- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05054361
Diafonía entre las células T invariantes asociadas a la mucosa (MAIT) y la microbiota intestinal y la mucosa en el desarrollo de la diabetes tipo 1 en niños (MAIT-DT1)
Diafonía entre las células T invariantes asociadas a la mucosa y la microbiota intestinal y la mucosa en el desarrollo de la diabetes tipo 1 en niños
Investigar de manera prospectiva los cambios en la frecuencia, el fenotipo y la función de las células T invariantes asociadas a la mucosa (MAIT) en relación con la microbiota intestinal, la integridad intestinal y la presencia del virus Coxsackie B en dos cohortes de pacientes pediátricos: pacientes con una genética alta riesgo de diabetes tipo 1 y pacientes pediátricos con diagnóstico reciente de DT1 en comparación con sujetos control
Tareas:
- Medir la frecuencia, el fenotipo y la función de las células MAIT en sangre en las tres cohortes
- Analizar la microbiota intestinal y la presencia del enterovirus Coxsackie B (CVB) y su impacto en la función de las células MAIT
- Para evaluar la integridad intestinal y analizar la mucosa intestinal
- Integrar todos los datos obtenidos con el desarrollo y evolución de la DT1
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
- Prueba de diagnóstico: Análisis de células MAIT
- Prueba de diagnóstico: Análisis de producción de citoquinas MAIT
- Prueba de diagnóstico: Prueba de lactulosa/manitol
- Procedimiento: Endoscopia UGI
- Prueba de diagnóstico: Estado de infección por el virus Coxsackie B
- Prueba de diagnóstico: Estado de infección por el virus Coxsackie B
Descripción detallada
Sujetos: Estudio múltiple. Los sujetos se incluirán en la unidad de diabetes pediátrica y endocrinología del hospital de niños Necker Sick y en la unidad de pediatría del hospital ANTONY.
- Inicio reciente (RO) n=40: los pacientes de inicio reciente se incluirán poco después del diagnóstico.
- Cohorte en riesgo (AR) n = 70: se les pedirá que participen en el estudio a los hermanos examinados de forma rutinaria de pacientes con diabetes tipo 1 que previamente dieron positivo para HLA DR3 y DR4.
- Cohorte de control (C) (n = 50): los sujetos de control serán pacientes que consultan en el Hospital Necker para pruebas endocrinas
- Control para endoscopia (CE) n= 20: pacientes que consultan en el Hospital Necker o en el hospital Antony para endoscopia UGI
Análisis:
Análisis de células MAIT: Para el análisis FACS, las células MAIT se identificarán como células T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+. Se analizarán marcadores de superficie para determinar su estado de activación (CD25, CD69, CD44), su agotamiento (PD1, KLRG1, TIM3), su capacidad de migración (CCR6), y se analizará su proliferación y supervivencia por expresión de Ki67 y BCL2. La producción de citoquinas se evaluará después de la activación de PMA-ionomicina, seguida de tinción intracitoplasmática con anticuerpos contra IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B. Para determinar la capacidad de respuesta de las células MAIT a la estimulación con TCR (agotamiento), se realizará una estimulación in vitro en presencia de ligandos bacterianos específicos. La expresión del marcador de activación se analizará mediante FACS y las citoquinas liberadas en el sobrenadante mediante un ensayo basado en citometría.
Análisis de microbiota intestinal: Las muestras de heces se recolectan y se mantienen directamente en condiciones anaeróbicas. En una hora, las muestras se procesan: una fracción se divide en alícuotas y se congela a -80 °C y otra fracción se usa para preparar el sobrenadante fecal para el bioensayo de los ligandos MAIT, se divide en alícuotas y se congela. Bioensayo para medir la presencia de ligandos de células MAIT mediante bioensayos utilizando la línea celular WT3 así como MR117 unido a la placa. Secuenciación 16S de todas las muestras y de acuerdo a los resultados obtenidos con el bioensayo y 16S, se seleccionarán 10 muestras para análisis metagenómico.
Estado de infección por el virus Coxsackie B (CVB): se realizarán anticuerpos específicos contra el virus Coxsackie B y QPCR específico de CVB en muestras de microbiota intestinal en todos los pacientes de las tres cohortes, y se realizará un análisis de la mucosa intestinal mediante q-PCR e inmunoquímica. realizado en un subconjunto de pacientes.
Integridad intestinal: los investigadores evaluarán la permeabilidad del intestino mediante la prueba de lactulosa-manitol en una submuestra de los grupos RO, RD y AR (> 5 años de edad, n = 20). En resumen, después de un ayuno nocturno, los pacientes beberán 50 ml de solución de 5 g de lactulosa y 2 g de manitol. La orina se recogerá antes y 5 horas después de la ingestión.
Análisis de la mucosa intestinal: en un subgrupo de pacientes (sin enfermedad celíaca según lo determinado por la dosis de anticuerpos contra la transglutaminasa), se obtendrán biopsias duodenales durante una endoscopia IUG. La biopsia duodenal se realizará en sujetos RD mayores de 8 años y en sujetos CE mayores de 4 años. Estas biopsias se analizarán mediante qPCR para determinar la expresión de moléculas epiteliales clave, como la fucosil transferasa 2 (fut2), las proteínas de unión estrecha (occludina, claudina4), los péptidos antimicrobianos (Reg3, LL37) y el componente mucoso (mucina 2). La función de las células inmunitarias también se evaluará mediante q-PCR para citoquinas/moléculas clave como IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb y CVB.
Con base en estudios previos, el tamaño de la muestra debería permitir diferencias estadísticas entre los grupos AR, RO y C. Los investigadores anticipan observar anomalías en las células MAIT de la sangre en pacientes con ósmosis inversa y algunos niños en riesgo después de la seroconversión pero antes del inicio de la diabetes. Estos nuevos datos reforzarán nuestro modelo predictivo (ver datos preliminares). Dado que las células MAIT reconocen el ligando bacteriano, planteamos la hipótesis de que la alteración de las células MAIT podría ocurrir en paralelo con cambios en la microbiota y/o infección CVB. Los investigadores prevén observar anomalías de la mucosa intestinal en niños con RO y la gravedad de estas anomalías puede correlacionarse con el nivel de defecto de las células MAIT y la presencia de infección CVB. Los investigadores esperan demostrar que las células MAIT representan un nuevo biomarcador de progresión hacia la diabetes, así como un marcador inmunológico funcional de la agresividad de la enfermedad autoinmune. Como tal, este estudio podría determinar la ventana terapéutica precisa para estrategias preventivas basadas en la manipulación de células MAIT.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: jacques beltrand, MD, PhD
- Número de teléfono: +33144481545
- Correo electrónico: jacques.beltrand@aphp.fr
Ubicaciones de estudio
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Antony, Francia, 92160
- Aún no reclutando
- Hôpital Privé d'Antony
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Contacto:
- Christine Rizk, MD
- Correo electrónico: christine.rizk@free.fr
-
Paris, Francia, 75015
- Reclutamiento
- Hôpital Necker Enfants malades
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Contacto:
- jacques Beltrand, MD
- Número de teléfono: +33144481545
- Correo electrónico: jacques.beltrand@aphp.fr
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Método de muestreo
Población de estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
Grupo de inicio reciente
- edad > 12 meses y < 15 años
- Diabetes tipo 1 recientemente diagnosticada según los criterios ISPAD
Sujetos en riesgo:
- edad > 12 meses y < 15 años
- hermanos de paciente diabético tipo 1
- HLA DR3 y DR4 positivo
Sujetos de control:
- edad > 12 meses y < 15 años
- sin HLA asociado con diabetes tipo 1 de alto riesgo
- sin anticuerpos contra los antígenos del páncreas
Sujetos de control para endoscopia UGI:
- edad > 12 meses y < 15 años
- sospecha de enfermedad celíaca o gastritis
Criterio de exclusión:
Para todos los grupos:
- sin seguro médico
- padres o tutores incapaces de firmar el consentimiento
- antecedentes personales de enfermedad autoinmune y/o enfermedad inflamatoria excepto de DT1 para grupos RD y CE
- uso de corticoides durante el mes anterior a la inclusión
- sujetos embarazadas
- contraindicación médica de temas anestésicos
Para sujetos de control para control de endoscopia UGI y grupo de endoscopia de inicio reciente:
- edad menor de 8 años para el grupo de endoscopia de inicio reciente
- edad menor de 4 años para el grupo de control de endoscopia UGI
- insuficiencia cardíaca o respiratoria, trastornos del ritmo cardíaco, enfermedad de la coagulación, pacientes tratados con anticoagulantes o fármacos antiagregantes
- antecedentes de alergia al fármaco anestésico
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
Cohortes e Intervenciones
Grupo / Cohorte |
Intervención / Tratamiento |
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pacientes de inicio reciente
pacientes con diabetes tipo 1 recientemente diagnosticada
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Para el análisis FACS, las células MAIT se identificarán como células T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+.
Se analizarán marcadores de superficie para determinar su estado de activación (CD25, CD69, CD44), su agotamiento (PD1, KLRG1, TIM3), su capacidad de migración (CCR6), y se analizará su proliferación y supervivencia por expresión de Ki67 y BCL2.
La producción de citoquinas se evaluará después de la activación de PMA-ionomicina, seguida de tinción intracitoplasmática con anticuerpos contra IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B. Para determinar la capacidad de respuesta de las células MAIT a la estimulación con TCR (agotamiento), se realizará una estimulación in vitro en presencia de ligandos bacterianos específicos.
La expresión del marcador de activación se analizará mediante FACS y las citoquinas liberadas en el sobrenadante mediante un ensayo basado en citometría.
Después de un ayuno nocturno, los pacientes beberán 50 ml de solución de 5 g de lactulosa y 2 g de manitol.
La orina se recogerá durante antes y 5 horas después.
Toma y análisis de biopsia duodenal.
Las biopsias se analizarán mediante qPCR para determinar la expresión de moléculas epiteliales clave, como la fucosil transferasa 2 (fut2), las proteínas de unión estrecha (occludina, claudina4), los péptidos antimicrobianos (Reg3, LL37) y el componente mucoso (mucina 2).
La función de las células inmunitarias también se evaluará mediante q-PCR para citoquinas/moléculas clave como IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb y CVB.
La serología contra CVB y la medición de qPCR específica de CVB en muestras de microbiota intestinal se realizarán en todos los pacientes de las tres cohortes, y el análisis de la mucosa intestinal por qPCR e inmunoquímica con mAb de proteína anti-CVB VP1 se realizará en un subconjunto de pacientes.
Las muestras de heces se recogen y se mantienen directamente en condiciones anaeróbicas.
En una hora, las muestras se procesan: una fracción se divide en alícuotas y se congela a -80 °C y otra fracción se usa para preparar el sobrenadante fecal para el bioensayo de los ligandos MAIT, se divide en alícuotas y se congela.
Bioensayo para medir la presencia de ligandos de células MAIT mediante bioensayos utilizando la línea celular WT3 así como MR117 unido a la placa.
Secuenciación 16S de todas las muestras y de acuerdo a los resultados obtenidos con el bioensayo y 16S, se seleccionarán 10 muestras para análisis metagenómico.
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pacientes de riesgo
pacientes con diabetes tipo 1 de alto riesgo genético
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Para el análisis FACS, las células MAIT se identificarán como células T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+.
Se analizarán marcadores de superficie para determinar su estado de activación (CD25, CD69, CD44), su agotamiento (PD1, KLRG1, TIM3), su capacidad de migración (CCR6), y se analizará su proliferación y supervivencia por expresión de Ki67 y BCL2.
La producción de citoquinas se evaluará después de la activación de PMA-ionomicina, seguida de tinción intracitoplasmática con anticuerpos contra IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B. Para determinar la capacidad de respuesta de las células MAIT a la estimulación con TCR (agotamiento), se realizará una estimulación in vitro en presencia de ligandos bacterianos específicos.
La expresión del marcador de activación se analizará mediante FACS y las citoquinas liberadas en el sobrenadante mediante un ensayo basado en citometría.
Después de un ayuno nocturno, los pacientes beberán 50 ml de solución de 5 g de lactulosa y 2 g de manitol.
La orina se recogerá durante antes y 5 horas después.
La serología contra CVB y la medición de qPCR específica de CVB en muestras de microbiota intestinal se realizarán en todos los pacientes de las tres cohortes, y el análisis de la mucosa intestinal por qPCR e inmunoquímica con mAb de proteína anti-CVB VP1 se realizará en un subconjunto de pacientes.
Las muestras de heces se recogen y se mantienen directamente en condiciones anaeróbicas.
En una hora, las muestras se procesan: una fracción se divide en alícuotas y se congela a -80 °C y otra fracción se usa para preparar el sobrenadante fecal para el bioensayo de los ligandos MAIT, se divide en alícuotas y se congela.
Bioensayo para medir la presencia de ligandos de células MAIT mediante bioensayos utilizando la línea celular WT3 así como MR117 unido a la placa.
Secuenciación 16S de todas las muestras y de acuerdo a los resultados obtenidos con el bioensayo y 16S, se seleccionarán 10 muestras para análisis metagenómico.
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sujetos de control
pacientes de control (sin riesgo de diabetes tipo 1 y sin diabetes tipo 1 diagnosticada)
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Para el análisis FACS, las células MAIT se identificarán como células T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+.
Se analizarán marcadores de superficie para determinar su estado de activación (CD25, CD69, CD44), su agotamiento (PD1, KLRG1, TIM3), su capacidad de migración (CCR6), y se analizará su proliferación y supervivencia por expresión de Ki67 y BCL2.
La producción de citoquinas se evaluará después de la activación de PMA-ionomicina, seguida de tinción intracitoplasmática con anticuerpos contra IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B. Para determinar la capacidad de respuesta de las células MAIT a la estimulación con TCR (agotamiento), se realizará una estimulación in vitro en presencia de ligandos bacterianos específicos.
La expresión del marcador de activación se analizará mediante FACS y las citoquinas liberadas en el sobrenadante mediante un ensayo basado en citometría.
Después de un ayuno nocturno, los pacientes beberán 50 ml de solución de 5 g de lactulosa y 2 g de manitol.
La orina se recogerá durante antes y 5 horas después.
La serología contra CVB y la medición de qPCR específica de CVB en muestras de microbiota intestinal se realizarán en todos los pacientes de las tres cohortes, y el análisis de la mucosa intestinal por qPCR e inmunoquímica con mAb de proteína anti-CVB VP1 se realizará en un subconjunto de pacientes.
Las muestras de heces se recogen y se mantienen directamente en condiciones anaeróbicas.
En una hora, las muestras se procesan: una fracción se divide en alícuotas y se congela a -80 °C y otra fracción se usa para preparar el sobrenadante fecal para el bioensayo de los ligandos MAIT, se divide en alícuotas y se congela.
Bioensayo para medir la presencia de ligandos de células MAIT mediante bioensayos utilizando la línea celular WT3 así como MR117 unido a la placa.
Secuenciación 16S de todas las muestras y de acuerdo a los resultados obtenidos con el bioensayo y 16S, se seleccionarán 10 muestras para análisis metagenómico.
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sujetos de control para endoscopia
pacientes sin diabetes tipo 1 que requieren endoscopia UGI por cualquier razón médica
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Para el análisis FACS, las células MAIT se identificarán como células T CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+.
Se analizarán marcadores de superficie para determinar su estado de activación (CD25, CD69, CD44), su agotamiento (PD1, KLRG1, TIM3), su capacidad de migración (CCR6), y se analizará su proliferación y supervivencia por expresión de Ki67 y BCL2.
La producción de citoquinas se evaluará después de la activación de PMA-ionomicina, seguida de tinción intracitoplasmática con anticuerpos contra IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B. Para determinar la capacidad de respuesta de las células MAIT a la estimulación con TCR (agotamiento), se realizará una estimulación in vitro en presencia de ligandos bacterianos específicos.
La expresión del marcador de activación se analizará mediante FACS y las citoquinas liberadas en el sobrenadante mediante un ensayo basado en citometría.
Toma y análisis de biopsia duodenal.
Las biopsias se analizarán mediante qPCR para determinar la expresión de moléculas epiteliales clave, como la fucosil transferasa 2 (fut2), las proteínas de unión estrecha (occludina, claudina4), los péptidos antimicrobianos (Reg3, LL37) y el componente mucoso (mucina 2).
La función de las células inmunitarias también se evaluará mediante q-PCR para citoquinas/moléculas clave como IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb y CVB.
La serología contra CVB y la medición de qPCR específica de CVB en muestras de microbiota intestinal se realizarán en todos los pacientes de las tres cohortes, y el análisis de la mucosa intestinal por qPCR e inmunoquímica con mAb de proteína anti-CVB VP1 se realizará en un subconjunto de pacientes.
Las muestras de heces se recogen y se mantienen directamente en condiciones anaeróbicas.
En una hora, las muestras se procesan: una fracción se divide en alícuotas y se congela a -80 °C y otra fracción se usa para preparar el sobrenadante fecal para el bioensayo de los ligandos MAIT, se divide en alícuotas y se congela.
Bioensayo para medir la presencia de ligandos de células MAIT mediante bioensayos utilizando la línea celular WT3 así como MR117 unido a la placa.
Secuenciación 16S de todas las muestras y de acuerdo a los resultados obtenidos con el bioensayo y 16S, se seleccionarán 10 muestras para análisis metagenómico.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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frecuencia de células MAIT en sangre
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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porcentaje de células MAIT en sangre periférica
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Análisis de marcadores de membrana de células MAIT
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Células positivas para CD25 en porcentaje, células positivas para CD69 en porcentaje, células positivas para CD44 en porcentaje, células positivas para PD1 en porcentaje, células positivas para KLRG1 en porcentaje, células positivas para TIM3 en porcentaje
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Producción de citocinas en el citoplasma del MAIT
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Anticuerpos contra IL-2, IFN-y, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 y granzima B expresados en % de células
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Mediciones de ligandos de células MAIT
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Porcentaje de células MAIT activadas in vitro cuando se cultivan en presencia de muestra de heces del sujeto
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Presencia de CVB en las heces
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Detección de ARN específico de CVB en muestras de heces de sujetos mediante qPCR
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Inmunoglobulinas en sangre contra el estado de infección CVB
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Anticuerpos específicos (Ig G) frente a mediciones CVB en muestras de sangre de pacientes
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Medición de la permeabilidad de la mucosa intestinal
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Evaluación de la permeabilidad del intestino mediante la prueba de Lactulosa-Manitol.
Concentración de lactulosa y manitol en muestras de orina de sujetos en mg/dl
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Evaluación de la integridad de la mucosa intestinal
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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qPCR para la expresión de moléculas epiteliales clave y citocinas en muestras intestinales
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Secuenciación de 16 S en las heces de los Sujetos
Periodo de tiempo: Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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La secuenciación del gen 16S rRNA se utilizará para la clasificación e identificación de especies de microbios en las heces de los sujetos.
Cada especie será identificada y cuantificada como un porcentaje del número total de especies identificadas en las heces.
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Muestra recolectada el día de la inscripción (grupo de control y pacientes en riesgo) o hasta 7 días después del diagnóstico y el día de la inscripción (grupo de inicio reciente)
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Colaboradores e Investigadores
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Rouland M, Beaudoin L, Rouxel O, Bertrand L, Cagninacci L, Saffarian A, Pedron T, Gueddouri D, Guilmeau S, Burnol AF, Rachdi L, Tazi A, Mouries J, Rescigno M, Vergnolle N, Sansonetti P, Christine Rogner U, Lehuen A. Gut mucosa alterations and loss of segmented filamentous bacteria in type 1 diabetes are associated with inflammation rather than hyperglycaemia. Gut. 2022 Feb;71(2):296-308. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323664. Epub 2021 Feb 16.
- Rouxel O, Da Silva J, Beaudoin L, Nel I, Tard C, Cagninacci L, Kiaf B, Oshima M, Diedisheim M, Salou M, Corbett A, Rossjohn J, McCluskey J, Scharfmann R, Battaglia M, Polak M, Lantz O, Beltrand J, Lehuen A. Cytotoxic and regulatory roles of mucosal-associated invariant T cells in type 1 diabetes. Nat Immunol. 2017 Dec;18(12):1321-1331. doi: 10.1038/ni.3854. Epub 2017 Oct 9.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Estimado)
Finalización del estudio (Estimado)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
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Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Términos MeSH relevantes adicionales
- Enfermedades del sistema endocrino
- Enfermedades metabólicas
- Enfermedades autoinmunes
- Enfermedades del sistema inmunológico
- Trastornos del metabolismo de la glucosa
- Diabetes mellitus
- Diabetes Mellitus, Tipo 1
- Efectos fisiológicos de las drogas
- Agentes gastrointestinales
- Diuréticos
- Agentes natriuréticos
- Diuréticos, Osmóticos
- Lactulosa
- Manitol
Otros números de identificación del estudio
- C19-47
- 2020-A00312-37 (Otro identificador: N° ID RCB)
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
producto fabricado y exportado desde los EE. UU.
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