- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05054361
Übersprechen zwischen Schleimhaut-assoziierten invarianten T (MAIT)-Zellen und der Darmmikrobiota und Schleimhaut bei der Entwicklung von Typ-1-Diabetes bei Kindern (MAIT-DT1)
Crosstalk zwischen Schleimhaut-assoziierten invarianten T-Zellen und der Darmmikrobiota und Schleimhaut bei der Entwicklung von Typ-1-Diabetes bei Kindern
Prospektive Untersuchung von Änderungen der Häufigkeit, des Phänotyps und der Funktion von Mukosa-assoziierten invarianten T-Zellen (MAIT) in Verbindung mit der Darmmikrobiota, der Darmintegrität und dem Vorhandensein des Coxsackie-Virus B in zwei Kohorten von pädiatrischen Patienten: Patienten mit hoher genetischer Veranlagung Risiko für Typ-1-Diabetes und pädiatrische Patienten mit kürzlich diagnostiziertem T1D im Vergleich zu Kontrollpersonen
Aufgaben:
- Messung der Häufigkeit, des Phänotyps und der Funktion von MAIT-Zellen im Blut in den drei Kohorten
- Analyse der Darmmikrobiota und des Coxsackie-B-Enterovirus (CVB) sowie deren Einfluss auf die MAIT-Zellfunktion
- Beurteilung der Darmintegrität und Analyse der Darmschleimhaut
- Integrieren aller Daten, die mit der T1D-Entwicklung und -Evolution gewonnen wurden
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Fächer: Multi-Studium. Die Probanden werden in die pädiatrische Diabetes- und Endokrinologieabteilung des Necker Sick-Kinderkrankenhauses und in die pädiatrische Abteilung des ANTONY-Krankenhauses aufgenommen.
- Recent-onset (RO) n=40: Neu aufgetretene Patienten werden kurz nach der Diagnose aufgenommen.
- Risikokohorte (AR) n = 70: Routinemäßig gescreente Geschwister von T1D-Patienten, die zuvor positiv auf HLA DR3 und DR4 getestet wurden, werden gebeten, an der Studie teilzunehmen.
- Kontrollkohorte (C) (n = 50): Kontrollpersonen werden Patienten sein, die das Necker Hospital für endokrine Tests konsultieren
- Kontrolle für Endoskopie (CE) n= 20: Patienten, die das Necker Hospital oder das Antony Hospital für eine UGI-Endoskopie konsultieren
Analyse:
MAIT-Zellanalyse: Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert. Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen. Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt. Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Darmmikrobiota-Analyse: Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten. Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren. Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117. 16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
Coxsackie-Virus B (CVB)-Infektionsstatus: Bei allen Patienten der drei Kohorten werden spezifische Antikörper gegen Coxsackie-Virus B und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Darmmikrobiota-Proben durchgeführt und die Darmschleimhaut durch q-PCR und Immunchemie analysiert an einer Untergruppe von Patienten durchgeführt.
Darmintegrität: Die Prüfärzte werden die Permeabilität des Darms unter Verwendung des Lactulose-Mannitol-Tests in einer Unterstichprobe der RO-, RD- und AR-Gruppen (> 5 Jahre alt, n = 20) beurteilen. Kurz gesagt, nach einer nächtlichen Fastenzeit trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannit. Der Urin wird vor und 5 Stunden nach der Einnahme gesammelt.
Darmschleimhautanalyse: Bei einer Untergruppe von Patienten (ohne Zöliakie, bestimmt durch die Dosierung von Antikörpern gegen Transglutaminase) werden während einer IUG-Endoskopie Zwölffingerdarmbiopsien entnommen. Eine Zwölffingerdarmbiopsie wird bei RD-Patienten über 8 Jahren und bei CE-Patienten über 4 Jahren durchgeführt. Diese Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction Proteins (Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert. Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.
