- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT03783195
Genetycznie specyficzny wpływ fruktozy na lipogenezę wątroby
Głównym celem tego badania jest zidentyfikowanie zestawu genotypów, które zwiększają ryzyko niealkoholowej stłuszczeniowej choroby wątroby (NAFLD) i predysponują osoby do zwiększonej lipogenezy de novo (DNL) i akumulacji tłuszczu w wątrobie po ekspozycji na spożycie fruktozy. Zaproponowany cel zostanie osiągnięty poprzez realizację następujących celów:
- Aby określić wpływ przedłużonej ekspozycji na fruktozę na akumulację lipidów w wątrobie u osób rasy kaukaskiej z wysokim i niskim genetycznym ryzykiem NAFLD,
- określenie wpływu ostrej ekspozycji na fruktozę na DNL wątroby, oraz
- określenie związku między markerami DNL, akumulacją tłuszczu w wątrobie a stężeniami lipidów, kwasu moczowego i markerami czynności wątroby w surowicy przed i po prowokacji fruktozą.
Przegląd badań
Szczegółowy opis
TŁO I UZASADNIENIE Niealkoholowa stłuszczeniowa choroba wątroby (NAFLD) charakteryzuje się nagromadzeniem tłuszczu w komórkach wątroby, które nie jest spowodowane alkoholem. NAFLD, będąca główną przyczyną przewlekłej choroby wątroby w Stanach Zjednoczonych, reprezentuje grupę zaburzeń, w tym stłuszczenie, niealkoholowe stłuszczeniowe zapalenie wątroby ze zwłóknieniem. Częstość występowania znacznie wzrosła w ciągu ostatnich dwóch dekad, a szacowana częstość występowania wynosi 20% wśród dorosłych w Stanach Zjednoczonych i 25% wśród młodych dorosłych (18-39 lat). Uważa się, że ponad 64 miliony osób cierpi na NAFLD, a roczne koszty leczenia sięgają ponad 100 miliardów dolarów. Częściej u osób otyłych lub chorych na cukrzycę i/lub z zespołem metabolicznym NAFLD wiąże się ze zwiększoną marskością wątroby, śmiertelnością związaną z wątrobą i rakiem wątrobowokomórkowym.
Zarówno czynniki genetyczne, jak i środowiskowe, w tym żywieniowe, przyczyniają się do wystąpienia i progresji NAFLD. Zwiększone spożycie słodzonych cukrem napojów bogatych w fruktozę zostało powiązane z NAFLD. Fruktoza, powszechnie występująca w napojach bezalkoholowych, sokach owocowych i napojach energetycznych, wpływa na wiele procesów metabolicznych, przede wszystkim na zwiększenie gromadzenia się tłuszczu w wątrobie, a co za tym idzie NAFLD. Badania całego genomu i genów kandydujących zidentyfikowały kilka genów związanych z NAFLD. Jednak żadne z tych badań nie wykazało skumulowanego wpływu polimorfizmów pojedynczych nukleotydów (SNP) na zmiany w tłuszczu wątrobowym po ekspozycji na fruktozę. Wyniki tego badania można ekstrapolować na większe kohorty i inne grupy etniczne, dlatego oczekuje się, że położą one podwaliny pod opracowanie spersonalizowanych planów żywieniowych.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
North Carolina
-
Kannapolis, North Carolina, Stany Zjednoczone, 28081
- UNC Nutrition Research Institute
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Osoby w wieku 12 - 40 lat
- Brak historii nadużywania alkoholu (> 7 drinków tygodniowo)
- Historia spożycia fruktozy < 14 drinków tygodniowo
- Pochodzenie kaukaskie
- BMI > 25kg/m² - 32kg/m² lub 85-99 percentyl, ale poza tym zdrowy
Kryteria wyłączenia:
- w wieku < 12 i > 40 lat
- Ciąża/karmienie piersią
- znane nadużywanie alkoholu lub spożycie fruktozy > 14 drinków tygodniowo
- nie pochodzenia kaukaskiego
- poziom glukozy > 100 mg/dl na czczo, > 140 mg/dl w ciągu 2 godzin po posiłku i > 200 mg/dl w przypadku losowej próbki
- przyjmowanie leków przeciwnadciśnieniowych, przeciwcukrzycowych, kwasu moczowego i/lub obniżających stężenie lipidów
- znane rozpoznanie cukrzycy, nietolerancji fruktozy, przewlekłej choroby nerek, NAFLD lub jakiejkolwiek choroby związanej z wątrobą, hipertriglicerydemii, zespołu policystycznych jajników, niedoczynności tarczycy, obturacyjnego bezdechu sennego, niedoczynności przysadki i hipogonadyzmu
- BMI < 25 kg/m² lub > 32 kg/m² lub < 85. lub > 99. percentyl
- Frakcja tłuszczu wątrobowego >5% zgodnie z wyjściowym skanem MRI
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Podstawowa nauka
- Przydział: Nielosowe
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Grupa o wysokim GRS
Ta grupa składa się z osób, które znajdują się w najwyższym kwartylu wyniku genetycznego ryzyka (GRS) i będą spożywać jeden napój z cukrem (równy 2 napojom bezalkoholowym) dziennie przez 3 tygodnie.
