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- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT05054361
어린이의 제1형 당뇨병 발병에서 점막 관련 불변 T(MAIT) 세포와 장내 미생물총 및 점막 사이의 혼선 (MAIT-DT1)
어린이의 제1형 당뇨병 발병에서 점막 관련 불변 T 세포와 장내 미생물총 및 점막 사이의 혼선
두 소아 환자 코호트에서 장내 미생물군, 장 완전성 및 Coxsackie 바이러스 B의 존재와 관련된 MAIT(점막 관련 불변 T(MAIT) 세포 빈도, 표현형 및 기능의 변화를 전향적 방식으로 조사하기 위해: 높은 유전적 대조군과 비교하여 최근에 T1D 진단을 받은 1형 당뇨병 및 소아 환자의 위험
작업:
- 세 집단에서 혈액 MAIT 세포 빈도, 표현형 및 기능을 측정하기 위해
- 장내 미생물군과 Coxsackie B 엔테로바이러스(CVB)의 존재 및 MAIT 세포 기능에 미치는 영향을 분석하기 위해
- 장 완전성을 평가하고 장 점막을 분석하기 위해
- T1D 개발 및 진화로 얻은 모든 데이터 통합
연구 개요
상태
정황
상세 설명
주제: 다중 연구. 대상자는 Necker Sick 어린이 병원의 소아 당뇨병 및 내분비과와 ANTONY 병원의 소아과에 포함됩니다.
- 최근 발병(RO) n=40: 새로운 발병 환자는 진단 직후에 포함됩니다.
- 위험(AR) 코호트 n=70: 이전에 HLA DR3 및 DR4에 대해 양성으로 테스트된 T1D 환자의 일상적으로 선별된 형제자매가 연구의 일부가 되도록 요청받을 것입니다.
- 대조군(C) 코호트(n=50): 대조군 대상자는 내분비 검사를 위해 Necker 병원에서 상담하는 환자입니다.
- Control for Endoscopy (CE) n= 20: UGI 내시경을 위해 Necker 병원 또는 Antony 병원에서 상담하는 환자
분석:
MAIT 세포 분석: FACS 분석을 위해 MAIT 세포는 CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T 세포로 식별됩니다. 표면 마커를 분석하여 활성화 상태(CD25, CD69, CD44), 고갈(PD1, KLRG1, TIM3), 이동 능력(CCR6), 증식 및 생존을 Ki67 및 BCL2 발현으로 분석합니다. 사이토카인 생성은 PMA-이오노마이신 활성화 후 IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임에 대한 항체로 세포질 내 염색 후 평가됩니다. B. TCR 자극(소진)에 대한 MAIT 세포의 반응 능력을 결정하기 위해, 특정 박테리아 리간드의 존재 하에 시험관 내 자극을 수행할 것이다. 활성화 마커 발현은 FACS에 의해 분석되고 세포계측법 기반 분석에 의해 상청액에서 방출된 사이토카인이 분석될 것입니다.
장내 미생물 분석: 대변 샘플을 수집하여 혐기성 조건에서 직접 보관합니다. 1시간 이내에 샘플을 처리합니다. 하나의 분획은 분취되어 -80°C에서 동결되고 다른 분획은 MAIT 리간드의 생물학적 검정을 위해 분변 상청액을 준비하는 데 사용되며 분취되고 동결됩니다. WT3 세포주 및 플레이트 결합 MR117을 사용하는 생물분석에 의해 MAIT 세포 리간드의 존재를 측정하기 위한 생물분석. 모든 시료의 16S 염기서열 분석 및 bioassay 및 16S로 얻은 결과에 따라 10개의 시료가 metagenomic 분석을 위해 선택됩니다.
Coxsackie virus B(CVB) 감염 상태: coxsackie virus B에 대한 특이항체 및 장내미생물군 검체 내 CVB specific-qPCR 측정은 3개 코호트의 모든 환자를 대상으로 실시할 예정이며, q-PCR 및 면역화학을 통한 장 점막 분석은 환자의 하위 집합에서 수행됩니다.
장 무결성: 조사관은 RO, RD 및 AR 그룹의 하위 샘플(> 5세, n=20)에서 락툴로스-만니톨 테스트를 사용하여 장의 투과성을 평가합니다. 하룻밤 금식 후 간단히 환자는 락툴로오스 5g과 만니톨 2g의 용액 50ml를 마십니다. 소변은 섭취 전과 섭취 후 5시간 동안 수집됩니다.
