Deze pagina is automatisch vertaald en de nauwkeurigheid van de vertaling kan niet worden gegarandeerd. Raadpleeg de Engelse versie voor een brontekst.

Overspraak tussen mucosaal-geassocieerde invariante T-cellen (MAIT) en de darmmicrobiota en -mucosa bij de ontwikkeling van diabetes type 1 bij kinderen (MAIT-DT1)

Overspraak tussen slijmvlies-geassocieerde invariante T-cellen en de darmmicrobiota en slijmvliezen bij de ontwikkeling van diabetes type 1 bij kinderen

Op een prospectieve manier veranderingen in Mucosal-Associated Invariant T (MAIT)-cellen frequentie, fenotype en functie onderzoeken in verband met de darmmicrobiota, darmintegriteit en de aanwezigheid van Coxsackie virus B in twee cohorten van pediatrische patiënten: patiënten met een hoog genetisch risico op diabetes type 1 en pediatrische patiënten met recent gediagnosticeerde T1D in vergelijking met controlepersonen

Taken:

  1. Om de frequentie, het fenotype en de functie van MAIT-bloedcellen in de drie cohorten te meten
  2. Om de darmmicrobiota en de aanwezigheid van Coxsackie B enterovirus (CVB) en hun impact op de MAIT-celfunctie te analyseren
  3. Om de darmintegriteit te evalueren en het darmslijmvlies te analyseren
  4. Om alle gegevens te integreren die zijn verkregen met de ontwikkeling en evolutie van T1D

Studie Overzicht

Gedetailleerde beschrijving

Onderwerpen: Meerstudie. Onderwerpen zullen worden opgenomen in de afdeling pediatrische diabetes en endocrinologie in het Necker Sick-kinderziekenhuis en in de pediatrische afdeling van het ANTONY-ziekenhuis.

  • Recent onset (RO) n=40: Nieuwe patiënten zullen kort na de diagnose worden opgenomen.
  • Risicocohort (AR) n=70: Routinematig gescreende broers en zussen van T1D-patiënten die eerder positief testten op HLA DR3 en DR4 zullen worden gevraagd om deel te nemen aan het onderzoek.
  • Controle (C) cohort (n=50): Controlepersonen zullen patiënten zijn die in het Necker-ziekenhuis consulteren voor endocriene testen
  • Controle voor endoscopie (CE) n= 20: patiënten raadplegen Necker Ziekenhuis of Antony ziekenhuis voor UGI endoscopie

Analyse:

MAIT-celanalyse: Voor FACS-analyse zullen MAIT-cellen worden geïdentificeerd als CD3+ CD4-CD161 hoge Vα7.2+ T-cellen. Oppervlaktemarkers zullen worden geanalyseerd om hun activeringsstatus (CD25, CD69, CD44), hun uitputting (PD1, KLRG1, TIM3), hun migratiecapaciteit (CCR6) en hun proliferatie en overleving te bepalen door Ki67- en BCL2-expressie. Cytokineproductie zal worden beoordeeld na activering van PMA-ionomycine, gevolgd door intracytoplasmatische kleuring met antilichamen tegen IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B. Om het vermogen van MAIT-cellen om te reageren op TCR-stimulatie (uitputting) te bepalen, zal in vitro stimulatie worden uitgevoerd in aanwezigheid van specifieke bacteriële liganden. Activeringsmarkerexpressie zal worden geanalyseerd door FACS en cytokines die vrijkomen in het supernatant door middel van op cytometrie gebaseerde assay.

Darmmicrobiota-analyse: ontlastingsmonsters worden verzameld en direct onder anaerobe omstandigheden gehouden. Binnen een uur worden de monsters verwerkt: een fractie wordt in porties verdeeld en ingevroren bij -80°C en een andere fractie wordt gebruikt om fecaal supernatant te bereiden voor de bioassay van MAIT-liganden, in porties verdeeld en ingevroren. Bioassay om de aanwezigheid van MAIT-celliganden te meten door middel van bioassays met WT3-cellijn en plaatgebonden MR117. 16S-sequencing van alle monsters en volgens de resultaten verkregen met de bioassay en 16S, zullen 10 monsters worden geselecteerd voor metagenomische analyse.

Coxsackie virus B (CVB) infectiestatus: Specifieke antilichamen tegen coxsackie virus B en CVB-specifieke-qPCR-metingen in darmmicrobiota-monsters zullen worden uitgevoerd bij alle patiënten van de drie cohorten, en analyse van het darmslijmvlies door middel van q-PCR en immunochemie zal worden uitgevoerd. uitgevoerd op een subgroep van patiënten.

Darmintegriteit: de onderzoekers zullen de doorlaatbaarheid van de darm beoordelen met behulp van de Lactulose-Mannitol-test in een submonster van RO-, RD- en AR-groepen (> 5 jaar, n=20). In het kort na een nacht vasten drinken de patiënten 50 ml oplossing van 5 g lactulose en 2 g mannitol. Urine wordt verzameld vóór en 5 uur na inname.

Darmslijmvliesanalyse: Bij een subgroep van patiënten (zonder coeliakie zoals bepaald door de dosering van antilichamen tegen transglutaminase), zullen duodenale biopsieën worden verkregen tijdens een IUG-endoscopie. Duodenale biopsie zal worden uitgevoerd bij RD-patiënten ouder dan 8 jaar en bij CE-patiënten ouder dan 4 jaar. Deze biopsieën zullen door qPCR worden geanalyseerd op de expressie van belangrijke epitheelmoleculen zoals het fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction-eiwitten (occludin, claudin4), antimicrobiële peptiden (Reg3, LL37) en mucuscomponent (mucin 2). De functie van immuuncellen zal ook worden beoordeeld door middel van q-PCR voor belangrijke cytokines/moleculen zoals IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb en CVB.

Op basis van eerder onderzoek zou de steekproefomvang statistische verschillen tussen AR-, RO- en C-groepen mogelijk moeten maken. De onderzoekers verwachten MAIT-celafwijkingen in het bloed waar te nemen bij RO-patiënten en sommige risicokinderen na seroconversie maar vóór het begin van de diabetes. Deze nieuwe gegevens zullen ons voorspellend model versterken (zie voorlopige gegevens). Aangezien MAIT-cellen bacterieel ligand herkennen, veronderstellen we dat wijziging van MAIT-cellen parallel kan optreden met veranderingen in de microbiota en/of CVB-infectie. De onderzoekers anticiperen op het waarnemen van afwijkingen in het darmslijmvlies bij RO-kinderen en de ernst van deze afwijkingen kan correleren met het niveau van defecte MAIT-cellen en de aanwezigheid van CVB-infectie. De onderzoekers verwachten aan te tonen dat MAIT-cellen een nieuwe biomarker vertegenwoordigen voor progressie naar diabetes, evenals een functionele immuunmarker voor de agressiviteit van de auto-immuunziekte. Als zodanig zou deze studie het juiste therapeutische venster kunnen bepalen voor preventieve strategieën op basis van MAIT-celmanipulatie.

Studietype

Observationeel

Inschrijving (Geschat)

180

Contacten en locaties

In dit gedeelte vindt u de contactgegevens van degenen die het onderzoek uitvoeren en informatie over waar dit onderzoek wordt uitgevoerd.

Studiecontact

Studie Locaties

      • Antony, Frankrijk, 92160
      • Paris, Frankrijk, 75015
        • Werving
        • Hôpital Necker Enfants malades
        • Contact:

Deelname Criteria

Onderzoekers zoeken naar mensen die aan een bepaalde beschrijving voldoen, de zogenaamde geschiktheidscriteria. Enkele voorbeelden van deze criteria zijn iemands algemene gezondheidstoestand of eerdere behandelingen.

Geschiktheidscriteria

Leeftijden die in aanmerking komen voor studie

1 jaar tot 15 jaar (Kind)

Accepteert gezonde vrijwilligers

Ja

Bemonsteringsmethode

Niet-waarschijnlijkheidssteekproef

Studie Bevolking

Studiepopulatie: patiënten die recent diabetes type 1 hebben gekregen en patiënten met een hoog risico op diabetes type 1

Beschrijving

Inclusiecriteria:

Recent onset groep

  • leeftijd > 12 maanden en < 15 jaar
  • recent gediagnosticeerde diabetes type 1 volgens ISPAD-criteria

Risicopersonen:

  • leeftijd > 12 maanden en < 15 jaar
  • broers en zussen van type 1 diabetespatiënt
  • HLA DR3 en DR4 positief

Controle onderwerpen:

  • leeftijd > 12 maanden en < 15 jaar
  • geen HLA geassocieerd met diabetes type 1 met een hoog risico
  • geen antilichamen tegen pancreasantigenen

Controlepersonen voor UGI-endoscopie:

  • leeftijd > 12 maanden en < 15 jaar
  • vermoeden van coeliakie of gastritis

Uitsluitingscriteria:

Voor alle groepen:

  • geen zorgverzekering
  • ouders of begeleiders die de toestemming niet kunnen ondertekenen
  • persoonlijke voorgeschiedenis van auto-immuunziekte en/of ontstekingsziekte behalve van T1D voor RD- en CE-groepen
  • gebruik van corticosteroïden in de maand voor opname
  • zwangere onderwerpen
  • medische contra-indicatie van anesthetische onderwerpen

Voor controlepersonen voor UGI-endoscopiecontrole en Recent onset-endoscopiegroep:

  • leeftijd jonger dan 8 jaar voor de groep Recent onset-endoscopie
  • leeftijd jonger dan 4 jaar voor UGI-endoscopiecontrolegroep
  • hart- of ademhalingsinsufficiëntie, hartritmestoornissen, stollingsziekte, patiënten die worden behandeld met anticoagulantia of antiaggregatiemedicijnen
  • voorgeschiedenis van allergie voor anestheticum

Studie plan

Dit gedeelte bevat details van het studieplan, inclusief hoe de studie is opgezet en wat de studie meet.

Hoe is de studie opgezet?

Ontwerpdetails

Cohorten en interventies

Groep / Cohort
Interventie / Behandeling
recent ontstane patiënten
patiënten met recent gediagnosticeerde diabetes type 1
Voor FACS-analyse zullen MAIT-cellen worden geïdentificeerd als CD3+ CD4-CD161 hoge Vα7.2+ T-cellen. Oppervlaktemarkers zullen worden geanalyseerd om hun activeringsstatus (CD25, CD69, CD44), hun uitputting (PD1, KLRG1, TIM3), hun migratiecapaciteit (CCR6) en hun proliferatie en overleving te bepalen door Ki67- en BCL2-expressie.
Cytokineproductie zal worden beoordeeld na activering van PMA-ionomycine, gevolgd door intracytoplasmatische kleuring met antilichamen tegen IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B. Om het vermogen van MAIT-cellen om te reageren op TCR-stimulatie (uitputting) te bepalen, zal in vitro stimulatie worden uitgevoerd in aanwezigheid van specifieke bacteriële liganden. Activeringsmarkerexpressie zal worden geanalyseerd door FACS en cytokines die vrijkomen in het supernatant door middel van op cytometrie gebaseerde assay.
Na een nacht vasten drinken de patiënten 50 ml oplossing van 5 g lactulose en 2 g mannitol. Urine wordt vóór en 5 uur later verzameld.
Biopsieverzameling en analyse van de twaalfvingerige darm. Biopsieën zullen worden geanalyseerd door qPCR voor de expressie van belangrijke epitheelmoleculen zoals het fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction-eiwitten (occludin, claudin4), antimicrobiële peptiden (Reg3, LL37) en mucuscomponent (mucin 2). De functie van immuuncellen zal ook worden beoordeeld door middel van q-PCR voor belangrijke cytokines/moleculen zoals IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb en CVB.
Serologie tegen CVB en CVB-specifieke qPCR-metingen in darmmicrobiota-monsters zullen worden uitgevoerd bij alle patiënten van de drie cohorten, en analyse van het darmslijmvlies door qPCR en immunochemie met anti-CVB VP1-eiwit-mAb zal worden uitgevoerd bij een subgroep van patiënten.
Ontlastingsmonsters worden verzameld en direct onder anaerobe omstandigheden bewaard. Binnen een uur worden de monsters verwerkt: een fractie wordt in porties verdeeld en ingevroren bij -80°C en een andere fractie wordt gebruikt om fecaal supernatant te bereiden voor de bioassay van MAIT-liganden, in porties verdeeld en ingevroren. Bioassay om de aanwezigheid van MAIT-celliganden te meten door middel van bioassays met WT3-cellijn en plaatgebonden MR117. 16S-sequencing van alle monsters en volgens de resultaten verkregen met de bioassay en 16S, zullen 10 monsters worden geselecteerd voor metagenomische analyse.
risicopatiënten
patiënten met een hoog genetisch risico type 1 diabetes
Voor FACS-analyse zullen MAIT-cellen worden geïdentificeerd als CD3+ CD4-CD161 hoge Vα7.2+ T-cellen. Oppervlaktemarkers zullen worden geanalyseerd om hun activeringsstatus (CD25, CD69, CD44), hun uitputting (PD1, KLRG1, TIM3), hun migratiecapaciteit (CCR6) en hun proliferatie en overleving te bepalen door Ki67- en BCL2-expressie.
Cytokineproductie zal worden beoordeeld na activering van PMA-ionomycine, gevolgd door intracytoplasmatische kleuring met antilichamen tegen IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B. Om het vermogen van MAIT-cellen om te reageren op TCR-stimulatie (uitputting) te bepalen, zal in vitro stimulatie worden uitgevoerd in aanwezigheid van specifieke bacteriële liganden. Activeringsmarkerexpressie zal worden geanalyseerd door FACS en cytokines die vrijkomen in het supernatant door middel van op cytometrie gebaseerde assay.
Na een nacht vasten drinken de patiënten 50 ml oplossing van 5 g lactulose en 2 g mannitol. Urine wordt vóór en 5 uur later verzameld.
Serologie tegen CVB en CVB-specifieke qPCR-metingen in darmmicrobiota-monsters zullen worden uitgevoerd bij alle patiënten van de drie cohorten, en analyse van het darmslijmvlies door qPCR en immunochemie met anti-CVB VP1-eiwit-mAb zal worden uitgevoerd bij een subgroep van patiënten.
Ontlastingsmonsters worden verzameld en direct onder anaerobe omstandigheden bewaard. Binnen een uur worden de monsters verwerkt: een fractie wordt in porties verdeeld en ingevroren bij -80°C en een andere fractie wordt gebruikt om fecaal supernatant te bereiden voor de bioassay van MAIT-liganden, in porties verdeeld en ingevroren. Bioassay om de aanwezigheid van MAIT-celliganden te meten door middel van bioassays met WT3-cellijn en plaatgebonden MR117. 16S-sequencing van alle monsters en volgens de resultaten verkregen met de bioassay en 16S, zullen 10 monsters worden geselecteerd voor metagenomische analyse.
