- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT05054361
Krysstale mellom slimhinne-assosierte invariante T-celler (MAIT) og tarmmikrobiota og slimhinne i utviklingen av type 1-diabetes hos barn (MAIT-DT1)
Krysstale mellom slimhinne-assosierte invariante T-celler og tarmmikrobiota og slimhinne i utviklingen av type 1-diabetes hos barn
Å undersøke på en prospektiv måte endringer i mucosal-assosierte invariante T (MAIT)-cellers frekvens, fenotype og funksjon i forbindelse med tarmmikrobiota, tarmintegritet og tilstedeværelse av Coxsackie-virus B i to kohorter av pediatriske pasienter: pasienter med høy genetisk risiko for type 1 diabetes og pediatriske pasienter med nylig diagnostisert T1D sammenlignet med kontrollpersoner
Oppgaver:
- For å måle blod MAIT-cellers frekvens, fenotype og funksjon i de tre kohortene
- Å analysere tarmmikrobiota og tilstedeværelsen av Coxsackie B enterovirus (CVB) og deres innvirkning på MAIT-cellefunksjonen
- For å evaluere tarmens integritet og analysere tarmslimhinnen
- For å integrere alle dataene som er oppnådd med T1D-utvikling og -evolusjon
Studieoversikt
Status
Forhold
Detaljert beskrivelse
Fag: Flerstudium. Forsøkspersonene vil bli inkludert i den pediatriske enheten for diabetes og endokrinologi i Necker Sick barnesykehuset og i den pediatriske enheten til ANTONY sykehus.
- Nylig debutert (RO) n=40: Nyoppståtte pasienter vil inkluderes kort tid etter diagnose.
- Risikokohort (AR) n=70: Rutinemessig screenede søsken til T1D-pasienter som tidligere har testet positivt for HLA DR3 og DR4 vil bli bedt om å være en del av studien.
- Kontroll (C) kohort (n=50): Kontrollpersoner vil være pasienter som konsulteres ved Necker sykehus for endokrin testing
- Kontroll for endoskopi (CE) n= 20: pasienter som konsulterer ved Necker sykehus eller ved Antony sykehus for UGI endoskopi
Analyse:
MAIT-celleanalyse: For FACS-analyse vil MAIT-celler bli identifisert som CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-celler. Overflatemarkører vil bli analysert for å bestemme deres aktiveringsstatus (CD25, CD69, CD44), deres utmattelse (PD1, KLRG1, TIM3), deres migrasjonskapasitet (CCR6), og deres spredning og overlevelse vil bli analysert ved Ki67 og BCL2 uttrykk. Cytokinproduksjon vil bli vurdert etter PMA-ionomycin-aktivering, etterfulgt av intracytoplasmatisk farging med antistoffer mot IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 og granzyme B. For å bestemme kapasiteten til MAIT-celler til respons på TCR-stimulering (utmattelse), vil in vitro-stimulering utføres i nærvær av spesifikke bakterielle ligander. Aktiveringsmarkøruttrykk vil bli analysert av FACS og cytokiner frigitt i supernatanten ved cytometribasert analyse.
Tarmmikrobiotaanalyse: Avføringsprøver samles inn og holdes direkte under anaerob tilstand. I løpet av en time behandles prøvene: en fraksjon blir delt i alikvoter og frosset ved -80°C og en annen fraksjon brukes til å fremstille fekal supernatant for bioassay av MAIT-ligander, delt opp og frosset. Bioassay for å måle tilstedeværelsen av MAIT-celleligander ved bioassays ved bruk av WT3-cellelinje samt platebundet MR117. 16S sekvensering av alle prøver og i henhold til resultatene oppnådd med bioanalysen og 16S, vil 10 prøver bli valgt for metagenomisk analyse.
Coxsackie virus B (CVB) infeksjonsstatus: Spesifikke antistoffer mot coxsackie virus B og CVB spesifikk-qPCR måling i tarmmikrobiota prøver vil bli utført hos alle pasienter i de tre kohortene, og analyse av tarmslimhinnen ved q-PCR og immunkjemi vil bli utført. utført på en undergruppe av pasienter.
Tarmintegritet: etterforskerne vil vurdere permeabiliteten til tarmen ved å bruke Lactulose-Mannitol-testen i en underprøve av RO-, RD- og AR-grupper (> 5 år, n=20). Kort oppsummert vil pasientene etter faste over natten drikke 50 ml oppløsning av 5 g laktulose og 2 g mannitol. Urin vil bli samlet opp før og 5 timer etter inntak.
Tarmslimhinneanalyse: Hos en undergruppe av pasienter (uten cøliaki som bestemt av dosen av antistoffer mot transglutaminase), vil duodenale biopsier bli tatt under en IUG-endoskopi. Duodenal biopsi vil bli utført hos RD-personer eldre enn 8 år og hos CE-personer eldre enn 4 år. Disse biopsiene vil bli analysert med qPCR for ekspresjon av nøkkelepitelmolekyler som fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction-proteiner (occludin, claudin4), antimikrobielle peptider (Reg3, LL37) og slimkomponent (mucin 2). Immuncellers funksjon vil også bli vurdert ved q-PCR for nøkkelcytokiner/molekyler som IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb og CVB.
Basert på tidligere studie, bør utvalgsstørrelsen tillate statistiske forskjeller mellom AR-, RO- og C-grupper. Etterforskerne forventer å observere MAIT-celleabnormiteter i blod hos RO-pasienter og noen risikobarn etter serokonversjon, men før diabetes debut. Disse nye dataene vil styrke vår prediktive modell (se foreløpige data). Siden MAIT-celler gjenkjenner bakteriell ligand, antar vi at MAIT-celleendring kan skje parallelt med mikrobiotaendringer og/eller CVB-infeksjon. Etterforskerne forventer å observere abnormiteter i tarmslimhinnen hos RO-barn, og alvorlighetsgraden av disse abnormitetene kan korrelere med nivået av MAIT-celledefekt og tilstedeværelsen av CVB-infeksjon. Etterforskerne forventer å demonstrere at MAIT-celler representerer en ny biomarkør for progresjon mot diabetes, så vel som en funksjonell immunmarkør for aggressiviteten til den autoimmune sykdommen. Som sådan kunne denne studien bestemme det nøyaktige terapeutiske vinduet for forebyggende strategier basert på MAIT-cellemanipulasjon.
Studietype
Registrering (Antatt)
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: jacques beltrand, MD, PhD
- Telefonnummer: +33144481545
- E-post: jacques.beltrand@aphp.fr
Studiesteder
-
-
-
Antony, Frankrike, 92160
- Har ikke rekruttert ennå
- Hôpital Privé d'Antony
-
Ta kontakt med:
- Christine Rizk, MD
- E-post: christine.rizk@free.fr
-
Paris, Frankrike, 75015
- Rekruttering
- Hôpital Necker Enfants malades
-
Ta kontakt med:
- jacques Beltrand, MD
- Telefonnummer: +33144481545
- E-post: jacques.beltrand@aphp.fr
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Prøvetakingsmetode
Studiepopulasjon
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
Nylig debutgruppe
- alder > 12 måneder og < 15 år
- nylig diagnostisert type 1 diabetes i henhold til ISPAD-kriteriene
Utsatte personer:
- alder > 12 måneder og < 15 år
- søsken til type 1 diabetespasient
- HLA DR3 og DR4 positive
Kontrollemner:
- alder > 12 måneder og < 15 år
- ingen HLA assosiert med høyrisiko type 1 diabetes
- ingen antistoffer mot bukspyttkjertelantigener
Kontrollpersoner for UGI-endoskopi:
- alder > 12 måneder og < 15 år
- mistanke om cøliaki eller gastritt
Ekskluderingskriterier:
For alle grupper:
- ingen helseforsikring
- foreldre eller veiledere som ikke kan signere samtykket
- personlig historie med autoimmun sykdom og/eller inflammatorisk sykdom bortsett fra T1D for RD- og CE-grupper
- bruk av kortikosteroider i løpet av måneden før inkludering
- gravide forsøkspersoner
- medisinsk kontraindikasjon for anestetiske emner
For kontrollpersoner for UGI-endoskopikontroll og endoskopigruppe for nylig debut:
- alder under 8 år for endoskopigruppe med nylig debut
- alder under 4 for UGI endoskopi kontrollgruppe
- hjerte- eller respirasjonssvikt, hjerterytmeforstyrrelser, koagulasjonssykdom, pasienter behandlet med antikoagulant eller antiaggregerende legemiddel
- historie med allergi mot anestesimiddel
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
Kohorter og intervensjoner
Gruppe / Kohort |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
nylig oppståtte pasienter
pasienter med nylig diagnostisert type 1 diabetes
|
For FACS-analyse vil MAIT-celler bli identifisert som CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-celler.
Overflatemarkører vil bli analysert for å bestemme deres aktiveringsstatus (CD25, CD69, CD44), deres utmattelse (PD1, KLRG1, TIM3), deres migrasjonskapasitet (CCR6), og deres spredning og overlevelse vil bli analysert ved Ki67 og BCL2 uttrykk.
Cytokinproduksjon vil bli vurdert etter PMA-ionomycin-aktivering, etterfulgt av intracytoplasmatisk farging med antistoffer mot IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 og granzyme B. For å bestemme kapasiteten til MAIT-celler til respons på TCR-stimulering (utmattelse), vil in vitro-stimulering utføres i nærvær av spesifikke bakterielle ligander.
Aktiveringsmarkøruttrykk vil bli analysert av FACS og cytokiner frigitt i supernatanten ved cytometribasert analyse.
Etter faste over natten vil pasientene drikke 50 ml oppløsning av 5 g laktulose og 2 g mannitol.
Urin vil bli samlet i løpet av før og 5 timer senere.
Duodenal biopsi innsamling og analyse.
Biopsier vil bli analysert med qPCR for ekspresjon av nøkkelepitelmolekyler som fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction proteiner (occludin, claudin4), antimikrobielle peptider (Reg3, LL37) og slimkomponent (mucin 2).
Immuncellers funksjon vil også bli vurdert ved q-PCR for nøkkelcytokiner/molekyler som IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb og CVB.
Serologi mot CVB og CVB spesifikk-qPCR måling i tarmmikrobiota prøver vil bli utført hos alle pasienter i de tre kohortene, og analyse av tarmslimhinnen ved qPCR og immunkjemi med anti-CVB VP1 protein mAb vil bli utført på en undergruppe av pasienter.
Avføringsprøver samles inn og holdes direkte under anaerob tilstand.
I løpet av en time behandles prøvene: en fraksjon blir delt i alikvoter og frosset ved -80°C og en annen fraksjon brukes til å fremstille fekal supernatant for bioassay av MAIT-ligander, delt opp og frosset.
Bioassay for å måle tilstedeværelsen av MAIT-celleligander ved bioassays ved bruk av WT3-cellelinje samt platebundet MR117.
16S sekvensering av alle prøver og i henhold til resultatene oppnådd med bioanalysen og 16S, vil 10 prøver bli valgt for metagenomisk analyse.
|
|
risikopasienter
pasienter med høy genetisk risiko type 1 diabetes
|
For FACS-analyse vil MAIT-celler bli identifisert som CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-celler.
Overflatemarkører vil bli analysert for å bestemme deres aktiveringsstatus (CD25, CD69, CD44), deres utmattelse (PD1, KLRG1, TIM3), deres migrasjonskapasitet (CCR6), og deres spredning og overlevelse vil bli analysert ved Ki67 og BCL2 uttrykk.
Cytokinproduksjon vil bli vurdert etter PMA-ionomycin-aktivering, etterfulgt av intracytoplasmatisk farging med antistoffer mot IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 og granzyme B. For å bestemme kapasiteten til MAIT-celler til respons på TCR-stimulering (utmattelse), vil in vitro-stimulering utføres i nærvær av spesifikke bakterielle ligander.
Aktiveringsmarkøruttrykk vil bli analysert av FACS og cytokiner frigitt i supernatanten ved cytometribasert analyse.
Etter faste over natten vil pasientene drikke 50 ml oppløsning av 5 g laktulose og 2 g mannitol.
Urin vil bli samlet i løpet av før og 5 timer senere.
Serologi mot CVB og CVB spesifikk-qPCR måling i tarmmikrobiota prøver vil bli utført hos alle pasienter i de tre kohortene, og analyse av tarmslimhinnen ved qPCR og immunkjemi med anti-CVB VP1 protein mAb vil bli utført på en undergruppe av pasienter.
Avføringsprøver samles inn og holdes direkte under anaerob tilstand.
I løpet av en time behandles prøvene: en fraksjon blir delt i alikvoter og frosset ved -80°C og en annen fraksjon brukes til å fremstille fekal supernatant for bioassay av MAIT-ligander, delt opp og frosset.
Bioassay for å måle tilstedeværelsen av MAIT-celleligander ved bioassays ved bruk av WT3-cellelinje samt platebundet MR117.
16S sekvensering av alle prøver og i henhold til resultatene oppnådd med bioanalysen og 16S, vil 10 prøver bli valgt for metagenomisk analyse.
|
|
kontrollemner
kontrollpasienter (ingen risiko for type 1 diabetes og ingen diagnostisert type 1 diabetes)
|
For FACS-analyse vil MAIT-celler bli identifisert som CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-celler.
Overflatemarkører vil bli analysert for å bestemme deres aktiveringsstatus (CD25, CD69, CD44), deres utmattelse (PD1, KLRG1, TIM3), deres migrasjonskapasitet (CCR6), og deres spredning og overlevelse vil bli analysert ved Ki67 og BCL2 uttrykk.
Cytokinproduksjon vil bli vurdert etter PMA-ionomycin-aktivering, etterfulgt av intracytoplasmatisk farging med antistoffer mot IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 og granzyme B. For å bestemme kapasiteten til MAIT-celler til respons på TCR-stimulering (utmattelse), vil in vitro-stimulering utføres i nærvær av spesifikke bakterielle ligander.
Aktiveringsmarkøruttrykk vil bli analysert av FACS og cytokiner frigitt i supernatanten ved cytometribasert analyse.
Etter faste over natten vil pasientene drikke 50 ml oppløsning av 5 g laktulose og 2 g mannitol.
Urin vil bli samlet i løpet av før og 5 timer senere.
Serologi mot CVB og CVB spesifikk-qPCR måling i tarmmikrobiota prøver vil bli utført hos alle pasienter i de tre kohortene, og analyse av tarmslimhinnen ved qPCR og immunkjemi med anti-CVB VP1 protein mAb vil bli utført på en undergruppe av pasienter.
Avføringsprøver samles inn og holdes direkte under anaerob tilstand.
I løpet av en time behandles prøvene: en fraksjon blir delt i alikvoter og frosset ved -80°C og en annen fraksjon brukes til å fremstille fekal supernatant for bioassay av MAIT-ligander, delt opp og frosset.
Bioassay for å måle tilstedeværelsen av MAIT-celleligander ved bioassays ved bruk av WT3-cellelinje samt platebundet MR117.
16S sekvensering av alle prøver og i henhold til resultatene oppnådd med bioanalysen og 16S, vil 10 prøver bli valgt for metagenomisk analyse.
|
|
kontrollemner for endoskopi
pasienter uten type 1 diabetes som trenger UGI endoskopi av en eller annen medisinsk grunn
|
For FACS-analyse vil MAIT-celler bli identifisert som CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-celler.
Overflatemarkører vil bli analysert for å bestemme deres aktiveringsstatus (CD25, CD69, CD44), deres utmattelse (PD1, KLRG1, TIM3), deres migrasjonskapasitet (CCR6), og deres spredning og overlevelse vil bli analysert ved Ki67 og BCL2 uttrykk.
Cytokinproduksjon vil bli vurdert etter PMA-ionomycin-aktivering, etterfulgt av intracytoplasmatisk farging med antistoffer mot IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 og granzyme B. For å bestemme kapasiteten til MAIT-celler til respons på TCR-stimulering (utmattelse), vil in vitro-stimulering utføres i nærvær av spesifikke bakterielle ligander.
Aktiveringsmarkøruttrykk vil bli analysert av FACS og cytokiner frigitt i supernatanten ved cytometribasert analyse.
Duodenal biopsi innsamling og analyse.
Biopsier vil bli analysert med qPCR for ekspresjon av nøkkelepitelmolekyler som fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction proteiner (occludin, claudin4), antimikrobielle peptider (Reg3, LL37) og slimkomponent (mucin 2).
Immuncellers funksjon vil også bli vurdert ved q-PCR for nøkkelcytokiner/molekyler som IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb og CVB.
Serologi mot CVB og CVB spesifikk-qPCR måling i tarmmikrobiota prøver vil bli utført hos alle pasienter i de tre kohortene, og analyse av tarmslimhinnen ved qPCR og immunkjemi med anti-CVB VP1 protein mAb vil bli utført på en undergruppe av pasienter.
