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Cultura CAPA-IVM com baixa tensão de oxigênio

9 de junho de 2025 atualizado por: Mỹ Đức Hospital
A maturação in vitro de capacitação (CAPA-IVM) foi recentemente avançada na cultura de oócitos do estágio de vesícula germinativa (GV) após estimulação ovariana leve ou nenhuma estimulação ovariana controlada. Pesquisas recentes sugeriram que a concentração de O2 pode regular significativamente a maturação dos oócitos e o desenvolvimento inicial do embrião através do fator induzível por hipóxia (HIF). No entanto, tem sido um desafio criar as condições ambientais de cultura para abordar o número ideal de oócitos e a maior possibilidade de desenvolvimento embrionário, uma vez que o consenso sobre o índice de concentração de oxigênio (O2) no ambiente de cultura IVM não foi alcançado. Com base nos resultados da concentração atmosférica de O2 (20%) e baixa concentração de O2 (5%) durante a cultura CAPA-IVM em camundongos, levantou-se a hipótese de que um O2 de 5% era a condição ideal de cultura para a etapa pré-IVM. Um O2 a 20% foi mais adequado para a etapa de cultura IVM. Portanto, este estudo tem como objetivo aprimorar o sistema de cultura CAPA-IVM, melhorando a eficiência do tratamento e proporcionando diversos benefícios para pacientes submetidos à tecnologia de reprodução assistida.

Visão geral do estudo

Descrição detalhada

A maturação in vitro de capacitação (CAPA-IVM) foi recentemente avançada no cultivo de oócitos do estágio de vesícula germinativa (GV). Esta abordagem é uma versão modificada da fertilização in vitro convencional (FIV) e da injeção intracitoplasmática de espermatozóides (ICSI), após estimulação leve ou sem ocorrência de estimulação ovariana controlada. Especificamente, a MIV pode ser indicada para pacientes com diagnóstico de síndrome dos ovários policísticos (SOP), com maior número de folículos secundários (constituindo quase 15% do total de pacientes) e tratar uma série de pacientes com riscos de hiperestimulação ovariana, tromboembolismo venoso ou ovário. torção. Além disso, o CAPA-IVM ajuda a reduzir o tempo de tratamento, é mais barato e aumenta a conveniência do paciente sem a necessidade de vários exames de acompanhamento. A taxa de nascidos vivos após a primeira transferência de embriões no grupo CAPA-IVM foi de 35,2%, o que não foi estatisticamente significativamente diferente do grupo de fertilização in vitro de 43,2% (diferença de risco -8,1%; intervalo de confiança de 95% de -16,6% a 0,5% ). No entanto, o número de embriões de alta qualidade em cada ciclo e a taxa cumulativa de gravidez clínica no CAPA-IVM ainda eram inferiores aos da FIVc.

Além disso, devem ser consideradas investigações adicionais devido à falta de provas de alta qualidade de relatórios concorrentes. Portanto, é essencial melhorar as condições de maturação dos oócitos no CAPA-IVM para colher o número ideal de oócitos e a maior possibilidade de desenvolvimento embrionário. Muitos estudos realizados em modelos animais e humanos demonstraram que a eficácia do CAPA-IVM depende de vários fatores. Entre estas, as condições ambientais de cultura, como a concentração de oxigênio (O2), desempenham um papel crucial na produção de oócitos maduros saudáveis. O2 é um componente físico e químico vital da trompa de Falópio, do útero e do folículo ovariano, está intimamente relacionado à atividade metabólica, à maturação dos oócitos e ao desenvolvimento inicial do embrião. Pesquisas recentes sugeriram que a concentração de O2 pode regular significativamente a maturação dos oócitos e o desenvolvimento inicial do embrião através do fator induzível por hipóxia (HIF). Não foi alcançado um consenso sobre o índice de concentração de O2 no ambiente de cultura IVM. Sistemas de cultura incorporados em oócitos têm sido comumente usados ​​em duas concentrações de O2, 5% e 20% em todo o mundo. No corpo humano, os complexos cumulus-oócitos (COCs) amadurecem em condições com baixas concentrações de O2 variando de 2% a 9%.

