- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT06367985
Cultura CAPA-IVM com baixa tensão de oxigênio
Visão geral do estudo
Status
Condições
Descrição detalhada
A maturação in vitro de capacitação (CAPA-IVM) foi recentemente avançada no cultivo de oócitos do estágio de vesícula germinativa (GV). Esta abordagem é uma versão modificada da fertilização in vitro convencional (FIV) e da injeção intracitoplasmática de espermatozóides (ICSI), após estimulação leve ou sem ocorrência de estimulação ovariana controlada. Especificamente, a MIV pode ser indicada para pacientes com diagnóstico de síndrome dos ovários policísticos (SOP), com maior número de folículos secundários (constituindo quase 15% do total de pacientes) e tratar uma série de pacientes com riscos de hiperestimulação ovariana, tromboembolismo venoso ou ovário. torção. Além disso, o CAPA-IVM ajuda a reduzir o tempo de tratamento, é mais barato e aumenta a conveniência do paciente sem a necessidade de vários exames de acompanhamento. A taxa de nascidos vivos após a primeira transferência de embriões no grupo CAPA-IVM foi de 35,2%, o que não foi estatisticamente significativamente diferente do grupo de fertilização in vitro de 43,2% (diferença de risco -8,1%; intervalo de confiança de 95% de -16,6% a 0,5% ). No entanto, o número de embriões de alta qualidade em cada ciclo e a taxa cumulativa de gravidez clínica no CAPA-IVM ainda eram inferiores aos da FIVc.
Além disso, devem ser consideradas investigações adicionais devido à falta de provas de alta qualidade de relatórios concorrentes. Portanto, é essencial melhorar as condições de maturação dos oócitos no CAPA-IVM para colher o número ideal de oócitos e a maior possibilidade de desenvolvimento embrionário. Muitos estudos realizados em modelos animais e humanos demonstraram que a eficácia do CAPA-IVM depende de vários fatores. Entre estas, as condições ambientais de cultura, como a concentração de oxigênio (O2), desempenham um papel crucial na produção de oócitos maduros saudáveis. O2 é um componente físico e químico vital da trompa de Falópio, do útero e do folículo ovariano, está intimamente relacionado à atividade metabólica, à maturação dos oócitos e ao desenvolvimento inicial do embrião. Pesquisas recentes sugeriram que a concentração de O2 pode regular significativamente a maturação dos oócitos e o desenvolvimento inicial do embrião através do fator induzível por hipóxia (HIF). Não foi alcançado um consenso sobre o índice de concentração de O2 no ambiente de cultura IVM. Sistemas de cultura incorporados em oócitos têm sido comumente usados em duas concentrações de O2, 5% e 20% em todo o mundo. No corpo humano, os complexos cumulus-oócitos (COCs) amadurecem em condições com baixas concentrações de O2 variando de 2% a 9%.
Por outro lado, os COCs são expostos a uma concentração atmosférica de O2 de 20% durante a manipulação e cultura do IVM. Embora a concentração de 5% imite o ambiente mais adequado na trompa de Falópio e no útero, o O2 de 20% é amplamente aplicado em técnicas de MIV. O uso de altas concentrações facilita uma melhor progressão dos processos de diferenciação e aumenta a taxa de maturação dos ovócitos. No entanto, alguns referenciais indicaram que um O2 de 20% pode representar um risco de estresse oxidativo reativo (ROS), levando a um desequilíbrio na proporção de pró-oxidantes para antioxidantes, resultando em danos celulares. Além disso, a análise da respiração em tempo real de oócitos cultivados a 5% de O2 é semelhante à de oócitos desenvolvidos in vivo, mas induziu atividade celular e consumo de oxigênio a 20% de O2. O impacto da concentração atmosférica de O2 (20%) e da baixa concentração de O2 (5%) durante a cultura CAPA-IVM em camundongos mostrou no estudo da Vrije Universiteit Brussel (VUB) - Bélgica que a capacidade respiratória dos COCs cultivados a 5% O2 foi relativamente semelhante ao desenvolvimento e maturação dos COCs in vivo.
No entanto, os COCs cultivados com 20% de O2 aumentaram notavelmente a atividade respiratória e o consumo de oxigênio. O estudo observou que a cultura pré-MIV de COCs com 20% de O2 causou perturbações no desenvolvimento. Além disso, o resultado foi desfavorável se COCs de camundongos fossem cultivados na etapa IVM com 5% de O2. Com base nessas análises, os pesquisadores levantaram a hipótese de que 5% de O2 era a condição de cultura ideal para a etapa pré-MIV, enquanto 20% de O2 era mais relevante para a etapa de cultura de IVM. Combinando esses achados com resultados de VUB e características do processo de diferenciação em oócitos CAPA-IVM, este estudo é dividido em dois grupos principais, incluindo 5% pré-IVM e 20% IVM versus 20% pré-IVM e IVM) e demonstra se esta hipótese deve ser aplicada CAPA-IVM em humanos. O aprimoramento do sistema de cultura CAPA-IVM leva à melhoria da eficiência do tratamento desta técnica e proporciona diversos benefícios para pacientes submetidos à tecnologia de reprodução assistida.
Procedimento de estudo:
Triagem para elegibilidade e randomização
- Este ensaio será realizado no Hospital My Duc, cidade de Ho Chi Minh, Vietnã.
- As mulheres potencialmente elegíveis receberão informações sobre o estudo no momento da indicação do tratamento IVM.
- A triagem de elegibilidade será realizada no dia da primeira consulta quando o tratamento IVM for indicado.
- Os pacientes receberão informações relacionadas ao estudo juntamente com os documentos de consentimento informado. Os formulários de consentimento informado assinados serão obtidos pelos investigadores de todas as mulheres antes da inscrição.
Os oócitos serão divididos em 2 grupos:
Grupo 1 (inclui 2 subgrupos: 1A e 1B): Concentração de Oxigênio no Ar Cultura CAPA-IVM T = Número total de oócitos após OR e há dois subgrupos.
O número de oócitos é dividido abaixo:
Se T for um número par:
- Número de oócitos no Grupo 1A: Um oócito.
- Número de oócitos no Grupo 1B: T1B = (T-2)/2.
Se T for um número ímpar:
- Número de oócitos no Grupo 1A: Um oócito.
- Número de oócitos no Grupo 1B: T1B = ([T-1]-2)/2. Um ovócito restante do primeiro paciente será atribuído ao grupo 1B, e o restante do próximo paciente será atribuído ao grupo 2B. Continuando a fazer isso sequencialmente para o próximo restante.
Grupo 2 (inclui 2 subgrupos: 2A e 2B): Baixa Concentração de Oxigênio CAPA- Cultura IVM T = Número total de oócitos após OR e há dois subgrupos.
O número de oócitos é dividido abaixo:
Se T for um número par:
- Número de oócitos no Grupo 2A: Um oócito.
- Número de oócitos no Grupo 2B: T2B = (T-2)/2.
Se T for um número ímpar:
- Número de oócitos no Grupo 2A: Um oócito.
- Número de oócitos no Grupo 2B: T2B = ([T-1]-2)/2. Um ovócito restante do primeiro paciente será atribuído ao grupo 1B, e o restante do próximo paciente será atribuído ao grupo 2B. Continuando a fazer isso sequencialmente para o próximo restante.
Grupo 1A, 2A: Coleta após capacitação: oócito e célula do cumulus.
Grupo 1B, 2B: Coleta após capacitação: mídia gasta, poço vazio. Coleta após maturação: meio gasto, célula cumulus, poço branco.
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Locais de estudo
-
-
-
Ho Chi Minh City, Vietnã
- My Duc Hospital
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
- Adulto
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critério de inclusão:
- 18-42 anos de idade
- Diagnosticado com síndrome dos ovários policísticos de acordo com os critérios de Rotterdam (2003)
- Ter indicação para tratamento CAPA-IVM
- Ter pelo menos 20 folículos no dia da retirada do oócito
- Concordando em ter transferência congelada de embriões
- Concordando em participar do ensaio
Critério de exclusão:
- Ciclos com doação de ovócitos, Teste Genético Pré-implantacional (PGT)
- Casais com fator masculino grave (concentração de espermatozoides <5 milhões/ml, motilidade <10%), recuperação cirúrgica de espermatozóides
- História anterior de oócitos imaturos inexplicáveis após tratamento de fertilização in vitro
- Anormalidades uterinas
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Tratamento
- Alocação: Não randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
|
Experimental: Cultura de concentração de oxigênio no ar CAPA-IVM
Metade dos COCs serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM a 37 graus Celsius em concentração de oxigênio no ar (20%) e 6% de dióxido de carbono.
|
|
|
Comparador Ativo: Cultura CAPA-IVM com baixa concentração de oxigênio
Metade dos COCs serão cultivados na etapa CAPA em baixa concentração de oxigênio (5%) e na etapa IVM em concentração de oxigênio no ar (20%); todas as duas etapas combinam 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.