Avføringsprøver samles inn og holdes direkte under anaerob tilstand.
I løpet av en time behandles prøvene: en fraksjon blir delt i alikvoter og frosset ved -80°C og en annen fraksjon brukes til å fremstille fekal supernatant for bioassay av MAIT-ligander, delt opp og frosset.
Bioassay for å måle tilstedeværelsen av MAIT-celleligander ved bioassays ved bruk av WT3-cellelinje samt platebundet MR117.
16S sekvensering av alle prøver og i henhold til resultatene oppnådd med bioanalysen og 16S, vil 10 prøver bli valgt for metagenomisk analyse.
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
blod MAIT celler frekvens
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
prosentandel av MAIT-celler i det perifere blodet
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
MAIT celle membran markører analyse
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
CD25 positive celler i prosent, CD69 positive celler i prosent, CD44 positive celler i prosent, PD1 positive celler i prosent, KLRG1 positive celler i prosent, TIM3 positive celler i prosent
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
Cytokinproduksjon i cytoplasmaet til MAIT
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Antistoffer mot IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 og granzym B uttrykt i celler %
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
MAIT celleligander målinger
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Prosentandel av MAIT-celler aktivert in vitro når de dyrkes i nærvær av den aktuelle avføringsprøven
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
Tilstedeværelse av CVB i avføringen
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
CVB-spesifikk ARN-deteksjon i forsøkspersoners avføringsprøver ved qPCR
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
Blodimmunoglobuliner mot CVB-infeksjonsstatus
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Spesifikke antistoffer (Ig G) mot CVB-målinger i pasientens blodprøve
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
Måling av tarmslimhinnepermeabilitet
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Vurdere permeabiliteten til tarmen ved å bruke Lactulose-Mannitol-testen.
Konsentrasjon av laktulose og manitol i forsøkspersonens urinprøver i mg/dl
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
Evaluering av integritet i tarmslimhinnen
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
qPCR for ekspresjon av nøkkelepitelmolekyler og cytokiner på tarmprøver
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
|
16 S-sekvensering i emnenes avføring
Tidsramme: Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
16S rRNA-gensekvenseringen vil bli brukt for klassifisering og identifisering av mikrobearter i forsøkspersoners avføring.
Hver art vil bli identifisert og kvantifisert som en prosentandel av det totale antallet identifiserte arter i avføringen.
|
Prøven ble samlet inn dagen for registrering (kontrollgruppe og risikopasienter) eller opptil 7 dager etter diagnose og registreringsdagen (nylig debutgruppe)
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Rouland M, Beaudoin L, Rouxel O, Bertrand L, Cagninacci L, Saffarian A, Pedron T, Gueddouri D, Guilmeau S, Burnol AF, Rachdi L, Tazi A, Mouries J, Rescigno M, Vergnolle N, Sansonetti P, Christine Rogner U, Lehuen A. Gut mucosa alterations and loss of segmented filamentous bacteria in type 1 diabetes are associated with inflammation rather than hyperglycaemia. Gut. 2022 Feb;71(2):296-308. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323664. Epub 2021 Feb 16.
- Rouxel O, Da Silva J, Beaudoin L, Nel I, Tard C, Cagninacci L, Kiaf B, Oshima M, Diedisheim M, Salou M, Corbett A, Rossjohn J, McCluskey J, Scharfmann R, Battaglia M, Polak M, Lantz O, Beltrand J, Lehuen A. Cytotoxic and regulatory roles of mucosal-associated invariant T cells in type 1 diabetes. Nat Immunol. 2017 Dec;18(12):1321-1331. doi: 10.1038/ni.3854. Epub 2017 Oct 9.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Sykdommer i det endokrine systemet
- Metabolske sykdommer
- Autoimmune sykdommer
- Sykdommer i immunsystemet
- Glukosemetabolismeforstyrrelser
- Sukkersyke
- Diabetes mellitus, type 1
- Fysiologiske effekter av legemidler
- Gastrointestinale midler
- Diuretika
- Natriuretiske midler
- Diuretika, osmotisk
- Laktulose
- Mannitol
Andre studie-ID-numre
- C19-47
- 2020-A00312-37 (Annen identifikator: N° ID RCB)
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
produkt produsert i og eksportert fra USA
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .