- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT01861054
Badanie pilotażowe oceniające bezpieczeństwo i skutki biologiczne doustnego podawania reparyksyny we wczesnym stadium raka piersi
Jednoramienne, przedoperacyjne, pilotażowe badanie mające na celu ocenę bezpieczeństwa i efektów biologicznych doustnie podawanej reparyksyny u pacjentek z wczesnym rakiem piersi, które są kandydatami do operacji
Jest to pilotażowe badanie kliniczne „okna możliwości” u pacjentów z operacyjnym rakiem piersi, oceniające zastosowanie reparyksyny jako pojedynczego środka w okresie między diagnozą kliniczną a operacją.
Głównymi celami tego badania były:
1- ocena wpływu doustnie podawanej reparyksyny na CSC w guzie pierwotnym i mikrośrodowisku guza we wczesnej populacji raka piersi:
A. CSC mierzono w próbkach tkanek za pomocą technik, które mogą obejmować: test ALDEFLUOR i ocenę CD44/CD24 za pomocą cytometrii przepływowej lub badanie transkryptów RNA za pomocą RT-PCR, dehydrogenazy aldehydowej-1, CD44/CD24 i nabłonkowych markerów przejścia mezenchymalnego ( Snail, Twist, Notch) metodą immunohistochemiczną (IHC). CSC zdefiniowano jako ALDEFLUOR-dodatnie (ALDH-1+) i/lub CD44 wysoki/CD24 niski za pomocą cytometrii przepływowej lub RT-PCR i IHC oraz przez wykrycie komórek ALDH-1+ z czynnikiem transkrypcyjnym nabłonkowego przejścia mezenchymalnego (EMT) lub bez niego w testach IHC.
B. Poziomy białkowej kinazy serynowo-treoninowej (AKT), ogniskowej kinazy adhezyjnej (FAK), fosfatazy i homologu tensyny (PTEN) oraz receptora chemokiny-1 (CXCR1) mierzono w próbkach tkanek metodą IHC.
C. Pomiar markerów stanu zapalnego (interleukina-1beta [IL-1β], interleukina-6 [IL-6], interleukina-8 [IL-8], czynnik martwicy nowotworu-alfa [TNF-α], czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów) czynnik wzrostu [GM-CSF], czynnik wzrostu śródbłonka naczyniowego [VEGF], podstawowy czynnik wzrostu fibroblastów [b-FGF] i wysokoczułe białko C-reaktywne [hsCRP]) w osoczu, podzbiory leukocytów (wyliczyć podzbiory T, B i naturalne zabójców/naturalnych zabójców komórek T [NK/NKT]) i badają biologię leukocytów polimorfojądrowych [PMN] w próbkach krwi obwodowej. D. Pomiar markerów angiogenezy (barwienie CD31), leukocytów naciekających guz (CD4, CD8, NK i makrofagi), autofagii (P62 i LC3 metodą IHC), markerów EpCAM i EMT (CD326, CD45, Twist1, SNAIL1, SLUG, ZEB1, FOXC2, TG2, Akt2, P13k i CK19 za pomocą RT-PCR) i komórkowości tkanek (charakterystyka choroby resztkowej w loży po guzie) w próbkach tkanek guza.
2. Ocena bezpieczeństwa doustnej reparyksyny podawanej trzy razy dziennie (t.i.d.) przez 21 kolejnych dni.
Drugim celem było określenie profilu farmakokinetycznego (PK) reparyksyny podawanej doustnie.
Przegląd badań
Szczegółowy opis
Zgodnie z modelem komórek macierzystych raka (CSC), nowotwory są zorganizowane w hierarchię komórkową utrzymywaną przez subpopulację komórek wykazujących właściwości komórek macierzystych. Właściwości te obejmują samoodnawianie (które napędza powstawanie nowotworów) i różnicowanie (które generuje masę guza i przyczynia się do heterogeniczności komórek).
CSC po raz pierwszy zaobserwowano w nowotworach hematologicznych, ale zidentyfikowano je również w guzach litych piersi, prostaty, mózgu, okrężnicy i trzustki. Uważa się, że CSC są oporne na konwencjonalne chemioterapie i być może dlatego u wielu pacjentów dochodzi do nawrotów, co może wyjaśniać niepowodzenie w opracowaniu terapii, które są w stanie konsekwentnie zwalczać guzy lite. Chociaż obecnie dostępne leki mogą zmniejszać guzy przerzutowe, efekty te są zwykle przejściowe i często nie wydłużają znacząco życia pacjentów. Jednym z powodów niepowodzenia tych terapii jest nabywanie lekooporności przez komórki nowotworowe w miarę ich ewolucji; inną możliwością jest to, że istniejące terapie nie zabijają skutecznie CSC. Istniejące terapie zostały opracowane głównie przeciwko masowej populacji komórek nowotworowych, ponieważ są one często identyfikowane na podstawie ich zdolności do zmniejszania guzów. Ponieważ większość komórek nowotworowych ma ograniczony potencjał proliferacyjny, zdolność do zmniejszania guza odzwierciedla głównie zdolność do zabijania tych komórek. Wydaje się, że normalne komórki macierzyste z różnych tkanek są bardziej odporne na chemioterapeutyki niż dojrzałe typy komórek z tych samych tkanek. Przyczyny tego nie są jasne, ale mogą odnosić się do wysokiego poziomu ekspresji białek antyapoptotycznych lub transporterów kasetowych wiążących trójfosforan adenozyny, takich jak gen oporności wielolekowej. Gdyby to samo dotyczyło CSC, można by przewidzieć, że komórki te byłyby bardziej oporne na chemioterapeutyki niż komórki nowotworowe o ograniczonym potencjale proliferacyjnym. Nawet terapie, które powodują całkowitą regresję guzów, mogą oszczędzić wystarczającą ilość CSC, aby umożliwić ponowny wzrost guzów. Terapie, które są bardziej ukierunkowane na CSC, mogą skutkować znacznie trwalszymi reakcjami, a nawet wyleczeniem guzów przerzutowych.
Istnieją ograniczone dane dotyczące wpływu dostosowywania leczenia w oparciu o wykrywanie CSC. Profilowanie genów CSC może prowadzić do identyfikacji celów terapeutycznych na CSC (np. receptory hormonalne (HR), ekspresja receptora ludzkiego naskórkowego czynnika wzrostu 2 [HER-2], ekspresja receptora naskórkowego czynnika wzrostu [EGFR]) i może reprezentować biopsję guza w „czasie rzeczywistym”. Kilka grup wykazało częstą niezgodność statusu HER-2 między guzem pierwotnym a CSC, a opisy przypadków wykazały użyteczność kliniczną stosowania terapii opartej na trastuzumabie w oparciu o status HER-2 CSC. Podobnie stan hormonalny CSC może różnić się od stanu guza pierwotnego, co może prowadzić do zwiększenia liczby pacjentów nadających się do terapii hormonalnej, ale może również wyjaśniać, dlaczego terapia hormonalna kończy się niepowodzeniem w podgrupie pacjentów z dodatnim wynikiem HR (HR+). Dokładniej, ostatnia obserwacja Ginestiera i in. wykazali, że nadekspresja receptora chemokin 1 (CXCR-1) jest związana z komórkami dodatnimi pod względem dehydrogenazy aldehydowej (ALDH+). W raku piersi fenotyp ALDEFLUOR+ częściowo pokrywa się z fenotypem CD44+CD24-Lin-CSC. Hierarchie komórkowe zidentyfikowano w serii molekularnie scharakteryzowanych linii komórkowych raka sutka i wykazano, że te linie zawierały składniki ALDEFLUOR+, które były zarówno rakotwórcze, jak i przerzutowe u myszy NOD/SCID. Ponadto wcześniejsze obserwacje wykazały, że dodanie rekombinowanej interleukiny-8 (IL-8) zwiększyło populację CSC, jak również zwiększyło jej skłonność do inwazji. Ponadto uszkodzenie tkanki wywołane przez środki chemioterapeutyczne może indukować IL-8 jako część odpowiedzi na uraz. Sugeruje to, że strategie mające na celu zakłócanie osi IL 8/CXCR-1 mogą być w stanie celować w CSC, zwiększając skuteczność obecnych terapii. Te dane eksperymentalne dostarczają innego celu terapeutycznego w raku piersi.
Reparixin wydaje się być dobrym kandydatem do stosowania u chorych na raka piersi ze względu na bardzo akceptowalny profil toksyczności wykazany w przeprowadzonych dotychczas badaniach klinicznych fazy I i II, a także zaobserwowaną aktywność in vitro przeciwko liniom komórkowym raka piersi oraz in vivo w nowotworach heteroprzeszczepy u myszy. Obecnie trwają badania fazy 1 mające na celu zbadanie wpływu reparyksyny w połączeniu z paklitakselem w raku piersi z przerzutami.
To małe badanie pilotażowe ma na celu zbadanie wpływu na markery CSC piersi, a także bezpieczeństwa i profilu farmakokinetycznego doustnej reparyksyny podawanej w monoterapii u pacjentek z wczesnym rakiem piersi HER-2-ujemnym (HER-2-) w ciągu 3 tygodni przed operacją.
Badanie zostanie przeprowadzone w okresie między rozpoznaniem choroby a planowaną operacją i może prowadzić do minimalnego opóźnienia operacji. Jest to równoważone potencjalnymi korzyściami z badania polegającego na ocenie CSC i ich znaczeniu prognostycznym, a także uzyskaniu informacji o wpływie terapii reparyksyną.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 2
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Indiana
-
Indianapolis, Indiana, Stany Zjednoczone, 46202-5289
- Indiana University Simon Cancer Center
-
-
Kansas
-
Fairway, Kansas, Stany Zjednoczone, 66205
- University of Kansas Cancer Center, 4350 Shawnee Mission Pkwy, Suite 1500, Mailstop 6004
-
-
New Jersey
-
New Brunswick, New Jersey, Stany Zjednoczone, 08903
- The Cancer Institute of New Jersey
-
-
New York
-
Bronx, New York, Stany Zjednoczone, 10461
- Montefiore Medical Center, MMC Medical Park at Eastchester
-
New York, New York, Stany Zjednoczone, 10065
- Weill Cornell Medical College
-
-
Pennsylvania
-
Philadelphia, Pennsylvania, Stany Zjednoczone, 19111
- Fox Chase Cancer Center
-
Pittsburgh, Pennsylvania, Stany Zjednoczone, 15213
- Magee-Womens Hospital
-
-
Tennessee
-
Nashville, Tennessee, Stany Zjednoczone, 37203
- Sara Cannon Research Institute
-
-
Texas
-
Houston, Texas, Stany Zjednoczone, 77030
- The Methodist Hospital Research Institute
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Kobieta w wieku > 18 lat.
- Pacjenci z operacyjnym rakiem piersi, z mierzalnymi guzami o średnicy powyżej 1 cm, którzy nie są kandydatami do leczenia neoadiuwantowego.
- Zubrod (Eastern Co-operative Oncology Group [ECOG]) Stan sprawności (PS) 0-1.
- Brak wcześniejszego leczenia chirurgicznego, radioterapii, terapii hormonalnej np. TAMOXIFEN® lub RALOXIFEN® do profilaktyki lub chemioterapii.
- Zaplanowano poddanie się ostatecznej operacji miejscowej z powodu raka piersi.
- Pacjenci muszą wyrazić chęć poddania się dwóm obowiązkowym biopsjom guza (przed i po terapii), które nie są wymagane w ramach standardowej opieki. Próbka tkanki guza usunięta podczas operacji zostanie również pobrana do analizy.
- Pacjenci muszą być w stanie połknąć i zachować lek doustny (nieuszkodzoną tabletkę).
- Możliwość poddania się wszystkim ocenom przesiewowym określonym w protokole po wyrażeniu świadomej zgody.
Odpowiednia funkcja narządów (zdefiniowana przez następujące parametry):
- Stężenie kreatyniny w surowicy < 140 μmol/l lub klirens kreatyniny > 60 ml/min.
- Hemoglobina w surowicy > 9 g/dl; bezwzględna liczba neutrofili > 1,5 x 109/l; płytki krwi > 100 x 109/l.
- Stężenie bilirubiny w surowicy < górna granica normy (UNL).
- Aminotransferaza alaninowa w surowicy (ALT), aminotransferaza asparaginianowa (AST) ≤ UNL; fosfataza alkaliczna (ALP) ≤ UNL; albuminy w granicach normy.
- Udokumentowany status receptora hormonalnego (receptor ER i progesteronu) oraz HER-2-.
- Brak znanego wirusa zapalenia wątroby typu B (chyba że z powodu immunizacji), wirusa zapalenia wątroby typu C, ludzkiego wirusa niedoboru odporności - status pozytywny I i II.
Kryteria wyłączenia:
- Mężczyzna.
- Ciąża lub laktacja lub niechęć do stosowania dwóch odpowiednich metod kontroli urodzeń w trakcie badania i przez 30 dni po przerwaniu badania.
- Wszelkie inne typy raka piersi, w tym postać zapalna.
- Przed operacją w okolicy piersi lub pierwotnym rozwarstwieniem pachowym.
- Wcześniejsze leczenie raka piersi.
- Stosowanie badanego leku w ciągu 30 dni poprzedzających podanie pierwszej dawki badanego leku.
- Każdy przebyty lub obecny rak, z wyjątkiem raka macicy in situ lub raka podstawnokomórkowego skóry, uznanego za definitywnie wyleczony.
- Wszelkie powiązane schorzenia uznane za niezgodne z badaniem, np. niewydolność serca, nerek, rdzenia kręgowego, oddechowego lub wątroby.
- Zaburzenia neurologiczne lub psychiatryczne, które mogą wpływać na zrozumienie badania i procedur świadomej zgody.
- Aktywna lub niekontrolowana infekcja.
- Zespół złego wchłaniania, choroba znacząco wpływająca na czynność przewodu pokarmowego.
Nadwrażliwość na:
- ibuprofen lub więcej niż jeden niesteroidowy lek przeciwzapalny;
- leki należące do klasy sulfonamidów, takie jak sulfametazyna, sulfametoksazol, sulfasalazyna, nimesulid lub celekoksyb.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nie dotyczy
- Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Leczeni pacjenci — ogółem
Kwalifikujący się pacjenci będą leczeni preparatem Reparixin jako dodatkową monoterapią
|
1000 mg Reparixin doustnie trzy razy na dobę przez 21 kolejnych dni przed zabiegiem
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Zmiana od punktu początkowego do dnia 21 w markerach nowotworowych komórek macierzystych (CSC) w guzie pierwotnym i mikrośrodowisku guza (ALDH1, CD44/CD24)
Ramy czasowe: W dniu 21
|
CSC mierzono w próbkach tkanek za pomocą następujących technik: ALDH-1 metodą ALDEFLUOR i metodą immunohistochemiczną (IHC); CD44/CD24 za pomocą cytometrii przepływowej lub badania transkryptów RNA za pomocą RT-PCR i immunohistochemii (IHC); nabłonkowe markery mezenchymalne (Snail, Twist, Notch) metodą immunohistochemiczną (IHC).
|
W dniu 21
|
|
Zmiana od linii podstawowej-1 do dnia 21-1 w markerach szlaku według IHC
Ramy czasowe: Dzień 21 (lub ostatni dzień leczenia)
|
Markery szlaku (AKT, FAK, PTEN i CXCR1) mierzono w próbkach tkanek przed badaniem (dni -14 do 0) iw dniu 21 (lub w ciągu 24 godzin od ostatniej dawki). Do oceny stopnia zabarwienia zastosowano następującą półilościową metodę punktacji (od 0 do 4): 0, brak komórek dodatnich; 1, 1-25%; 2, 26-50%; 3, 51-75%; i 4, 76-100%. Stąd dla tej skali im wyższe wartości, tym gorszy wynik. Do oceny intensywności plam zastosowano następującą metodę punktacji (od 0 do 3): 0, wynik negatywny; 1, słaby; 2, umiarkowane, 3; mocny. Także dla tej skali im wyższy wynik, tym gorszy wynik. Kinaza białkowa serynowo-treoninowa (AKT, znana również jako kinaza białkowa B, PKB) Kinaza ogniskowej adhezji (FAK) Receptor chemokiny-1 (CXCR1) |
Dzień 21 (lub ostatni dzień leczenia)
|
|
Zmiana od linii podstawowej do dnia 21 w markerach stanu zapalnego
Ramy czasowe: W dniu 21
|
W osoczu krwi obwodowej oznaczano markery stanu zapalnego (IL-1β, IL-6, IL-8, TNF-α, GM-CSF, VEGF i b-FGF). IL = interleukiny TNF-α = czynnik martwicy nowotworu alfa GM-CSF = czynnik stymulujący tworzenie kolonii makrofagów VEGF = czynnik wzrostu śródbłonka naczyń b-FGF = podstawowy czynnik wzrostu fibroblastów |
W dniu 21
|
|
Zmiana od linii podstawowej-1 do dnia 21-1 w markerach angiogenezy (barwienie CD31)
Ramy czasowe: W dniu 21
|
Barwienie CD31 metodą IHC. Do oceny stopnia zabarwienia zastosowano następującą półilościową metodę punktacji (od 0 do 4): 0, brak komórek dodatnich; 1, 1-25%; 2, 26-50%; 3, 51-75%; i 4, 76-100%. Stąd dla tej skali im wyższe wartości, tym gorszy wynik. Do oceny intensywności plam zastosowano następującą metodę punktacji (od 0 do 3): 0, wynik negatywny; 1, słaby; 2, umiarkowane, 3; mocny. Także dla tej skali im wyższy wynik, tym gorszy wynik. CD31 jest transbłonową glikoproteiną o masie cząsteczkowej 130-140 kDa, znaną również jako cząsteczka adhezyjna komórek śródbłonka płytek krwi (PECAM-1). CD31 jest ligandem dla CD38 i odgrywa rolę w zakrzepicy i angiogenezie. CD31 ulega silnej ekspresji w komórkach śródbłonka i słabej w megakariocytach, płytkach krwi, sporadycznie komórkach plazmatycznych, limfocytach (zwł. komórki B strefy brzeżnej, obwodowe komórki T) i neutrofile. |
W dniu 21
|
|
Zmiana od linii podstawowej-1 do dnia 21-1 w markerach autofagii (P62 i LC3B wg IHC)
Ramy czasowe: W dniu 21
|
Autofagia to lizosomalny proces degradacji i recyklingu związany z progresją raka i opornością na terapię. Znakowanie p62 służy jako użyteczny marker do indukcji autofagii, usuwania agregatów białkowych i hamowania autofagii. Znakowanie LC3B służy do śledzenia wiązania p62 i późniejszej rekrutacji autofagosomów. Do oceny zakresu zastosowano następującą półilościową metodę punktacji (od 0 do 4): 0, brak komórek dodatnich; 1, 1-25%; 2, 26-50%; 3, 51-75%; i 4, 76-100%. Stąd dla tej skali im wyższe wartości, tym gorszy wynik. Do oceny intensywności zastosowano następującą metodę punktową (od 0 do 3): 0, negatywna; 1, słaby; 2, umiarkowane, 3; mocny. Także dla tej skali im wyższy wynik, tym gorszy wynik. |
W dniu 21
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Farmakokinetyka reparyksyny (DF1681Y, DF1681Y niezwiązany, DF2243Y, DF2188Y) - Cmax
Ramy czasowe: W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
Po wchłonięciu reparyksyna silnie wiąże się z białkami. Porównując Cmax i AUC dla leku niezwiązanego z całkowitym lekiem, tylko < 0,1% do 0,2% reparyksyny jest dostępne w postaci niezwiązanego (wolnego) leku. Celem wyników PK nie było porównanie wyników między dwiema kohortami; z tego powodu wyniki dotyczące wyników farmakokinetycznych są podawane dla całej grupy leczonych pacjentów. Cmax = maksymalne stężenie w osoczu uzyskane bezpośrednio z danych bez interpolacji, wyrażone w jednostkach stężenia |
W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
|
Farmakokinetyka reparyksyny (DF1681Y, DF1681Y niezwiązany, DF2243Y, DF2188Y) — Tmax i T1/2
Ramy czasowe: W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
Po wchłonięciu reparyksyna silnie wiąże się z białkami. Porównując Cmax i AUC dla leku niezwiązanego z całkowitym lekiem, tylko < 0,1% do 0,2% reparyksyny jest dostępne w postaci niezwiązanego (wolnego) leku. Celem wyników PK nie było porównanie wyników między dwiema kohortami; z tego powodu wyniki dotyczące wyników farmakokinetycznych są podawane dla całej grupy leczonych pacjentów. tmax = czas do osiągnięcia maksymalnego stężenia w osoczu uzyskany bezpośrednio z danych bez interpolacji t1/2 = okres półtrwania w końcowej fazie eliminacji obliczony jako ln(2)/lambda z; oblicza się tylko wtedy, gdy współczynnik determinacji R2 w estymacji lambda z wynosi co najmniej 0,8. |
W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
|
Farmakokinetyka reparyksyny (DF1681Y, DF1681Y niezwiązany, DF2243Y, DF2188Y) - AUC0-8, AUCinf, AUClast, AUCtau w dniu 21,
Ramy czasowe: W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
Celem wyników PK nie było porównanie wyników między dwiema kohortami; z tego powodu wyniki dotyczące wyników farmakokinetycznych są podawane dla całej grupy leczonych pacjentów. AUC0-8 = pole pod krzywą zależności stężenia w osoczu od czasu od czasu 0 do 8 godzin po podaniu dawki; AUClast = pole pod krzywą stężenie-czas od czasu 0 do ostatniego oznaczalnego stężenia AUCtau = pole pod krzywą stężenie-czas w osoczu dla przerwy między dawkami (przerwa między dawkami [tau] = 8 godzin); AUCinf = Całkowity obszar pod krzywą zależności stężenia w osoczu od czasu od zera do nieskończoności czasu; AUC0-inf = AUClast + Clast/lambda zeta, gdzie Clast to ostatnie zaobserwowane stężenie ≥ dolna granica oznaczania ilościowego w czasie tlast. Wszystkie te parametry zostały obliczone według liniowej zasady trapezów. |
W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
|
Farmakokinetyka reparyksyny (DF1681Y, DF1681Y niezwiązany, DF2243Y, DF2188Y) - CL/F (l/h) w dniu 1, CLSS/F (l/h) w dniu 21)
Ramy czasowe: W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
Celem wyników PK nie było porównanie wyników między dwiema kohortami; z tego powodu wyniki dotyczące wyników farmakokinetycznych są podawane dla całej grupy leczonych pacjentów. CL/F = pozorny klirens po podaniu doustnym – tylko dla DF1681Y, obliczony jako dawka/AUCinf.; oblicza się tylko wtedy, gdy współczynnik determinacji R2 w estymacji lambda zeta wynosi co najmniej 0,8, a ekstrapolacja procentowa AUC jest mniejsza lub równa 20%. CLss/F = pozorny klirens po podaniu doustnym w stanie stacjonarnym – tylko dla DF1681Y obliczony jako dawka/AUCtau. |
W dniu 1 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu) i 21 (przed pierwszą dawką i 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8 godzin po podaniu)
|
|
Zmiana od linii podstawowej do dnia 21 w podzbiorach leukocytów
Ramy czasowe: W dniu 21
|
Analizowane podzbiory leukocytów są następujące: limfocyty w białych krwinkach, limfocyty T ogółem w limfocytach, limfocyty B w limfocytach, limfocyty pomocnicze T w limfocytach, CTL w limfocytach, komórki NKT w limfocytach, podzbiory ADCC NK w limfocytach, podzbiory regulatorowych NK w limfocytach , Wyczerpane podzbiory NK w limfocytach, Podzbiory NK CD56-CD16+ w limfocytach, CD11b w PMN - IL-8, CD18 w PMN - IL-8, MFI dla CD11b - IL-8, MFI dla CD66b - IL-8, MFI dla CD18 - IL-8, CD11b w PMN - US, CD18 w PMN - US, MFI CD11b - US, MFI CD66b - US, MFI CD18 - US, procent monocytów z ekspresją IL6 - IL-8, procent monocytów z ekspresją IL1b - IL -8, Procent monocytów z ekspresją IL8 - IL-8, Procent monocytów z ekspresją TNFa - IL-8, Procent neutrofili z ekspresją IL6 - IL-8, Procent neutrofili z ekspresją IL1b - IL-8, Procent neutrofili z ekspresją IL8 - IL-8, Procent neutrofili z ekspresją TNFa - IL-8, procent monocytów z ekspresją IL6 - US, procent monocytów z ekspresją IL1b - US itp.
|
W dniu 21
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Lori J Goldstein, MD, PhD, Fox Chase Cancer Center
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Goldstein LJ, Mansutti M, Levy C, Chang JC, Henry S, Fernandez-Perez I, Prausova J, Staroslawska E, Viale G, Butler B, McCanna S, Ruffini PA, Wicha MS, Schott AF; fRida Trial Investigators. A randomized, placebo-controlled phase 2 study of paclitaxel in combination with reparixin compared to paclitaxel alone as front-line therapy for metastatic triple-negative breast cancer (fRida). Breast Cancer Res Treat. 2021 Nov;190(2):265-275. doi: 10.1007/s10549-021-06367-5. Epub 2021 Sep 3.
- Goldstein LJ, Perez RP, Yardley D, Han LK, Reuben JM, Gao H, McCanna S, Butler B, Ruffini PA, Liu Y, Rosato RR, Chang JC. A window-of-opportunity trial of the CXCR1/2 inhibitor reparixin in operable HER-2-negative breast cancer. Breast Cancer Res. 2020 Jan 10;22(1):4. doi: 10.1186/s13058-019-1243-8. Erratum In: Breast Cancer Res. 2020 May 20;22(1):52.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- REP0210
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .