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Interferenza tra le cellule T invarianti associate alla mucosa (MAIT) e il microbiota intestinale e la mucosa nello sviluppo del diabete di tipo 1 nei bambini (MAIT-DT1)

Interferenza tra cellule T invarianti associate alla mucosa e microbiota intestinale e mucosa nello sviluppo del diabete di tipo 1 nei bambini

Indagare in modo prospettico i cambiamenti nella frequenza, nel fenotipo e nella funzione delle cellule T invarianti associate alla mucosa (MAIT) in relazione al microbiota intestinale, all'integrità intestinale e alla presenza del virus B di Coxsackie in due coorti di pazienti pediatrici: pazienti con un'elevata rischio di diabete di tipo 1 e pazienti pediatrici con T1D di recente diagnosi rispetto ai soggetti di controllo

Compiti:

  1. Misurare la frequenza, il fenotipo e la funzione delle cellule MAIT del sangue nelle tre coorti
  2. Analizzare il microbiota intestinale e la presenza di Coxsackie B enterovirus (CVB) e il loro impatto sulla funzione delle cellule MAIT
  3. Per valutare l'integrità dell'intestino e analizzare la mucosa intestinale
  4. Integrare tutti i dati ottenuti con lo sviluppo e l'evoluzione del T1D

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

Materie: studio multiplo. I soggetti saranno inclusi nell'unità pediatrica di diabete ed endocrinologia dell'ospedale pediatrico Necker Sick e nell'unità pediatrica dell'ospedale ANTONY.

  • Recente insorgenza (RO) n=40: i pazienti di nuova insorgenza saranno inclusi poco dopo la diagnosi.
  • Coorte a rischio (AR) n=70: fratelli sottoposti a screening di routine di pazienti con T1D precedentemente risultati positivi per HLA DR3 e DR4 saranno invitati a far parte dello studio.
  • Coorte di controllo (C) (n=50): i soggetti di controllo saranno pazienti consultati presso l'ospedale Necker per i test endocrini
  • Controllo per endoscopia (CE) n= 20: pazienti consultati presso l'ospedale Necker o presso l'ospedale Antony per l'endoscopia UGI

Analisi:

Analisi delle cellule MAIT: per l'analisi FACS, le cellule MAIT saranno identificate come cellule T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. I marcatori di superficie saranno analizzati per determinare il loro stato di attivazione (CD25, CD69, CD44), il loro esaurimento (PD1, KLRG1, TIM3), la loro capacità di migrazione (CCR6) e la loro proliferazione e sopravvivenza saranno analizzate mediante l'espressione di Ki67 e BCL2. La produzione di citochine sarà valutata dopo l'attivazione di PMA-ionomicina, seguita da colorazione intracitoplasmatica con anticorpi contro IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B. Per determinare la capacità delle cellule MAIT di rispondere alla stimolazione del TCR (esaurimento), la stimolazione in vitro sarà effettuata in presenza di ligandi batterici specifici. L'espressione del marcatore di attivazione sarà analizzata mediante FACS e le citochine rilasciate nel supernatante mediante saggio basato su citometria.

Analisi del microbiota intestinale: i campioni di feci vengono raccolti e conservati direttamente in condizioni anaerobiche. Entro un'ora i campioni vengono processati: una frazione viene aliquotata e congelata a -80°C e un'altra frazione viene utilizzata per preparare il surnatante fecale per il biodosaggio dei ligandi MAIT, aliquotato e congelato. Saggio biologico per misurare la presenza di ligandi cellulari MAIT mediante saggi biologici utilizzando la linea cellulare WT3 e MR117 legato alla piastra. Sequenziamento 16S di tutti i campioni e in base ai risultati ottenuti con il biodosaggio e 16S, 10 campioni saranno selezionati per l'analisi metagenomica.

Stato di infezione da virus B di Coxsackie (CVB): in tutti i pazienti delle tre coorti verranno eseguiti anticorpi specifici contro il virus B di coxsackie e la misurazione di qPCR specifica per CVB in campioni di microbiota intestinale e verrà eseguita l'analisi della mucosa intestinale mediante q-PCR e immunochimica eseguita su un sottogruppo di pazienti.

Integrità intestinale: gli investigatori valuteranno la permeabilità dell'intestino utilizzando il test del lattulosio-mannitolo in un sottocampione di gruppi RO, RD e AR (> 5 anni di età, n = 20). In breve, dopo un digiuno notturno, i pazienti berranno 50 ml di soluzione di 5 g di lattulosio e 2 g di mannitolo. L'urina sarà raccolta prima e 5 ore dopo l'ingestione.

Analisi della mucosa intestinale: in un sottogruppo di pazienti (senza malattia celiaca determinata dal dosaggio di anticorpi contro la transglutaminasi), le biopsie duodenali saranno ottenute durante un'endoscopia IUG. La biopsia duodenale verrà eseguita in soggetti RD di età superiore a 8 anni e in soggetti CE di età superiore a 4 anni. Queste biopsie saranno analizzate mediante qPCR per l'espressione di molecole epiteliali chiave come la fucosil transferasi 2 (fut2), le proteine ​​della giunzione stretta (occludina, claudin4), i peptidi antimicrobici (Reg3, LL37) e la componente del muco (mucina 2). La funzione delle cellule immunitarie sarà anche valutata mediante q-PCR per citochine/molecole chiave come IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb e CVB.

Sulla base di studi precedenti, la dimensione del campione dovrebbe consentire differenze statistiche tra i gruppi AR, RO e C. I ricercatori prevedono di osservare anomalie delle cellule MAIT del sangue nei pazienti RO e in alcuni bambini a rischio dopo la sieroconversione ma prima dell'insorgenza del diabete. Questi nuovi dati rafforzeranno il nostro modello predittivo (vedi dati preliminari). Poiché le cellule MAIT riconoscono il ligando batterico, ipotizziamo che l'alterazione delle cellule MAIT possa verificarsi in parallelo con i cambiamenti del microbiota e/o l'infezione da CVB. Gli investigatori prevedono di osservare anomalie della mucosa intestinale nei bambini RO e la gravità di queste anomalie può essere correlata al livello di difetto delle cellule MAIT e alla presenza di infezione da CVB. I ricercatori si aspettano di dimostrare che le cellule MAIT rappresentano un nuovo biomarcatore della progressione verso il diabete, nonché un marcatore immunitario funzionale dell'aggressività della malattia autoimmune. In quanto tale, questo studio potrebbe determinare l'accurata finestra terapeutica per le strategie preventive basate sulla manipolazione delle cellule MAIT.

Tipo di studio

Osservativo

Iscrizione (Stimato)

180

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Contatto studio

Luoghi di studio

      • Antony, Francia, 92160
      • Paris, Francia, 75015
        • Reclutamento
        • Hopital Necker Enfants Malades
        • Contatto:

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

Da 1 anno a 15 anni (Bambino)

Accetta volontari sani

Metodo di campionamento

Campione non probabilistico

Popolazione di studio

Popolazione in studio: pazienti con recente diagnosi di diabete di tipo 1 e pazienti ad alto rischio di diabete di tipo 1

Descrizione

Criterio di inclusione:

Gruppo di esordio recente

  • età > 12 mesi e < 15 anni
  • diabete di tipo 1 di recente diagnosi secondo i criteri ISPAD

Soggetti a rischio:

  • età > 12 mesi e < 15 anni
  • fratelli di paziente diabetico di tipo 1
  • HLA DR3 e DR4 positivi

Soggetti di controllo:

  • età > 12 mesi e < 15 anni
  • nessun HLA associato a diabete di tipo 1 ad alto rischio
  • nessun anticorpo contro gli antigeni del pancreas

Soggetti di controllo per endoscopia UGI:

  • età > 12 mesi e < 15 anni
  • sospetto di celiachia o gastrite

Criteri di esclusione:

Per tutti i gruppi:

  • nessuna assicurazione sanitaria
  • genitori o tutori impossibilitati a firmare il consenso
  • anamnesi personale di malattia autoimmune e/o malattia infiammatoria ad eccezione del T1D per i gruppi RD e CE
  • uso di corticosteroidi durante il mese prima dell'inclusione
  • soggetti in gravidanza
  • controindicazione medica di argomenti anestetici

Per i soggetti di controllo per il controllo dell'endoscopia UGI e il gruppo di endoscopia di recente insorgenza:

  • età inferiore a 8 anni per il gruppo di endoscopia di recente insorgenza
  • età inferiore a 4 per il gruppo di controllo dell'endoscopia UGI
  • insufficienza cardiaca o respiratoria, disturbi del ritmo cardiaco, malattia della coagulazione, pazienti trattati con farmaci anticoagulanti o antiaggreganti
  • storia di allergia al farmaco anestetico

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

Coorti e interventi

Gruppo / Coorte
Intervento / Trattamento
pazienti di recente insorgenza
pazienti con diabete di tipo 1 di recente diagnosi
Per l'analisi FACS, le cellule MAIT saranno identificate come cellule T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. I marcatori di superficie saranno analizzati per determinare il loro stato di attivazione (CD25, CD69, CD44), il loro esaurimento (PD1, KLRG1, TIM3), la loro capacità di migrazione (CCR6) e la loro proliferazione e sopravvivenza saranno analizzate mediante l'espressione di Ki67 e BCL2.
La produzione di citochine sarà valutata dopo l'attivazione di PMA-ionomicina, seguita da colorazione intracitoplasmatica con anticorpi contro IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B. Per determinare la capacità delle cellule MAIT di rispondere alla stimolazione del TCR (esaurimento), la stimolazione in vitro sarà effettuata in presenza di ligandi batterici specifici. L'espressione del marcatore di attivazione sarà analizzata mediante FACS e le citochine rilasciate nel supernatante mediante saggio basato su citometria.
Dopo un digiuno notturno, i pazienti berranno 50 ml di soluzione di 5 g di lattulosio e 2 g di mannitolo. L'urina verrà raccolta prima e 5 ore dopo.
Raccolta e analisi della biopsia duodenale. Le biopsie saranno analizzate mediante qPCR per l'espressione di molecole epiteliali chiave come la fucosil transferasi 2 (fut2), le proteine ​​della giunzione stretta (occludina, claudin4), i peptidi antimicrobici (Reg3, LL37) e la componente del muco (mucina 2). La funzione delle cellule immunitarie sarà anche valutata mediante q-PCR per citochine/molecole chiave come IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb e CVB.
La sierologia contro CVB e la misurazione di qPCR specifica per CVB nei campioni di microbiota intestinale saranno eseguite in tutti i pazienti delle tre coorti e l'analisi della mucosa intestinale mediante qPCR e immunochimica con mAb anti-CVB VP1 sarà eseguita su un sottogruppo di pazienti.
I campioni di feci vengono raccolti e conservati direttamente in condizioni anaerobiche. Entro un'ora i campioni vengono processati: una frazione viene aliquotata e congelata a -80°C e un'altra frazione viene utilizzata per preparare il surnatante fecale per il biodosaggio dei ligandi MAIT, aliquotato e congelato. Saggio biologico per misurare la presenza di ligandi cellulari MAIT mediante saggi biologici utilizzando la linea cellulare WT3 e MR117 legato alla piastra. Sequenziamento 16S di tutti i campioni e in base ai risultati ottenuti con il biodosaggio e 16S, 10 campioni saranno selezionati per l'analisi metagenomica.
pazienti a rischio
pazienti con diabete di tipo 1 ad alto rischio genetico
Per l'analisi FACS, le cellule MAIT saranno identificate come cellule T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. I marcatori di superficie saranno analizzati per determinare il loro stato di attivazione (CD25, CD69, CD44), il loro esaurimento (PD1, KLRG1, TIM3), la loro capacità di migrazione (CCR6) e la loro proliferazione e sopravvivenza saranno analizzate mediante l'espressione di Ki67 e BCL2.
La produzione di citochine sarà valutata dopo l'attivazione di PMA-ionomicina, seguita da colorazione intracitoplasmatica con anticorpi contro IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B. Per determinare la capacità delle cellule MAIT di rispondere alla stimolazione del TCR (esaurimento), la stimolazione in vitro sarà effettuata in presenza di ligandi batterici specifici. L'espressione del marcatore di attivazione sarà analizzata mediante FACS e le citochine rilasciate nel supernatante mediante saggio basato su citometria.
Dopo un digiuno notturno, i pazienti berranno 50 ml di soluzione di 5 g di lattulosio e 2 g di mannitolo. L'urina verrà raccolta prima e 5 ore dopo.
La sierologia contro CVB e la misurazione di qPCR specifica per CVB nei campioni di microbiota intestinale saranno eseguite in tutti i pazienti delle tre coorti e l'analisi della mucosa intestinale mediante qPCR e immunochimica con mAb anti-CVB VP1 sarà eseguita su un sottogruppo di pazienti.
I campioni di feci vengono raccolti e conservati direttamente in condizioni anaerobiche. Entro un'ora i campioni vengono processati: una frazione viene aliquotata e congelata a -80°C e un'altra frazione viene utilizzata per preparare il surnatante fecale per il biodosaggio dei ligandi MAIT, aliquotato e congelato. Saggio biologico per misurare la presenza di ligandi cellulari MAIT mediante saggi biologici utilizzando la linea cellulare WT3 e MR117 legato alla piastra. Sequenziamento 16S di tutti i campioni e in base ai risultati ottenuti con il biodosaggio e 16S, 10 campioni saranno selezionati per l'analisi metagenomica.
soggetti di controllo
pazienti di controllo (nessun rischio di diabete di tipo 1 e nessun diabete di tipo 1 diagnosticato)
Per l'analisi FACS, le cellule MAIT saranno identificate come cellule T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. I marcatori di superficie saranno analizzati per determinare il loro stato di attivazione (CD25, CD69, CD44), il loro esaurimento (PD1, KLRG1, TIM3), la loro capacità di migrazione (CCR6) e la loro proliferazione e sopravvivenza saranno analizzate mediante l'espressione di Ki67 e BCL2.
La produzione di citochine sarà valutata dopo l'attivazione di PMA-ionomicina, seguita da colorazione intracitoplasmatica con anticorpi contro IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B. Per determinare la capacità delle cellule MAIT di rispondere alla stimolazione del TCR (esaurimento), la stimolazione in vitro sarà effettuata in presenza di ligandi batterici specifici. L'espressione del marcatore di attivazione sarà analizzata mediante FACS e le citochine rilasciate nel supernatante mediante saggio basato su citometria.
Dopo un digiuno notturno, i pazienti berranno 50 ml di soluzione di 5 g di lattulosio e 2 g di mannitolo. L'urina verrà raccolta prima e 5 ore dopo.
La sierologia contro CVB e la misurazione di qPCR specifica per CVB nei campioni di microbiota intestinale saranno eseguite in tutti i pazienti delle tre coorti e l'analisi della mucosa intestinale mediante qPCR e immunochimica con mAb anti-CVB VP1 sarà eseguita su un sottogruppo di pazienti.
I campioni di feci vengono raccolti e conservati direttamente in condizioni anaerobiche. Entro un'ora i campioni vengono processati: una frazione viene aliquotata e congelata a -80°C e un'altra frazione viene utilizzata per preparare il surnatante fecale per il biodosaggio dei ligandi MAIT, aliquotato e congelato. Saggio biologico per misurare la presenza di ligandi cellulari MAIT mediante saggi biologici utilizzando la linea cellulare WT3 e MR117 legato alla piastra. Sequenziamento 16S di tutti i campioni e in base ai risultati ottenuti con il biodosaggio e 16S, 10 campioni saranno selezionati per l'analisi metagenomica.
soggetti di controllo per endoscopia
pazienti senza diabete di tipo 1 che richiedono l'endoscopia UGI per qualsiasi motivo medico
Per l'analisi FACS, le cellule MAIT saranno identificate come cellule T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. I marcatori di superficie saranno analizzati per determinare il loro stato di attivazione (CD25, CD69, CD44), il loro esaurimento (PD1, KLRG1, TIM3), la loro capacità di migrazione (CCR6) e la loro proliferazione e sopravvivenza saranno analizzate mediante l'espressione di Ki67 e BCL2.
La produzione di citochine sarà valutata dopo l'attivazione di PMA-ionomicina, seguita da colorazione intracitoplasmatica con anticorpi contro IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B. Per determinare la capacità delle cellule MAIT di rispondere alla stimolazione del TCR (esaurimento), la stimolazione in vitro sarà effettuata in presenza di ligandi batterici specifici. L'espressione del marcatore di attivazione sarà analizzata mediante FACS e le citochine rilasciate nel supernatante mediante saggio basato su citometria.
Raccolta e analisi della biopsia duodenale. Le biopsie saranno analizzate mediante qPCR per l'espressione di molecole epiteliali chiave come la fucosil transferasi 2 (fut2), le proteine ​​della giunzione stretta (occludina, claudin4), i peptidi antimicrobici (Reg3, LL37) e la componente del muco (mucina 2). La funzione delle cellule immunitarie sarà anche valutata mediante q-PCR per citochine/molecole chiave come IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb e CVB.
La sierologia contro CVB e la misurazione di qPCR specifica per CVB nei campioni di microbiota intestinale saranno eseguite in tutti i pazienti delle tre coorti e l'analisi della mucosa intestinale mediante qPCR e immunochimica con mAb anti-CVB VP1 sarà eseguita su un sottogruppo di pazienti.
I campioni di feci vengono raccolti e conservati direttamente in condizioni anaerobiche. Entro un'ora i campioni vengono processati: una frazione viene aliquotata e congelata a -80°C e un'altra frazione viene utilizzata per preparare il surnatante fecale per il biodosaggio dei ligandi MAIT, aliquotato e congelato. Saggio biologico per misurare la presenza di ligandi cellulari MAIT mediante saggi biologici utilizzando la linea cellulare WT3 e MR117 legato alla piastra. Sequenziamento 16S di tutti i campioni e in base ai risultati ottenuti con il biodosaggio e 16S, 10 campioni saranno selezionati per l'analisi metagenomica.

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
frequenza delle cellule MAIT nel sangue
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
percentuale di cellule MAIT nel sangue periferico
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)

Misure di risultato secondarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Analisi dei marcatori di membrana delle cellule MAIT
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Cellule positive CD25 in percentuale, Cellule positive CD69 in percentuale, Cellule positive CD44 in percentuale, Cellule positive PD1 in percentuale, Cellule positive KLRG1 in percentuale, Cellule positive TIM3 in percentuale
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Produzione di citochine nel citoplasma del MAIT
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Anticorpi contro IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 e granzima B espressi in cellule %
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Misura dei ligandi cellulari MAIT
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Percentuale di cellule MAIT attivate in vitro quando coltivate in presenza del campione di feci del soggetto
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Presenza di CVB nelle feci
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Rilevamento ARN specifico di CVB nei campioni di feci dei soggetti mediante qPCR
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Immunoglobuline del sangue contro lo stato di infezione da CVB
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Anticorpi specifici (Ig G) contro le misurazioni del CVB nel campione di sangue dei pazienti
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Misurazione della permeabilità della mucosa intestinale intestinale
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Valutazione della permeabilità dell'intestino mediante il test del lattulosio-mannitolo. Concentrazione di lattulosio e manitolo nei campioni di urina dei soggetti in mg/dl
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Valutazione dell'integrità della mucosa intestinale
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
qPCR per l'espressione di molecole epiteliali chiave e citochine su campioni intestinali
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Sequenziamento di 16 S nelle feci dei soggetti
Lasso di tempo: Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)
Il sequenziamento del gene 16S rRNA sarà utilizzato per la classificazione e l'identificazione di specie microbiche nelle feci dei soggetti. Ogni specie sarà identificata e quantificata come percentuale del numero totale di specie identificate nelle feci.
Campione raccolto il giorno dell'arruolamento (gruppo di controllo e pazienti a rischio) o fino a 7 giorni dopo la diagnosi e il giorno dell'arruolamento (gruppo di insorgenza recente)

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Pubblicazioni e link utili

La persona responsabile dell'inserimento delle informazioni sullo studio fornisce volontariamente queste pubblicazioni. Questi possono riguardare qualsiasi cosa relativa allo studio.

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio (Effettivo)

1 gennaio 2022

Completamento primario (Stimato)

11 agosto 2026

Completamento dello studio (Stimato)

14 agosto 2027

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

8 giugno 2021

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

22 settembre 2021

Primo Inserito (Effettivo)

23 settembre 2021

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)

13 aprile 2026

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

8 aprile 2026

Ultimo verificato

1 aprile 2026

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)

Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?

NO

Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio

Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

prodotto fabbricato ed esportato dagli Stati Uniti

No

Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .

Prove cliniche su Analisi delle cellule MAIT

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