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Desregulação Metabólica como Biomarcador de Fragilidade: Papel da Disfunção Mitocondrial (FRAMITO)

22 de maio de 2024 atualizado por: University Hospital of Ferrara

O objetivo deste estudo observacional é avaliar a presença de disfunção mitocondrial relacionada ao estresse oxidativo e seu possível papel na fragilidade, com e sem multimorbidade, e identificar possíveis biomarcadores de fragilidade correlacionados com a disfunção mitocondrial. As principais questões que pretende responder são:

  • Qual o papel da disfunção mitocondrial relacionada ao estresse oxidativo na fragilidade, levando em consideração a interação com a multimorbidade.
  • Quais poderiam ser os biomarcadores específicos associados à disfunção mitocondrial na avaliação da fragilidade.

Para atingir os objetivos do estudo, inscreveremos três categorias de idosos:

  • Não Frágil sem Multimorbidade (NFWoM);
  • Frágil com Multimorbidade (FWM);
  • Frágil sem Multimorbidade (FWoM).

Cada indivíduo será submetido a avaliação do fenótipo de fragilidade e multimorbidade, além da coleta de amostras de sangue para isolamento de células mononucleares do sangue periférico (PBMCs). A identificação de biomarcadores de fragilidade em cada grupo de participantes será realizada combinando abordagens não direcionadas baseadas em metabolômica e estudos funcionais sobre disfunções mitocondriais específicas realizadas em PBMCs e suas subpopulações. Técnicas estatísticas multivariadas e de aprendizado de máquina caracterizarão os três grupos de fenótipos clínicos com base em dados moleculares.

Visão geral do estudo

Status

Ainda não está recrutando

Descrição detalhada

Tipo de estudo: estudo prospectivo observacional. Objetivo principal: avaliar a presença de disfunção mitocondrial relacionada ao estresse oxidativo e seu possível papel na fragilidade, com e sem multimorbidade.

Endpoint primário: disfunção mitocondrial na fragilidade. Objetivos secundários: combinar abordagens não direcionadas baseadas em metabolômica e estudos funcionais sobre disfunções mitocondriais específicas realizadas em PBMCs e subpopulações de PBMCs (linfócitos B, linfócitos T e monócitos).

As atividades de investigação estão organizadas nas seguintes tarefas:

  • Tarefa 1, Inscrição de Pacientes: Inscreveremos indivíduos com 65 anos ou mais de ambulatórios geriátricos ou enfermarias geriátricas. Para cada indivíduo, realizaremos uma avaliação de fragilidade e multimorbidade, e coletaremos amostras de sangue para isolar células mononucleares do sangue periférico (PBMCs). Serão inscritas três categorias de indivíduos: 25 indivíduos não frágeis sem multimorbidade (NFWoM), 25 indivíduos frágeis com multimorbidade (FWM) e 25 indivíduos frágeis sem multimorbidade (FWoM).
  • Tarefa 2, Separação de subpopulações de PBMC: Linfócitos T, linfócitos B e monócitos serão separados de PBMCs congelados usando o Cell Sorting Facility para separação de células ativadas por fluorescência (FACS) e o classificador de células MoFlo Astrios. As análises em linfócitos T CD45+/CD3+/CD19-/CD14-, linfócitos CD45+/CD3-/CD19+/CD14-B, monócitos CD45+/CD3-/CD19-/CD14+.
  • Tarefa 3, Análise de disfunção mitocondrial em PBMCs e subpopulações de PBMCs: Para cada indivíduo, a disfunção mitocondrial será avaliada analisando danos ao mtDNA (por PCR em tempo real), alteração da massa mitocondrial (por coloração com Mitotracker) e espécies reativas de oxigênio intracelular e mitocondrial ( por coloração DCF e MitoSOX). Além disso, avaliaremos a alteração do metabolismo glicolítico e mitocondrial utilizando o Analisador de Fluxo Extracelular Agilent Seahorse XFe96.
  • Tarefa 4, Metabolômica não direcionada em PBMCs e subpopulações de PBMCs: Para avaliar a assinatura metabólica de PBMCs e subpopulações e destacar desregulações metabólicas ligadas à fragilidade, realizaremos metabolômica não direcionada baseada em LC-MS em PBMCs, linfócitos T, linfócitos B e monócitos. A análise do metaboloma polar permitirá compreender melhor as alterações metabólicas associadas à desregulação mitocondrial.
  • Tarefa 5, Caracterização de Biomarcadores e Mecanismo Molecular de Fragilidade: Os potenciais biomarcadores de fragilidade e os mecanismos moleculares envolvidos na disfunção mitocondrial serão estudados utilizando técnicas estatísticas e de aprendizado de máquina em dados moleculares, metabólicos e clínicos. Esta etapa ajudará a caracterizar os fenótipos clínicos com base em medições moleculares.

Tipo de estudo

Observacional

Inscrição (Estimado)

75

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Contato de estudo

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

  • Adulto mais velho

Aceita Voluntários Saudáveis

Sim

Método de amostragem

Amostra Não Probabilística

População do estudo

O estudo inscreverá indivíduos com 65 anos ou mais. A inscrição ocorrerá entre os pacientes que acessam ambulatórios geriátricos ou recebem alta das enfermarias geriátricas em condições clinicamente estáveis.

