- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT06879340
Evaluering av sikkerheten og effekten av Duocar20.19.22-D95 hos voksne pasienter med tilbakefall eller ildfast B-celle maligniteter
En fase 1 multisenter, åpen etikettforsøk som evaluerer sikkerheten og effekten av Duocar20.19.22-D95 hos voksne pasienter med tilbakefall eller ildfast B-celle maligniteter
Studieoversikt
Status
Detaljert beskrivelse
Dose opptrapping kohort (fase 1)
Dette vil ha 3 påmeldingsgrupper:
Gruppe A: Deltakere med B-ALL (CAR Pre-behandlet eller bil naiv), gruppe B: Deltakere med B-NHL (CAR-forhåndsbehandlet), gruppe C: Deltakere med B-NHL (bil naiv)
Rettsaken vil begynne med en fase I -dose opptrappingsevaluering i hver av de tre påmeldingsgruppene. Deltakerne vil bli behandlet enten på dosenivå 1 og dosenivå -1 eller i dosenivå 1 og dosenivå 2 av CAR T -celler. Denne fasen vil bestemme MTD og /eller RP2D for den påfølgende fase 2 -studien. Forsøksvarigheten for en individuell deltaker er 15 år fra Duocar20.19.22-D95-bil T-celleinfusjon. Etter infusjon vil DLT-vurderinger fortsette gjennom slutten av dag 30 besøk under dose opptrappingsfase 1. Effektivitet og rutinemessig sikkerhetsovervåking for fase 1-kohort vil oppstå ved etablert protokolldefinerte intervaller gjennom år 2 eller til starten av et nytt behandlingsregime, avhengig av hva som skjer før. Den observasjonelle langsiktige oppfølgingsdelen av studien vil da bli operativ.
Studietype
Registrering (Antatt)
Fase
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
Kansas
-
Westwood, Kansas, Forente stater, 66205
- Rekruttering
- University of Kansas Cancer Center
-
Hovedetterforsker:
- Joseph McGuirk, DO
-
Ta kontakt med:
- Nurse Navigation
- Telefonnummer: 913-945-7552
- E-post: CTNurseNav@kumc.edu
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
- Voksen
- Eldre voksen
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inkluderingskriterier:
- Deltakerens evne til å forstå denne studien, og deltakerens vilje til å signere et skriftlig informert samtykke
- Kvinner med fertilpotensial må ha en negativ serum graviditetstest 48 timer før start av forberedende regime
Pasienter må ha histologisk bekreftet aggressiv B-celle NHL eller alt som angitt nedenfor:
A. Pasienter med tilbakefall eller ildfast B-celle alle i. Demonstrasjon av ett eller flere antigener av interesse (CD19, CD20, CD22) i den nyeste sykdomsevalueringen før studien og innen 30 dager etter studien.
ii. Pasienter med tilbakefall/ildfast sykdom i blod-, marg- og ekstramedullære steder inkludert CSF vil være kvalifisert når det er immunofenotypisk bevis på CD19 og/eller CD20 og/eller CD22 -ekspresjon
iii. Primær ildfast sykdom ved studieinngang definert som: en morfologisk fullstendig respons har aldri blitt oppnådd før studiens innreise.
IV. Tidlig første tilbakefall ved studieinngang definert som: RECIFATION AV MORFOLOGISK vurdering etter varighet av første remisjon ved ≤ 18 måneder
v. Tilbaketrukket ildfast sykdom (første eller senere tilbakefall) ved studieinngang definert som: morfologisk fullstendig respons ble ikke oppnådd etter igangsetting av en andrelinje (eller senere) systemisk terapi
vi. Andre eller større tilbakefall ved studieoppføringen definert som: enhver sykdomsgjennomgang etter en andre eller senere fullstendig respons (med behandlingshistorikk inkludert to eller flere linjer med systemisk terapi)
vii. Ytterligere hensyn utover kriterier ovenfor:
- Pasienter med tilbakefall eller ildfast sykdom etter allogen stamcelletransplantasjon må være> 100 dager fra HSCT for å være kvalifisert for deltakelse i studien. Videre må post-HSCT-immunsuppressive medisiner seponeres i minst 4 uker før studieoppføringen
- Tidligere CAR-T-terapi er tillatt hvis ≥ 3 måneder etter fullføring av terapi
- Morfologisk sykdom i benmargsnotatet: Morfologisk sykdom er definert som sprengninger er minst 5% i benmargen.
B. Histologisk bekreftet aggressiv B -celle NHL, inkludert følgende typer definert av WHO 2008 etter 2 eller flere linjer med tidligere terapi:
jeg. DLBCL ikke på annen måte spesifisert; T -celle/histiocyttrik stor B -cellelymfom; DLBCL assosiert med kronisk betennelse; Epstein-Barr-virus (EBV)+ DLBCL av eldre; Primær kutan DLBCL, bentype; Eller ii. Primær mediastinal (tymisk) stor B -cellelymfom III. Follikulær lymfom 3B og transformasjon av follikulært lymfom til DLBCL vil også bli inkludert IV. Høykvalitets B-cellelymfom v. Cellegift-refractory sykdom, definert som ett eller flere av følgende:
- Refactory sykdom er definert som progressiv eller stabil sykdom som den beste responsen på den siste tidligere terapien eller tilbakefall innen 12 måneder etter autolog stamcelletransplantasjon. Det kreves to tidligere terapilinjer for valgbarhet i LBCL. Den andre linjeterapien kan være cellegiftbasert, autolog stamcelletransplantasjon eller CAR-T.
- Tilbaketrukket eller ildfast sykdom etter allogen transplantasjon forutsatt at pasienten er minst 100 dager fra stamcelletransplantasjon på påmeldingstidspunktet og av immunsuppressive medisiner i minst 4 uker før påmelding
Pasienter må ha fått 2 eller flere linjer med tilstrekkelig tidligere terapi inkludert et minimum:
- anti-CD20 monoklonalt antistoff med mindre etterforsker bestemmer at tumor er CD20- negativt og
- en antracyklin som inneholder cellegiftregime
- For pasienter med transformert FL må ha ha fått tidligere cellegift for follikulært lymfom og deretter ha kjemorefraktorisykdom etter transformasjon til DLBCL VI. Tidligere CAR T -terapi tillatt hvis ≥ 3 måneder fra terapien VII. Minst 1 målbar lesjon i henhold til de reviderte IWG -responskriteriene for ondartet lymfom (Cheson 2007). Lesjoner som tidligere er blitt bestrålet, vil bare bli målbar hvis progresjon er dokumentert etter fullføring av strålebehandling C. Tilbakefall eller ildfast indolent ikke-Hodgkin lymfom i. Histologisk bekreftet indolent ikke-Hodgkin-lymfom, inkludert grad 1-3b follikulært lymfom eller nodal eller ekstranodal marginal sone-lymfom (begge Per WHO 2016 klassifiseringskriterier) II. Tilbakefall eller ildfast sykdom (per Lugano -kriterier) etter to eller flere tidligere terapilinjer, III. Tidligere terapilinjer for å inkludere et anti-CD20 monoklonalt antistoff kombinert med et alkyleringsmiddel IV. Tidligere CAR T -terapi tillatt hvis ≥ 3 måneder fra terapien V. Minst 1 målbar lesjon i henhold til de reviderte IWG -responskriteriene for ondartet lymfom (Cheson 2007). Lesjoner som tidligere har blitt bestrålet, vil bare bli målbar hvis progresjon er dokumentert etter fullføring av strålebehandling VI. Tilbakefall eller ildfast sykdom etter allogen transplantasjon forutsatt at pasienten er minst 100 dager fra stamcelletransplantasjon på påmeldingstidspunktet og av immunsuppressive medisiner i minst 4 uker før påmelding D. Tilbaketrukket eller ildfast mantelcelle lymfom i. Histologisk bekreftet mantelcelle lymfom med enten cyclin D1-overekspresjon eller tilstedeværelse av translokasjonen (T11: 14) II. Sykdom som enten er tilbakefall eller ildfast til minst 2 tidligere linjer med tidligere regimer for mantelcelle lymfom III. Tidligere terapi må ha inkludert antracyklin- eller bendamustinholdig cellegift, et anti-CD20 monoklonalt antistoff og BTK-hemmerterapi
- Tidligere CAR T -terapi tillatt hvis ≥ 3 måneder fra terapien
- Minst 1 målbar lesjon i henhold til de reviderte IWG -responskriteriene for ondartet lymfom (Cheson 2007). Lesjoner som tidligere har blitt bestrålet, vil bare bli målbar hvis progresjon er dokumentert etter fullføring av strålebehandling
- Tilbaketrukket eller ildfast sykdom etter allogen transplantasjon forutsatt at pasienten er ≥ 3 måneder fra stamcelletransplantasjon på påmeldingstidspunktet og av immunsuppressive medisiner i minst 4 uker før påmelding
- Oppfyll institusjonelle kriterier for leukapheresisprosedyre eller har tilgjengeligheten av tidligere innsamlet og lagret leukafereseprodukt som tilfredsstiller minimumskrav
- Eastern Cooperative Oncology Group (ECOG) resultatstatus på 0 til 2.
- Tilstrekkelig hematologisk og organfunksjon MERKNAD: Pasienter med etablert diagnose av godartet nøytropeni er kvalifisert til å delta med ANC mellom 1000-1500, hvis ikke for å behandle lege for å behandle lege, utgjør ikke forbeholdet overdreven risiko for infeksjon for pasienten.
- Voksne ≥ 18 år, uten øvre aldersgrense
- Forventet levealder> 2 måneder
- ≥ 3 måneder fra tidligere bil
- Kvinner med barnebærende potensial og menn med partnere om barneskuddspotensial må gå med på å utøve seksuell avholdenhet eller å bruke prevensjonsformene som er oppført i barnelagende potensial/graviditetsseksjon fra tidspunktet for å signere informert samtykke til minst 12 måneder etter to-celler som er til stede. Menn må være enige om å ikke donere sæd for samme tidsperiode.
Eksklusjonskriterier:
- Pasienter med CLL, Richters transformasjon og Burkitt lymfom
- Aktiv CNS -involvering ved malignitet - CNS3 -sykdom, dvs. pasienter med WBC -telling i CSF ≥5 og har sprengninger i CSF hos pasienter med all eller påvisning av NHL på CSF ved flytcytometri eller aktiv CNS -involvering ved avbildning)
- Kjemoterapi annet enn lymfodeplettering av cellegift innen 2 uker etter infusjon
- Undersøkelsesmedisinprodukt i løpet av de siste 30 dagene før screening Merk: Undersøkelsesbehandlinger må ikke brukes på noe tidspunkt mens du er på studie før den første progresjonen etter Duocar20.19.22-D95 Bil t infusjon.
Følgende medisiner er ekskludert:
- Steroider: Terapeutiske doser av steroider må stoppes> 72 timer før leukaferese og> 72 timer før DUOCAR20.19.22-D95 infusjon. Imidlertid er følgende fysiologiske erstatningsdoser av steroider tillatt: <12 mg/m2/dag hydrokortison eller ekvivalent
- Immunsuppresjon: Eventuell annen immunsuppressiv medisinering må stoppes ≥ 2 uker før leukaferese og ≥ 2 uker før duocar20.19.22-D95 infusjon. Dette kan omfatte sjekkpunkthemmere (monoklonale antistoffer og små molekylmodulatorer).
- Antiproliferative terapier enn lymfodepletterende cellegift innen 2 uker før infusjon
- Kortvirkende medisiner som brukes til å behandle leukemi eller lymfom (f.eks. Tyrosinkinaseinhibitorer og hydroksyure) må stoppes> 72 timer før leukaferese og> 72 timer før Duocar20.19.22-D95 infusjon
- Andre cytotoksiske medisiner, inkludert lavdose daglig eller ukentlig vedlikehold cellegift, må ikke gis innen 2 uker før leukaferese og innen 2 uker før Duocar20.19.22-D95-infusjon.
- Antistoffbruk inkludert anti-CD20-terapi innen 4 uker før infusjon eller 5 halveringstid av det respektive antistoffet, avhengig av hva som er lengre. Merk: Rituximab er ekskludert innen 4 uker før infusjon.
- Profylakse eller behandling av CNS-sykdommer må stoppes> 1 uke før Duocar20.19.22-D95 infusjon (f.eks. Intratekal metotreksat)
- Tidligere strålebehandling innen 2 uker etter infusjon
- Aktiv replikasjon av eller tidligere infeksjon med hepatitt B eller aktiv hepatitt C (HCV RNA -positiv)
- HIV -positive pasienter (unntatt falsk positiv HIV -test som følge av den virale vektoren som ble brukt i Prior Car T)
- Ukontrollert akutt livstruende bakteriell, virus- eller soppinfeksjon (f.eks. Blodkultur positiv ≤ 72 timer før infusjon)
- Ustabil angina og/eller hjerteinfarkt innen 6 måneder før screening
Tidligere eller samtidig malignitet med følgende unntak:
- Tilstrekkelig behandlet basalcelle- eller plateepitelkarsinom (tilstrekkelig sårheling er nødvendig før studieinngang)
- In situ karsinom i livmorhalsen eller brystet, behandlet kurativt og uten bevis for tilbakefall i minst 3 år før studien
- En primær malignitet som er blitt fullstendig reseksjonert og i fullstendig remisjon i ≥ 5 år
- Samtidig registrert i en hvilken som helst terapeutisk klinisk studie (bortsett fra langsiktige oppfølgingsstudier)
- Nåværende eller forutse bruk av andre anti-neoplastiske eller undersøkelsesmidler mens du deltar i denne studien
- Enten diagnostisert med en psykiatrisk sykdom eller under innvirkning av en sosial situasjon som vil begrense overholdelsen av studiekravene etter etterforskerens mening
- Er gravid eller amming
- Intoleranse for celleproduktets hjelpestoffer
- Hjertearytmi er ikke kontrollert med medisinsk behandling
- Aktiv Covid-19 (følg ASTCT-retningslinjer)
- Tilstedeværelse av aktiv grad 2 til 4 akutt, omfattende kronisk graft-versus-host sykdom (GVHD) eller som krever systemiske steroider
- Pasienter med aktive nevrologiske autoimmun eller inflammatoriske lidelser (f.eks. Guillain-Barré-syndrom, amyotrofisk lateral sklerose)
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Intervensjonsmodell: Sekvensiell tildeling
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Phase 1 (Dose Escalation)
Lymphodepletion: Fludarabine: Days -6 to -3 (4 days total) Cyclophosphamide: Days -6 and -5 (2 days total) Investigational Treatment: DuoCAR20.19.22-D95 will be infused on day # 0 Patients will receive lymphodepletion chemotherapy and receive the CAR T cell infusion on day 0 (or up to day +14 in extenuating clinical conditions). Patients will be hospitalized inpatient period of at least 7 days from the day of the CAR T infusion. |
Lymfodeplesjon kjemoterapi
Pasientavledede autologe T-celler, lentiviral transdusert til å generere, ved bruk av Miltenyi Clinimacs Prodigy® lukket transduksjonssystem, et duo-CAR-T-celler som målretter celleoverflateantigener CD19/20/22.
Lymfodepletion cellegift
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Maksimal tolerert dose (MTD)
Tidsramme: Omtrent 30 dager
|
MTD er definert som dosenivået rett under det der ≥ 2/6 deltakere opplever en doseringsbegrensende toksisitet (DLT).
|
Omtrent 30 dager
|
|
Anbefalt fase 2 -dose (RP2D)
Tidsramme: Omtrent 30 dager
|
Bestem ved å bruke MTD og DLT -er.
|
Omtrent 30 dager
|
|
Sikkerhet: Forekomst av alvorlige bivirkninger/bivirkninger
Tidsramme: Omtrent 30 dager
|
Toksisiteter av Duocar20.19.22-D95 i kombinasjon med foregående lymfodepletterende cellegiftregime målt med CTCAE V 5.0,
|
Omtrent 30 dager
|
|
Behandlingsrelatert dødelighet (TRM)
Tidsramme: Omtrent 1 år
|
definert av fravær av progressiv sykdom på dødstidspunktet.
|
Omtrent 1 år
|
|
Tilstedeværelse av replikasjon kompetent lentivirus (RCL) i perifere blodprøver
Tidsramme: Omtrent 15 år
|
Målt med qPCR
|
Omtrent 15 år
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Effektivitet av Duocar 20.19.22-D95
Tidsramme: opptil 24 måneder
|
Generell svarprosent definert av CR/PR-hastighet som bestemt av WHOs definerte benmargsresultater i alle og Lugano-responskriteriene i B-celle NHL.
|
opptil 24 måneder
|
|
Sikkerhet relatert til Duocar20.19.22-D95
Tidsramme: Omtrent 15 år
|
For å vurdere langsiktige sikkerhetsrisikoer, per FDA-retningslinjer knyttet til genterapi, målt ved forsinkede bivirkninger av spesiell interesse potensielt relatert til Duocar20.19.22-D95
|
Omtrent 15 år
|
|
Farmakologi (utvidelseskinetikk)
Tidsramme: 28 dager
|
Ekspansjonskinetikk av Duocar20.19.22-D95 over tid målt ved PCR og/eller flowcytometri, Winnonlin 8.4
|
28 dager
|
|
Manufacturing Feasibility of Miltenyi CliniMACS Prodigy (By number of participants)
Tidsramme: 2 weeks
|
To assess the Miltenyi CliniMACS Prodigy® closed transduction system for manufacturing feasibility of DuoCAR20.19.22-D95 throughout dose escalation and efficacy.
For evaluation of feasibility, the number of participants which can successfully manufacture the targeted dose number will be determined and reported by dose level for the three enrollment groups.
|
2 weeks
|
|
Blood DuoCAR20.19.22-D95 concentrations (PCR)
Tidsramme: approximately 2 years
|
determined by PCR and/or flow cytometry
|
approximately 2 years
|
|
Blood DuoCAR20.19.22-D95 concentrations (Non-parametric PK parameters)
Tidsramme: approximately 2 years
|
Non-parametric pharmacokinetic data analysis will be performed on resultant blood DuoCAR20.19.22-D95 concentration-time data using WinNonlin 8.4.
|
approximately 2 years
|
|
Blood DuoCAR20.19.22-D95 concentrations (time data)
Tidsramme: approximately 2 years
|
The frequency (n,%) of observed concentrations below the lower limit of quantitation (LLOQ), reported as zero, will be described for each sampling timepoint
|
approximately 2 years
|
|
Blood DuoCAR20.19.22-D95 mean concentrations
Tidsramme: approximately 2 years
|
Mean concentrations will be provided for blood DuoCAR20.19.22-D95 concentration-time data
|
approximately 2 years
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Joseph McGuirk, D.O., University of Kansas Medical Center
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Cheson BD, Fisher RI, Barrington SF, Cavalli F, Schwartz LH, Zucca E, Lister TA; Alliance, Australasian Leukaemia and Lymphoma Group; Eastern Cooperative Oncology Group; European Mantle Cell Lymphoma Consortium; Italian Lymphoma Foundation; European Organisation for Research; Treatment of Cancer/Dutch Hemato-Oncology Group; Grupo Espanol de Medula Osea; German High-Grade Lymphoma Study Group; German Hodgkin's Study Group; Japanese Lymphorra Study Group; Lymphoma Study Association; NCIC Clinical Trials Group; Nordic Lymphoma Study Group; Southwest Oncology Group; United Kingdom National Cancer Research Institute. Recommendations for initial evaluation, staging, and response assessment of Hodgkin and non-Hodgkin lymphoma: the Lugano classification. J Clin Oncol. 2014 Sep 20;32(27):3059-68. doi: 10.1200/JCO.2013.54.8800.
- Cheson BD, Pfistner B, Juweid ME, Gascoyne RD, Specht L, Horning SJ, Coiffier B, Fisher RI, Hagenbeek A, Zucca E, Rosen ST, Stroobants S, Lister TA, Hoppe RT, Dreyling M, Tobinai K, Vose JM, Connors JM, Federico M, Diehl V; International Harmonization Project on Lymphoma. Revised response criteria for malignant lymphoma. J Clin Oncol. 2007 Feb 10;25(5):579-86. doi: 10.1200/JCO.2006.09.2403. Epub 2007 Jan 22.
- Porter DL, Hwang WT, Frey NV, Lacey SF, Shaw PA, Loren AW, Bagg A, Marcucci KT, Shen A, Gonzalez V, Ambrose D, Grupp SA, Chew A, Zheng Z, Milone MC, Levine BL, Melenhorst JJ, June CH. Chimeric antigen receptor T cells persist and induce sustained remissions in relapsed refractory chronic lymphocytic leukemia. Sci Transl Med. 2015 Sep 2;7(303):303ra139. doi: 10.1126/scitranslmed.aac5415.
- Lee DW, Kochenderfer JN, Stetler-Stevenson M, Cui YK, Delbrook C, Feldman SA, Fry TJ, Orentas R, Sabatino M, Shah NN, Steinberg SM, Stroncek D, Tschernia N, Yuan C, Zhang H, Zhang L, Rosenberg SA, Wayne AS, Mackall CL. T cells expressing CD19 chimeric antigen receptors for acute lymphoblastic leukaemia in children and young adults: a phase 1 dose-escalation trial. Lancet. 2015 Feb 7;385(9967):517-528. doi: 10.1016/S0140-6736(14)61403-3. Epub 2014 Oct 13.
- Liakou CI, Kamat A, Tang DN, Chen H, Sun J, Troncoso P, Logothetis C, Sharma P. CTLA-4 blockade increases IFNgamma-producing CD4+ICOShi cells to shift the ratio of effector to regulatory T cells in cancer patients. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Sep 30;105(39):14987-92. doi: 10.1073/pnas.0806075105. Epub 2008 Sep 25.
- Gardner RA, Finney O, Annesley C, Brakke H, Summers C, Leger K, Bleakley M, Brown C, Mgebroff S, Kelly-Spratt KS, Hoglund V, Lindgren C, Oron AP, Li D, Riddell SR, Park JR, Jensen MC. Intent-to-treat leukemia remission by CD19 CAR T cells of defined formulation and dose in children and young adults. Blood. 2017 Jun 22;129(25):3322-3331. doi: 10.1182/blood-2017-02-769208. Epub 2017 Apr 13.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Fried S, Avigdor A, Bielorai B, Meir A, Besser MJ, Schachter J, Shimoni A, Nagler A, Toren A, Jacoby E. Early and late hematologic toxicity following CD19 CAR-T cells. Bone Marrow Transplant. 2019 Oct;54(10):1643-1650. doi: 10.1038/s41409-019-0487-3. Epub 2019 Feb 26.
- Muller SM, Ege M, Pottharst A, Schulz AS, Schwarz K, Friedrich W. Transplacentally acquired maternal T lymphocytes in severe combined immunodeficiency: a study of 121 patients. Blood. 2001 Sep 15;98(6):1847-51. doi: 10.1182/blood.v98.6.1847.
- Wierda W, O'Brien S, Wen S, Faderl S, Garcia-Manero G, Thomas D, Do KA, Cortes J, Koller C, Beran M, Ferrajoli A, Giles F, Lerner S, Albitar M, Kantarjian H, Keating M. Chemoimmunotherapy with fludarabine, cyclophosphamide, and rituximab for relapsed and refractory chronic lymphocytic leukemia. J Clin Oncol. 2005 Jun 20;23(18):4070-8. doi: 10.1200/JCO.2005.12.516. Epub 2005 Mar 14.
- Hines MR, Knight TE, McNerney KO, Leick MB, Jain T, Ahmed S, Frigault MJ, Hill JA, Jain MD, Johnson WT, Lin Y, Mahadeo KM, Maron GM, Marsh RA, Neelapu SS, Nikiforow S, Ombrello AK, Shah NN, Talleur AC, Turicek D, Vatsayan A, Wong SW, Maus MV, Komanduri KV, Berliner N, Henter JI, Perales MA, Frey NV, Teachey DT, Frank MJ, Shah NN. Immune Effector Cell-Associated Hemophagocytic Lymphohistiocytosis-Like Syndrome. Transplant Cell Ther. 2023 Jul;29(7):438.e1-438.e16. doi: 10.1016/j.jtct.2023.03.006. Epub 2023 Mar 9.
- Fry TJ, Shah NN, Orentas RJ, Stetler-Stevenson M, Yuan CM, Ramakrishna S, Wolters P, Martin S, Delbrook C, Yates B, Shalabi H, Fountaine TJ, Shern JF, Majzner RG, Stroncek DF, Sabatino M, Feng Y, Dimitrov DS, Zhang L, Nguyen S, Qin H, Dropulic B, Lee DW, Mackall CL. CD22-targeted CAR T cells induce remission in B-ALL that is naive or resistant to CD19-targeted CAR immunotherapy. Nat Med. 2018 Jan;24(1):20-28. doi: 10.1038/nm.4441. Epub 2017 Nov 20.
- Locke FL, Ghobadi A, Jacobson CA, Miklos DB, Lekakis LJ, Oluwole OO, Lin Y, Braunschweig I, Hill BT, Timmerman JM, Deol A, Reagan PM, Stiff P, Flinn IW, Farooq U, Goy A, McSweeney PA, Munoz J, Siddiqi T, Chavez JC, Herrera AF, Bartlett NL, Wiezorek JS, Navale L, Xue A, Jiang Y, Bot A, Rossi JM, Kim JJ, Go WY, Neelapu SS. Long-term safety and activity of axicabtagene ciloleucel in refractory large B-cell lymphoma (ZUMA-1): a single-arm, multicentre, phase 1-2 trial. Lancet Oncol. 2019 Jan;20(1):31-42. doi: 10.1016/S1470-2045(18)30864-7. Epub 2018 Dec 2.
- Dioverti V, Boghdadly ZE, Shahid Z, Waghmare A, Abidi MZ, Pergam S, Boeckh M, Dadwal S, Kamboj M, Seo S, Chemaly RF, Papanicolaou GA. Revised Guidelines for Coronavirus Disease 19 Management in Hematopoietic Cell Transplantation and Cellular Therapy Recipients (August 2022). Transplant Cell Ther. 2022 Dec;28(12):810-821. doi: 10.1016/j.jtct.2022.09.002. Epub 2022 Sep 11.
- Hedger MP, Meinhardt A. Local regulation of T cell numbers and lymphocyte-inhibiting activity in the interstitial tissue of the adult rat testis. J Reprod Immunol. 2000 Oct-Nov;48(2):69-80. doi: 10.1016/s0165-0378(00)00071-1.
- Pulsipher MA, Han X, Maude SL, Laetsch TW, Qayed M, Rives S, Boyer MW, Hiramatsu H, Yanik GA, Driscoll T, Myers GD, Bader P, Baruchel A, Buechner J, Stefanski HE, Kalfoglou C, Nguyen K, Waldron ER, Thudium Mueller K, Maier HJ, Kari G, Grupp SA. Next-Generation Sequencing of Minimal Residual Disease for Predicting Relapse after Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with Acute Lymphoblastic Leukemia. Blood Cancer Discov. 2022 Jan;3(1):66-81. doi: 10.1158/2643-3230.BCD-21-0095. Epub 2021 Dec 1.
- Rossoff J, Baggott C, Prabhu S, Pacenta H, Phillips CL, Stefanski H, Talano JA, Moskop A, Margossian SP, Verneris MR, Myers GD, Karras N, Brown PA, Qayed M, Hermiston M, Satwani P, Krupski C, Keating AK, Wilcox R, Rabik CA, Fabrizio VA, Kunicki M, Chinnabhandar V, Goksenin AY, Curran KJ, Mackall CL, Laetsch TW, Schultz LM. Out-of-specification tisagenlecleucel does not compromise safety or efficacy in pediatric acute lymphoblastic leukemia. Blood. 2021 Nov 25;138(21):2138-2142. doi: 10.1182/blood.2021012392. No abstract available.
- Laetsch TW, Myers GD, Baruchel A, Dietz AC, Pulsipher MA, Bittencourt H, Buechner J, De Moerloose B, Davis KL, Nemecek E, Driscoll T, Mechinaud F, Boissel N, Rives S, Bader P, Peters C, Sabnis HS, Grupp SA, Yanik GA, Hiramatsu H, Stefanski HE, Rasouliyan L, Yi L, Shah S, Zhang J, Harris AC. Patient-reported quality of life after tisagenlecleucel infusion in children and young adults with relapsed or refractory B-cell acute lymphoblastic leukaemia: a global, single-arm, phase 2 trial. Lancet Oncol. 2019 Dec;20(12):1710-1718. doi: 10.1016/S1470-2045(19)30493-0. Epub 2019 Oct 9.
- Schneider D, Xiong Y, Wu D, Hu P, Alabanza L, Steimle B, Mahmud H, Anthony-Gonda K, Krueger W, Zhu Z, Dimitrov DS, Orentas RJ, Dropulic B. Trispecific CD19-CD20-CD22-targeting duoCAR-T cells eliminate antigen-heterogeneous B cell tumors in preclinical models. Sci Transl Med. 2021 Mar 24;13(586):eabc6401. doi: 10.1126/scitranslmed.abc6401.
- Dekker L, Calkoen FG, Jiang Y, Blok H, Veldkamp SR, De Koning C, Spoon M, Admiraal R, Hoogerbrugge P, Vormoor B, Vormoor HJ, Visscher H, Bierings M, Van Der Vlugt M, Van Tinteren H, Nijstad AL, Huitema ADR, Van Der Elst KCM, Pieters R, Lindemans CA, Nierkens S. Fludarabine exposure predicts outcome after CD19 CAR T-cell therapy in children and young adults with acute leukemia. Blood Adv. 2022 Apr 12;6(7):1969-1976. doi: 10.1182/bloodadvances.2021006700.
- Rogers PR, Song J, Gramaglia I, Killeen N, Croft M. OX40 promotes Bcl-xL and Bcl-2 expression and is essential for long-term survival of CD4 T cells. Immunity. 2001 Sep;15(3):445-55. doi: 10.1016/s1074-7613(01)00191-1.
- Gramaglia I, Jember A, Pippig SD, Weinberg AD, Killeen N, Croft M. The OX40 costimulatory receptor determines the development of CD4 memory by regulating primary clonal expansion. J Immunol. 2000 Sep 15;165(6):3043-50. doi: 10.4049/jimmunol.165.6.3043.
- Maxwell JR, Weinberg A, Prell RA, Vella AT. Danger and OX40 receptor signaling synergize to enhance memory T cell survival by inhibiting peripheral deletion. J Immunol. 2000 Jan 1;164(1):107-12. doi: 10.4049/jimmunol.164.1.107.
- Rafiq S, Hackett CS, Brentjens RJ. Engineering strategies to overcome the current roadblocks in CAR T cell therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2020 Mar;17(3):147-167. doi: 10.1038/s41571-019-0297-y. Epub 2019 Dec 17.
- Frigault MJ, Maus MV. State of the art in CAR T cell therapy for CD19+ B cell malignancies. J Clin Invest. 2020 Apr 1;130(4):1586-1594. doi: 10.1172/JCI129208.
- Moreno-Cortes E, Franco-Fuquen P, Garcia-Robledo JE, Forero J, Booth N, Castro JE. ICOS and OX40 tandem co-stimulation enhances CAR T-cell cytotoxicity and promotes T-cell persistence phenotype. Front Oncol. 2023 Aug 18;13:1200914. doi: 10.3389/fonc.2023.1200914. eCollection 2023.
- Poe JC, Minard-Colin V, Kountikov EI, Haas KM, Tedder TF. A c-Myc and surface CD19 signaling amplification loop promotes B cell lymphoma development and progression in mice. J Immunol. 2012 Sep 1;189(5):2318-25. doi: 10.4049/jimmunol.1201000. Epub 2012 Jul 23.
- Fruman DA. Phosphoinositide 3-kinase and its targets in B-cell and T-cell signaling. Curr Opin Immunol. 2004 Jun;16(3):314-20. doi: 10.1016/j.coi.2004.03.014.
- Rogel A, Willoughby JE, Buchan SL, Leonard HJ, Thirdborough SM, Al-Shamkhani A. Akt signaling is critical for memory CD8+ T-cell development and tumor immune surveillance. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 Feb 14;114(7):E1178-E1187. doi: 10.1073/pnas.1611299114. Epub 2017 Jan 30.
- Gravestein LA, Nieland JD, Kruisbeek AM, Borst J. Novel mAbs reveal potent co-stimulatory activity of murine CD27. Int Immunol. 1995 Apr;7(4):551-7. doi: 10.1093/intimm/7.4.551.
- Haas KM, Sen S, Sanford IG, Miller AS, Poe JC, Tedder TF. CD22 ligand binding regulates normal and malignant B lymphocyte survival in vivo. J Immunol. 2006 Sep 1;177(5):3063-73. doi: 10.4049/jimmunol.177.5.3063.
- Hombach AA, Heiders J, Foppe M, Chmielewski M, Abken H. OX40 costimulation by a chimeric antigen receptor abrogates CD28 and IL-2 induced IL-10 secretion by redirected CD4(+) T cells. Oncoimmunology. 2012 Jul 1;1(4):458-466. doi: 10.4161/onci.19855.
- Majzner RG, Mackall CL. Tumor Antigen Escape from CAR T-cell Therapy. Cancer Discov. 2018 Oct;8(10):1219-1226. doi: 10.1158/2159-8290.CD-18-0442. Epub 2018 Aug 22.
- Shah NN, Maatman T, Hari P, Johnson B. Multi Targeted CAR-T Cell Therapies for B-Cell Malignancies. Front Oncol. 2019 Mar 12;9:146. doi: 10.3389/fonc.2019.00146. eCollection 2019.
- Holland EM, Molina JC, Dede K, Moyer D, Zhou T, Yuan CM, Wang HW, Stetler-Stevenson M, Mackall C, Fry TJ, Panch S, Highfill S, Stroncek D, Little L, Lee DW, Shalabi H, Yates B, Shah N. Efficacy of second CAR-T (CART2) infusion limited by poor CART expansion and antigen modulation. J Immunother Cancer. 2022 May;10(5):e004483. doi: 10.1136/jitc-2021-004483.
- Cao Y, Xiao Y, Wang N, Wang G, Huang L, Hong Z, Meng L, Zhou X, Wang J, Yang Y, Xu H, Zhang S, Xiao M, Chen L, Zheng M, Li C, Mao X, Gu C, Zhang T, Zhang Y, Zhou J. CD19/CD22 Chimeric Antigen Receptor T Cell Cocktail Therapy following Autologous Transplantation in Patients with Relapsed/Refractory Aggressive B Cell Lymphomas. Transplant Cell Ther. 2021 Nov;27(11):910.e1-910.e11. doi: 10.1016/j.jtct.2021.08.012. Epub 2021 Aug 20.
- Pan J, Niu Q, Deng B, Liu S, Wu T, Gao Z, Liu Z, Zhang Y, Qu X, Zhang Y, Liu S, Ling Z, Lin Y, Zhao Y, Song Y, Tan X, Zhang Y, Li Z, Yin Z, Chen B, Yu X, Yan J, Zheng Q, Zhou X, Gao J, Chang AH, Feng X, Tong C. CD22 CAR T-cell therapy in refractory or relapsed B acute lymphoblastic leukemia. Leukemia. 2019 Dec;33(12):2854-2866. doi: 10.1038/s41375-019-0488-7. Epub 2019 May 20.
- Fayad L, Offner F, Smith MR, Verhoef G, Johnson P, Kaufman JL, Rohatiner A, Advani A, Foran J, Hess G, Coiffier B, Czuczman M, Gine E, Durrant S, Kneissl M, Luu KT, Hua SY, Boni J, Vandendries E, Dang NH. Safety and clinical activity of a combination therapy comprising two antibody-based targeting agents for the treatment of non-Hodgkin lymphoma: results of a phase I/II study evaluating the immunoconjugate inotuzumab ozogamicin with rituximab. J Clin Oncol. 2013 Feb 10;31(5):573-83. doi: 10.1200/JCO.2012.42.7211. Epub 2013 Jan 7.
- Rigaud C, Auperin A, Jourdain A, Haouy S, Couec ML, Aladjidi N, Gandemer V, Lambliotte A, Plat G, Landman-Parker J, Michon J, Leblanc T, Patte C, Minard-Colin V. Outcome of relapse in children and adolescents with B-cell non-Hodgkin lymphoma and mature acute leukemia: A report from the French LMB study. Pediatr Blood Cancer. 2019 Sep;66(9):e27873. doi: 10.1002/pbc.27873. Epub 2019 Jun 17.
- Hochberg J, El-Mallawany NK, Abla O. Adolescent and young adult non-Hodgkin lymphoma. Br J Haematol. 2016 May;173(4):637-50. doi: 10.1111/bjh.14074. Epub 2016 Apr 12.
- Anoop P, Sankpal S, Stiller C, Tewari S, Lancaster DL, Khabra K, Taj MM. Outcome of childhood relapsed or refractory mature B-cell non-Hodgkin lymphoma and acute lymphoblastic leukemia. Leuk Lymphoma. 2012 Oct;53(10):1882-8. doi: 10.3109/10428194.2012.677534. Epub 2012 Apr 23.
- Egan G, Goldman S, Alexander S. Mature B-NHL in children, adolescents and young adults: current therapeutic approach and emerging treatment strategies. Br J Haematol. 2019 Jun;185(6):1071-1085. doi: 10.1111/bjh.15734. Epub 2019 Jan 6.
- Cairo M, Auperin A, Perkins SL, Pinkerton R, Harrison L, Goldman S, Patte C. Overall survival of children and adolescents with mature B cell non-Hodgkin lymphoma who had refractory or relapsed disease during or after treatment with FAB/LMB 96: A report from the FAB/LMB 96 study group. Br J Haematol. 2018 Sep;182(6):859-869. doi: 10.1111/bjh.15491. Epub 2018 Jul 9.
- Moleti ML, Testi AM, Foa R. Treatment of relapsed/refractory paediatric aggressive B-cell non-Hodgkin lymphoma. Br J Haematol. 2020 Jun;189(5):826-843. doi: 10.1111/bjh.16461. Epub 2020 Mar 6.
- Rytting ME, Thomas DA, O'Brien SM, Ravandi-Kashani F, Jabbour EJ, Franklin AR, Kadia TM, Pemmaraju N, Daver NG, Ferrajoli A, Garcia-Manero G, Konopleva MY, Cortes JE, Borthakur G, Garris R, Cardenas-Turanzas M, Schroeder K, Jorgensen JL, Kornblau SM, Kantarjian HM. Augmented Berlin-Frankfurt-Munster therapy in adolescents and young adults (AYAs) with acute lymphoblastic leukemia (ALL). Cancer. 2014 Dec 1;120(23):3660-8. doi: 10.1002/cncr.28930. Epub 2014 Jul 17.
- Ram R, Wolach O, Vidal L, Gafter-Gvili A, Shpilberg O, Raanani P. Adolescents and young adults with acute lymphoblastic leukemia have a better outcome when treated with pediatric-inspired regimens: systematic review and meta-analysis. Am J Hematol. 2012 May;87(5):472-8. doi: 10.1002/ajh.23149. Epub 2012 Mar 3.
- Essig S, Li Q, Chen Y, Hitzler J, Leisenring W, Greenberg M, Sklar C, Hudson MM, Armstrong GT, Krull KR, Neglia JP, Oeffinger KC, Robison LL, Kuehni CE, Yasui Y, Nathan PC. Risk of late effects of treatment in children newly diagnosed with standard-risk acute lymphoblastic leukaemia: a report from the Childhood Cancer Survivor Study cohort. Lancet Oncol. 2014 Jul;15(8):841-51. doi: 10.1016/S1470-2045(14)70265-7. Epub 2014 Jun 19.
- Hunger SP, Baruchel A, Biondi A, Evans WE, Jeha S, Loh M, Moericke A, Pieters R, Relling MV, Schmiegelow K, Schrappe M, Silverman LB, Stanulla M, Valsecchi MG, Vora A, Pui CH. The thirteenth international childhood acute lymphoblastic leukemia workshop report: La Jolla, CA, USA, December 7-9, 2011. Pediatr Blood Cancer. 2013 Feb;60(2):344-8. doi: 10.1002/pbc.24354. Epub 2012 Sep 28. No abstract available.
- Faderl S, O'Brien S, Pui CH, Stock W, Wetzler M, Hoelzer D, Kantarjian HM. Adult acute lymphoblastic leukemia: concepts and strategies. Cancer. 2010 Mar 1;116(5):1165-76. doi: 10.1002/cncr.24862.
- Gill S, Carney D, Ritchie D, Wolf M, Westerman D, Prince HM, Januszewicz H, Seymour JF. The frequency, manifestations, and duration of prolonged cytopenias after first-line fludarabine combination chemotherapy. Ann Oncol. 2010 Feb;21(2):331-334. doi: 10.1093/annonc/mdp297. Epub 2009 Jul 22.
- Levine JE, Grupp SA, Pulsipher MA, Dietz AC, Rives S, Myers GD, August KJ, Verneris MR, Buechner J, Laetsch TW, Bittencourt H, Baruchel A, Boyer MW, De Moerloose B, Qayed M, Davies SM, Phillips CL, Driscoll TA, Bader P, Schlis K, Wood PA, Mody R, Yi L, Leung M, Eldjerou LK, June CH, Maude SL. Pooled safety analysis of tisagenlecleucel in children and young adults with B cell acute lymphoblastic leukemia. J Immunother Cancer. 2021 Aug;9(8):e002287. doi: 10.1136/jitc-2020-002287.
- Schuster, SJ, Svoboda J, Nasta SD, et al, Sustained Remissions Following Chimeric Antigen Receptor Modified T Cells Directed Against CD19 (CTL019) in Patients with Relapsed or Refractory CD19+ Lymphomas. Blood, 2015. 126(23): p. 183-183.
- Jourdain A, Auperin A, Minard-Colin V, Aladjidi N, Zsiros J, Coze C, Gandemer V, Bertrand Y, Leverger G, Bergeron C, Michon J, Patte C; SFCE LNH Committee. Outcome of and prognostic factors for relapse in children and adolescents with mature B-cell lymphoma and leukemia treated in three consecutive prospective "Lymphomes Malins B" protocols. A Societe Francaise des Cancers de l'Enfant study. Haematologica. 2015 Jun;100(6):810-7. doi: 10.3324/haematol.2014.121434. Epub 2015 Feb 27.
- Guedan S, Chen X, Madar A, Carpenito C, McGettigan SE, Frigault MJ, Lee J, Posey AD Jr, Scholler J, Scholler N, Bonneau R, June CH. ICOS-based chimeric antigen receptors program bipolar TH17/TH1 cells. Blood. 2014 Aug 14;124(7):1070-80. doi: 10.1182/blood-2013-10-535245. Epub 2014 Jul 1.
- Zhao Z, Condomines M, van der Stegen SJC, Perna F, Kloss CC, Gunset G, Plotkin J, Sadelain M. Structural Design of Engineered Costimulation Determines Tumor Rejection Kinetics and Persistence of CAR T Cells. Cancer Cell. 2015 Oct 12;28(4):415-428. doi: 10.1016/j.ccell.2015.09.004.
- Long AH, Haso WM, Shern JF, Wanhainen KM, Murgai M, Ingaramo M, Smith JP, Walker AJ, Kohler ME, Venkateshwara VR, Kaplan RN, Patterson GH, Fry TJ, Orentas RJ, Mackall CL. 4-1BB costimulation ameliorates T cell exhaustion induced by tonic signaling of chimeric antigen receptors. Nat Med. 2015 Jun;21(6):581-90. doi: 10.1038/nm.3838. Epub 2015 May 4.
- National Institute of Health/National Cancer Institute - Cancer Therapy Evaluation Program (CTEP). Common Terminology Criteria for Adverse Events (CTCAE). URL: https://ctep.cancer.gov/protocoldevelopment/electronic_applications/ctc.htm#ctc_60 Accessed 01-26-2022
- Pasquini MC, Hu ZH, Curran K, Laetsch T, Locke F, Rouce R, Pulsipher MA, Phillips CL, Keating A, Frigault MJ, Salzberg D, Jaglowski S, Sasine JP, Rosenthal J, Ghosh M, Landsburg D, Margossian S, Martin PL, Kamdar MK, Hematti P, Nikiforow S, Turtle C, Perales MA, Steinert P, Horowitz MM, Moskop A, Pacaud L, Yi L, Chawla R, Bleickardt E, Grupp S. Real-world evidence of tisagenlecleucel for pediatric acute lymphoblastic leukemia and non-Hodgkin lymphoma. Blood Adv. 2020 Nov 10;4(21):5414-5424. doi: 10.1182/bloodadvances.2020003092.
- Barrington SF, Mikhaeel NG, Kostakoglu L, Meignan M, Hutchings M, Mueller SP, Schwartz LH, Zucca E, Fisher RI, Trotman J, Hoekstra OS, Hicks RJ, O'Doherty MJ, Hustinx R, Biggi A, Cheson BD. Role of imaging in the staging and response assessment of lymphoma: consensus of the International Conference on Malignant Lymphomas Imaging Working Group. J Clin Oncol. 2014 Sep 20;32(27):3048-58. doi: 10.1200/JCO.2013.53.5229.
- Fabrizio VA, Boelens JJ, Mauguen A, Baggott C, Prabhu S, Egeler E, Mavroukakis S, Pacenta H, Phillips CL, Rossoff J, Stefanski HE, Talano JA, Moskop A, Margossian SP, Verneris MR, Myers GD, Karras NA, Brown PA, Qayed M, Hermiston M, Satwani P, Krupski C, Keating AK, Wilcox R, Rabik CA, Chinnabhandar V, Kunicki M, Goksenin AY, Mackall CL, Laetsch TW, Schultz LM, Curran KJ. Optimal fludarabine lymphodepletion is associated with improved outcomes after CAR T-cell therapy. Blood Adv. 2022 Apr 12;6(7):1961-1968. doi: 10.1182/bloodadvances.2021006418.
- Kawalekar OU, O'Connor RS, Fraietta JA, Guo L, McGettigan SE, Posey AD Jr, Patel PR, Guedan S, Scholler J, Keith B, Snyder NW, Blair IA, Milone MC, June CH. Distinct Signaling of Coreceptors Regulates Specific Metabolism Pathways and Impacts Memory Development in CAR T Cells. Immunity. 2016 Feb 16;44(2):380-90. doi: 10.1016/j.immuni.2016.01.021.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Neoplasmer
- Sykdommer i immunsystemet
- Infeksjoner
- Virussykdommer
- Neoplasmer etter histologisk type
- DNA-virusinfeksjoner
- Lymfesykdommer
- Lymfoproliferative lidelser
- Immunproliferative lidelser
- Lymfom, Non-Hodgkin
- Lymfom
- Epstein-Barr-virusinfeksjoner
- Herpesviridae-infeksjoner
- Tumorvirusinfeksjoner
- Hemic og lymfatiske sykdommer
- Lymfom, B-celle
- Burkitt lymfom
- Organiske kjemikalier
- Hydrokarboner
- Fosforamid -sennep
- Nitrogen sennepsforbindelser
- Sennepsforbindelser
- Hydrokarboner, halogenert
- Fosforamider
- Organofosforforbindelser
- Cyklofosfamid
- fludarabin
Andre studie-ID-numre
- STUDY00161006
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
produkt produsert i og eksportert fra USA
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .