Взаимодействие между гипертонией и пародонтитом

В исследование были включены сорок два участника. Группы исследования состояли из 20 здоровых лиц без ранее диагностированного системного заболевания (10 пародонтологически здоровых и 10 с пародонтитом) и 22 больных гипертонической болезнью (13 пародонтологически здоровых и 9 с пародонтитом). Популяция пациентов была отобрана случайным образом среди пациентов, обратившихся в клинику пародонтологии. В группу гипертензии были включены пациенты с артериальной гипертензией с периодом наблюдения не менее 5 лет. Пациенты с артериальной гипертензией, получавшие антигипертензивные препараты, вызывающие разрастание десен, были исключены из исследования.

Другими критериями исключения были сахарный диабет, высокий уровень холестерина, сердечно-сосудистые заболевания и прием лекарственных средств, кроме антигипертензивных. Квалифицированный врач провел комплексное обследование пародонта, включая индекс зубного налета (Silness & Loe, 1964) (PI), десневой индекс (Loe & Silness, 1963) (GI), глубину зондирования (PD), уровень клинического прикрепления (CAL) и кровоточивость на зондирование (ВОР). Измерения проводились на шести участках зуба (мезио-щечном, среднещечном, дисто-щечном, мезио-лингвальном, среднеязычном и дистально-язычном) с использованием периодонтального зонда (пародонтальный зонд Williams, Nordent Manufacturing, Elk Grove Village, Иллинойс, США) Для выполнения внутриисследовательской калибровки PD и CAL измеряли дважды на шести участках каждого зуба в течение 24 часов. Согласованность между экспертами составила не менее 90% как для PD, так и для CAL в пределах 1 мм. Исследователь, который регистрировал клинические показатели, не знал о системном статусе пациентов, а пародонтологи, которые отвечали за пародонтологическое лечение пациентов, не были ослеплены из-за анестезии, применяемой к пациентам с гипертонией, и необходимых мер предосторожности.

В течение периода исследования пациентов проинструктировали не использовать какие-либо местные/системные антибиотики и противомикробные препараты. Пациенты с диагнозом пародонтит имели генерализованный пародонтит II стадии с глубиной зондирования 3-4 мм. Диагноз был поставлен на основании критериев, что максимальная глубина зондирования ≤5 мм, в основном горизонтальная потеря и >30% пораженных зубов. Здоровый пародонт определяли по наличию BOP≤10% и PD≤3 мм. Для отбора проб GCF были выбраны четыре самых глубоких кармана несмежных однокорневых зубов. Участники были распределены на четыре группы; здоровые субъекты со здоровым пародонтом (контроль), здоровые субъекты с пародонтитом (CP), больные гипертонией с пародонтитом (CP + HP) и больные гипертонией со здоровым пародонтом (HP). Исследование было одобрено локальным комитетом по этике (291208/11), и все пациенты подписали форму информированного согласия. Критериями исключения были курение, беременность, установленный диагноз вторичной артериальной гипертензии, другие системные заболевания и предшествующее лечение пародонта и/или антибиотиками в течение последних шести месяцев. Все пациенты с пародонтитом получали пародонтальную терапию фазы I, включая инструкции по гигиене полости рта (OHI) и удаление зубного камня/планирование корня (SRP) без какой-либо антимикробной терапии. Были получены образцы GCF и слюны, а клинические измерения были выполнены на исходном уровне (до лечения (BT) и через четыре недели после фазы I пародонтальной терапии (AT). Сроки I фазы терапии (в течение 2 недель после исходного обследования 4 дня). Первичные биохимические исходы включали слюну и GCF IL-6 и CRP, а первичные пародонтальные исходы включали PI, GI, PD, CAL и BOP. Вторичным показателем результата был объем GCF.

Взятие и обработка GCF и слюны Место взятия GCF аккуратно высушивали воздухом и удаляли наддесневой налет.

Участок тщательно изолировали ватными тампонами, чтобы предотвратить заражение.

Стандартные бумажные полоски (Periopaper, Pro Flow, Amityville, NY, USA) вводили в борозду до ощущения легкого сопротивления и оставляли на 30 секунд. Полоски, загрязненные кровотечением или экссудатом, выбрасывали. Объемы GCF определяли, как описано ранее. Для определения количества GCF использовались электронные весы для взвешивания полосок бумаги до и сразу после сбора. Массу (мг) жидкости на каждой полоске переводили в объем в миллиметрах, предполагая, что плотность GCF равна 1. Полоски помещали в кодированные микроцентрифужные пробирки и хранили при -80°С до обработки. Перед биохимическим анализом бумажные полоски помещали в 0,1 % бычий сывороточный альбумин/фосфатно-солевой буферный раствор в пробирки Эппендорфа, и жидкость из бумажной полоски элюировали центрифугированием в течение 6 минут при 5000·g при 4°С. После центрифугирования полоски удаляли. Участников просили прекратить есть и пить за 2 часа до каждого взятия проб. Им было предложено прополоскать рот в течение 30 секунд 10 мл воды и отдохнуть в течение 2 минут перед тем, как собрать нестимулированную слюну путем сплевывания. Приблизительно 1 мл нестимулированной цельной слюны собирали в пробирки Эппендорфа. Образцы центрифугировали в течение 10 минут при 15 000 g при 4°C для удаления любых твердых частиц. Супернатанты хранили при -20°C до проведения анализа.

Иммуноферментный анализ GCF и слюны (ELISA) на IL-6 и CRP. Уровни IL-6 и CRP в GCF и слюне измеряли с использованием набора для сэндвич-ELISA (Biosource, Invitrogen Corporation, Carlsbad, California 92008). Процедуры ELISA проводили в соответствии с инструкциями производителя. Результаты выражали в пг/мл. Общие количества также рассчитывали путем умножения концентраций и объемов CRP.