GRS oblicza się, dodając liczbę alleli, które zwiększają ryzyko lipogenezy wątroby lub stłuszczenia wątroby.
|
Napój cukrowy sporządzony z 1,2 g/kg masy ciała dodatku cukru (0,75 g/kg masy ciała fruktozy + 0,45 g/kg masy ciała glukozy) i 24 uncji wody
|
|
Eksperymentalny: Grupa o niskim GRS
Ta grupa składa się z osób, które znajdują się w najniższym kwartylu wyniku genetycznego ryzyka (GRS) i spożywają jeden napój z cukrem (równy 2 napojom bezalkoholowym) dziennie przez 3 tygodnie.
GRS oblicza się, dodając liczbę alleli, które zwiększają ryzyko lipogenezy wątroby lub stłuszczenia wątroby.
|
Napój cukrowy sporządzony z 1,2 g/kg masy ciała dodatku cukru (0,75 g/kg masy ciała fruktozy + 0,45 g/kg masy ciała glukozy) i 24 uncji wody
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Średnia zmiana zawartości tłuszczu w wątrobie na podstawie elastografii
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Do pomiaru zmian w tkance tłuszczowej wątroby wykorzystana zostanie elastografia (Fibroscan).
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia procentowa zmiana zawartości tłuszczu w wątrobie na podstawie MRI
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Rezonans magnetyczny (MRI) zostanie wykorzystany do pomiaru zmian w tkance tłuszczowej wątroby (% zmiany frakcji tłuszczowej).
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia trójglicerydów lipoprotein o bardzo małej gęstości (VLDL-TG) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pomiar VLDL-TG w surowicy (mg/dl) w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC trójglicerydów lipoprotein o bardzo małej gęstości (VLDL-TG) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (mg*godz./dl) VLDL-TG w surowicy dla punktów początkowych i 3-godzinnych w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Średnia zmiana stężenia triglicerydów w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie trójglicerydów w surowicy na czczo (mg/dl) zostanie zmierzone w tygodniu 0 i 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC trójglicerydów w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (mg*godz./dl) VLDL-TG w surowicy dla punktów początkowych i 3-godzinnych w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia cholesterolu HDL w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie cholesterolu HDL w surowicy (mg/dl) na czczo będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC cholesterolu HDL w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (mg*hr/dl) cholesterolu HDL w surowicy dla punktów początkowych i 3-godzinnych w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia cholesterolu LDL w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Na czczo będzie mierzone stężenie cholesterolu LDL w surowicy (mg/dl).
tydzień 0 i tydzień 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC cholesterolu LDL w surowicy
Ramy czasowe: Tydzień 0 (wartość wyjściowa) i tydzień 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (mg*h/dl) cholesterolu LDL w surowicy dla punktów początkowych i 3-godzinnych w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
Tydzień 0 (wartość wyjściowa) i tydzień 3
|
|
Średnia zmiana stężenia całkowitego cholesterolu w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie cholesterolu całkowitego (mg/dl) w surowicy na czczo będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC całkowitego cholesterolu w surowicy
Ramy czasowe: tydzień 0 i tydzień 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (mg*hr/dl) całkowitego cholesterolu w surowicy dla wartości wyjściowych i punktów czasowych po 3 godzinach w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
tydzień 0 i tydzień 3
|
|
Średnie zmiany stężenia kwasu moczowego w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie kwasu moczowego w surowicy na czczo (ng/ml) będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnie zmiany AUC kwasu moczowego w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (ng*hr/ml) stężenia kwasu moczowego w surowicy dla wartości wyjściowych i punktów czasowych po 3 godzinach w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia markera czynności wątroby (transaminazy alaninowej – ALT) w surowicy.
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie ALT w surowicy (nmol) na czczo będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC transaminazy alaninowej (ALT) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (nmol/godz.) aktywności ALT w surowicy dla wartości wyjściowych i punktów czasowych po 3 godzinach w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia markera czynności wątroby (transaminazy asparaginianowej-AST) w surowicy.
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie AST w surowicy będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC transaminazy asparaginianowej (AST) w surowicy.
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (j.m.*godz./l) AST w surowicy dla wartości wyjściowych i punktów czasowych po 3 godzinach w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia markera czynności wątroby (fosfatazy alkalicznej-ALP) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie ALP w surowicy (nmol) na czczo będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC fosfatazy alkalicznej w surowicy (ALP)
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (nmol/godz.) ALP w surowicy dla wartości wyjściowych i punktów czasowych po 3 godzinach w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana stężenia markera czynności wątroby (gamma-glutamylotranspeptydaza-GGT) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Stężenie GGT w surowicy będzie mierzone w tygodniu 0 i tygodniu 3
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
|
Średnia zmiana AUC gamma-glutamylotranspeptydazy (GGT) w surowicy
Ramy czasowe: pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Pole pod krzywą (AUC) (j.m.*godz./dl) VLDL-TG w surowicy dla punktów początkowych i 3-godzinnych w tygodniu 0 i tygodniu 3.
|
pomiędzy tygodniem 0 (wartość wyjściowa) a tygodniem 3
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Główny śledczy: Saroja Voruganti, University of North Carolina, Chapel Hill
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Akhavan T, Anderson GH. Effects of glucose-to-fructose ratios in solutions on subjective satiety, food intake, and satiety hormones in young men. Am J Clin Nutr. 2007 Nov;86(5):1354-63. doi: 10.1093/ajcn/86.5.1354.
- Awai HI, Newton KP, Sirlin CB, Behling C, Schwimmer JB. Evidence and recommendations for imaging liver fat in children, based on systematic review. Clin Gastroenterol Hepatol. 2014 May;12(5):765-73. doi: 10.1016/j.cgh.2013.09.050. Epub 2013 Sep 30.
- Bonder A, Afdhal N. Utilization of FibroScan in clinical practice. Curr Gastroenterol Rep. 2014 Feb;16(2):372. doi: 10.1007/s11894-014-0372-6.
- Stanhope KL, Schwarz JM, Keim NL, Griffen SC, Bremer AA, Graham JL, Hatcher B, Cox CL, Dyachenko A, Zhang W, McGahan JP, Seibert A, Krauss RM, Chiu S, Schaefer EJ, Ai M, Otokozawa S, Nakajima K, Nakano T, Beysen C, Hellerstein MK, Berglund L, Havel PJ. Consuming fructose-sweetened, not glucose-sweetened, beverages increases visceral adiposity and lipids and decreases insulin sensitivity in overweight/obese humans. J Clin Invest. 2009 May;119(5):1322-34. doi: 10.1172/JCI37385. Epub 2009 Apr 20.
- Stanhope KL, Bremer AA, Medici V, Nakajima K, Ito Y, Nakano T, Chen G, Fong TH, Lee V, Menorca RI, Keim NL, Havel PJ. Consumption of fructose and high fructose corn syrup increase postprandial triglycerides, LDL-cholesterol, and apolipoprotein-B in young men and women. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Oct;96(10):E1596-605. doi: 10.1210/jc.2011-1251. Epub 2011 Aug 17.
- Schwarz JM, Noworolski SM, Wen MJ, Dyachenko A, Prior JL, Weinberg ME, Herraiz LA, Tai VW, Bergeron N, Bersot TP, Rao MN, Schambelan M, Mulligan K. Effect of a High-Fructose Weight-Maintaining Diet on Lipogenesis and Liver Fat. J Clin Endocrinol Metab. 2015 Jun;100(6):2434-42. doi: 10.1210/jc.2014-3678. Epub 2015 Mar 31.
- Younossi ZM, Blissett D, Blissett R, Henry L, Stepanova M, Younossi Y, Racila A, Hunt S, Beckerman R. The economic and clinical burden of nonalcoholic fatty liver disease in the United States and Europe. Hepatology. 2016 Nov;64(5):1577-1586. doi: 10.1002/hep.28785. Epub 2016 Sep 26.
- Vos MB, Kimmons JE, Gillespie C, Welsh J, Blanck HM. Dietary fructose consumption among US children and adults: the Third National Health and Nutrition Examination Survey. Medscape J Med. 2008 Jul 9;10(7):160.
- Moore JB, Gunn PJ, Fielding BA. The role of dietary sugars and de novo lipogenesis in non-alcoholic fatty liver disease. Nutrients. 2014 Dec 10;6(12):5679-703. doi: 10.3390/nu6125679.
- Faeh D, Minehira K, Schwarz JM, Periasamy R, Park S, Tappy L. Effect of fructose overfeeding and fish oil administration on hepatic de novo lipogenesis and insulin sensitivity in healthy men. Diabetes. 2005 Jul;54(7):1907-13. doi: 10.2337/diabetes.54.7.1907. Erratum In: Diabetes. 2006 Feb;55(2):563. Periasami, Raj [corrected to Periasamy, Raj]; Seongsu, Park [corrected to Park, Seongsu].
- Alwahsh SM, Gebhardt R. Dietary fructose as a risk factor for non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). Arch Toxicol. 2017 Apr;91(4):1545-1563. doi: 10.1007/s00204-016-1892-7. Epub 2016 Dec 19.
- Stanhope KL, Medici V, Bremer AA, Lee V, Lam HD, Nunez MV, Chen GX, Keim NL, Havel PJ. A dose-response study of consuming high-fructose corn syrup-sweetened beverages on lipid/lipoprotein risk factors for cardiovascular disease in young adults. Am J Clin Nutr. 2015 Jun;101(6):1144-54. doi: 10.3945/ajcn.114.100461. Epub 2015 Apr 22.
- Basaranoglu M, Basaranoglu G, Bugianesi E. Carbohydrate intake and nonalcoholic fatty liver disease: fructose as a weapon of mass destruction. Hepatobiliary Surg Nutr. 2015 Apr;4(2):109-16. doi: 10.3978/j.issn.2304-3881.2014.11.05.
- Johnson RJ, Nakagawa T, Sanchez-Lozada LG, Shafiu M, Sundaram S, Le M, Ishimoto T, Sautin YY, Lanaspa MA. Sugar, uric acid, and the etiology of diabetes and obesity. Diabetes. 2013 Oct;62(10):3307-15. doi: 10.2337/db12-1814.
- Zhou Y, Wei F, Fan Y. High serum uric acid and risk of nonalcoholic fatty liver disease: A systematic review and meta-analysis. Clin Biochem. 2016 May;49(7-8):636-42. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2015.12.010. Epub 2015 Dec 29.
- Goran MI, Walker R, Allayee H. Genetic-related and carbohydrate-related factors affecting liver fat accumulation. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2012 Jul;15(4):392-6. doi: 10.1097/MCO.0b013e3283544477.
- Speliotes EK, Yerges-Armstrong LM, Wu J, Hernaez R, Kim LJ, Palmer CD, Gudnason V, Eiriksdottir G, Garcia ME, Launer LJ, Nalls MA, Clark JM, Mitchell BD, Shuldiner AR, Butler JL, Tomas M, Hoffmann U, Hwang SJ, Massaro JM, O'Donnell CJ, Sahani DV, Salomaa V, Schadt EE, Schwartz SM, Siscovick DS; NASH CRN; GIANT Consortium; MAGIC Investigators; Voight BF, Carr JJ, Feitosa MF, Harris TB, Fox CS, Smith AV, Kao WH, Hirschhorn JN, Borecki IB; GOLD Consortium. Genome-wide association analysis identifies variants associated with nonalcoholic fatty liver disease that have distinct effects on metabolic traits. PLoS Genet. 2011 Mar;7(3):e1001324. doi: 10.1371/journal.pgen.1001324. Epub 2011 Mar 10.
- Davis JN, Le KA, Walker RW, Vikman S, Spruijt-Metz D, Weigensberg MJ, Allayee H, Goran MI. Increased hepatic fat in overweight Hispanic youth influenced by interaction between genetic variation in PNPLA3 and high dietary carbohydrate and sugar consumption. Am J Clin Nutr. 2010 Dec;92(6):1522-7. doi: 10.3945/ajcn.2010.30185. Epub 2010 Oct 20.
- Ter Horst KW, Schene MR, Holman R, Romijn JA, Serlie MJ. Effect of fructose consumption on insulin sensitivity in nondiabetic subjects: a systematic review and meta-analysis of diet-intervention trials. Am J Clin Nutr. 2016 Dec;104(6):1562-1576. doi: 10.3945/ajcn.116.137786. Epub 2016 Nov 9.
- Schwarz JM, Noworolski SM, Erkin-Cakmak A, Korn NJ, Wen MJ, Tai VW, Jones GM, Palii SP, Velasco-Alin M, Pan K, Patterson BW, Gugliucci A, Lustig RH, Mulligan K. Effects of Dietary Fructose Restriction on Liver Fat, De Novo Lipogenesis, and Insulin Kinetics in Children With Obesity. Gastroenterology. 2017 Sep;153(3):743-752. doi: 10.1053/j.gastro.2017.05.043. Epub 2017 Jun 1.
- Ventura EE, Davis JN, Goran MI. Sugar content of popular sweetened beverages based on objective laboratory analysis: focus on fructose content. Obesity (Silver Spring). 2011 Apr;19(4):868-74. doi: 10.1038/oby.2010.255. Epub 2010 Oct 14.
- Faix D, Neese R, Kletke C, Wolden S, Cesar D, Coutlangus M, Shackleton CH, Hellerstein MK. Quantification of menstrual and diurnal periodicities in rates of cholesterol and fat synthesis in humans. J Lipid Res. 1993 Dec;34(12):2063-75.
- Hudgins LC, Parker TS, Levine DM, Hellerstein MK. A dual sugar challenge test for lipogenic sensitivity to dietary fructose. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Mar;96(3):861-8. doi: 10.1210/jc.2010-2007. Epub 2011 Jan 20.
- Shin HJ, Kim HG, Kim MJ, Koh H, Kim HY, Roh YH, Lee MJ. Normal range of hepatic fat fraction on dual- and triple-echo fat quantification MR in children. PLoS One. 2015 Feb 6;10(2):e0117480. doi: 10.1371/journal.pone.0117480. eCollection 2015.
- Lallukka S, Sadevirta S, Kallio MT, Luukkonen PK, Zhou Y, Hakkarainen A, Lundbom N, Orho-Melander M, Yki-Jarvinen H. Predictors of Liver Fat and Stiffness in Non-Alcoholic Fatty Liver Disease (NAFLD) - an 11-Year Prospective Study. Sci Rep. 2017 Nov 6;7(1):14561. doi: 10.1038/s41598-017-14706-0.
- Softic S, Gupta MK, Wang GX, Fujisaka S, O'Neill BT, Rao TN, Willoughby J, Harbison C, Fitzgerald K, Ilkayeva O, Newgard CB, Cohen DE, Kahn CR. Divergent effects of glucose and fructose on hepatic lipogenesis and insulin signaling. J Clin Invest. 2017 Nov 1;127(11):4059-4074. doi: 10.1172/JCI94585. Epub 2017 Oct 3. Erratum In: J Clin Invest. 2018 Mar 1;128(3):1199. doi: 10.1172/JCI99009.
- Santoro N, Caprio S, Pierpont B, Van Name M, Savoye M, Parks EJ. Hepatic De Novo Lipogenesis in Obese Youth Is Modulated by a Common Variant in the GCKR Gene. J Clin Endocrinol Metab. 2015 Aug;100(8):E1125-32. doi: 10.1210/jc.2015-1587. Epub 2015 Jun 4. Erratum In: J Clin Endocrinol Metab. 2020 Jan 2;105(2):dgz158. doi: 10.1210/clinem/dgz158.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Inne numery identyfikacyjne badania
- 17-3348
- P30DK056336-16S1 (Grant/umowa NIH USA)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .