低氧张力 CAPA-IVM 培养
研究概览
详细说明
获能体外成熟(CAPA-IVM)最近在生发囊泡(GV)阶段的卵母细胞培养方面取得了进展。 这种方法是传统体外受精(IVF)和胞浆内单精子注射(ICSI)的改良版本,在轻度刺激或不发生受控卵巢刺激后进行。 具体而言,IVM 可用于诊断为多囊卵巢综合征 (PCOS)、次级卵泡数量较多(占患者总数的近 15%)的患者,并治疗一系列存在卵巢过度刺激、静脉血栓栓塞或卵巢癌风险的患者。扭转。 此外,CAPA-IVM 有助于缩短治疗时间,成本更低,并且无需多次后续检查即可提高患者的便利性。 CAPA-IVM组首次胚胎移植后的活产率为35.2%,与IVF组的43.2%没有统计学差异(风险差异-8.1%;95%置信区间为-16.6%至0.5%) )。 但CAPA-IVM每个周期的优质胚胎数量和累计临床妊娠率仍低于cIVF。
此外,由于缺乏同时报告的高质量证据,应考虑进一步调查。 因此,改善CAPA-IVM中的卵母细胞成熟条件以收获最佳数量的卵母细胞和最高的胚胎发育可能性至关重要。 对动物和人体模型进行的许多研究表明,CAPA-IVM 的有效性取决于多种因素。 其中,氧气(O2)浓度等环境培养条件对于产生健康成熟的卵母细胞起着至关重要的作用。 O2是输卵管、子宫和卵泡的重要理化成分,与代谢活动、卵母细胞成熟和早期胚胎发育密切相关。 最近的研究表明,氧气浓度可能通过缺氧诱导因子(HIF)显着调节卵母细胞成熟和早期胚胎发育。 关于IVM培养环境中的O2浓度指标尚未达成共识。 卵母细胞包埋培养系统在全球范围内常用两种 O2 浓度:5% 和 20%。 在人体内,卵丘-卵母细胞复合体 (COC) 在氧气浓度较低(2% 至 9%)的条件下成熟。
相反,COC 在 IVM 操作和培养过程中暴露于 20% 的大气 O2 浓度。 尽管5%的浓度模拟了输卵管和子宫中最合适的环境,但20%的O2在IVM技术中被广泛应用。 高浓度的使用有利于分化过程更好地进行并提高卵母细胞的成熟率。 然而,一些参考框架表明,20%的氧气可能会带来反应性氧化应激(ROS)的风险,导致促氧化剂与抗氧化剂的比例失衡,从而导致细胞损伤。 此外,在 5% O2 下培养的卵母细胞的实时呼吸分析与体内发育的卵母细胞相似,但在 20% O2 下诱导细胞活动和耗氧量。 比利时布鲁塞尔自由大学 (VUB) 的研究显示,CAPA-IVM 培养过程中大气 O2 浓度 (20%) 和低 O2 浓度 (5%) 对小鼠的影响,在 5% O2 下培养的 COC 的呼吸能力为与COC在体内的发育和成熟相对相似。
尽管如此,在 20% O2 下培养的 COC 显着增加了呼吸活动和耗氧量。 研究观察到,在 20% O2 下进行 IVM 前的 COC 培养会导致发育中断。 此外,如果小鼠 COC 在 IVM 步骤中用 5% O2 培养,结果也不理想。 根据这些分析,研究人员假设 5% O2 是 IVM 前步骤的最佳培养条件,而 20% O2 与 IVM 培养步骤更相关。 将这些发现与 VUB 结果和 CAPA-IVM 卵母细胞分化过程的特征相结合,本研究分为两个主要组,包括 5% IVM 前和 20% IVM 与 20% IVM 前和 IVM),并证明是否这个假设应该应用于人类的CAPA-IVM。 CAPA-IVM培养系统的增强提高了该技术的治疗效率,并为接受辅助生殖技术的患者提供了多种益处。
研究程序:
资格筛选和随机化
- 该试验将在越南胡志明市 My Duc 医院进行。
- 可能符合资格的女性将在出现 IVM 治疗指征时获得有关试验的信息。
- 当需要 IVM 治疗时,将在首次就诊当天进行资格筛查。
- 将向患者提供与研究相关的信息以及知情同意文件。 研究人员将在入组前获得所有女性签署的知情同意书。
卵母细胞将分为 2 组:
第 1 组(包括 2 个亚组:1A 和 1B):空气氧浓度 CAPA-IVM 培养物 T = OR 后的卵母细胞总数,有两个亚组。
卵母细胞的数量划分如下:
如果 T 是偶数:
- 1A组卵母细胞数量:1个卵母细胞。
- 1B 组中的卵母细胞数量:T1B = (T-2)/2。
如果 T 是奇数:
- 1A组卵母细胞数量:1个卵母细胞。
- 1B 组中的卵母细胞数量:T1B = ([T-1]-2)/2。 第一个患者的一个卵母细胞剩余部分将被分配到 1B 组,下一个患者的剩余卵母细胞将被分配到 2B 组。 继续按顺序进行下一个剩余部分。
第 2 组(包括 2 个亚组:2A 和 2B):低氧浓度 CAPA-IVM 培养物 T = OR 后的卵母细胞总数,有两个亚组。
卵母细胞的数量划分如下:
如果 T 是偶数:
- 2A组中的卵母细胞数量:1个卵母细胞。
- 2B 组中的卵母细胞数量:T2B = (T-2)/2。
如果 T 是奇数:
- 2A组中的卵母细胞数量:1个卵母细胞。
- 2B 组中的卵母细胞数量:T2B = ([T-1]-2)/2。 第一个患者的一个卵母细胞剩余部分将被分配到 1B 组,下一个患者的剩余卵母细胞将被分配到 2B 组。 继续按顺序进行下一个剩余部分。
第1A、2A组:获能后收集:卵母细胞和卵丘细胞。
组1B、2B:获能后收集:用过的培养基、空白孔。 成熟后收集:用过的培养基、卵丘细胞、空白孔。
研究类型
注册 (实际的)
阶段
- 不适用
联系人和位置
学习地点
-
-
-
Ho Chi Minh City、越南
- My Duc Hospital
-
-
参与标准
资格标准
适合学习的年龄
- 成人
接受健康志愿者
描述
纳入标准:
- 18-42岁
- 根据鹿特丹标准(2003年)诊断为多囊卵巢综合征
- 有 CAPA-IVM 治疗指征
- 取卵当天至少有 20 个卵泡
- 同意冷冻胚胎移植
- 同意参加试验
排除标准:
- 卵母细胞捐赠周期、植入前基因检测 (PGT)
- 男性因素严重的夫妇(精子浓度<500万/ml,活力<10%),手术取精
- 既往 IVF 治疗后出现不明原因的未成熟卵母细胞史
- 子宫异常
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 主要用途:治疗
- 分配:非随机化
- 介入模型:并行分配
- 屏蔽:无(打开标签)
武器和干预
参与者组/臂 |
干预/治疗 |
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实验性的:空气氧浓度 CAPA-IVM 培养
一半的 COC 将在 CAPA 步骤和 IVM 步骤中在 37 摄氏度、空气氧浓度 (20%) 和 6% 二氧化碳的条件下培养。
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有源比较器:低氧浓度 CAPA-IVM 培养
一半的COC将在低氧浓度(5%)的CAPA步骤和空气氧浓度(20%)的IVM步骤中培养;所有两个步骤在 37 摄氏度下都会结合 6% 的二氧化碳。
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研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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成熟率
大体时间:取卵后两天
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卵母细胞成熟率通常由 MII 卵母细胞数量除以 COC 总数来定义
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取卵后两天
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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交货方式
大体时间:出生时
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阴道分娩、剖腹产(选择性、疑似胎儿窘迫、非进行性分娩)
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出生时
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取卵总数
大体时间:取卵当天
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计算取出的卵母细胞数量
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取卵当天
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未取出卵母细胞的患者人数
大体时间:取卵当天
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统计未取出卵母细胞的患者人数
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取卵当天
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MII 卵母细胞数量
大体时间:取卵后两天
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卵母细胞成熟度通常由 MII 卵母细胞数量来定义
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取卵后两天
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GV卵母细胞数量
大体时间:取卵后两天
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计算 GV 卵母细胞数量
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取卵后两天
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无成熟卵母细胞的患者人数
大体时间:取卵后两天
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计算没有成熟卵母细胞的患者数量
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取卵后两天
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2PN卵母细胞数量
大体时间:ICSI 后 16-18 小时
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ICSI 后具有 2 个原核的受精卵数量
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ICSI 后 16-18 小时
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受精率
大体时间:ICSI 后 16-18 小时
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受精卵母细胞数/受精卵母细胞数
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ICSI 后 16-18 小时
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受精率异常
大体时间:ICSI 后 16-18 小时
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ICSI 后具有 1,3 或 4 个原核的受精卵的百分比/受精的卵母细胞数量
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ICSI 后 16-18 小时
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无第 3 天胚胎的患者人数
大体时间:取卵后五天
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计算无胚胎患者的数量
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取卵后五天
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第三天胚胎数量
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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ICSI 后 64±2 小时计算第 3 天胚胎的数量
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胞浆内单精子注射三天后
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优质第 3 天胚胎数量
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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1 级和 2 级第 3 天胚胎的数量
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胞浆内单精子注射三天后
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冷冻第 3 天胚胎数量
大体时间:ICSI 后三天
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计算冷冻第 3 天胚胎的数量
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ICSI 后三天
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囊胚数量(第 5 天或第 6 天胚胎)
大体时间:ICSI 后五六天
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ICSI后114±2小时/140±2小时计数囊胚数量
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ICSI 后五六天
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无囊胚患者人数
大体时间:ICSI 后五六天
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计算无囊胚患者的数量
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ICSI 后五六天
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优质囊胚数量
大体时间:胞浆内单精子注射后五天
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1级和2级囊胚数量
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胞浆内单精子注射后五天
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冷冻囊胚数量
大体时间:ICSI 后三天
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计算冷冻囊胚的数量
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ICSI 后三天
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移植胚胎数量
大体时间:胚胎移植当天
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移植胚胎总数
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胚胎移植当天
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移植胚胎质量(1级、2级、3级)
大体时间:胚胎移植当天
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移植胚胎的质量按照阿尔法生殖医学科学家和ESHRE胚胎学特别兴趣小组,2011年进行分类; D.加德纳,1999; D.K.加德纳和斯库克拉蒂,1999
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胚胎移植当天
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妊娠试验阳性率
大体时间:囊胚移植后 11 天和第 3 天胚胎移植后 13 天
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妊娠试验阳性定义为血清人绒毛膜促性腺激素水平大于 25 mIU/mL
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囊胚移植后 11 天和第 3 天胚胎移植后 13 天
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着床率
大体时间:胚胎移植完成后3周后
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着床率被解释为每移植胚胎数量的孕囊数量。
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胚胎移植完成后3周后
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临床妊娠率
大体时间:胚胎移植后5周
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通过在末次月经开始后 6 周或更长时间内超声检查一个或多个孕囊或明确的妊娠临床体征来诊断。
除了宫内妊娠外,还包括临床记录的宫外孕
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胚胎移植后5周
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宫外孕率
大体时间:胚胎移植后3周
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通过超声、手术可视化或组织病理学诊断的宫腔外妊娠
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胚胎移植后3周
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持续妊娠率
大体时间:胚胎移植后10周
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持续妊娠被定义为在妊娠 12 周或之后可检测到心率的妊娠。
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胚胎移植后10周
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流产<12周率(早期流产)
大体时间:胚胎移植后2-10周
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妊娠 12 周以内的自然流产被称为早期流产。
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胚胎移植后2-10周
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流产<22周率(晚期流产)
大体时间:移植后 >10 至 20 周
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妊娠 12 至 22 周期间自然流产称为晚期流产
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移植后 >10 至 20 周
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活产率
大体时间:怀孕22周时
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活产被定义为在 22 个完整孕周后从女性体内完全排出或提取受精产物;分离后,无论脐带是否被切断或胎盘是否附着,它都会呼吸或显示出任何其他生命迹象,例如心跳、脐带搏动或随意肌的明确运动。
如果孕龄未知,则可以使用 500 克或以上的出生体重。
双胞胎算作一个活产。
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怀孕22周时
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多胎妊娠率
大体时间:胚胎移植后4周
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定义为早孕超声检查(妊娠 6-9 周)时出现多个孕囊
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胚胎移植后4周
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多次交货率
大体时间:怀孕22周时
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定义为在孕龄满 22 周后,将多于一个胎儿的妇女完全排出或取出,无论是活产还是死产
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怀孕22周时
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出生胎龄
大体时间:出生时
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按所有活产儿的胎龄计算
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出生时
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出生体重
大体时间:交货时
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以克为单位;单胞胎和双胞胎
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交货时
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出生体重率极低
大体时间:出生时
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出生体重小于 1.500 克
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出生时
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低出生体重率
大体时间:出生时
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出生体重低于 2.500 克
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出生时
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高出生体重率
大体时间:出生时
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意味着生长超过绝对出生体重,历史上为 4.000 克或 4.500 克,无论孕龄如何
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出生时
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出生体重率非常高
大体时间:出生时
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患有糖尿病的女性出生体重超过 4.500 克,非糖尿病女性的出生体重阈值为 5000 克
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出生时
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小于胎龄率
大体时间:出生时
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大于胎龄定义为出生体重低于第 10 个百分位数
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出生时
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大于胎龄率
大体时间:出生时
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大于胎龄定义为出生体重高于第 90 个百分位
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出生时
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妊娠期高血压发生率
大体时间:妊娠 20 周或之后
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包括妊娠高血压综合征 (PIH)、先兆子痫 (PET)、子痫和 HELLP 综合征。
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妊娠 20 周或之后
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妊娠糖尿病发生率
大体时间:妊娠 24 至 28 周时
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根据最新版ADA指南诊断。 75 g OGTT,在患者禁食时以及妊娠 24-28 周 1 小时和 2 小时内对先前未诊断患有糖尿病的女性进行血浆葡萄糖测量。
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妊娠 24 至 28 周时
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静态出生率
大体时间:孕龄满 20 周后
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定义为胎儿在胎龄满 20 周后从母亲体内完全排出或取出之前死亡。
死亡是由以下事实决定的:在这种分离之后,胎儿不再呼吸或显示出任何其他生命迹象,例如心跳、脐带搏动或随意肌的明确运动。
它包括分娩期间发生的死亡
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孕龄满 20 周后
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早产率
大体时间:交货当天
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定义为分娩时间<24、<28、<32、<37 完整周。
妊娠期 22 周后至 37 周完整之前发生的分娩。
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交货当天
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产前出血率
大体时间:出生时
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定义为从怀孕 24 周到婴儿出生之前发生的生殖道出血或出血。
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出生时
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主要先天畸形率
大体时间:出生时
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结构、功能和遗传异常,发生在怀孕期间,并在产前、出生时或生命后期发现,需要手术修复缺陷,或在视觉上明显,或危及生命,或导致死亡。
任何先天性异常都将按照出生缺陷和发育障碍部门的先天性异常监测、NCBDDD、疾病控制与预防中心 (2020) 中的先天性异常定义包括在内。
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出生时
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新生儿死亡率
大体时间:产后 8 至 28 天
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新生儿死亡率定义为活产婴儿在出生后 28 天内死亡。
这可以分为早期新生儿死亡率(如果死亡发生在出生后 7 天内)和晚期新生儿死亡率(如果死亡发生在出生后 8 至 28 天之间)
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产后 8 至 28 天
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新生儿重症监护病房 (NICU) 入院率
大体时间:出生时
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统计入住新生儿重症监护室的婴儿人数
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出生时
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入住 NICU 的原因
大体时间:出生时
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呼吸窘迫、脑室内出血、坏死性小肠结肠炎、败血症
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出生时
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合作者和调查者
调查人员
- 首席研究员:Lan N Vuong, MD, PhD、University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
出版物和有用的链接
一般刊物
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Fischer B, Bavister BD. Oxygen tension in the oviduct and uterus of rhesus monkeys, hamsters and rabbits. J Reprod Fertil. 1993 Nov;99(2):673-9. doi: 10.1530/jrf.0.0990673.
- Paulson RJ, Fauser BCJM, Vuong LTN, Doody K. Can we modify assisted reproductive technology practice to broaden reproductive care access? Fertil Steril. 2016 May;105(5):1138-1143. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.03.013. Epub 2016 Apr 4.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Zhao X, Liu X, Feng Y, Shi D, Lu F. Regulation of hypoxia-inducible factor 1alpha by optimal oxygen concentration enhances oocyte maturation and early embryonic development in buffalo. Theriogenology. 2023 Aug;206:50-59. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.05.006. Epub 2023 May 8.
- Bahrami M, Cottee PA. Culture conditions for in vitro maturation of oocytes - A review. Reproduction and Breeding. 2022 Jun 1;2(2):31-6
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- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
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研究主要日期
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初级完成 (实际的)
研究完成 (实际的)
研究注册日期
首次提交
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首次发布 (实际的)
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最后更新发布 (实际的)
上次提交的符合 QC 标准的更新
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