Basierend auf früheren Studien sollte die Stichprobengröße statistische Unterschiede zwischen AR-, RO- und C-Gruppen zulassen. Die Forscher gehen davon aus, Anomalien der Blut-MAIT-Zellen bei RO-Patienten und einigen gefährdeten Kindern nach der Serokonversion, aber vor dem Ausbruch von Diabetes, zu beobachten. Diese neuen Daten werden unser Vorhersagemodell stärken (siehe vorläufige Daten). Da MAIT-Zellen bakterielle Liganden erkennen, nehmen wir an, dass MAIT-Zellen-Veränderungen parallel zu Mikrobiota-Veränderungen und/oder CVB-Infektion auftreten könnten. Die Forscher rechnen mit der Beobachtung von Anomalien der Darmschleimhaut bei RO-Kindern, und die Schwere dieser Anomalien kann mit dem Ausmaß des MAIT-Zelldefekts und dem Vorhandensein einer CVB-Infektion korrelieren. Die Forscher erwarten zu zeigen, dass MAIT-Zellen einen neuen Biomarker für das Fortschreiten zu Diabetes sowie einen funktionellen Immunmarker für die Aggressivität der Autoimmunerkrankung darstellen. Als solche könnte diese Studie das genaue therapeutische Fenster für vorbeugende Strategien basierend auf der Manipulation von MAIT-Zellen bestimmen.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: jacques beltrand, MD, PhD
- Telefonnummer: +33144481545
- E-Mail: jacques.beltrand@aphp.fr
Studienorte
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Antony, Frankreich, 92160
- Noch keine Rekrutierung
- Hôpital Privé d'Antony
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Kontakt:
- Christine Rizk, MD
- E-Mail: christine.rizk@free.fr
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Paris, Frankreich, 75015
- Rekrutierung
- Hôpital Necker Enfants malades
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Kontakt:
- jacques Beltrand, MD
- Telefonnummer: +33144481545
- E-Mail: jacques.beltrand@aphp.fr
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Beschreibung
Einschlusskriterien:
Kürzlich aufgetretene Gruppe
- Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
- kürzlich diagnostizierter Typ-1-Diabetes gemäß ISPAD-Kriterien
Risikopersonen:
- Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
- Geschwister eines Typ-1-Diabetikers
- HLA DR3 und DR4 positiv
Kontrollsubjekte:
- Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
- kein HLA im Zusammenhang mit Typ-1-Diabetes mit hohem Risiko
- keine Antikörper gegen Pankreas-Antigene
Kontrollpersonen für die UGI-Endoskopie:
- Alter > 12 Monate und < 15 Jahre
- Verdacht auf Zöliakie oder Gastritis
Ausschlusskriterien:
Für alle Gruppen:
- keine Krankenversicherung
- Eltern oder Erziehungsberechtigte können die Einverständniserklärung nicht unterschreiben
- persönliche Vorgeschichte von Autoimmunerkrankungen und/oder entzündlichen Erkrankungen außer T1D für RD- und CE-Gruppen
- Verwendung von Kortikosteroiden im Monat vor der Aufnahme
- Schwangere
- medizinische Kontraindikation für Anästhesiethemen
Für Kontrollpersonen für die UGI-Endoskopiekontrolle und die Gruppe mit kürzlich aufgetretener Endoskopie:
- Alter unter 8 Jahren für die Gruppe mit kürzlich aufgetretener Endoskopie
- Alter unter 4 Jahren für die UGI-Endoskopie-Kontrollgruppe
- Herz- oder Ateminsuffizienz, Herzrhythmusstörungen, Gerinnungsstörung, Patienten, die mit gerinnungshemmenden oder antiagregant wirkenden Arzneimitteln behandelt werden
- Vorgeschichte einer Allergie gegen Anästhetika
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
Kohorten und Interventionen
Gruppe / Kohorte |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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kürzlich aufgetretene Patienten
Patienten mit kürzlich diagnostiziertem Typ-1-Diabetes
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Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert.
Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt.
Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol.
Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Zwölffingerdarmbiopsieentnahme und -analyse.
Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction-Proteine (Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert.
Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten.
Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren.
Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117.
16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
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bei Risikopatienten
Patienten mit Typ-1-Diabetes mit hohem genetischem Risiko
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Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert.
Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt.
Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol.
Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten.
Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren.
Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117.
16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
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Kontrollsubjekte
Kontrollpatienten (kein Risiko für Typ-1-Diabetes und kein diagnostizierter Typ-1-Diabetes)
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Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert.
Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt.
Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Nach nächtlichem Fasten trinken die Patienten 50 ml Lösung aus 5 g Lactulose und 2 g Mannitol.
Der Urin wird vor und 5 Stunden später gesammelt.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten.
Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren.
Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117.
16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
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Kontrollpersonen für die Endoskopie
Patienten ohne Typ-1-Diabetes, die aus medizinischen Gründen eine UGI-Endoskopie benötigen
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Für die FACS-Analyse werden MAIT-Zellen als CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T-Zellen identifiziert.
Oberflächenmarker werden analysiert, um ihren Aktivierungsstatus (CD25, CD69, CD44), ihre Erschöpfung (PD1, KLRG1, TIM3), ihre Migrationsfähigkeit (CCR6) und ihre Proliferation und ihr Überleben anhand der Ki67- und BCL2-Expression zu bestimmen.
Die Zytokinproduktion wird nach PMA-Ionomycin-Aktivierung bewertet, gefolgt von einer intrazytoplasmatischen Färbung mit Antikörpern gegen IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B. Um die Fähigkeit von MAIT-Zellen zur Reaktion auf eine TCR-Stimulation (Erschöpfung) zu bestimmen, wird eine In-vitro-Stimulation in Gegenwart spezifischer bakterieller Liganden durchgeführt.
Die Aktivierungsmarkerexpression wird durch FACS und die im Überstand freigesetzten Zytokine durch einen auf Zytometrie basierenden Assay analysiert.
Zwölffingerdarmbiopsieentnahme und -analyse.
Biopsien werden mittels qPCR auf die Expression wichtiger Epithelmoleküle wie Fucosyltransferase 2 (fut2), Tight Junction-Proteine (Occludin, Claudin4), antimikrobielle Peptide (Reg3, LL37) und Schleimkomponente (Mucin 2) analysiert.
Die Funktion der Immunzellen wird auch durch q-PCR für wichtige Zytokine/Moleküle wie IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb und CVB bewertet.
Serologie gegen CVB und CVB-spezifische qPCR-Messungen in Proben der Darmmikrobiota werden bei allen Patienten der drei Kohorten durchgeführt, und bei einer Untergruppe von Patienten wird eine Analyse der Darmschleimhaut durch qPCR und Immunchemie mit Anti-CVB-VP1-Protein-mAb durchgeführt.
Stuhlproben werden gesammelt und direkt unter anaeroben Bedingungen gehalten.
Innerhalb einer Stunde werden die Proben verarbeitet: Eine Fraktion wird aliquotiert und bei -80 °C eingefroren, und eine andere Fraktion wird zur Herstellung von Stuhlüberstand für den Bioassay von MAIT-Liganden verwendet, aliquotiert und eingefroren.
Bioassay zur Messung des Vorhandenseins von MAIT-Zellliganden durch Bioassays unter Verwendung der WT3-Zelllinie sowie plattengebundenem MR117.
16S-Sequenzierung aller Proben und gemäß den mit dem Bioassay und 16S erhaltenen Ergebnissen werden 10 Proben für die metagenomische Analyse ausgewählt.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Frequenz der Blut-MAIT-Zellen
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Prozentsatz der MAIT-Zellen im peripheren Blut
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Analyse der Membranmarker von MAIT-Zellen
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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CD25-positive Zellen in Prozent, CD69-positive Zellen in Prozent, CD44-positive Zellen in Prozent, PD1-positive Zellen in Prozent, KLRG1-positive Zellen in Prozent, TIM3-positive Zellen in Prozent
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Zytokinproduktion im Zytoplasma des MAIT
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Antikörper gegen IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 und Granzym B, exprimiert in Zellen %
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Messungen von MAIT-Zellliganden
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Prozentsatz der MAIT-Zellen, die in vitro aktiviert wurden, wenn sie in Gegenwart einer Stuhlprobe des Subjekts kultiviert wurden
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Vorhandensein von CVB im Stuhl
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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CVB-spezifischer ARN-Nachweis in Stuhlproben von Probanden durch qPCR
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Blut-Immunglobuline gegen CVB-Infektionsstatus
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Spezifische Antikörper (Ig G) gegen CVB-Messungen in der Blutprobe des Patienten
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Messung der Durchlässigkeit der Darmschleimhaut
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Beurteilung der Durchlässigkeit des Darms mit dem Lactulose-Mannitol-Test.
Konzentration von Lactulose und Manitol in Urinproben von Probanden in mg/dl
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Bewertung der Integrität der Darmschleimhaut
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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qPCR für die Expression wichtiger Epithelmoleküle und Zytokine in Darmproben
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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16 S-Sequenzierung in den Hockern der Probanden
Zeitfenster: Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Die 16S-rRNA-Gensequenzierung wird für die Klassifizierung und Identifizierung von Mikrobenarten im Stuhl von Probanden verwendet.
Jede Art wird identifiziert und als Prozentsatz der Gesamtzahl identifizierter Arten im Stuhl quantifiziert.
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Probe entnommen am Tag der Einschreibung (Kontrollgruppe und Risikopatienten) oder bis zu 7 Tage nach der Diagnose und dem Tag der Einschreibung (Gruppe mit kürzlichem Auftreten)
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Mitarbeiter und Ermittler
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Rouland M, Beaudoin L, Rouxel O, Bertrand L, Cagninacci L, Saffarian A, Pedron T, Gueddouri D, Guilmeau S, Burnol AF, Rachdi L, Tazi A, Mouries J, Rescigno M, Vergnolle N, Sansonetti P, Christine Rogner U, Lehuen A. Gut mucosa alterations and loss of segmented filamentous bacteria in type 1 diabetes are associated with inflammation rather than hyperglycaemia. Gut. 2022 Feb;71(2):296-308. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323664. Epub 2021 Feb 16.
- Rouxel O, Da Silva J, Beaudoin L, Nel I, Tard C, Cagninacci L, Kiaf B, Oshima M, Diedisheim M, Salou M, Corbett A, Rossjohn J, McCluskey J, Scharfmann R, Battaglia M, Polak M, Lantz O, Beltrand J, Lehuen A. Cytotoxic and regulatory roles of mucosal-associated invariant T cells in type 1 diabetes. Nat Immunol. 2017 Dec;18(12):1321-1331. doi: 10.1038/ni.3854. Epub 2017 Oct 9.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
- Erkrankungen des endokrinen Systems
- Stoffwechselerkrankungen
- Autoimmunerkrankungen
- Erkrankungen des Immunsystems
- Störungen des Glukosestoffwechsels
- Diabetes Mellitus
- Diabetes mellitus, Typ 1
- Physiologische Wirkungen von Arzneimitteln
- Magen-Darm-Wirkstoffe
- Diuretika
- Natriuretische Wirkstoffe
- Diuretika, Osmotika
- Lactulose
- Mannit
Andere Studien-ID-Nummern
- C19-47
- 2020-A00312-37 (Andere Kennung: N° ID RCB)
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
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