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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT05054361
Diaphonie entre les cellules T invariantes associées aux muqueuses (MAIT) et le microbiote intestinal et la muqueuse dans le développement du diabète de type 1 chez les enfants (MAIT-DT1)
Diaphonie entre les cellules T invariantes associées aux muqueuses et le microbiote intestinal et la muqueuse dans le développement du diabète de type 1 chez les enfants
Étudier de manière prospective les changements dans la fréquence, le phénotype et la fonction des cellules T invariantes associées aux muqueuses (MAIT) en lien avec le microbiote intestinal, l'intégrité intestinale et la présence du virus Coxsackie B dans deux cohortes de patients pédiatriques : les patients avec un risque de diabète de type 1 et patients pédiatriques atteints de DT1 récemment diagnostiqué par rapport aux sujets témoins
Tâches:
- Mesurer la fréquence, le phénotype et la fonction des cellules sanguines MAIT dans les trois cohortes
- Analyser le microbiote intestinal et la présence d'entérovirus Coxsackie B (CVB) et leur impact sur la fonction des cellules MAIT
- Pour évaluer l'intégrité intestinale et analyser la muqueuse intestinale
- Intégrer toutes les données obtenues avec le développement et l'évolution du DT1
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
- Test diagnostique: Analyse des cellules MAIT
- Test diagnostique: Analyse de la production de cytokines MAIT
- Test diagnostique: Test Lactulose/Mannitol
- Procédure: Endoscopie UGI
- Test diagnostique: Statut d'infection par le virus Coxsackie B
- Test diagnostique: Statut d'infection par le virus Coxsackie B
Description détaillée
Sujets : étude multiple. Les sujets seront inclus dans l'unité de diabète pédiatrique et d'endocrinologie de l'hôpital pédiatrique Necker Sick et dans l'unité pédiatrique de l'hôpital ANTONY.
- Apparition récente (RO) n=40 : les nouveaux patients seront inclus peu de temps après le diagnostic.
- Cohorte à risque (AR) n = 70 : les frères et sœurs systématiquement dépistés de patients DT1 précédemment testés positifs pour HLA DR3 et DR4 seront invités à faire partie de l'étude.
- Cohorte témoin (C) (n=50) : les sujets témoins seront des patients consultant à l'hôpital Necker pour des tests endocriniens
- Témoin pour Endoscopie (CE) n= 20 : patients consultant à l'hôpital Necker ou à l'hôpital d'Antony pour endoscopie UGI
Analyse:
Analyse des cellules MAIT : Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2. La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Analyse du microbiote intestinal : Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés en condition anaérobie. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
Statut d'infection par le virus Coxsackie B (CVB) : des anticorps spécifiques contre le virus coxsackie B et une mesure qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par q-PCR et immunochimie sera effectuée. réalisée sur un sous-ensemble de patients.
Intégrité intestinale : les enquêteurs évalueront la perméabilité de l'intestin à l'aide du test Lactulose-Mannitol dans un sous-échantillon des groupes RO, RD et AR (> 5 ans, n = 20). En bref après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol. L'urine sera recueillie avant et 5 heures après l'ingestion.
Analyse de la muqueuse intestinale : dans un sous-ensemble de patients (sans maladie coeliaque déterminée par le dosage des anticorps contre la transglutaminase), des biopsies duodénales seront obtenues lors d'une endoscopie IUG . La biopsie duodénale sera réalisée chez les sujets RD âgés de plus de 8 ans et chez les sujets CE âgés de plus de 4 ans. Ces biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2). La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.
Sur la base d'une étude précédente, la taille de l'échantillon devrait permettre des différences statistiques entre les groupes AR, RO et C. Les chercheurs prévoient d'observer des anomalies des cellules sanguines MAIT chez les patients RO et certains enfants à risque après la séroconversion mais avant l'apparition du diabète. Ces nouvelles données viendront renforcer notre modèle prédictif (voir données préliminaires). Étant donné que les cellules MAIT reconnaissent le ligand bactérien, nous émettons l'hypothèse que l'altération des cellules MAIT pourrait se produire parallèlement aux modifications du microbiote et/ou à l'infection par le CVB. Les chercheurs prévoient d'observer des anomalies de la muqueuse intestinale chez les enfants RO et la gravité de ces anomalies peut être corrélée au niveau de défaut des cellules MAIT et à la présence d'une infection à CVB. Les chercheurs espèrent démontrer que les cellules MAIT représentent un nouveau biomarqueur de progression vers le diabète ainsi qu'un marqueur immunitaire fonctionnel de l'agressivité de la maladie auto-immune. En tant que telle, cette étude pourrait déterminer la fenêtre thérapeutique précise pour les stratégies préventives basées sur la manipulation des cellules MAIT.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: jacques beltrand, MD, PhD
- Numéro de téléphone: +33144481545
- E-mail: jacques.beltrand@aphp.fr
Lieux d'étude
-
-
-
Antony, France, 92160
- Pas encore de recrutement
- Hopital Prive d'Antony
-
Contact:
- Christine Rizk, MD
- E-mail: christine.rizk@free.fr
-
Paris, France, 75015
- Recrutement
- Hôpital Necker Enfants Malades
-
Contact:
- jacques Beltrand, MD
- Numéro de téléphone: +33144481545
- E-mail: jacques.beltrand@aphp.fr
-
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
Groupe d'apparition récente
- âge > 12 mois et < 15 ans
- diabète de type 1 récemment diagnostiqué selon les critères ISPAD
Sujets à risque :
- âge > 12 mois et < 15 ans
- frères et sœurs d'un patient diabétique de type 1
- HLA DR3 et DR4 positifs
Sujets de contrôle :
- âge > 12 mois et < 15 ans
- aucun HLA associé au diabète de type 1 à haut risque
- pas d'anticorps contre les antigènes du pancréas
Sujets témoins pour l'endoscopie UGI :
- âge > 12 mois et < 15 ans
- suspicion de maladie cœliaque ou de gastrite
Critère d'exclusion:
Pour tous les groupes :
- pas d'assurance maladie
- parents ou tuteurs incapables de signer le consentement
- antécédents personnels de maladie auto-immune et/ou de maladie inflammatoire sauf du DT1 pour les groupes RD et CE
- prise de corticoïdes au cours du mois précédant l'inclusion
- sujets enceintes
- contre-indication médicale des sujets anesthésiques
Pour les sujets témoins du groupe contrôle endoscopie UGI et endoscopie d'apparition récente :
- âge inférieur à 8 ans pour le groupe d'endoscopie d'apparition récente
- âge inférieur à 4 ans pour le groupe témoin d'endoscopie UGI
- insuffisance cardiaque ou respiratoire, troubles du rythme cardiaque, maladie de la coagulation, patients traités par anticoagulant ou antiagrégant
- antécédent d'allergie au médicament anesthésiant
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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patients d'apparition récente
patients atteints de diabète de type 1 récemment diagnostiqué
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Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+.
Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques.
L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol.
L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
Prélèvement et analyse de biopsie duodénale.
Les biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2).
La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies.
En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé.
Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque.
Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
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patients à risque
patients avec un diabète de type 1 à haut risque génétique
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Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+.
Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques.
L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol.
L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies.
En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé.
Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque.
Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
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sujets témoins
patients témoins (pas de risque de diabète de type 1 et pas de diabète de type 1 diagnostiqué)
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Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+.
Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques.
L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol.
L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies.
En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé.
Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque.
Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
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sujets témoins pour l'endoscopie
patients sans diabète de type 1 nécessitant une endoscopie UGI pour une raison médicale
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Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+.
Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques.
L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Prélèvement et analyse de biopsie duodénale.
Les biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2).
La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies.
En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé.
Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque.
Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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fréquence des cellules MAIT du sang
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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pourcentage de cellules MAIT dans le sang périphérique
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Analyse des marqueurs membranaires des cellules MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Cellules positives CD25 en pourcentage, Cellules positives CD69 en pourcentage, Cellules positives CD44 en pourcentage, Cellules positives PD1 en pourcentage, Cellules positives KLRG1 en pourcentage, Cellules positives TIM3 en pourcentage
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Production de cytokines dans le cytoplasme du MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Anticorps contre IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 et granzyme B exprimés en % de cellules
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Mesures des ligands des cellules MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Pourcentage de cellules MAIT activées in vitro lorsqu'elles sont cultivées en présence d'un échantillon de selles sujet
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Présence de CVB dans les selles
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Détection d'ARN spécifique de CVB dans des échantillons de selles de sujets par qPCR
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Statut des immunoglobulines sanguines contre l'infection à CVB
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Anticorps spécifiques (Ig G) contre les mesures de CVB dans l'échantillon de sang des patients
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Mesure de la perméabilité de la muqueuse intestinale
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Évaluation de la perméabilité de l'intestin par le test Lactulose-Mannitol.
Concentration de lactulose et de manitol dans les échantillons d'urine des sujets en mg/dl
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Évaluation de l'intégrité de la muqueuse intestinale
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés et de cytokines sur des échantillons intestinaux
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Séquençage du 16 S dans les selles des sujets
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Le séquençage du gène ARNr 16S sera utilisé pour la classification et l'identification des espèces de microbes dans les selles des sujets.
Chaque espèce sera identifiée et quantifiée en pourcentage du nombre total d'espèces identifiées dans les selles.
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Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
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Collaborateurs et enquêteurs
Publications et liens utiles
Publications générales
- Rouxel O, Da Silva J, Beaudoin L, Nel I, Tard C, Cagninacci L, Kiaf B, Oshima M, Diedisheim M, Salou M, Corbett A, Rossjohn J, McCluskey J, Scharfmann R, Battaglia M, Polak M, Lantz O, Beltrand J, Lehuen A. Cytotoxic and regulatory roles of mucosal-associated invariant T cells in type 1 diabetes. Nat Immunol. 2017 Dec;18(12):1321-1331. doi: 10.1038/ni.3854. Epub 2017 Oct 9. Erratum In: Nat Immunol. 2018 Jun 7;:
- Rouland M, Beaudoin L, Rouxel O, Bertrand L, Cagninacci L, Saffarian A, Pedron T, Gueddouri D, Guilmeau S, Burnol AF, Rachdi L, Tazi A, Mouries J, Rescigno M, Vergnolle N, Sansonetti P, Christine Rogner U, Lehuen A. Gut mucosa alterations and loss of segmented filamentous bacteria in type 1 diabetes are associated with inflammation rather than hyperglycaemia. Gut. 2022 Feb;71(2):296-308. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323664. Epub 2021 Feb 16.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Troubles du métabolisme du glucose
- Maladies métaboliques
- Maladies du système immunitaire
- Maladies auto-immunes
- Maladies du système endocrinien
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- Diabète sucré, type 1
- Effets physiologiques des médicaments
- Agents gastro-intestinaux
- Agents natriurétiques
- Diurétiques, osmotiques
- Diurétiques
- Lactulose
- Mannitol
Autres numéros d'identification d'étude
- C19-47
- 2020-A00312-37 (Autre identifiant: N° ID RCB)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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