Por outro lado, os COCs são expostos a uma concentração atmosférica de O2 de 20% durante a manipulação e cultura do IVM. Embora a concentração de 5% imite o ambiente mais adequado na trompa de Falópio e no útero, o O2 de 20% é amplamente aplicado em técnicas de MIV. O uso de altas concentrações facilita uma melhor progressão dos processos de diferenciação e aumenta a taxa de maturação dos ovócitos. No entanto, alguns referenciais indicaram que um O2 de 20% pode representar um risco de estresse oxidativo reativo (ROS), levando a um desequilíbrio na proporção de pró-oxidantes para antioxidantes, resultando em danos celulares. Além disso, a análise da respiração em tempo real de oócitos cultivados a 5% de O2 é semelhante à de oócitos desenvolvidos in vivo, mas induziu atividade celular e consumo de oxigênio a 20% de O2. O impacto da concentração atmosférica de O2 (20%) e da baixa concentração de O2 (5%) durante a cultura CAPA-IVM em camundongos mostrou no estudo da Vrije Universiteit Brussel (VUB) - Bélgica que a capacidade respiratória dos COCs cultivados a 5% O2 foi relativamente semelhante ao desenvolvimento e maturação dos COCs in vivo.

No entanto, os COCs cultivados com 20% de O2 aumentaram notavelmente a atividade respiratória e o consumo de oxigênio. O estudo observou que a cultura pré-MIV de COCs com 20% de O2 causou perturbações no desenvolvimento. Além disso, o resultado foi desfavorável se COCs de camundongos fossem cultivados na etapa IVM com 5% de O2. Com base nessas análises, os pesquisadores levantaram a hipótese de que 5% de O2 era a condição de cultura ideal para a etapa pré-MIV, enquanto 20% de O2 era mais relevante para a etapa de cultura de IVM. Combinando esses achados com resultados de VUB e características do processo de diferenciação em oócitos CAPA-IVM, este estudo é dividido em dois grupos principais, incluindo 5% pré-IVM e 20% IVM versus 20% pré-IVM e IVM) e demonstra se esta hipótese deve ser aplicada CAPA-IVM em humanos. O aprimoramento do sistema de cultura CAPA-IVM leva à melhoria da eficiência do tratamento desta técnica e proporciona diversos benefícios para pacientes submetidos à tecnologia de reprodução assistida.

Procedimento de estudo:

Triagem para elegibilidade e randomização

  • Este ensaio será realizado no Hospital My Duc, cidade de Ho Chi Minh, Vietnã.
  • As mulheres potencialmente elegíveis receberão informações sobre o estudo no momento da indicação do tratamento IVM.
  • A triagem de elegibilidade será realizada no dia da primeira consulta quando o tratamento IVM for indicado.
  • Os pacientes receberão informações relacionadas ao estudo juntamente com os documentos de consentimento informado. Os formulários de consentimento informado assinados serão obtidos pelos investigadores de todas as mulheres antes da inscrição.

Os oócitos serão divididos em 2 grupos:

Grupo 1 (inclui 2 subgrupos: 1A e 1B): Concentração de Oxigênio no Ar Cultura CAPA-IVM T = Número total de oócitos após OR e há dois subgrupos.

O número de oócitos é dividido abaixo:

Se T for um número par:

  • Número de oócitos no Grupo 1A: Um oócito.
  • Número de oócitos no Grupo 1B: T1B = (T-2)/2.

Se T for um número ímpar:

  • Número de oócitos no Grupo 1A: Um oócito.
  • Número de oócitos no Grupo 1B: T1B = ([T-1]-2)/2. Um ovócito restante do primeiro paciente será atribuído ao grupo 1B, e o restante do próximo paciente será atribuído ao grupo 2B. Continuando a fazer isso sequencialmente para o próximo restante.

Grupo 2 (inclui 2 subgrupos: 2A e 2B): Baixa Concentração de Oxigênio CAPA- Cultura IVM T = Número total de oócitos após OR e há dois subgrupos.

O número de oócitos é dividido abaixo:

Se T for um número par:

  • Número de oócitos no Grupo 2A: Um oócito.
  • Número de oócitos no Grupo 2B: T2B = (T-2)/2.

Se T for um número ímpar:

  • Número de oócitos no Grupo 2A: Um oócito.
  • Número de oócitos no Grupo 2B: T2B = ([T-1]-2)/2. Um ovócito restante do primeiro paciente será atribuído ao grupo 1B, e o restante do próximo paciente será atribuído ao grupo 2B. Continuando a fazer isso sequencialmente para o próximo restante.

Grupo 1A, 2A: Coleta após capacitação: oócito e célula do cumulus.

Grupo 1B, 2B: Coleta após capacitação: mídia gasta, poço vazio. Coleta após maturação: meio gasto, célula cumulus, poço branco.

Tipo de estudo

Intervencional

Inscrição (Real)

20

Estágio

  • Não aplicável

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Locais de estudo

      • Ho Chi Minh City, Vietnã
        • My Duc Hospital

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

  • Adulto

Aceita Voluntários Saudáveis

Não

Descrição

Critério de inclusão:

  • 18-42 anos de idade
  • Diagnosticado com síndrome dos ovários policísticos de acordo com os critérios de Rotterdam (2003)
  • Ter indicação para tratamento CAPA-IVM
  • Ter pelo menos 20 folículos no dia da retirada do oócito
  • Concordando em ter transferência congelada de embriões
  • Concordando em participar do ensaio

Critério de exclusão:

  • Ciclos com doação de ovócitos, Teste Genético Pré-implantacional (PGT)
  • Casais com fator masculino grave (concentração de espermatozoides <5 milhões/ml, motilidade <10%), recuperação cirúrgica de espermatozóides
  • História anterior de oócitos imaturos inexplicáveis ​​após tratamento de fertilização in vitro
  • Anormalidades uterinas

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

  • Finalidade Principal: Tratamento
  • Alocação: Não randomizado
  • Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
  • Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)

Armas e Intervenções

Grupo de Participantes / Braço
Intervenção / Tratamento
Experimental: Cultura de concentração de oxigênio no ar CAPA-IVM
Metade dos COCs serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM a 37 graus Celsius em concentração de oxigênio no ar (20%) e 6% de dióxido de carbono.
  • Grupo 1A: COC será cultivado na etapa CAPA em concentração de oxigênio no ar (20%) por 24 horas e 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.
  • Grupo 1B: Os COCs serão cultivados na etapa CAPA na concentração de oxigênio no ar (20%) por 24 horas e na etapa IVM na concentração de oxigênio no ar (20%) por 30 horas; todas as duas etapas combinam 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.
Comparador Ativo: Cultura CAPA-IVM com baixa concentração de oxigênio
Metade dos COCs serão cultivados na etapa CAPA em baixa concentração de oxigênio (5%) e na etapa IVM em concentração de oxigênio no ar (20%); todas as duas etapas combinam 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.
  • Grupo 2A: COC será cultivado na etapa CAPA em baixa concentração de oxigênio (5%) por 24 horas e 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.
  • Grupo 2B: Os COCs serão cultivados na etapa CAPA em baixa concentração de oxigênio (5%) por 24 horas e na etapa IVM em concentração de oxigênio no ar (20%) por 30 horas; todas as duas etapas combinam 6% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius.

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Taxa de maturação
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
A taxa de maturação oocitária foi geralmente definida pelo número de oócitos MII dividido pelo número total de COCs
Dois dias após a retirada do oócito

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Modo de entrega
Prazo: No nascimento
Parto vaginal, cesariana (eletivo, suspeita de sofrimento fetal, trabalho de parto não progressivo)
No nascimento
Número total de recuperação de oócitos
Prazo: No dia da retirada do oócito
Contando o número de oócitos recuperados
No dia da retirada do oócito
Número de pacientes sem ovócitos recuperados
Prazo: No dia da retirada do oócito
Contando o número de pacientes sem oócitos recuperados
No dia da retirada do oócito
Número de oócitos MII
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
A maturação oocitária foi geralmente definida pelo número de oócitos MII
Dois dias após a retirada do oócito
Número de oócitos GV
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
Contando o número de oócitos GV
Dois dias após a retirada do oócito
Número de pacientes sem oócito amadurecido
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
Contando o número de pacientes sem ovócitos amadurecidos
Dois dias após a retirada do oócito
Número de oócitos 2PN
Prazo: 16-18 horas após ICSI
Número de zigotos com 2 pronúcleos após ICSI
16-18 horas após ICSI
Taxa de fertilização
Prazo: 16-18 horas após ICSI
Número de oócitos fertilizados / número de oócitos inseminados
16-18 horas após ICSI
Taxa de fertilização anormal
Prazo: 16-18 horas após ICSI
A porcentagem de zigotos com 1,3 ou 4 pronúcleos após ICSI/número de oócitos inseminados
16-18 horas após ICSI
Número de pacientes sem embrião no dia 3
Prazo: Cinco dias após a retirada do oócito
Contando o número de pacientes sem embrião
Cinco dias após a retirada do oócito
Número de embriões do dia 3
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de embriões do dia 3 às 64±2h após ICSI
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões do Dia 3 de boa qualidade
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões de grau 1 e grau 2 no dia 3
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões congelados no dia 3
Prazo: Três dias após ICSI
Contando o número de embriões congelados no dia 3
Três dias após ICSI
Número de blastocistos (dia 5 ou dia 6 embrião)
Prazo: Cinco ou seis dias após ICSI
Contagem do número de blastocistos em 114±2h/140±2h após ICSI
Cinco ou seis dias após ICSI
Número de pacientes sem blastocisto
Prazo: Cinco ou seis dias após ICSI
Contando o número de pacientes sem blastocisto
Cinco ou seis dias após ICSI
Número de blastocistos de boa qualidade
Prazo: Cinco dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de blastocistos de grau 1 e grau 2
Cinco dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de blastocistos congelados
Prazo: Três dias após ICSI
Contando o número de blastocistos congelados
Três dias após ICSI
Número de embriões transferidos
Prazo: No dia da transferência do embrião
Total de embriões transferidos
No dia da transferência do embrião
Qualidade dos embriões transferidos (Grau 1, Grau 2, Grau 3)
Prazo: No dia da transferência do embrião
A qualidade do embrião transferido é classificada de acordo com Alpha Scientists in Reproductive Medicine e ESHRE Special Interest Group of Embryology, 2011; D. Gardner, 1999; DK Gardner & Schoolcrati, 1999
No dia da transferência do embrião
Taxa de teste de gravidez positivo
Prazo: 11 dias após o dia da transferência do blastocisto e 13 dias após o dia da transferência do embrião no dia 3
Teste de gravidez positivo definido como nível sérico de gonadotrofina coriônica humana superior a 25 mUI/mL
11 dias após o dia da transferência do blastocisto e 13 dias após o dia da transferência do embrião no dia 3
Taxa de implantação
Prazo: Às 3 semanas após a transferência do embrião, após a conclusão da transferência do embrião
A taxa de implantação é explicada como o número de sacos gestacionais por número de embriões transferidos.
Às 3 semanas após a transferência do embrião, após a conclusão da transferência do embrião
Taxa clínica de gravidez
Prazo: 5 semanas após a transferência do embrião
Diagnosticada pela visualização ultrassonográfica de um ou mais sacos gestacionais ou sinais clínicos definitivos de gravidez 6 semanas ou mais após o início da última menstruação. Além da gravidez intrauterina, inclui uma gravidez ectópica clinicamente documentada
5 semanas após a transferência do embrião
Taxa de gravidez ectópica
Prazo: 3 semanas após a transferência do embrião
Uma gravidez fora da cavidade uterina, diagnosticada por ultrassonografia, visualização cirúrgica ou histopatologia
3 semanas após a transferência do embrião
Taxa de gravidez contínua
Prazo: 10 semanas após a transferência do embrião
Gravidez em curso é definida como gravidez com frequência cardíaca detectável com 12 semanas de gestação ou mais.
10 semanas após a transferência do embrião
Taxa de aborto espontâneo <12 semanas (aborto espontâneo precoce)
Prazo: 2 a 10 semanas após a transferência do embrião
A perda espontânea da gravidez até às 12 semanas de gestação é referida como uma gravidez precoce.
2 a 10 semanas após a transferência do embrião
Taxa de aborto espontâneo <22 semanas (aborto espontâneo tardio)
Prazo: Em >10 a 20 semanas após a transferência
A perda espontânea da gravidez entre 12 a 22 semanas é denominada aborto espontâneo tardio
Em >10 a 20 semanas após a transferência
Taxa de natalidade viva
Prazo: Com 22 semanas de gestação
O nascimento vivo é definido como a expulsão ou extração completa de uma mulher de um produto da fertilização, após 22 semanas completas de idade gestacional; que, após essa separação, respire ou apresente qualquer outra evidência de vida, como batimentos cardíacos, pulsação do cordão umbilical ou movimento definido dos músculos voluntários, independentemente de o cordão umbilical ter sido cortado ou a placenta estar inserida. Um peso ao nascer de 500 gramas ou mais pode ser usado se a idade gestacional for desconhecida. Gêmeos contados como um nascido vivo.
Com 22 semanas de gestação
Taxa de gravidez múltipla
Prazo: 4 semanas após a transferência do embrião
Definido como a presença de mais de um saco gestacional na ultrassonografia no início da gravidez (6-9 semanas de gestação)
4 semanas após a transferência do embrião
Taxa de entrega múltipla
Prazo: Com 22 semanas de gestação
Definida como a expulsão ou extração completa de mais de um feto de uma mulher, após 22 semanas completas de idade gestacional, independentemente de ser nascido vivo ou natimorto
Com 22 semanas de gestação
Idade gestacional ao nascer
Prazo: No nascimento
Calculado pela idade gestacional de todos os nascidos vivos
No nascimento
Peso ao nascer
Prazo: Na hora da entrega
em gramas; de solteiros e gêmeos
Na hora da entrega
Taxa de peso ao nascer muito baixo
Prazo: No nascimento
Peso ao nascer inferior a 1.500 g
No nascimento
Taxa de baixo peso ao nascer
Prazo: No nascimento
Peso ao nascer inferior a 2.500 g
No nascimento
Alta taxa de peso ao nascer
Prazo: No nascimento
Implica crescimento além do peso absoluto ao nascer, historicamente 4.000 g ou 4.500 g, independentemente da idade gestacional
No nascimento
Taxa de peso ao nascer muito elevada
Prazo: No nascimento
Peso ao nascer superior a 4.500 g para mulheres com diabetes e limite de 5.000 g para mulheres sem diabetes
No nascimento
Taxa pequena para a idade gestacional
Prazo: No nascimento
Grande para a idade gestacional foi definido como peso ao nascer abaixo do percentil 10
No nascimento
Grande para a taxa de idade gestacional
Prazo: No nascimento
Grande para a idade gestacional foi definido como peso ao nascer acima do percentil 90
No nascimento
Taxa de hipertensão na gravidez
Prazo: Com 20 semanas de gestação ou mais
Compreendendo hipertensão induzida pela gravidez (PIH), pré-eclâmpsia (PET), eclâmpsia e síndrome HELLP.
Com 20 semanas de gestação ou mais
Taxa de diabetes mellitus gestacional
Prazo: De 24 a 28 semanas de gestação

Diagnosticado de acordo com a versão mais recente das diretrizes da ADA. um TOTG de 75 g, com medição de glicose plasmática quando a paciente está em jejum e em 1 e 2 horas, entre 24 e 28 semanas de gestação em mulheres sem diagnóstico prévio de diabetes.

  • Jejum: 92 mg/dL (5,1 mmol/L)
  • 1h: 180 mg/dL (10,0 mmol/L)
  • 2 h: 153 mg/dL (8,5 mmol/L)
De 24 a 28 semanas de gestação
Ainda taxa de natalidade
Prazo: Após 20 semanas completas de idade gestacional
definida como a morte de um feto antes da expulsão ou extração completa de sua mãe após 20 semanas completas de idade gestacional. A morte é determinada pelo fato de que, após tal separação, o feto não respira ou apresenta qualquer outra evidência de vida, como batimentos cardíacos, pulsação do cordão umbilical ou movimento definido dos músculos voluntários. Inclui mortes ocorridas durante o trabalho de parto
Após 20 semanas completas de idade gestacional
Taxa de natalidade prematura
Prazo: No dia da entrega
Definido como parto em <24, <28, <32, <37 semanas completas. Nascimento que ocorre após 22 semanas e antes de 37 semanas completas de idade gestacional.
No dia da entrega
Taxa de hemorragia pré-parto
Prazo: No nascimento
Definido como sangramento de ou para o trato genital, ocorrendo a partir da 24ª semana de gravidez e antes do nascimento do bebê.
No nascimento
Taxa de principais anomalias congênitas
Prazo: No nascimento
Anomalias estruturais, funcionais e genéticas que ocorrem durante a gravidez e são identificadas no período pré-natal, no nascimento ou mais tarde na vida e requerem reparo cirúrgico de um defeito, ou são visualmente evidentes, ou ameaçam a vida, ou causam a morte. Qualquer anomalia congênita será incluída conforme definição seguida de anomalias congênitas na Vigilância de Anomalias Congênitas pela Divisão de Defeitos Congênitos e Deficiências de Desenvolvimento, NCBDDD, Centros de Controle e Prevenção de Doenças (2020).
No nascimento
Taxa de mortalidade neonatal
Prazo: entre oito e 28 dias após o parto
Mortalidade neonatal definida como a morte de um bebê nascido vivo até 28 dias após o nascimento. Esta pode ser dividida em mortalidade neonatal precoce, se a morte ocorrer nos primeiros sete dias após o nascimento, e neonatal tardia, se a morte ocorrer entre oito e 28 dias após o parto.
entre oito e 28 dias após o parto
Taxa de admissão na UTIN
Prazo: No nascimento
Contagem do número de bebês internados em unidade de terapia intensiva neonatal
No nascimento
Motivo da internação na UTIN
Prazo: No nascimento
Desconforto respiratório, hemorragia intraventricular, enterocolite necrosante, sepse
No nascimento

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Patrocinador

Investigadores

  • Investigador principal: Lan N Vuong, MD, PhD, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publicações e links úteis

A pessoa responsável por inserir informações sobre o estudo fornece voluntariamente essas publicações. Estes podem ser sobre qualquer coisa relacionada ao estudo.

Publicações Gerais

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (Real)

13 de maio de 2024

Conclusão Primária (Real)

11 de julho de 2024

Conclusão do estudo (Real)

1 de junho de 2025

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

26 de março de 2024

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

10 de abril de 2024

Primeira postagem (Real)

16 de abril de 2024

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (Real)

12 de junho de 2025

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

9 de junho de 2025

Última verificação

1 de junho de 2025

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Outros números de identificação do estudo

  • 03/24/DD-BVMD

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

produto fabricado e exportado dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

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