Descrição

Critério de inclusão:

  • Idade ≥ 65 anos
  • Condições clínicas estáveis
  • Disponibilidade para participar do estudo (fornecimento de consentimento informado)
  • Proficiência na língua italiana

Critério de exclusão:

- Condições clínicas agudas ou instáveis

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

Coortes e Intervenções

Grupo / Coorte
Não Frágil sem Multimorbidade (NFWoM)
Indivíduos com 65 anos ou mais sem fragilidade e sem multimorbidade. Este grupo servirá de referência para participantes que não sejam frágeis e não tenham múltiplas condições crônicas.
Frágil com Multimorbidade (FWM)
Indivíduos frágeis com 65 anos ou mais que apresentam multimorbidade. Este grupo incluirá participantes que apresentem fragilidade e tenham duas ou mais doenças crônicas.
Frágil sem Multimorbidade (FWoM)
Indivíduos frágeis com 65 anos ou mais sem multimorbidade. Este grupo ajudará a avaliar a fragilidade na ausência de múltiplas condições crónicas.

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Diferença no número de cópias do mtDNA entre indivíduos frágeis com e sem multimorbidade
Prazo: Linha de base

Cópias de mtDNA isoladas de PBMCs totais e de linfócitos T e B e monócitos, obtidas dos participantes, com JetQuick™ Blood and Cell Culture DNA Midiprep Kit (Invitrogen), e 10 ng de DNA serão usados ​​para análise no QuantumStudio 7 Real Time PCR (Biossistemas Aplicados). O número de cópias do mtDNA será calculado normalizando os níveis do gene mitocondrial ND1 (mtND1) para os níveis nucleares de microglobulina Beta-2 (B2M).

O número de cópias de mtDNA será comparado entre indivíduos com fragilidade e multimorbidade versus indivíduos com fragilidade sem multimorbidade. A fragilidade será derivada com base na presença de pelo menos três critérios entre: perda de peso involuntária ≥ 4,5 kg, fraqueza muscular medida por preensão manual, fadiga autorreferida em ≥ 3 dias por semana, baixa atividade física (avaliada com o questionário IPAQ), e redução da velocidade da marcha (medida pelo teste de caminhada de 4 m). A multimorbidade será definida como a presença de pelo menos duas doenças crônicas.

Linha de base
Diferença no número de cópias do mtDNA entre indivíduos não frágeis e frágeis sem multimorbidade
Prazo: Linha de base

Cópias de mtDNA isoladas de PBMCs totais e de linfócitos T e B e monócitos, obtidas dos participantes, com JetQuick™ Blood and Cell Culture DNA Midiprep Kit (Invitrogen), e 10 ng de DNA serão usados ​​para análise no QuantumStudio 7 Real Time PCR (Biossistemas Aplicados). O número de cópias do mtDNA será calculado normalizando os níveis do gene mitocondrial ND1 (mtND1) para os níveis nucleares de microglobulina Beta-2 (B2M).

O número de cópias de mtDNA será comparado entre indivíduos com fragilidade e multimorbidade versus indivíduos com fragilidade sem multimorbidade. A fragilidade será derivada com base na presença de pelo menos três critérios entre: perda de peso involuntária ≥ 4,5 kg, fraqueza muscular medida por preensão manual, fadiga autorreferida em ≥ 3 dias por semana, baixa atividade física (avaliada com o questionário IPAQ), e redução da velocidade da marcha (medida pelo teste de caminhada de 4 m). A multimorbidade será definida como a presença de pelo menos duas doenças crônicas.

Linha de base

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Variação na intensidade média da fluorescência mitocondrial entre indivíduos não frágeis vs frágeis sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
500.000 PBMCs obtidos dos participantes do estudo serão corados com anticorpos CD45, CD3, CD19 e CD14 e incubados com Mitotracker Deep Red 100 nM (Thermo Fisher Scientific) por 30 minutos a 30°C. As células também serão marcadas com corante Live/Dead e analisadas por citometria de fluxo com classificador de células MoFLO Astrios. A massa mitocondrial, avaliada como a intensidade mediana de fluorescência (MFI) do Mitotracker Deep Red, será avaliada em PBMCs totais, linfócitos T e B e monócitos. Serão adquiridos 40.000 eventos em cada portão populacional e a análise offline será realizada com o software Kaluza.
Linha de base
Variação na intensidade média da fluorescência mitocondrial entre indivíduos frágeis com e sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
500.000 PBMCs obtidos dos participantes do estudo serão corados com anticorpos CD45, CD3, CD19 e CD14 e incubados com Mitotracker Deep Red 100 nM (Thermo Fisher Scientific) por 30 minutos a 30°C. As células também serão marcadas com corante Live/Dead e analisadas por citometria de fluxo com classificador de células MoFLO Astrios. A massa mitocondrial, avaliada como a intensidade mediana de fluorescência (MFI) do Mitotracker Deep Red, será avaliada em PBMCs totais, linfócitos T e B e monócitos. Serão adquiridos 40.000 eventos em cada portão populacional e a análise offline será realizada com o software Kaluza.
Linha de base
Diferença de espécies reativas de oxigênio intracelular (ROS) entre indivíduos não frágeis e frágeis sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
O indicador fluorescente permeável às células diacetato de 2',7'-diclorofluorescina (DCFH-DA) será utilizado para detecção de ERO intracelulares. DCFH-DA é desacetilado por esterases celulares em um composto não fluorescente, que é posteriormente oxidado por ROS em 2',7'-diclorofluoresceína fluorescente (DCF). A intensidade do sinal fluorescente gerado correlaciona-se com o nível intracelular de ERO. 500.000 PBMCs obtidos de 25 indivíduos NFWoM, 25 FWM e 25 FWoM serão corados com anticorpos CD45, CD3, CD19 e CD14 e incubados com 10 μM de diacetato de 2',7'-diclorofluorescina (DCFH-DA) a 37°C por 30 minutos . As células também serão marcadas com corante Vivo/Morto e analisadas por citometria de fluxo. As ERO intracelulares, avaliadas como a intensidade mediana de fluorescência (MFI) do DCF, serão avaliadas em PBMCs totais, linfócitos T e B e monócitos. Serão adquiridos 40.000 eventos em cada portão populacional e a análise offline será realizada com o software Kaluza.
Linha de base
Diferença de espécies reativas de oxigênio intracelular (ROS) entre indivíduos frágeis com e sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
O indicador fluorescente permeável às células diacetato de 2',7'-diclorofluorescina (DCFH-DA) será utilizado para detecção de ERO intracelulares. DCFH-DA é desacetilado por esterases celulares em um composto não fluorescente, que é posteriormente oxidado por ROS em 2',7'-diclorofluoresceína fluorescente (DCF). A intensidade do sinal fluorescente gerado correlaciona-se com o nível intracelular de ERO. 500.000 PBMCs obtidos de 25 indivíduos NFWoM, 25 FWM e 25 FWoM serão corados com anticorpos CD45, CD3, CD19 e CD14 e incubados com 10 μM de diacetato de 2',7'-diclorofluorescina (DCFH-DA) a 37°C por 30 minutos . As células também serão marcadas com corante Vivo/Morto e analisadas por citometria de fluxo. As ERO intracelulares, avaliadas como a intensidade mediana de fluorescência (MFI) do DCF, serão avaliadas em PBMCs totais, linfócitos T e B e monócitos. Serão adquiridos 40.000 eventos em cada portão populacional e a análise offline será realizada com o software Kaluza.
Linha de base
Diferença qualitativa nos perfis metabolômicos de PBMCs e subpopulações de PBMCs entre indivíduos não frágeis e frágeis sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
A metabolômica baseada em LC-MS não direcionada será realizada em PBMCs e em linfócitos e monócitos T e B, obtidos conforme descrito na Tarefa 2. As amostras de células serão extintas usando metanol frio. Após a precipitação das proteínas, os metabólitos serão extraídos e analisados ​​por espectrometria de massa por cromatografia líquida (LC-MS). A cromatografia de interação hidrofílica (HILIC) será usada para resolver o metaboloma polar antes da detecção de MS usando um instrumento Agilent 6546 lc/q-tof (Agilent). Todo o conteúdo de proteína será quantificado com NanoDrop™ (Thermofisher) e usado para normalizar o metabolismo perfil de cada amostra.
Linha de base
Diferença qualitativa nos perfis metabolômicos de PBMCs e subpopulações de PBMCs entre indivíduos frágeis com vs sem multimorbidade
Prazo: Linha de base
A metabolômica baseada em LC-MS não direcionada será realizada em PBMCs e em linfócitos e monócitos T e B, obtidos conforme descrito na Tarefa 2. As amostras de células serão extintas usando metanol frio. Após a precipitação das proteínas, os metabólitos serão extraídos e analisados ​​por espectrometria de massa por cromatografia líquida (LC-MS). A cromatografia de interação hidrofílica (HILIC) será usada para resolver o metaboloma polar antes da detecção de MS usando um instrumento Agilent 6546 lc/q-tof (Agilent). Todo o conteúdo de proteína será quantificado com NanoDrop™ (Thermofisher) e usado para normalizar o metabolismo perfil de cada amostra.
Linha de base

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Investigadores

  • Investigador principal: Caterina Trevisan, PhD, Università degli Studi di Ferrara

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (Estimado)

29 de maio de 2024

Conclusão Primária (Estimado)

30 de maio de 2025

Conclusão do estudo (Estimado)

22 de fevereiro de 2026

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

14 de março de 2024

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

22 de maio de 2024

Primeira postagem (Real)

29 de maio de 2024

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (Real)

29 de maio de 2024

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

22 de maio de 2024

Última verificação

1 de janeiro de 2024

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Outros números de identificação do estudo

  • 653/2023/Oss/AOUFe

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

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