene検定により評価された。 記述統計は、パラメトリックデータについては平均±SD、ノンパラメトリックデータについては中央値(IQR)および平均(順位)として提示された。 群間比較では、パラメトリックデータには一元配置分散分析が、ノンパラメトリックデータにはクラスカル・ウォリス検定が用いられ、その後、事後多重比較のためにダン・ボンフェローニ補正が行われた。 相関分析にはスピアマンの順位相関係数が用いられた。 統計的有意性はp < 0.05に設定された。
miRNA発現は、Ct(交差点)値を介したqRT-PCRにより定量され、RNU6B_13で正規化された。 相対的miRNA発現レベルは、2-ΔCt法を用いて全群間で比較され、2Ct(目的遺伝子) - Ct(参照遺伝子)として計算された。 全ての統計解析はIBM SPSS v28(IBM Inc.、シカゴ、イリノイ州、米国)を用いて実施された。
研究の種類
入学 (実際)
連絡先と場所
研究場所
-
-
Altınordu
-
Ordu、Altınordu、トルコ(Türkiye)、52200
- Ordu University
-
-
参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 子
- 大人
健康ボランティアの受け入れ
サンプリング方法
調査対象母集団
対照群:両側の精巣が陰嚢内にある健康な子供。
停留精巣群:片側性の触知可能な停留精巣、または両側性の触知可能な停留精巣を有する子供。
引っ込み精巣群:片側性の引っ込み精巣、または両側性の引っ込み精巣の経過観察中の子供。
説明
選定基準:
- 触知可能な(片側または両側)停留精巣症例
- 遊走精巣症例;医師による検査は3つの体位(仰臥位、半仰臥位、立位)で実施され、その後1か月間の親による検査(1日2回)が行われました。
- 年齢18歳未満の健康な子供で、陰嚢内に2つの精巣が触知可能であること。
除外基準:
- 過去の鼠径部/陰嚢手術の既往
- 不備なデータセット
- 不適切な血清サンプル
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
コホートと介入
グループ/コホート |
介入・治療 |
|---|---|
|
停留精巣
miRNAレベルが調査された停留精巣症例
|
miR-34c、miR-210、miR-449a のレベルを調査しました。
|
|
収縮性睾丸
miRNAレベルが調査された収縮性睾丸症例
|
miR-34c、miR-210、miR-449a のレベルを調査しました。
|
|
コントロール
精巣が陰嚢内にあるmiRNAレベルが調査された健康な小児
|
miR-34c、miR-210、miR-449a のレベルを調査しました。
|
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
miRNAレベル
時間枠:研究登録期間内
|
2Ct(標的遺伝子)- Ct(参照遺伝子)
|
研究登録期間内
|
|
miRNA変化
時間枠:研究登録時の迅速なmiRNAレベル。
|
3群におけるmiRNAレベルの分化
|
研究登録時の迅速なmiRNAレベル。
|
協力者と研究者
スポンサー
捜査官
- スタディチェア:Benli、Ordu University
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell. 2004 Jan 23;116(2):281-97. doi: 10.1016/s0092-8674(04)00045-5.
- Wenzler DL, Bloom DA, Park JM. What is the rate of spontaneous testicular descent in infants with cryptorchidism? J Urol. 2004 Feb;171(2 Pt 1):849-51. doi: 10.1097/01.ju.0000106100.21225.d7.
- Pizzi G, Groppetti D, Brambilla E, Pecile A, Grieco V, Lecchi C. MicroRNA as epigenetic regulators of canine cryptorchidism. Res Vet Sci. 2023 Sep;162:104961. doi: 10.1016/j.rvsc.2023.104961. Epub 2023 Jul 20.
- Kim EP, Shin JH, Kim WH, Kim GA. Integrated miRNA Changes in Canine Testis and Epididymis According to Age and Presence of Cryptorchidism. Animals (Basel). 2023 Apr 18;13(8):1390. doi: 10.3390/ani13081390.
- Elias FM, Nishi MY, Sircili MHP, Bastista RL, Gomes NL, Ferrari MTM, Costa EMF, Denes FT, Mendonca BB, Domenice S. Elevated plasma miR-210 expression is associated with atypical genitalia in patients with 46,XY differences in sex development. Mol Genet Genomic Med. 2022 Dec;10(12):e2084. doi: 10.1002/mgg3.2084. Epub 2022 Nov 11.
- Jia H, Ma T, Jia S, Ouyang Y. AKT3 and related molecules as potential biomarkers responsible for cryptorchidism and cryptorchidism-induced azoospermia. Transl Pediatr. 2021 Jul;10(7):1805-1817. doi: 10.21037/tp-21-31.
- Yadav SK, Pandey A, Kumar L, Devi A, Kushwaha B, Vishvkarma R, Maikhuri JP, Rajender S, Gupta G. The thermo-sensitive gene expression signatures of spermatogenesis. Reprod Biol Endocrinol. 2018 Jun 2;16(1):56. doi: 10.1186/s12958-018-0372-8.
- Procopio MS, de Avelar GF, Costa GMJ, Lacerda SMSN, Resende RR, de Franca LR. MicroRNAs in Sertoli cells: implications for spermatogenesis and fertility. Cell Tissue Res. 2017 Dec;370(3):335-346. doi: 10.1007/s00441-017-2667-z. Epub 2017 Aug 4.
- Lian J, Zhang X, Tian H, Liang N, Wang Y, Liang C, Li X, Sun F. Altered microRNA expression in patients with non-obstructive azoospermia. Reprod Biol Endocrinol. 2009 Feb 11;7:13. doi: 10.1186/1477-7827-7-13.
- Han H, Chen Q, Gao Y, Li J, Li W, Dang R, Lei C. Comparative Transcriptomics Analysis of Testicular miRNA from Cryptorchid and Normal Horses. Animals (Basel). 2020 Feb 21;10(2):338. doi: 10.3390/ani10020338.
- Huang Z, Tang D, Gao J, Dou X, Cheng P, Peng D, Zhang Y, Mao J, Zhang L, Zhang X. miR-34c disrupts spermatogonial stem cell homeostasis in cryptorchid testes by targeting Nanos2. Reprod Biol Endocrinol. 2018 Oct 15;16(1):97. doi: 10.1186/s12958-018-0417-z.
- Tang D, Huang Z, He X, Wu H, Peng D, Zhang L, Zhang X. Altered miRNA profile in testis of post-cryptorchidopexy patients with non-obstructive azoospermia. Reprod Biol Endocrinol. 2018 Aug 13;16(1):78. doi: 10.1186/s12958-018-0393-3.
- Duan Z, Huang H, Sun F. The functional and predictive roles of miR-210 in cryptorchidism. Sci Rep. 2016 Aug 26;6:32265. doi: 10.1038/srep32265.
- Lagos-Quintana M, Rauhut R, Meyer J, Borkhardt A, Tuschl T. New microRNAs from mouse and human. RNA. 2003 Feb;9(2):175-9. doi: 10.1261/rna.2146903.
- Park KH, Lee JH, Han JJ, Lee SD, Song SY. Histological evidences suggest recommending orchiopexy within the first year of life for children with unilateral inguinal cryptorchid testis. Int J Urol. 2007 Jul;14(7):616-21. doi: 10.1111/j.1442-2042.2007.01788.x.
- Engeler DS, Hosli PO, John H, Bannwart F, Sulser T, Amin MB, Heitz PU, Hailemariam S. Early orchiopexy: prepubertal intratubular germ cell neoplasia and fertility outcome. Urology. 2000 Jul;56(1):144-8. doi: 10.1016/s0090-4295(00)00560-4.
- Radmayr C, Dogan HS, Hoebeke P, Kocvara R, Nijman R, Silay S, Stein R, Undre S, Tekgul S. Management of undescended testes: European Association of Urology/European Society for Paediatric Urology Guidelines. J Pediatr Urol. 2016 Dec;12(6):335-343. doi: 10.1016/j.jpurol.2016.07.014. Epub 2016 Sep 15.
- Hadziselimovic F, Herzog B. The importance of both an early orchidopexy and germ cell maturation for fertility. Lancet. 2001 Oct 6;358(9288):1156-7. doi: 10.1016/S0140-6736(01)06274-2.
- Moritoki Y, Hayashi Y, Mizuno K, Kamisawa H, Nishio H, Kurokawa S, Ugawa S, Kojima Y, Kohri K. Expression profiling of microRNA in cryptorchid testes: miR-135a contributes to the maintenance of spermatogonial stem cells by regulating FoxO1. J Urol. 2014 Apr;191(4):1174-80. doi: 10.1016/j.juro.2013.10.137. Epub 2013 Oct 31.
- Jia H, Hao C. Exploring dysregulated miRNAs in cryptorchidism: a systematic review. J Int Med Res. 2021 Mar;49(3):300060521999950. doi: 10.1177/0300060521999950.
- Lv W, Yu M, Su Y. miR-22-5p regulates the self-renewal of spermatogonial stem cells by targeting EZH2. Open Med (Wars). 2022 Mar 17;17(1):556-565. doi: 10.1515/med-2022-0429. eCollection 2022.
- Garcia-Andrade F, Vigueras-Villasenor RM, Chavez-Saldana MD, Rojas-Castaneda JC, Bahena-Ocampo IU, Arechaga-Ocampo E, Diaz-Chavez J, Landero-Huerta DA. The Role of microRNAs in the Gonocyte Theory as Target of Malignancy: Looking for Potential Diagnostic Biomarkers. Int J Mol Sci. 2022 Sep 10;23(18):10526. doi: 10.3390/ijms231810526.
- Dieckmann KP, Spiekermann M, Balks T, Ikogho R, Anheuser P, Wosniok W, Loening T, Bullerdiek J, Belge G. MicroRNA miR-371a-3p - A Novel Serum Biomarker of Testicular Germ Cell Tumors: Evidence for Specificity from Measurements in Testicular Vein Blood and in Neoplastic Hydrocele Fluid. Urol Int. 2016;97(1):76-83. doi: 10.1159/000444303. Epub 2016 Mar 19.
- Condrat CE, Thompson DC, Barbu MG, Bugnar OL, Boboc A, Cretoiu D, Suciu N, Cretoiu SM, Voinea SC. miRNAs as Biomarkers in Disease: Latest Findings Regarding Their Role in Diagnosis and Prognosis. Cells. 2020 Jan 23;9(2):276. doi: 10.3390/cells9020276.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (実際)
研究の完了 (実際)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (推定)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (推定)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
本研究に関する用語
追加の関連 MeSH 用語
その他の研究ID番号
- 2022/25
- A-2109 (その他の助成金/資金番号:Ordu University Scientific Project Unit)
個々の参加者データ (IPD) の計画
個々の参加者データ (IPD) を共有する予定はありますか?
医薬品およびデバイス情報、研究文書
米国FDA規制医薬品の研究
米国FDA規制機器製品の研究
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。