|
|
O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
|
Taxa de maturação
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
|
A taxa de maturação oocitária foi geralmente definida pelo número de oócitos MII dividido pelo número total de COCs
|
Dois dias após a retirada do oócito
|
Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
|
Modo de entrega
Prazo: No nascimento
|
Parto vaginal, cesariana (eletivo, suspeita de sofrimento fetal, trabalho de parto não progressivo)
|
No nascimento
|
|
Número total de recuperação de oócitos
Prazo: No dia da retirada do oócito
|
Contando o número de oócitos recuperados
|
No dia da retirada do oócito
|
|
Número de pacientes sem ovócitos recuperados
Prazo: No dia da retirada do oócito
|
Contando o número de pacientes sem oócitos recuperados
|
No dia da retirada do oócito
|
|
Número de oócitos MII
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
|
A maturação oocitária foi geralmente definida pelo número de oócitos MII
|
Dois dias após a retirada do oócito
|
|
Número de oócitos GV
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
|
Contando o número de oócitos GV
|
Dois dias após a retirada do oócito
|
|
Número de pacientes sem oócito amadurecido
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
|
Contando o número de pacientes sem ovócitos amadurecidos
|
Dois dias após a retirada do oócito
|
|
Número de oócitos 2PN
Prazo: 16-18 horas após ICSI
|
Número de zigotos com 2 pronúcleos após ICSI
|
16-18 horas após ICSI
|
|
Taxa de fertilização
Prazo: 16-18 horas após ICSI
|
Número de oócitos fertilizados / número de oócitos inseminados
|
16-18 horas após ICSI
|
|
Taxa de fertilização anormal
Prazo: 16-18 horas após ICSI
|
A porcentagem de zigotos com 1,3 ou 4 pronúcleos após ICSI/número de oócitos inseminados
|
16-18 horas após ICSI
|
|
Número de pacientes sem embrião no dia 3
Prazo: Cinco dias após a retirada do oócito
|
Contando o número de pacientes sem embrião
|
Cinco dias após a retirada do oócito
|
|
Número de embriões do dia 3
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
Contando o número de embriões do dia 3 às 64±2h após ICSI
|
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
|
Número de embriões do Dia 3 de boa qualidade
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
Número de embriões de grau 1 e grau 2 no dia 3
|
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
|
Número de embriões congelados no dia 3
Prazo: Três dias após ICSI
|
Contando o número de embriões congelados no dia 3
|
Três dias após ICSI
|
|
Número de blastocistos (dia 5 ou dia 6 embrião)
Prazo: Cinco ou seis dias após ICSI
|
Contagem do número de blastocistos em 114±2h/140±2h após ICSI
|
Cinco ou seis dias após ICSI
|
|
Número de pacientes sem blastocisto
Prazo: Cinco ou seis dias após ICSI
|
Contando o número de pacientes sem blastocisto
|
Cinco ou seis dias após ICSI
|
|
Número de blastocistos de boa qualidade
Prazo: Cinco dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
Número de blastocistos de grau 1 e grau 2
|
Cinco dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
|
|
Número de blastocistos congelados
Prazo: Três dias após ICSI
|
Contando o número de blastocistos congelados
|
Três dias após ICSI
|
|
Número de embriões transferidos
Prazo: No dia da transferência do embrião
|
Total de embriões transferidos
|
No dia da transferência do embrião
|
|
Qualidade dos embriões transferidos (Grau 1, Grau 2, Grau 3)
Prazo: No dia da transferência do embrião
|
A qualidade do embrião transferido é classificada de acordo com Alpha Scientists in Reproductive Medicine e ESHRE Special Interest Group of Embryology, 2011; D. Gardner, 1999; DK Gardner & Schoolcrati, 1999
|
No dia da transferência do embrião
|
|
Taxa de teste de gravidez positivo
Prazo: 11 dias após o dia da transferência do blastocisto e 13 dias após o dia da transferência do embrião no dia 3
|
Teste de gravidez positivo definido como nível sérico de gonadotrofina coriônica humana superior a 25 mUI/mL
|
11 dias após o dia da transferência do blastocisto e 13 dias após o dia da transferência do embrião no dia 3
|
|
Taxa de implantação
Prazo: Às 3 semanas após a transferência do embrião, após a conclusão da transferência do embrião
|
A taxa de implantação é explicada como o número de sacos gestacionais por número de embriões transferidos.
|
Às 3 semanas após a transferência do embrião, após a conclusão da transferência do embrião
|
|
Taxa clínica de gravidez
Prazo: 5 semanas após a transferência do embrião
|
Diagnosticada pela visualização ultrassonográfica de um ou mais sacos gestacionais ou sinais clínicos definitivos de gravidez 6 semanas ou mais após o início da última menstruação.
Além da gravidez intrauterina, inclui uma gravidez ectópica clinicamente documentada
|
5 semanas após a transferência do embrião
|
|
Taxa de gravidez ectópica
Prazo: 3 semanas após a transferência do embrião
|
Uma gravidez fora da cavidade uterina, diagnosticada por ultrassonografia, visualização cirúrgica ou histopatologia
|
3 semanas após a transferência do embrião
|
|
Taxa de gravidez contínua
Prazo: 10 semanas após a transferência do embrião
|
Gravidez em curso é definida como gravidez com frequência cardíaca detectável com 12 semanas de gestação ou mais.
|
10 semanas após a transferência do embrião
|
|
Taxa de aborto espontâneo <12 semanas (aborto espontâneo precoce)
Prazo: 2 a 10 semanas após a transferência do embrião
|
A perda espontânea da gravidez até às 12 semanas de gestação é referida como uma gravidez precoce.
|
2 a 10 semanas após a transferência do embrião
|
|
Taxa de aborto espontâneo <22 semanas (aborto espontâneo tardio)
Prazo: Em >10 a 20 semanas após a transferência
|
A perda espontânea da gravidez entre 12 a 22 semanas é denominada aborto espontâneo tardio
|
Em >10 a 20 semanas após a transferência
|
|
Taxa de natalidade viva
Prazo: Com 22 semanas de gestação
|
O nascimento vivo é definido como a expulsão ou extração completa de uma mulher de um produto da fertilização, após 22 semanas completas de idade gestacional; que, após essa separação, respire ou apresente qualquer outra evidência de vida, como batimentos cardíacos, pulsação do cordão umbilical ou movimento definido dos músculos voluntários, independentemente de o cordão umbilical ter sido cortado ou a placenta estar inserida.
Um peso ao nascer de 500 gramas ou mais pode ser usado se a idade gestacional for desconhecida.
Gêmeos contados como um nascido vivo.
|
Com 22 semanas de gestação
|
|
Taxa de gravidez múltipla
Prazo: 4 semanas após a transferência do embrião
|
Definido como a presença de mais de um saco gestacional na ultrassonografia no início da gravidez (6-9 semanas de gestação)
|
4 semanas após a transferência do embrião
|
|
Taxa de entrega múltipla
Prazo: Com 22 semanas de gestação
|
Definida como a expulsão ou extração completa de mais de um feto de uma mulher, após 22 semanas completas de idade gestacional, independentemente de ser nascido vivo ou natimorto
|
Com 22 semanas de gestação
|
|
Idade gestacional ao nascer
Prazo: No nascimento
|
Calculado pela idade gestacional de todos os nascidos vivos
|
No nascimento
|
|
Peso ao nascer
Prazo: Na hora da entrega
|
em gramas; de solteiros e gêmeos
|
Na hora da entrega
|
|
Taxa de peso ao nascer muito baixo
Prazo: No nascimento
|
Peso ao nascer inferior a 1.500 g
|
No nascimento
|
|
Taxa de baixo peso ao nascer
Prazo: No nascimento
|
Peso ao nascer inferior a 2.500 g
|
No nascimento
|
|
Alta taxa de peso ao nascer
Prazo: No nascimento
|
Implica crescimento além do peso absoluto ao nascer, historicamente 4.000 g ou 4.500 g, independentemente da idade gestacional
|
No nascimento
|
|
Taxa de peso ao nascer muito elevada
Prazo: No nascimento
|
Peso ao nascer superior a 4.500 g para mulheres com diabetes e limite de 5.000 g para mulheres sem diabetes
|
No nascimento
|
|
Taxa pequena para a idade gestacional
Prazo: No nascimento
|
Grande para a idade gestacional foi definido como peso ao nascer abaixo do percentil 10
|
No nascimento
|
|
Grande para a taxa de idade gestacional
Prazo: No nascimento
|
Grande para a idade gestacional foi definido como peso ao nascer acima do percentil 90
|
No nascimento
|
|
Taxa de hipertensão na gravidez
Prazo: Com 20 semanas de gestação ou mais
|
Compreendendo hipertensão induzida pela gravidez (PIH), pré-eclâmpsia (PET), eclâmpsia e síndrome HELLP.
|
Com 20 semanas de gestação ou mais
|
|
Taxa de diabetes mellitus gestacional
Prazo: De 24 a 28 semanas de gestação
|
Diagnosticado de acordo com a versão mais recente das diretrizes da ADA. um TOTG de 75 g, com medição de glicose plasmática quando a paciente está em jejum e em 1 e 2 horas, entre 24 e 28 semanas de gestação em mulheres sem diagnóstico prévio de diabetes.
|
De 24 a 28 semanas de gestação
|
|
Ainda taxa de natalidade
Prazo: Após 20 semanas completas de idade gestacional
|
definida como a morte de um feto antes da expulsão ou extração completa de sua mãe após 20 semanas completas de idade gestacional.
A morte é determinada pelo fato de que, após tal separação, o feto não respira ou apresenta qualquer outra evidência de vida, como batimentos cardíacos, pulsação do cordão umbilical ou movimento definido dos músculos voluntários.
Inclui mortes ocorridas durante o trabalho de parto
|
Após 20 semanas completas de idade gestacional
|
|
Taxa de natalidade prematura
Prazo: No dia da entrega
|
Definido como parto em <24, <28, <32, <37 semanas completas.
Nascimento que ocorre após 22 semanas e antes de 37 semanas completas de idade gestacional.
|
No dia da entrega
|
|
Taxa de hemorragia pré-parto
Prazo: No nascimento
|
Definido como sangramento de ou para o trato genital, ocorrendo a partir da 24ª semana de gravidez e antes do nascimento do bebê.
|
No nascimento
|
|
Taxa de principais anomalias congênitas
Prazo: No nascimento
|
Anomalias estruturais, funcionais e genéticas que ocorrem durante a gravidez e são identificadas no período pré-natal, no nascimento ou mais tarde na vida e requerem reparo cirúrgico de um defeito, ou são visualmente evidentes, ou ameaçam a vida, ou causam a morte.
Qualquer anomalia congênita será incluída conforme definição seguida de anomalias congênitas na Vigilância de Anomalias Congênitas pela Divisão de Defeitos Congênitos e Deficiências de Desenvolvimento, NCBDDD, Centros de Controle e Prevenção de Doenças (2020).
|
No nascimento
|
|
Taxa de mortalidade neonatal
Prazo: entre oito e 28 dias após o parto
|
Mortalidade neonatal definida como a morte de um bebê nascido vivo até 28 dias após o nascimento.
Esta pode ser dividida em mortalidade neonatal precoce, se a morte ocorrer nos primeiros sete dias após o nascimento, e neonatal tardia, se a morte ocorrer entre oito e 28 dias após o parto.
|
entre oito e 28 dias após o parto
|
|
Taxa de admissão na UTIN
Prazo: No nascimento
|
Contagem do número de bebês internados em unidade de terapia intensiva neonatal
|
No nascimento
|
|
Motivo da internação na UTIN
Prazo: No nascimento
|
Desconforto respiratório, hemorragia intraventricular, enterocolite necrosante, sepse
|
No nascimento
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Lan N Vuong, MD, PhD, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Fischer B, Bavister BD. Oxygen tension in the oviduct and uterus of rhesus monkeys, hamsters and rabbits. J Reprod Fertil. 1993 Nov;99(2):673-9. doi: 10.1530/jrf.0.0990673.
- Paulson RJ, Fauser BCJM, Vuong LTN, Doody K. Can we modify assisted reproductive technology practice to broaden reproductive care access? Fertil Steril. 2016 May;105(5):1138-1143. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.03.013. Epub 2016 Apr 4.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Zhao X, Liu X, Feng Y, Shi D, Lu F. Regulation of hypoxia-inducible factor 1alpha by optimal oxygen concentration enhances oocyte maturation and early embryonic development in buffalo. Theriogenology. 2023 Aug;206:50-59. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.05.006. Epub 2023 May 8.
- Bahrami M, Cottee PA. Culture conditions for in vitro maturation of oocytes - A review. Reproduction and Breeding. 2022 Jun 1;2(2):31-6
- Increased susceptibility to oxidative stress as a proximate cost of reproduction - Alonso-Alvarez - 2004 - Ecology Letters - Wiley Online Library [Internet]. [cited 2023 Sep 19]. Available from: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1461-0248.2004.00594.x
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Real)
Conclusão do estudo (Real)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Real)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Real)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Outros números de identificação do estudo
- 03/24/DD-BVMD
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
produto fabricado e exportado dos EUA
Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .