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Übersprechen zwischen Schleimhaut-assoziierten invarianten T (MAIT)-Zellen und der Darmmikrobiota und Schleimhaut bei der Entwicklung von Typ-1-Diabetes bei Kindern (MAIT-DT1)

Crosstalk zwischen Schleimhaut-assoziierten invarianten T-Zellen und der Darmmikrobiota und Schleimhaut bei der Entwicklung von Typ-1-Diabetes bei Kindern

Prospektive Untersuchung von Änderungen der Häufigkeit, des Phänotyps und der Funktion von Mukosa-assoziierten invarianten T-Zellen (MAIT) in Verbindung mit der Darmmikrobiota, der Darmintegrität und dem Vorhandensein des Coxsackie-Virus B in zwei Kohorten von pädiatrischen Patienten: Patienten mit hoher genetischer Veranlagung Risiko für Typ-1-Diabetes und pädiatrische Patienten mit kürzlich diagnostiziertem T1D im Vergleich zu Kontrollpersonen

Aufgaben:

  1. Messung der Häufigkeit, des Phänotyps und der Funktion von MAIT-Zellen im Blut in den drei Kohorten
  2. Analyse der Darmmikrobiota und des Coxsackie-B-Enterovirus (CVB) sowie deren Einfluss auf die MAIT-Zellfunktion
  3. Beurteilung der Darmintegrität und Analyse der Darmschleimhaut
  4. Integrieren aller Daten, die mit der T1D-Entwicklung und -Evolution gewonnen wurden

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Fächer: Multi-Studium. Die Probanden werden in die pädiatrische Diabetes- und Endokrinologieabteilung des Necker Sick-Kinderkrankenhauses und in die pädiatrische Abteilung des ANTONY-Krankenhauses aufgenommen.

  • Recent-onset (RO) n=40: Neu aufgetretene Patienten werden kurz nach der Diagnose aufgenommen.
  • Risikokohorte (AR) n = 70: Routinemäßig gescreente Geschwister von T1D-Patienten, die zuvor positiv auf HLA DR3 und DR4 getestet wurden, werden gebeten, an der Studie teilzunehmen.
  • Kontrollkohorte (C) (n = 50): Kontrollpersonen werden Patienten sein, die das Necker Hospital für endokrine Tests konsultieren
  • Kontrolle für Endoskopie (CE) n= 20: Patienten, die das Necker Hospital oder das Antony Hospital für eine UGI-Endoskopie konsultieren

Analyse:

MAIT-Zellanalyse: Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen. Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.

Darmmikrobiota-Analyse: Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.

Coxsackie-Virus B (CVB)-Infektionsstatus: Bei allen Patienten der drei Kohorten werden spezifische Antikörper gegen Coxsackie-Virus B und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Darmmikrobiota-Proben durchgeführt und die Darmschleimhaut durch q-PCR und Immunchemie analysiert an einer Untergruppe von Patienten durchgeführt.

Darmintegrität: Die Prüfärzte werden die Permeabilität des Darms unter Verwendung des Lactulose-Mannitol-Tests in einer Unterstichprobe der RO-, RD- und AR-Gruppen (> 5 Jahre alt, n = 20) beurteilen. Kurz gesagt, nach einer nächtlichen Fastenzeit trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannit. Der Urin wird vor und 5 Stunden nach der Einnahme gesammelt.

Darmschleimhautanalyse: Bei einer Untergruppe von Patienten (ohne Zöliakie, bestimmt durch die Dosierung von Antikörpern gegen Transglutaminase) werden während einer IUG-Endoskopie Zwölffingerdarmbiopsien entnommen. Eine Zwölffingerdarmbiopsie wird bei RD-Patienten über 8 Jahren und bei CE-Patienten über 4 Jahren durchgeführt. Diese Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction Proteins (Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert. Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.

Basierend auf früheren Studien sollte die Stichprobengröße statistische Unterschiede zwischen AR-, RO- und C-Gruppen zulassen. Die Forscher gehen davon aus, Anomalien der Blut-MAIT-Zellen bei RO-Patienten und einigen gefährdeten Kindern nach der Serokonversion, aber vor dem Ausbruch von Diabetes, zu beobachten. Diese neuen Daten werden unser Vorhersagemodell stärken (siehe vorläufige Daten). Da MAIT-Zellen bakterielle Liganden erkennen, nehmen wir an, dass MAIT-Zellen-Veränderungen parallel zu Mikrobiota-Veränderungen und/oder CVB-Infektion auftreten könnten. Die Forscher rechnen mit der Beobachtung von Anomalien der Darmschleimhaut bei RO-Kindern, und die Schwere dieser Anomalien kann mit dem Ausmaß des MAIT-Zelldefekts und dem Vorhandensein einer CVB-Infektion korrelieren. Die Forscher erwarten zu zeigen, dass MAIT-Zellen einen neuen Biomarker für das Fortschreiten zu Diabetes sowie einen funktionellen Immunmarker für die Aggressivität der Autoimmunerkrankung darstellen. Als solche könnte diese Studie das genaue therapeutische Fenster für vorbeugende Strategien basierend auf der Manipulation von MAIT-Zellen bestimmen.

Studientyp

Beobachtungs

Einschreibung (Geschätzt)

180

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studienorte

      • Antony, Frankreich, 92160
      • Paris, Frankreich, 75015
        • Rekrutierung
        • Hôpital Necker Enfants malades
        • Kontakt:

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

1 Jahr bis 15 Jahre (Kind)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Ja

Probenahmeverfahren

Nicht-Wahrscheinlichkeitsprobe

Studienpopulation

Studienpopulation: Patienten mit kürzlich diagnostiziertem Typ-1-Diabetes und Patienten mit einem hohen Risiko für Typ-1-Diabetes

Beschreibung

Einschlusskriterien:

Kürzlich aufgetretene Gruppe

  • Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
  • kürzlich diagnostizierter Typ-1-Diabetes gemäß ISPAD-Kriterien

Risikopersonen:

  • Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
  • Geschwister eines Typ-1-Diabetikers
  • HLA DR3 und DR4 positiv

Kontrollsubjekte:

  • Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
  • kein HLA im Zusammenhang mit Typ-1-Diabetes mit hohem Risiko
  • keine Antikörper gegen Pankreas-Antigene

Kontrollpersonen für die UGI-Endoskopie:

  • Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
  • Verdacht auf Zöliakie oder Gastritis

Ausschlusskriterien:

Für alle Gruppen:

  • keine Krankenversicherung
  • Eltern oder Erziehungsberechtigte können die Einverständniserklärung nicht unterschreiben
  • persönliche Vorgeschichte von Autoimmunerkrankungen und/oder entzündlichen Erkrankungen außer T1D für RD- und CE-Gruppen
  • Verwendung von Kortikosteroiden im Monat vor der Aufnahme
  • Schwangere
  • medizinische Kontraindikation für Anästhesiethemen

Für Kontrollpersonen für die UGI-Endoskopiekontrolle und die Gruppe mit kürzlich aufgetretener Endoskopie:

  • Alter unter 8 Jahren für die Gruppe mit kürzlich aufgetretener Endoskopie
  • Alter unter 4 Jahren für die UGI-Endoskopie-Kontrollgruppe
  • Herz- oder Ateminsuffizienz, Herzrhythmusstörungen, Gerinnungsstörung, Patienten, die mit gerinnungshemmenden oder antiagregant wirkenden Arzneimitteln behandelt werden
  • Vorgeschichte einer Allergie gegen Anästhetika

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

Kohorten und Interventionen

Gruppe / Kohorte
Intervention / Behandlung
kürzlich aufgetretene Patienten
Patienten mit kürzlich diagnostiziertem Typ-1-Diabetes
Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol. Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Zwölffingerdarmbiopsieentnahme und -analyse. Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction-Proteine ​​(Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert. Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
bei Risikopatienten
Patienten mit Typ-1-Diabetes mit hohem genetischem Risiko
Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol. Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
Kontrollsubjekte
Kontrollpatienten (kein Risiko für Typ-1-Diabetes und kein diagnostizierter Typ-1-Diabetes)
Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol. Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
Kontrollpersonen für die Endoskopie
Patienten ohne Typ-1-Diabetes, die aus medizinischen Gründen eine UGI-Endoskopie benötigen
Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Zwölffingerdarmbiopsieentnahme und -analyse. Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction-Proteine ​​(Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert. Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Frequenz der Blut-MAIT-Zellen
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Prozentsatz der MAIT-Zellen im peripheren Blut
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Analyse der Membranmarker von MAIT-Zellen
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
CD25-positive Zellen in Prozent, CD69-positive Zellen in Prozent, CD44-positive Zellen in Prozent, PD1-positive Zellen in Prozent, KLRG1-positive Zellen in Prozent, TIM3-positive Zellen in Prozent
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Zytokinproduktion im Zytoplasma des MAIT
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Antikörper gegen IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B, exprimiert in Zellen %
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Messungen von MAIT-Zellliganden
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Prozentsatz der MAIT-Zellen, die in vitro aktiviert wurden, wenn sie in Gegenwart einer Stuhlprobe des Subjekts kultiviert wurden
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Vorhandensein von CVB im Stuhl
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
CVB-spezifischer ARN-Nachweis in Stuhlproben von Probanden durch qPCR
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Blut-Immunglobuline gegen CVB-Infektionsstatus
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Spezifische Antikörper (Ig G) gegen CVB-Messungen in der Blutprobe des Patienten
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Messung der Durchlässigkeit der Darmschleimhaut
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Beurteilung der Durchlässigkeit des Darms mit dem Lactulose-Mannitol-Test. Konzentration von Lactulose und Manitol in Urinproben von Probanden in mg/dl
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Bewertung der Integrität der Darmschleimhaut
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
qPCR für die Expression wichtiger Epithelmoleküle und Zytokine in Darmproben
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
16 S-Sequenzierung in den Hockern der Probanden
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
Die 16S-rRNA-Gensequenzierung wird für die Klassifizierung und Identifizierung von Mikrobenarten im Stuhl von Probanden verwendet. Jede Art wird identifiziert und als Prozentsatz der Gesamtzahl identifizierter Arten im Stuhl quantifiziert.
Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

1. Januar 2022

Primärer Abschluss (Geschätzt)

11. August 2026

Studienabschluss (Geschätzt)

14. August 2027

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

8. Juni 2021

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

22. September 2021

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

23. September 2021

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

13. April 2026

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

8. April 2026

Zuletzt verifiziert

1. April 2026

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird

Nein

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