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Rebuçados de Goma Com Bagas de Maqui (MaquiGUM)

23 de janeiro de 2026 atualizado por: Gonzalo Jorquera, PhD

Gomas Contendo Bagas de Maqui (Aristotelia Chilensis) para Melhorar o Controlo Glicémico em Indivíduos com Excesso de Peso

O objetivo deste ensaio clínico é saber se a goma de baga de Maqui encapsulada (GMM) em comparação com a não encapsulada (GM) pode melhorar a resposta glicémica em adultos com excesso de peso. Também irá estudar o possível efeito nos níveis de antioxidantes séricos. As principais questões que pretende responder são:

A GMM ou a GM reduzem a resposta glicémica em indivíduos com excesso de peso/obesidade após consumirem um alimento rico em hidratos de carbono?

A GMM ou a GM aumentam os níveis de antioxidantes em indivíduos com excesso de peso/obesidade após consumirem um alimento rico em hidratos de carbono?

Os investigadores irão comparar (i) um alimento rico em hidratos de carbono, (ii) GMM + um alimento rico em hidratos de carbono, (iii) GM + um alimento rico em hidratos de carbono para verificar se a goma de Maqui funciona para controlar os níveis glicémicos e de antioxidantes.

Os participantes irão:

Tomar um alimento rico em hidratos de carbono e/ou a goma de Maqui três vezes, com uma semana de intervalo. Terão amostras de sangue recolhidas e responderão a questionários alimentares em cada visita.

Visão geral do estudo

Descrição detalhada

Critérios de inclusão e exclusão para a intervenção Serão recrutados dez voluntários sedentários. Critérios de inclusão: índice de massa corporal (IMC) de sobrepeso ou obesidade (IMC de pelo menos 25,0 kg/m²); ausência de doença crónica não transmissível; e sedentarismo (menos de 30 minutos de atividade física, 3 vezes por semana). A todos os participantes será pedido que mantenham a sua atividade física, ingestão alimentar e medicação durante todo o estudo. Critérios de exclusão: uso de fármacos hipoglicemiantes, suplementos contendo antioxidantes e alto consumo de polifenóis (mais de 2 g por dia); alergia alimentar à baga de Maqui ou a qualquer componente dos GCs; gravidez ou lactação. O estudo foi aprovado pelo Comité de Ética da Faculdade de Farmácia, Universidad de Valparaíso (CBI 014/2022).

Características dos participantes O peso e a altura serão determinados para calcular o IMC, bem como a circunferência da cintura e a prega tricipital. Questionários de Frequência Alimentar (QFA) serão recuperados antes do estudo para estimar a ingestão de fibra e de antioxidantes alimentares totais, principalmente polifenóis, carotenos e consumo de vitaminas E e C. Toda a intervenção foi realizada na Faculdade de Farmácia, Universidad de Valparaíso, por pessoal capacitado.

Intervenção Os participantes completarão uma intervenção aguda de três condições, intra-sujeito, com períodos de washout de uma semana entre as visitas: (i) linha de base/controlo: 150 g de pão branco (75 g de hidratos de carbono disponíveis); (ii) pão branco + GM: 150 g de pão branco mais 24 g de GM (3 gomas); e (iii) pão branco + GMM: 150 g de pão branco mais 24 g de GMM (3 gomas). Cada participante servirá como seu próprio controlo. Em cada dia de estudo (controlo, GM, GMM), será colhida uma amostra em jejum (tempo 0) antes da ingestão da refeição-teste. As visitas ocorrerão em dias separados, com uma semana de intervalo, sob condições pré-teste padronizadas (jejum noturno, horário matinal fixo e restrições dietéticas/de atividade pré-especificadas).

Condição de controlo e mitigação do viés de expectativa A nossa condição de controlo utilizará o dia apenas com pão branco como controlo sem Maqui para as respostas glicémicas e antioxidantes. As intervenções adicionarão 24 g de gomas (3 unidades) à mesma carga de pão. Os investigadores não incluirão uma "goma placebo" separada porque o estudo é um piloto concebido em torno de um controlo objetivo de pão branco, e produzir uma goma sem polifenóis sensorialmente indistinguível é desafiante (pigmentos/sabor da Maqui); mesmo GM vs. GMM diferiram no cheiro e sabor nos nossos testes sensoriais, sugerindo que o cegamento com uma matriz placebo provavelmente seria imperfeito. Para limitar os efeitos de expectativa e mitigar possíveis vieses, os investigadores: (i) utilizarão endpoints objetivos (glicemia/insulina/GLP-1; TRAP, SOD, CAT); (ii) imporão condições pré-teste padronizadas (12 h de jejum; testes matinais em horas fixas; restrições dietéticas/de atividade com adesão documentada); e (iii) implementarão períodos de washout de uma semana entre as intervenções. Todas as comparações serão intra-pessoais relativamente ao controlo de pão branco.

Procedimentos de colheita de sangue As amostras de sangue serão colhidas dos participantes após um jejum noturno de 12 h no início de cada intervenção e durante um período de 2 h. As amostras serão colhidas em tubos de heparina sódica (concentração final de 0,1%). Para as determinações de insulina e GLP-1, o sangue será centrifugado a 2000× g durante 10 minutos a 4 °C e o sobrenadante será congelado a -80 °C. Para as medições do estado antioxidante, o plasma será separado das células vermelhas por centrifugação a 1500× g durante 1 min a 4 °C. O plasma será imediatamente congelado a -80 °C para análise subsequente do poder antioxidante total reativo (TRAP), enquanto as células vermelhas serão lavadas com albumina sérica bovina (BSA), centrifugadas 3 vezes a 1500× g durante 15 minutos, descartando o sobrenadante de cada vez. Antes do armazenamento a -80°C, as células vermelhas serão diluídas com uma solução hipotónica para catalase (CAT, razão 1:10) e superóxido dismutase (SOD, razão 1:28) para análise posterior.

Biomarcadores do estado antioxidante Poder Antioxidante Total Reativo (TRAP) Brevemente, 10 µL de sobrenadante serão misturados com uma mistura 1:1 de 150 µM de ácido 2,20-azino-bis(3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico) e 10 mM de 2,20-azobis(2-amidinopropano), previamente incubada a 45 °C durante 30 minutos. A cinética será determinada a 734 nm aos 10, 30 e 50 segundos após a adição da amostra. A capacidade antioxidante será medida comparando com Trolox®.

Medição de proteína total A quantificação de proteína total será realizada usando eritrócitos para normalizar a atividade enzimática da SOD e CAT. Para isso, será utilizado o Kit de Ensaio de Proteína Pierce BCA (Thermofisher), baseado numa curva de albumina feita a partir de um Padrão de Albumina (Thermofisher). Todos os protocolos serão utilizados de acordo com o fabricante.

Superóxido dismutase (SOD) Este ensaio baseia-se na redução do citocromo c pelo radical superóxido num sistema xantina/xantina oxidase. Brevemente, 5 µL de amostras homogeneizadas serão misturadas com 0,5 mM de xantina (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) e 20 µM de citocromo C (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) dissolvidos num tampão fosfato. Esta solução será misturada com xantina oxidase (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) e 0,1 mM de EDTA (1:40). A atividade enzimática será detetada a 550 nm num espectrofotómetro Rayleigh UV-2601. Cada amostra será analisada em triplicado.

Catalase (CAT) A atividade da catalase será determinada medindo a perda de absorbância a 240 nm de uma mistura de reação consistindo em 100 µL de H2O2 0,3 M (Merck, Darmstadt, Alemanha) em 2,9 mL de tampão fosfato (50 mM de Na2HPO4 e 50 mM de NaH2PO4, pH 7,8) e 50 µL de amostras. As medições serão realizadas durante 90 segundos num espectrofotómetro Rayleigh UV-2601. Cada amostra será analisada em triplicado.

Glucose, Insulina e GLP-1 Amostras capilares de sangue serão obtidas do dedo do participante usando tiras de teste de glucose (One Touch II) antes de consumir o pão branco (tempo 0) e após o consumo com ou sem as gomas (aos 15, 30, 60, 90 e 120 minutos). Amostras de sangue serão obtidas para concentrações de insulina nos pontos de tempo 0 e 120 minutos, que serão medidas usando um imunoensaio de quimioluminescência de acordo com as recomendações do fabricante. Os níveis plasmáticos humanos de GLP-1 serão medidos aos 0 e 120 minutos usando o Kit ELISA de GLP-1 (BMS2194; ThermoFisher Scientific) seguindo as instruções do fabricante. A área incremental sob a curva (AUC) a cada 120 minutos de glucose plasmática, insulina e GLP-1 será calculada usando a regra do trapézio, considerando os valores em jejum como linha de base.

Análise estatística Tamanho da amostra e poder: Este estudo será concebido como uma intervenção aguda de fase inicial, intra-sujeito, na qual cada participante serviu como seu próprio controlo em três condições (linha de base, GMM, GM) com um washout de uma semana. Dada a eficiência dos desenhos intra-sujeito, os investigadores planeiam um tamanho de amostra modesto (n = 10 completadores). Uma análise de sensibilidade indica que, para comparações emparelhadas bilaterais com α = 0,05 e 80% de poder, n = 10 pode detetar um grande efeito intra-sujeito padronizado de aproximadamente dz de Cohen ≈ 0,9-1,0. O teste de Shapiro-Wilk será usado para confirmar a normalidade dos dados. Correlações de ordem de Spearman serão usadas dentro de cada condição de intervenção (analisando GM e GMM separadamente) para examinar associações entre exposições glicémicas, insulinémicas e de GLP-1 pós-prandiais (AUC glicémica, AUC de insulina e AUC de GLP-1) e variáveis relacionadas com antioxidantes: atividade da SOD, TRAP plasmático (TEAC), atividade da catalase e ingestões dietéticas do QFA (vitamina C, vitamina E, carotenos, polifenóis totais e fibra). Os investigadores reportarão o coeficiente de Spearman e valores de p bilaterais (n = 10). Dada a natureza piloto e geradora de hipóteses do estudo, as análises serão exploratórias e não implicam causalidade; ajustes de multiplicidade não serão aplicados. Comparações múltiplas serão feitas usando o teste de Kruskal-Wallis assumindo um valor de p inferior a 0,05 como significativo. Todas as análises serão realizadas com o software GraphPad Prism versão 9.0.

Tipo de estudo

Intervencional

Inscrição (Real)

10

Estágio

  • Não aplicável

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Locais de estudo

    • Región de Valparaíso
      • Valparaíso, Región de Valparaíso, Chile, 2340000
        • Faculty of Pharmacy

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

  • Adulto

Aceita Voluntários Saudáveis

Não

Descrição

Critérios de Inclusão:

  • Índice de massa corporal (IMC) de sobrepeso ou obesidade (IMC de pelo menos 25,0 kg/m2);
  • ausência de doença crónica não transmissível;
  • ser sedentário (menos de 30 minutos de atividade física por 3 vezes por semana).
  • Todos os participantes devem manter a sua atividade física, ingestão alimentar e medicação durante todo o estudo.

Critérios de Exclusão:

  • utilização de medicamentos hipoglicemiantes
  • suplementos contendo antioxidantes
  • consumo elevado de polifenóis (mais de 2 g por dia)
  • alergia alimentar à baga de Maqui ou a qualquer componente dos GCs
  • gravidez ou amamentação no caso das participantes do sexo feminino

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

  • Finalidade Principal: Outro
  • Alocação: N / D
  • Modelo Intervencional: Atribuição sequencial
  • Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)

Armas e Intervenções

Grupo de Participantes / Braço
Intervenção / Tratamento
Outro: Controlo, GM, GMM
Os participantes completarão uma intervenção aguda de três condições, intra-sujeito, com períodos de washout de uma semana entre as visitas: (i) linha de base/controlo: 150 g de pão branco (75 g de hidratos de carbono disponíveis); (ii) pão branco + GM: 150 g de pão branco mais 24 g de GM (3 gomas); (iii) pão branco + GMM: 150 g de pão branco mais 24 g de GMM (3 gomas). Cada participante servirá como seu próprio controlo. Em cada dia de estudo (controlo, GM, GMM), será colhida uma amostra de base em jejum (tempo 0) antes da ingestão da refeição teste. As visitas ocorrerão em dias separados, com uma semana de intervalo, em condições pré-teste padronizadas (jejum noturno, horário matinal fixo e restrições dietéticas/de atividade pré-especificadas).
pão branco + GM: 150 g de pão branco mais 24 g de GM (3 gomas)
Linha de base/controlo: 150 g de pão branco (75 g de hidratos de carbono disponíveis)
pão branco + GM: 150 g de pão branco mais 24 g de GM (3 gomas)

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Glicemia
Prazo: As amostras de sangue capilar serão obtidas do dedo do participante usando tiras de teste de glicose (One Touch II) antes de consumir o pão branco (tempo 0) e após o consumo com ou sem os GCs (aos 15, 30, 60, 90 e 120 minutos).
As amostras de sangue capilar foram obtidas dos dedos dos participantes através de tiras de teste de glicose (One Touch II) antes de consumir o pão branco (tempo 0) e após o consumo com ou sem os GCs (aos 15, 30, 60, 90 e 120 minutos). Será expresso em mg/dl.
As amostras de sangue capilar serão obtidas do dedo do participante usando tiras de teste de glicose (One Touch II) antes de consumir o pão branco (tempo 0) e após o consumo com ou sem os GCs (aos 15, 30, 60, 90 e 120 minutos).

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Níveis de insulina
Prazo: As amostras de sangue serão obtidas para as concentrações de insulina nos pontos temporais 0 e 120 minutos, que serão medidas utilizando um imunoensaio de quimioluminescência de acordo com as recomendações do fabricante.
Insulin AUC: Serão recolhidas amostras de sangue para determinar as concentrações de insulina nos momentos 0 e 120 minutos, que serão medidas através de um imunoensaio de quimioluminescência de acordo com as recomendações do fabricante. Será expresso em mg/dl.
As amostras de sangue serão obtidas para as concentrações de insulina nos pontos temporais 0 e 120 minutos, que serão medidas utilizando um imunoensaio de quimioluminescência de acordo com as recomendações do fabricante.
GLP-1
Prazo: Os níveis de GLP-1 no plasma humano serão medidos aos 0 e aos 120 minutos.
Os níveis plasmáticos humanos de GLP-1 serão medidos utilizando o Kit ELISA GLP-1 (BMS2194; ThermoFisher Scientific) seguindo as instruções do fabricante. A área incremental sob a curva (AUC) a cada 120 minutos de GLP-1 será calculada utilizando a regra do trapézio, considerando os valores em jejum como linha de base. Será expressa em mg/dl.
Os níveis de GLP-1 no plasma humano serão medidos aos 0 e aos 120 minutos.
Poder Antioxidante Total Reactivo (TRAP)
Prazo: Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
Resumidamente, 10 µL de sobrenadante serão misturados com uma mistura 1:1 de 150 µM de 2,20-azino-bis(3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico) e 10 mM de 2,20-azobis(2-amidinopropano), previamente incubados a 45 °C durante 30 minutos. As cinéticas serão determinadas a 734 nm aos 10, 30 e 50 segundos após a adição da amostra. A capacidade antioxidante será medida em comparação com Trolox®. Os resultados serão expressos como capacidade antioxidante equivalente a Trolox® em micromolar (µM TEAC).
Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
Medição de proteína total
Prazo: Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
A quantificação total de proteínas será realizada usando eritrócitos para normalizar a atividade das enzimas SOD e CAT. Para isso, será utilizado o Kit de Ensaio de Proteína Pierce BCA (Thermo Fisher), baseado numa curva de albumina feita a partir de um Padrão de Albumina (Thermo Fisher). Todos os protocolos serão utilizados de acordo com o fabricante. Será expresso em mcg/dl.
Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
Superóxido dismutase (SOD)
Prazo: Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
Resumidamente, 5 µL de amostras homogeneizadas serão misturadas com 0,5 mM de xantina (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) e 20 µM de citocromo c (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) dissolvidos num tampão de fosfato. Esta solução será misturada com xantina oxidase (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA) e 0,1 mM de EDTA (1:40). A atividade enzimática será detetada a 550 nm num espectrofotómetro Rayleigh UV-2601. Cada amostra será analisada em triplicado. Os resultados serão expressos como unidades de enzima por micrograma de proteína (UE/µg de proteína).
Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção
Catalase (CAT)
Prazo: Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção.
A atividade da catalase será determinada medindo a perda de absorbância a 240 nm de uma mistura de reação composta por 100 µL de H₂O₂ 0,3 M (Merck, Darmstadt, Alemanha) em 2,9 mL de tampão fosfato (50 mM de Na₂HPO₄ e 50 mM de NaH₂PO₄, pH 7,8) e 50 µL de amostra. As medições serão realizadas durante 90 segundos num espectrofotómetro Rayleigh UV-2601. Cada amostra será analisada em triplicado. Os resultados serão expressos em unidades de enzima por micrograma de proteína (UE/µg de proteína).
Os biomarcadores antioxidantes serão medidos aos 0 e 120 minutos após cada intervenção.
Circunferência da cintura
Prazo: No início
Será medido com a métrica. Será expresso em cm.
No início
Questionários de Frequência Alimentar (FFQ)
Prazo: No início
Os Questionários de Frequência Alimentar (QFA) serão recolhidos antes do estudo para estimar o consumo de fibra e o total de antioxidantes na dieta, principalmente polifenóis, carotenos e vitaminas E e C. As análises do QFA basear-se-ão na Tabela de Composição de Alimentos Chilena e na Base de Dados Nacional de Nutrientes do USDA para Referência Padrão. Será expresso como mg/dia de consumo.
No início

Outras medidas de resultado

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
IMC
Prazo: No início
O peso (kg) e a altura (cm) serão determinados para calcular o IMC (kg/cm²)
No início

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (Real)

2 de dezembro de 2025

Conclusão Primária (Real)

13 de janeiro de 2026

Conclusão do estudo (Real)

13 de janeiro de 2026

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

15 de janeiro de 2026

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

23 de janeiro de 2026

Primeira postagem (Real)

28 de janeiro de 2026

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (Real)

28 de janeiro de 2026

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

23 de janeiro de 2026

Última verificação

1 de janeiro de 2026

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Plano para dados de participantes individuais (IPD)

Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?

INDECISO

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

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