장 점막 분석: 일부 환자(트랜스글루타미나아제에 대한 항체의 용량으로 결정되는 체강 질병이 없는 경우)에서 십이지장 생검은 IUG 내시경 중에 시행됩니다. 십이지장 생검은 8세 이상의 RD 피험자 및 4세 이상의 CE 피험자에서 수행됩니다. 이러한 생검은 fucosyl transferase 2(fut2), 단단한 접합 단백질(occludin, claudin4), 항균 펩타이드(Reg3, LL37) 및 점액 성분(mucin 2)과 같은 주요 상피 분자의 발현에 대해 qPCR로 분석됩니다. 면역 세포 기능은 또한 IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb 및 CVB와 같은 주요 사이토카인/분자에 대한 q-PCR에 의해 평가될 것입니다.
이전 연구를 기반으로 표본 크기는 AR, RO 및 C 그룹 간의 통계적 차이를 허용해야 합니다. 연구자들은 RO 환자와 일부 위험한 소아에서 혈액 MAIT 세포 이상을 관찰할 것으로 예상합니다. 이 새로운 데이터는 우리의 예측 모델을 강화할 것입니다(예비 데이터 참조). MAIT 세포는 박테리아 리간드를 인식하기 때문에 우리는 MAIT 세포 변경이 미생물 변화 및/또는 CVB 감염과 동시에 발생할 수 있다고 가정합니다. 연구자들은 RO 소아에서 장 점막 이상을 관찰할 것으로 예상하고 이러한 이상의 심각도는 MAIT 세포 결함 수준 및 CVB 감염의 존재와 관련이 있을 수 있습니다. 연구자들은 MAIT 세포가 자가면역 질환의 공격성에 대한 기능적 면역 마커뿐만 아니라 당뇨병 진행의 새로운 바이오마커임을 입증할 것으로 기대합니다. 따라서 이 연구는 MAIT 세포 조작에 기반한 예방 전략을 위한 정확한 치료 창을 결정할 수 있습니다.
연구 유형
등록 (예상)
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: jacques beltrand, MD, PhD
- 전화번호: +33144481545
- 이메일: jacques.beltrand@aphp.fr
연구 장소
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Antony, 프랑스, 92160
- 아직 모집하지 않음
- Hopital Prive d'Antony
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연락하다:
- Christine Rizk, MD
- 이메일: christine.rizk@free.fr
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Paris, 프랑스, 75015
- 모병
- Hôpital Necker Enfants Malades
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연락하다:
- jacques Beltrand, MD
- 전화번호: +33144481545
- 이메일: jacques.beltrand@aphp.fr
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참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
연구 대상 성별
샘플링 방법
연구 인구
설명
포함 기준:
최근 발병 그룹
- 연령 > 12개월 및 < 15세
- ISPAD 기준에 따라 최근에 진단된 1형 당뇨병
위험 대상:
- 연령 > 12개월 및 < 15세
- 제1형 당뇨병 환자의 형제자매
- HLA DR3 및 DR4 양성
제어 대상:
- 연령 > 12개월 및 < 15세
- 고위험 제1형 당뇨병과 관련된 HLA 없음
- 췌장 항원에 대한 항체 없음
UGI 내시경 검사를 위한 제어 대상:
- 연령 > 12개월 및 < 15세
- 체강 질병 또는 위염의 의심
제외 기준:
모든 그룹:
- 건강 보험 없음
- 동의서에 서명할 수 없는 부모 또는 교사
- RD 및 CE 그룹에 대한 T1D를 제외한 자가면역 질환 및/또는 염증성 질환의 개인 병력
- 포함 전 한 달 동안 코르티코스테로이드 사용
- 임산부
- 마취제의 의학적 금기
UGI 내시경 대조군 및 최근 발병 내시경 그룹의 대조군 대상:
- 최근 발병 내시경 그룹의 경우 8세 미만
- UGI 내시경 대조군의 경우 4세 미만
- 심장 또는 호흡 부전, 심장 리듬 장애, 응고 질환, 항응고제 또는 항응고제를 투여받은 환자
- 마취제에 대한 알레르기 병력
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
코호트 및 개입
그룹/코호트 |
개입 / 치료 |
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최근 발병 환자
최근 제1형 당뇨병 진단을 받은 환자
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FACS 분석을 위해 MAIT 세포는 CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T 세포로 식별됩니다.
표면 마커를 분석하여 활성화 상태(CD25, CD69, CD44), 고갈(PD1, KLRG1, TIM3), 이동 능력(CCR6), 증식 및 생존을 Ki67 및 BCL2 발현으로 분석합니다.
사이토카인 생성은 PMA-이오노마이신 활성화 후 IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임에 대한 항체로 세포질 내 염색 후 평가됩니다. B. TCR 자극(소진)에 대한 MAIT 세포의 반응 능력을 결정하기 위해, 특정 박테리아 리간드의 존재 하에 시험관 내 자극을 수행할 것이다.
활성화 마커 발현은 FACS에 의해 분석되고 세포계측법 기반 분석에 의해 상청액에서 방출된 사이토카인이 분석될 것입니다.
하룻밤 금식 후, 환자는 락툴로오스 5g과 만니톨 2g의 용액 50ml를 마십니다.
소변은 전과 후 5시간 동안 수집됩니다.
십이지장 생검 수집 및 분석.
생검은 fucosyl transferase 2(fut2), 밀착연접 단백질(occludin, claudin4), 항균 펩타이드(Reg3, LL37) 및 점액 성분(mucin 2)과 같은 주요 상피 분자의 발현에 대해 qPCR로 분석됩니다.
면역 세포 기능은 또한 IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb 및 CVB와 같은 주요 사이토카인/분자에 대한 q-PCR에 의해 평가될 것입니다.
장내 미생물군 샘플에서 CVB 및 CVB 특이적-qPCR 측정에 대한 혈청학은 3개 코호트의 모든 환자에서 수행될 것이며 qPCR 및 항-CVB VP1 단백질 mAb를 사용한 면역화학에 의한 장 점막 분석은 일부 환자에서 수행될 것입니다.
대변 샘플을 수집하여 혐기성 조건에서 직접 보관합니다.
1시간 이내에 샘플을 처리합니다. 하나의 분획은 분취되어 -80°C에서 동결되고 다른 분획은 MAIT 리간드의 생물학적 검정을 위해 분변 상청액을 준비하는 데 사용되며 분취되고 동결됩니다.
WT3 세포주 및 플레이트 결합 MR117을 사용하는 생물분석에 의해 MAIT 세포 리간드의 존재를 측정하기 위한 생물분석.
모든 시료의 16S 염기서열 분석 및 bioassay 및 16S로 얻은 결과에 따라 10개의 시료가 metagenomic 분석을 위해 선택됩니다.
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위험한 환자
유전적 위험이 높은 제1형 당뇨병 환자
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FACS 분석을 위해 MAIT 세포는 CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T 세포로 식별됩니다.
표면 마커를 분석하여 활성화 상태(CD25, CD69, CD44), 고갈(PD1, KLRG1, TIM3), 이동 능력(CCR6), 증식 및 생존을 Ki67 및 BCL2 발현으로 분석합니다.
사이토카인 생성은 PMA-이오노마이신 활성화 후 IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임에 대한 항체로 세포질 내 염색 후 평가됩니다. B. TCR 자극(소진)에 대한 MAIT 세포의 반응 능력을 결정하기 위해, 특정 박테리아 리간드의 존재 하에 시험관 내 자극을 수행할 것이다.
활성화 마커 발현은 FACS에 의해 분석되고 세포계측법 기반 분석에 의해 상청액에서 방출된 사이토카인이 분석될 것입니다.
하룻밤 금식 후, 환자는 락툴로오스 5g과 만니톨 2g의 용액 50ml를 마십니다.
소변은 전과 후 5시간 동안 수집됩니다.
장내 미생물군 샘플에서 CVB 및 CVB 특이적-qPCR 측정에 대한 혈청학은 3개 코호트의 모든 환자에서 수행될 것이며 qPCR 및 항-CVB VP1 단백질 mAb를 사용한 면역화학에 의한 장 점막 분석은 일부 환자에서 수행될 것입니다.
대변 샘플을 수집하여 혐기성 조건에서 직접 보관합니다.
1시간 이내에 샘플을 처리합니다. 하나의 분획은 분취되어 -80°C에서 동결되고 다른 분획은 MAIT 리간드의 생물학적 검정을 위해 분변 상청액을 준비하는 데 사용되며 분취되고 동결됩니다.
WT3 세포주 및 플레이트 결합 MR117을 사용하는 생물분석에 의해 MAIT 세포 리간드의 존재를 측정하기 위한 생물분석.
모든 시료의 16S 염기서열 분석 및 bioassay 및 16S로 얻은 결과에 따라 10개의 시료가 metagenomic 분석을 위해 선택됩니다.
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제어 대상
대조군 환자(제1형 당뇨병 위험 없음 및 진단된 제1형 당뇨병 없음)
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FACS 분석을 위해 MAIT 세포는 CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T 세포로 식별됩니다.
표면 마커를 분석하여 활성화 상태(CD25, CD69, CD44), 고갈(PD1, KLRG1, TIM3), 이동 능력(CCR6), 증식 및 생존을 Ki67 및 BCL2 발현으로 분석합니다.
사이토카인 생성은 PMA-이오노마이신 활성화 후 IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임에 대한 항체로 세포질 내 염색 후 평가됩니다. B. TCR 자극(소진)에 대한 MAIT 세포의 반응 능력을 결정하기 위해, 특정 박테리아 리간드의 존재 하에 시험관 내 자극을 수행할 것이다.
활성화 마커 발현은 FACS에 의해 분석되고 세포계측법 기반 분석에 의해 상청액에서 방출된 사이토카인이 분석될 것입니다.
하룻밤 금식 후, 환자는 락툴로오스 5g과 만니톨 2g의 용액 50ml를 마십니다.
소변은 전과 후 5시간 동안 수집됩니다.
장내 미생물군 샘플에서 CVB 및 CVB 특이적-qPCR 측정에 대한 혈청학은 3개 코호트의 모든 환자에서 수행될 것이며 qPCR 및 항-CVB VP1 단백질 mAb를 사용한 면역화학에 의한 장 점막 분석은 일부 환자에서 수행될 것입니다.
대변 샘플을 수집하여 혐기성 조건에서 직접 보관합니다.
1시간 이내에 샘플을 처리합니다. 하나의 분획은 분취되어 -80°C에서 동결되고 다른 분획은 MAIT 리간드의 생물학적 검정을 위해 분변 상청액을 준비하는 데 사용되며 분취되고 동결됩니다.
WT3 세포주 및 플레이트 결합 MR117을 사용하는 생물분석에 의해 MAIT 세포 리간드의 존재를 측정하기 위한 생물분석.
모든 시료의 16S 염기서열 분석 및 bioassay 및 16S로 얻은 결과에 따라 10개의 시료가 metagenomic 분석을 위해 선택됩니다.
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내시경 검사를 위한 대조군
의학적 이유로 UGI 내시경 검사가 필요한 제1형 당뇨병이 없는 환자
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FACS 분석을 위해 MAIT 세포는 CD3+ CD4-CD161high Vα7.2+ T 세포로 식별됩니다.
표면 마커를 분석하여 활성화 상태(CD25, CD69, CD44), 고갈(PD1, KLRG1, TIM3), 이동 능력(CCR6), 증식 및 생존을 Ki67 및 BCL2 발현으로 분석합니다.
사이토카인 생성은 PMA-이오노마이신 활성화 후 IL-2, IFN-γ TNF-α, IL-2, IL-4, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임에 대한 항체로 세포질 내 염색 후 평가됩니다. B. TCR 자극(소진)에 대한 MAIT 세포의 반응 능력을 결정하기 위해, 특정 박테리아 리간드의 존재 하에 시험관 내 자극을 수행할 것이다.
활성화 마커 발현은 FACS에 의해 분석되고 세포계측법 기반 분석에 의해 상청액에서 방출된 사이토카인이 분석될 것입니다.
십이지장 생검 수집 및 분석.
생검은 fucosyl transferase 2(fut2), 밀착연접 단백질(occludin, claudin4), 항균 펩타이드(Reg3, LL37) 및 점액 성분(mucin 2)과 같은 주요 상피 분자의 발현에 대해 qPCR로 분석됩니다.
면역 세포 기능은 또한 IL-23, IL-17, IL-22, Foxp3, IL-10, TGFb 및 CVB와 같은 주요 사이토카인/분자에 대한 q-PCR에 의해 평가될 것입니다.
장내 미생물군 샘플에서 CVB 및 CVB 특이적-qPCR 측정에 대한 혈청학은 3개 코호트의 모든 환자에서 수행될 것이며 qPCR 및 항-CVB VP1 단백질 mAb를 사용한 면역화학에 의한 장 점막 분석은 일부 환자에서 수행될 것입니다.
대변 샘플을 수집하여 혐기성 조건에서 직접 보관합니다.
1시간 이내에 샘플을 처리합니다. 하나의 분획은 분취되어 -80°C에서 동결되고 다른 분획은 MAIT 리간드의 생물학적 검정을 위해 분변 상청액을 준비하는 데 사용되며 분취되고 동결됩니다.
WT3 세포주 및 플레이트 결합 MR117을 사용하는 생물분석에 의해 MAIT 세포 리간드의 존재를 측정하기 위한 생물분석.
모든 시료의 16S 염기서열 분석 및 bioassay 및 16S로 얻은 결과에 따라 10개의 시료가 metagenomic 분석을 위해 선택됩니다.
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연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
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혈액 MAIT 세포 빈도
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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말초 혈액에서 MAIT 세포의 백분율
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
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MAIT 세포 막 마커 분석
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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CD25 양성 세포(백분율), CD69 양성 세포(백분율), CD44 양성 세포(백분율), PD1 양성 세포(백분율), KLRG1 양성 세포(백분율), TIM3 양성 세포(백분율)
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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MAIT의 세포질에서 사이토카인 생산
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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세포에서 발현된 IL-2, IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-10, IL-13, IL-17 및 그랜자임 B에 대한 항체 %
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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MAIT 세포 리간드 측정
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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대상 대변 샘플의 존재 하에 배양될 때 시험관 내에서 활성화된 MAIT 세포의 백분율
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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변에 CVB의 존재
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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QPCR에 의한 피험자 대변 샘플의 CVB 특정 ARN 검출
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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CVB 감염 상태에 대한 혈액 면역글로불린
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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환자 혈액 샘플에서 CVB 측정에 대한 특정 항체(Ig G)
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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장 점막 투과성 측정
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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Lactulose-Mannitol 테스트를 사용하여 장의 투과성을 평가합니다.
피험자 소변 샘플의 락툴로오스 및 만니톨 농도(mg/dl)
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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장 점막 완전성 평가
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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장 샘플에서 주요 상피 분자 및 사이토카인 발현을 위한 qPCR
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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피험자 대변의 16 S 시퀀싱
기간: 등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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16S rRNA 유전자 시퀀싱은 대상 대변에서 미생물 종의 분류 및 식별에 사용될 것입니다.
각 종은 대변에서 식별된 총 종 수의 백분율로 식별 및 정량화됩니다.
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등록일(대조군 및 위험 환자) 또는 진단 후 최대 7일 및 등록일(최근 발병 그룹)에 수집된 샘플
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공동 작업자 및 조사자
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Rouxel O, Da Silva J, Beaudoin L, Nel I, Tard C, Cagninacci L, Kiaf B, Oshima M, Diedisheim M, Salou M, Corbett A, Rossjohn J, McCluskey J, Scharfmann R, Battaglia M, Polak M, Lantz O, Beltrand J, Lehuen A. Cytotoxic and regulatory roles of mucosal-associated invariant T cells in type 1 diabetes. Nat Immunol. 2017 Dec;18(12):1321-1331. doi: 10.1038/ni.3854. Epub 2017 Oct 9. Erratum In: Nat Immunol. 2018 Jun 7;:
- Rouland M, Beaudoin L, Rouxel O, Bertrand L, Cagninacci L, Saffarian A, Pedron T, Gueddouri D, Guilmeau S, Burnol AF, Rachdi L, Tazi A, Mouries J, Rescigno M, Vergnolle N, Sansonetti P, Christine Rogner U, Lehuen A. Gut mucosa alterations and loss of segmented filamentous bacteria in type 1 diabetes are associated with inflammation rather than hyperglycaemia. Gut. 2022 Feb;71(2):296-308. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323664. Epub 2021 Feb 16.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (예상)
연구 완료 (예상)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
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MAIT 세포 분석에 대한 임상 시험
-
Hvidovre University HospitalElsassFonden종료됨
-
Spaarne GasthuisLeiden University Medical Center모집하지 않고 적극적으로
-
Central Hospital, Nancy, France아직 모집하지 않음
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The First Affiliated Hospital of Soochow UniversityFundamenta Therapeutics, Ltd.모병
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Universidad de la SabanaFundación Neumologica Colombiana; Stem Medicina Regenerativa; Innocell SAS사용 가능