controle onderwerpen
controlepatiënten (geen risico op diabetes type 1 en geen diagnose diabetes type 1)
Voor FACS-analyse zullen MAIT-cellen worden geïdentificeerd als CD3+ CD4-CD161 hoge Vα7.2+ T-cellen. Oppervlaktemarkers zullen worden geanalyseerd om hun activeringsstatus (CD25, CD69, CD44), hun uitputting (PD1, KLRG1, TIM3), hun migratiecapaciteit (CCR6) en hun proliferatie en overleving te bepalen door Ki67- en BCL2-expressie.
Cytokineproductie zal worden beoordeeld na activering van PMA-ionomycine, gevolgd door intracytoplasmatische kleuring met antilichamen tegen IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B. Om het vermogen van MAIT-cellen om te reageren op TCR-stimulatie (uitputting) te bepalen, zal in vitro stimulatie worden uitgevoerd in aanwezigheid van specifieke bacteriële liganden. Activeringsmarkerexpressie zal worden geanalyseerd door FACS en cytokines die vrijkomen in het supernatant door middel van op cytometrie gebaseerde assay.
Na een nacht vasten drinken de patiënten 50 ml oplossing van 5 g lactulose en 2 g mannitol. Urine wordt vóór en 5 uur later verzameld.
Serologie tegen CVB en CVB-specifieke qPCR-metingen in darmmicrobiota-monsters zullen worden uitgevoerd bij alle patiënten van de drie cohorten, en analyse van het darmslijmvlies door qPCR en immunochemie met anti-CVB VP1-eiwit-mAb zal worden uitgevoerd bij een subgroep van patiënten.
Ontlastingsmonsters worden verzameld en direct onder anaerobe omstandigheden bewaard. Binnen een uur worden de monsters verwerkt: een fractie wordt in porties verdeeld en ingevroren bij -80°C en een andere fractie wordt gebruikt om fecaal supernatant te bereiden voor de bioassay van MAIT-liganden, in porties verdeeld en ingevroren. Bioassay om de aanwezigheid van MAIT-celliganden te meten door middel van bioassays met WT3-cellijn en plaatgebonden MR117. 16S-sequencing van alle monsters en volgens de resultaten verkregen met de bioassay en 16S, zullen 10 monsters worden geselecteerd voor metagenomische analyse.
controlepersonen voor endoscopie
patiënten zonder diabetes type 1 die om medische redenen een UGI-endoscopie nodig hebben
Voor FACS-analyse zullen MAIT-cellen worden geïdentificeerd als CD3+ CD4-CD161 hoge Vα7.2+ T-cellen. Oppervlaktemarkers zullen worden geanalyseerd om hun activeringsstatus (CD25, CD69, CD44), hun uitputting (PD1, KLRG1, TIM3), hun migratiecapaciteit (CCR6) en hun proliferatie en overleving te bepalen door Ki67- en BCL2-expressie.
Cytokineproductie zal worden beoordeeld na activering van PMA-ionomycine, gevolgd door intracytoplasmatische kleuring met antilichamen tegen IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B. Om het vermogen van MAIT-cellen om te reageren op TCR-stimulatie (uitputting) te bepalen, zal in vitro stimulatie worden uitgevoerd in aanwezigheid van specifieke bacteriële liganden. Activeringsmarkerexpressie zal worden geanalyseerd door FACS en cytokines die vrijkomen in het supernatant door middel van op cytometrie gebaseerde assay.
Biopsieverzameling en analyse van de twaalfvingerige darm. Biopsieën zullen worden geanalyseerd door qPCR voor de expressie van belangrijke epitheelmoleculen zoals het fucosyltransferase 2 (fut2), tight junction-eiwitten (occludin, claudin4), antimicrobiële peptiden (Reg3, LL37) en mucuscomponent (mucin 2). De functie van immuuncellen zal ook worden beoordeeld door middel van q-PCR voor belangrijke cytokines/moleculen zoals IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb en CVB.
Serologie tegen CVB en CVB-specifieke qPCR-metingen in darmmicrobiota-monsters zullen worden uitgevoerd bij alle patiënten van de drie cohorten, en analyse van het darmslijmvlies door qPCR en immunochemie met anti-CVB VP1-eiwit-mAb zal worden uitgevoerd bij een subgroep van patiënten.
Ontlastingsmonsters worden verzameld en direct onder anaerobe omstandigheden bewaard. Binnen een uur worden de monsters verwerkt: een fractie wordt in porties verdeeld en ingevroren bij -80°C en een andere fractie wordt gebruikt om fecaal supernatant te bereiden voor de bioassay van MAIT-liganden, in porties verdeeld en ingevroren. Bioassay om de aanwezigheid van MAIT-celliganden te meten door middel van bioassays met WT3-cellijn en plaatgebonden MR117. 16S-sequencing van alle monsters en volgens de resultaten verkregen met de bioassay en 16S, zullen 10 monsters worden geselecteerd voor metagenomische analyse.

Wat meet het onderzoek?

Primaire uitkomstmaten

Uitkomstmaat
Maatregel Beschrijving
Tijdsspanne
frequentie van MAIT-cellen in het bloed
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
percentage MAIT-cellen in het perifere bloed
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)

Secundaire uitkomstmaten

Uitkomstmaat
Maatregel Beschrijving
Tijdsspanne
Analyse van MAIT-celmembraanmarkers
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
CD25-positieve cellen in percentage, CD69-positieve cellen in percentage, CD44-positieve cellen in percentage, PD1-positieve cellen in percentage, KLRG1-positieve cellen in percentage, TIM3-positieve cellen in percentage
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Productie van cytokinen in het cytoplasma van de MAIT
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Antilichamen tegen IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 en granzyme B uitgedrukt in cellen %
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
MAIT-celligandmetingen
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Percentage MAIT-cellen dat in vitro wordt geactiveerd wanneer gekweekt in aanwezigheid van een ontlastingsmonster van de patiënt
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Aanwezigheid van CVB in de ontlasting
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
CVB-specifieke ARN-detectie in ontlastingsmonsters van proefpersonen door qPCR
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Bloedimmunoglobulinen tegen CVB-infectiestatus
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Specifieke antilichamen (Ig G) tegen CVB-metingen in bloedmonster van patiënt
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Meting van de doorlaatbaarheid van het darmslijmvlies
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Beoordeling van de doorlaatbaarheid van de darm met behulp van de Lactulose-Mannitol-test. Concentratie van lactulose en manitol in urinemonsters van proefpersonen in mg/dl
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
Evaluatie van de integriteit van het darmslijmvlies
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
qPCR voor de expressie van belangrijke epitheelmoleculen en cytokines op darmmonsters
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
16 S-sequencing in de ontlasting van het onderwerp
Tijdsspanne: Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)
De 16S rRNA-gensequencing zal worden gebruikt voor de classificatie en identificatie van microbensoorten in de ontlasting van proefpersonen. Elke soort wordt geïdentificeerd en gekwantificeerd als een percentage van het totale aantal geïdentificeerde soorten in de ontlasting.
Monster genomen op de dag van inschrijving (controlegroep en risicopatiënten) of tot 7 dagen na diagnose en dag van inschrijving (recent onset-groep)

Medewerkers en onderzoekers

Hier vindt u mensen en organisaties die betrokken zijn bij dit onderzoek.

Publicaties en nuttige links

De persoon die verantwoordelijk is voor het invoeren van informatie over het onderzoek stelt deze publicaties vrijwillig ter beschikking. Dit kan gaan over alles wat met het onderzoek te maken heeft.

Studie record data

Deze datums volgen de voortgang van het onderzoeksdossier en de samenvatting van de ingediende resultaten bij ClinicalTrials.gov. Studieverslagen en gerapporteerde resultaten worden beoordeeld door de National Library of Medicine (NLM) om er zeker van te zijn dat ze voldoen aan specifieke kwaliteitscontrolenormen voordat ze op de openbare website worden geplaatst.

Bestudeer belangrijke data

Studie start (Werkelijk)

1 januari 2022

Primaire voltooiing (Geschat)

11 augustus 2026

Studie voltooiing (Geschat)

14 augustus 2027

Studieregistratiedata

Eerst ingediend

8 juni 2021

Eerst ingediend dat voldeed aan de QC-criteria

22 september 2021

Eerst geplaatst (Werkelijk)

23 september 2021

Updates van studierecords

Laatste update geplaatst (Werkelijk)

13 april 2026

Laatste update ingediend die voldeed aan QC-criteria

8 april 2026

Laatst geverifieerd

1 april 2026

Meer informatie

Termen gerelateerd aan deze studie

Plan Individuele Deelnemersgegevens (IPD)

Bent u van plan om gegevens van individuele deelnemers (IPD) te delen?

NEE

Informatie over medicijnen en apparaten, studiedocumenten

Bestudeert een door de Amerikaanse FDA gereguleerd geneesmiddel

Nee

Bestudeert een door de Amerikaanse FDA gereguleerd apparaatproduct

Nee

product vervaardigd in en geëxporteerd uit de V.S.

Nee

Deze informatie is zonder wijzigingen rechtstreeks van de website clinicaltrials.gov gehaald. Als u verzoeken heeft om uw onderzoeksgegevens te wijzigen, te verwijderen of bij te werken, neem dan contact op met register@clinicaltrials.gov. Zodra er een wijziging wordt doorgevoerd op clinicaltrials.gov, wordt deze ook automatisch bijgewerkt op onze website .

Abonneren