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Diaphonie entre les cellules T invariantes associées aux muqueuses (MAIT) et le microbiote intestinal et la muqueuse dans le développement du diabète de type 1 chez les enfants (MAIT-DT1)

Diaphonie entre les cellules T invariantes associées aux muqueuses et le microbiote intestinal et la muqueuse dans le développement du diabète de type 1 chez les enfants

Étudier de manière prospective les changements dans la fréquence, le phénotype et la fonction des cellules T invariantes associées aux muqueuses (MAIT) en lien avec le microbiote intestinal, l'intégrité intestinale et la présence du virus Coxsackie B dans deux cohortes de patients pédiatriques : les patients avec un risque de diabète de type 1 et patients pédiatriques atteints de DT1 récemment diagnostiqué par rapport aux sujets témoins

Tâches:

  1. Mesurer la fréquence, le phénotype et la fonction des cellules sanguines MAIT dans les trois cohortes
  2. Analyser le microbiote intestinal et la présence d'entérovirus Coxsackie B (CVB) et leur impact sur la fonction des cellules MAIT
  3. Pour évaluer l'intégrité intestinale et analyser la muqueuse intestinale
  4. Intégrer toutes les données obtenues avec le développement et l'évolution du DT1

Aperçu de l'étude

Description détaillée

Sujets : étude multiple. Les sujets seront inclus dans l'unité de diabète pédiatrique et d'endocrinologie de l'hôpital pédiatrique Necker Sick et dans l'unité pédiatrique de l'hôpital ANTONY.

  • Apparition récente (RO) n=40 : les nouveaux patients seront inclus peu de temps après le diagnostic.
  • Cohorte à risque (AR) n = 70 : les frères et sœurs systématiquement dépistés de patients DT1 précédemment testés positifs pour HLA DR3 et DR4 seront invités à faire partie de l'étude.
  • Cohorte témoin (C) (n=50) : les sujets témoins seront des patients consultant à l'hôpital Necker pour des tests endocriniens
  • Témoin pour Endoscopie (CE) n= 20 : patients consultant à l'hôpital Necker ou à l'hôpital d'Antony pour endoscopie UGI

Analyse:

Analyse des cellules MAIT : Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2. La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.

Analyse du microbiote intestinal : Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés en condition anaérobie. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.

Statut d'infection par le virus Coxsackie B (CVB) : des anticorps spécifiques contre le virus coxsackie B et une mesure qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par q-PCR et immunochimie sera effectuée. réalisée sur un sous-ensemble de patients.

Intégrité intestinale : les enquêteurs évalueront la perméabilité de l'intestin à l'aide du test Lactulose-Mannitol dans un sous-échantillon des groupes RO, RD et AR (> 5 ans, n = 20). En bref après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol. L'urine sera recueillie avant et 5 heures après l'ingestion.

Analyse de la muqueuse intestinale : dans un sous-ensemble de patients (sans maladie coeliaque déterminée par le dosage des anticorps contre la transglutaminase), des biopsies duodénales seront obtenues lors d'une endoscopie IUG . La biopsie duodénale sera réalisée chez les sujets RD âgés de plus de 8 ans et chez les sujets CE âgés de plus de 4 ans. Ces biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2). La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.

Sur la base d'une étude précédente, la taille de l'échantillon devrait permettre des différences statistiques entre les groupes AR, RO et C. Les chercheurs prévoient d'observer des anomalies des cellules sanguines MAIT chez les patients RO et certains enfants à risque après la séroconversion mais avant l'apparition du diabète. Ces nouvelles données viendront renforcer notre modèle prédictif (voir données préliminaires). Étant donné que les cellules MAIT reconnaissent le ligand bactérien, nous émettons l'hypothèse que l'altération des cellules MAIT pourrait se produire parallèlement aux modifications du microbiote et/ou à l'infection par le CVB. Les chercheurs prévoient d'observer des anomalies de la muqueuse intestinale chez les enfants RO et la gravité de ces anomalies peut être corrélée au niveau de défaut des cellules MAIT et à la présence d'une infection à CVB. Les chercheurs espèrent démontrer que les cellules MAIT représentent un nouveau biomarqueur de progression vers le diabète ainsi qu'un marqueur immunitaire fonctionnel de l'agressivité de la maladie auto-immune. En tant que telle, cette étude pourrait déterminer la fenêtre thérapeutique précise pour les stratégies préventives basées sur la manipulation des cellules MAIT.

Type d'étude

Observationnel

Inscription (Anticipé)

180

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Coordonnées de l'étude

Lieux d'étude

      • Antony, France, 92160
      • Paris, France, 75015
        • Recrutement
        • Hôpital Necker Enfants Malades
        • Contact:

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

1 an à 15 ans (Enfant)

Accepte les volontaires sains

Oui

Sexes éligibles pour l'étude

Tout

Méthode d'échantillonnage

Échantillon non probabiliste

Population étudiée

Population étudiée : patients récemment diagnostiqués avec un diabète de type 1 et patients à haut risque de diabète de type 1

La description

Critère d'intégration:

Groupe d'apparition récente

  • âge > 12 mois et < 15 ans
  • diabète de type 1 récemment diagnostiqué selon les critères ISPAD

Sujets à risque :

  • âge > 12 mois et < 15 ans
  • frères et sœurs d'un patient diabétique de type 1
  • HLA DR3 et DR4 positifs

Sujets de contrôle :

  • âge > 12 mois et < 15 ans
  • aucun HLA associé au diabète de type 1 à haut risque
  • pas d'anticorps contre les antigènes du pancréas

Sujets témoins pour l'endoscopie UGI :

  • âge > 12 mois et < 15 ans
  • suspicion de maladie cœliaque ou de gastrite

Critère d'exclusion:

Pour tous les groupes :

  • pas d'assurance maladie
  • parents ou tuteurs incapables de signer le consentement
  • antécédents personnels de maladie auto-immune et/ou de maladie inflammatoire sauf du DT1 pour les groupes RD et CE
  • prise de corticoïdes au cours du mois précédant l'inclusion
  • sujets enceintes
  • contre-indication médicale des sujets anesthésiques

Pour les sujets témoins du groupe contrôle endoscopie UGI et endoscopie d'apparition récente :

  • âge inférieur à 8 ans pour le groupe d'endoscopie d'apparition récente
  • âge inférieur à 4 ans pour le groupe témoin d'endoscopie UGI
  • insuffisance cardiaque ou respiratoire, troubles du rythme cardiaque, maladie de la coagulation, patients traités par anticoagulant ou antiagrégant
  • antécédent d'allergie au médicament anesthésiant

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

Cohortes et interventions

Groupe / Cohorte
Intervention / Traitement
patients d'apparition récente
patients atteints de diabète de type 1 récemment diagnostiqué
Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol. L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
Prélèvement et analyse de biopsie duodénale. Les biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2). La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
patients à risque
patients avec un diabète de type 1 à haut risque génétique
Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol. L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
sujets témoins
patients témoins (pas de risque de diabète de type 1 et pas de diabète de type 1 diagnostiqué)
Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Après une nuit de jeûne, les patients boiront 50 ml de solution de 5 g de lactulose et 2 g de mannitol. L'urine sera recueillie pendant avant et 5 heures plus tard.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.
sujets témoins pour l'endoscopie
patients sans diabète de type 1 nécessitant une endoscopie UGI pour une raison médicale
Pour l'analyse FACS, les cellules MAIT seront identifiées comme des cellules T CD3+ CD4- CD161high Vα7.2+. Les marqueurs de surface seront analysés pour déterminer leur statut d'activation (CD25, CD69, CD44), leur épuisement (PD1, KLRG1, TIM3), leur capacité de migration (CCR6), et leur prolifération et survie seront analysés par l'expression de Ki67 et BCL2.
La production de cytokines sera évaluée après l'activation de la PMA-ionomycine, suivie d'une coloration intracytoplasmique avec des anticorps contre l'IL-2, l'IFN-γ, le TNF-α, l'IL-2, l'IL-4, l'IL-10, l'IL-13, l'IL-17 et le granzyme B. Pour déterminer la capacité des cellules MAIT à répondre à la stimulation du TCR (épuisement), une stimulation in vitro sera réalisée en présence de ligands bactériens spécifiques. L'expression du marqueur d'activation sera analysée par FACS et les cytokines libérées dans le surnageant par un test basé sur la cytométrie.
Prélèvement et analyse de biopsie duodénale. Les biopsies seront analysées par qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés telles que la fucosyl transférase 2 (fut2), les protéines des jonctions serrées (occludine, claudine4), les peptides antimicrobiens (Reg3, LL37) et le composant du mucus (mucine 2). La fonction des cellules immunitaires sera également évaluée par q-PCR pour les cytokines/molécules clés telles que IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb et CVB.
La sérologie contre le CVB et la mesure de la qPCR spécifique du CVB dans des échantillons de microbiote intestinal seront effectuées chez tous les patients des trois cohortes, et l'analyse de la muqueuse intestinale par qPCR et immunochimie avec la protéine mAb anti-CVB VP1 sera effectuée sur un sous-ensemble de patients.
Des échantillons de selles sont prélevés et directement conservés dans des conditions anaérobies. En une heure, les échantillons sont traités : une fraction est aliquotée et congelée à -80 °C et une autre fraction est utilisée pour préparer le surnageant fécal pour le dosage biologique des ligands MAIT, aliquoté et congelé. Essai biologique pour mesurer la présence de ligands de cellules MAIT par des essais biologiques utilisant la lignée cellulaire WT3 ainsi que le MR117 lié à la plaque. Séquençage 16S de tous les échantillons et selon les résultats obtenus avec le bioessai et le 16S, 10 échantillons seront sélectionnés pour l'analyse métagénomique.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
fréquence des cellules MAIT du sang
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
pourcentage de cellules MAIT dans le sang périphérique
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Analyse des marqueurs membranaires des cellules MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Cellules positives CD25 en pourcentage, Cellules positives CD69 en pourcentage, Cellules positives CD44 en pourcentage, Cellules positives PD1 en pourcentage, Cellules positives KLRG1 en pourcentage, Cellules positives TIM3 en pourcentage
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Production de cytokines dans le cytoplasme du MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Anticorps contre IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 et granzyme B exprimés en % de cellules
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Mesures des ligands des cellules MAIT
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Pourcentage de cellules MAIT activées in vitro lorsqu'elles sont cultivées en présence d'un échantillon de selles sujet
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Présence de CVB dans les selles
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Détection d'ARN spécifique de CVB dans des échantillons de selles de sujets par qPCR
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Statut des immunoglobulines sanguines contre l'infection à CVB
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Anticorps spécifiques (Ig G) contre les mesures de CVB dans l'échantillon de sang des patients
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Mesure de la perméabilité de la muqueuse intestinale
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Évaluation de la perméabilité de l'intestin par le test Lactulose-Mannitol. Concentration de lactulose et de manitol dans les échantillons d'urine des sujets en mg/dl
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Évaluation de l'intégrité de la muqueuse intestinale
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
qPCR pour l'expression de molécules épithéliales clés et de cytokines sur des échantillons intestinaux
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Séquençage du 16 S dans les selles des sujets
Délai: Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)
Le séquençage du gène ARNr 16S sera utilisé pour la classification et l'identification des espèces de microbes dans les selles des sujets. Chaque espèce sera identifiée et quantifiée en pourcentage du nombre total d'espèces identifiées dans les selles.
Échantillon prélevé le jour de l'inscription (groupe témoin et patients à risque) ou jusqu'à 7 jours après le diagnostic et le jour de l'inscription (groupe d'apparition récente)

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

1 janvier 2022

Achèvement primaire (Anticipé)

1 octobre 2024

Achèvement de l'étude (Anticipé)

1 octobre 2025

Dates d'inscription aux études

Première soumission

8 juin 2021

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

22 septembre 2021

Première publication (Réel)

23 septembre 2021

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

4 août 2022

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

2 août 2022

Dernière vérification

1 août 2022

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

Essais cliniques sur Analyse des cellules MAIT

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