- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT06367985
Coltura CAPA-IVM con bassa tensione di ossigeno
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
La maturazione in vitro di capacitazione (CAPA-IVM) è stata recentemente avanzata nella coltura di ovociti dallo stadio della vescicola germinale (GV). Questo approccio è una versione modificata della fecondazione in vitro convenzionale (IVF) e dell'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi (ICSI), a seguito di una stimolazione lieve o senza stimolazione ovarica controllata. Nello specifico, l'IVM può essere indicata per le pazienti con diagnosi di sindrome dell'ovaio policistico (PCOS), con un numero maggiore di follicoli secondari (che costituiscono quasi il 15% delle pazienti totali) e per trattare una serie di pazienti a rischio di iperstimolazione ovarica, tromboembolia venosa o torsione. Inoltre, CAPA-IVM aiuta a ridurre i tempi di trattamento, è meno costoso e migliora la comodità del paziente senza dover effettuare molteplici esami di follow-up. Il tasso di nati vivi dopo il primo trasferimento di embrioni nel gruppo CAPA-IVM è stato del 35,2%, che non differiva in modo statisticamente significativo dal gruppo IVF pari al 43,2% (differenza di rischio -8,1%; intervallo di confidenza al 95% da -16,6% a 0,5% ). Tuttavia, il numero di embrioni di alta qualità in ciascun ciclo e il tasso cumulativo di gravidanza clinica nel CAPA-IVM erano ancora inferiori rispetto al cIVF.
Inoltre, dovrebbero essere prese in considerazione ulteriori indagini a causa della mancanza di prove di alta qualità di rapporti simultanei. Pertanto, è essenziale migliorare le condizioni di maturazione degli ovociti nel CAPA-IVM per raccogliere il numero ottimale di ovociti e la massima possibilità di sviluppo dell'embrione. Molti studi condotti sia su modelli animali che umani hanno dimostrato che l’efficacia di CAPA-IVM dipende da vari fattori. Tra questi, le condizioni ambientali della coltura come la concentrazione di ossigeno (O2) svolgono un ruolo cruciale nella produzione di ovociti maturi sani. L'O2 è un componente fisico e chimico vitale delle tube di Falloppio, dell'utero e del follicolo ovarico, è strettamente correlato all'attività metabolica, alla maturazione degli ovociti e allo sviluppo iniziale dell'embrione. Ricerche recenti hanno suggerito che la concentrazione di O2 può regolare significativamente la maturazione degli ovociti e lo sviluppo iniziale dell'embrione attraverso il fattore inducibile dall'ipossia (HIF). Non è stato raggiunto un consenso sull'indice di concentrazione di O2 nell'ambiente di coltura IVM. I sistemi di coltura incorporati negli ovociti sono stati comunemente utilizzati in due concentrazioni di O2, 5% e 20% in tutto il mondo. Nel corpo umano, i complessi cumulo-ovociti (COC) maturano in condizioni con basse concentrazioni di O2 che vanno dal 2% al 9%.
Al contrario, i COC sono esposti a una concentrazione atmosferica di O2 del 20% durante la manipolazione e la coltura dell'IVM. Sebbene la concentrazione del 5% imiti l'ambiente più appropriato nelle tube di Falloppio e nell'utero, la concentrazione di O2 al 20% è ampiamente applicata nelle tecniche IVM. L'utilizzo di alte concentrazioni facilita una migliore progressione dei processi di differenziazione e aumenta il tasso di maturazione degli ovociti. Tuttavia, alcuni quadri di riferimento hanno indicato che una concentrazione di O2 al 20% può comportare un rischio di stress ossidativo reattivo (ROS), portando a uno squilibrio nel rapporto tra pro-ossidanti e antiossidanti, con conseguente danno cellulare. Inoltre, l'analisi della respirazione in tempo reale degli ovociti coltivati al 5% di O2 è simile agli ovociti sviluppati in vivo ma ha indotto l'attività cellulare e il consumo di ossigeno al 20% di O2. L'impatto della concentrazione atmosferica di O2 (20%) e della bassa concentrazione di O2 (5%) durante la coltura CAPA-IVM nei topi ha dimostrato nello studio della Vrije Universiteit Brussel (VUB) - Belgio che la capacità respiratoria dei COC coltivati al 5% di O2 era relativamente simili ai COC che si sviluppano e maturano in vivo.
Tuttavia, i COC coltivati al 20% di O2 hanno aumentato notevolmente l’attività respiratoria e il consumo di ossigeno. Lo studio ha osservato che la coltura pre-IVM dei COC al 20% di O2 causava interruzioni dello sviluppo. Inoltre, il risultato era sfavorevole se i COC di topo venivano coltivati nella fase IVM con il 5% di O2. Sulla base di queste analisi, i ricercatori hanno ipotizzato che una concentrazione di O2 al 5% fosse la condizione di coltura ottimale per la fase pre-IVM, mentre una concentrazione di O2 al 20% fosse più rilevante per la fase di coltura IVM. Combinando questi risultati con i risultati del VUB e le caratteristiche del processo di differenziazione negli ovociti CAPA-IVM, questo studio è diviso in due gruppi principali, tra cui 5% pre-IVM e 20% IVM contro 20% pre-IVM e IVM) e dimostra se questa ipotesi dovrebbe essere applicata CAPA-IVM nell'uomo. Il miglioramento del sistema di coltura CAPA-IVM porta a una migliore efficienza del trattamento di questa tecnica e offre vari vantaggi per i pazienti sottoposti a tecnologia di riproduzione assistita.
Procedura di studio:
Screening per l'ammissibilità e la randomizzazione
- Questo studio sarà condotto presso il My Duc Hospital, Ho Chi Minh City, Vietnam.
- Alle donne potenzialmente idonee verranno fornite informazioni sulla sperimentazione al momento dell'indicazione del trattamento IVM.
- Lo screening per l'idoneità verrà eseguito il giorno della prima visita quando è indicato il trattamento IVM.
- Ai pazienti verranno fornite informazioni relative allo studio insieme ai documenti di consenso informato. I moduli di consenso informato firmati saranno ottenuti dai ricercatori da tutte le donne prima dell'arruolamento.
Gli ovociti verranno divisi in 2 gruppi:
Gruppo 1 (comprende 2 sottogruppi: 1A e 1B): Concentrazione di ossigeno nell'aria Cultura CAPA-IVM T = Numero totale di ovociti dopo la sala operatoria e ci sono due sottogruppi.
Il numero di ovociti è suddiviso come segue:
Se T è un numero pari:
- Numero di ovociti nel gruppo 1A: un ovocita.
- Numero di ovociti nel Gruppo 1B: T1B = (T-2)/2.
Se T è un numero dispari:
- Numero di ovociti nel gruppo 1A: un ovocita.
- Numero di ovociti nel Gruppo 1B: T1B = ([T-1]-2)/2. Un ovocita rimanente della prima paziente verrà assegnato al gruppo 1B e il resto della paziente successiva verrà assegnato al gruppo 2B. Continuando a farlo in sequenza per il resto successivo.
Gruppo 2 (comprende 2 sottogruppi: 2A e 2B): Coltura CAPA-IVM a bassa concentrazione di ossigeno T = Numero totale di ovociti dopo la sala operatoria e ci sono due sottogruppi.
Il numero di ovociti è suddiviso come segue:
Se T è un numero pari:
- Numero di ovociti nel gruppo 2A: un ovocita.
- Numero di ovociti nel Gruppo 2B: T2B = (T-2)/2.
Se T è un numero dispari:
- Numero di ovociti nel gruppo 2A: un ovocita.
- Numero di ovociti nel Gruppo 2B: T2B = ([T-1]-2)/2. Un ovocita rimanente della prima paziente verrà assegnato al gruppo 1B e il resto della paziente successiva verrà assegnato al gruppo 2B. Continuando a farlo in sequenza per il resto successivo.
Gruppo 1A, 2A: Raccolta dopo capacitazione: ovocita e cellula del cumulo.
Gruppo 1B, 2B: Raccolta dopo la capacitazione: mezzi esauriti, pozzetto vuoto. Raccolta dopo la maturazione: mezzi esauriti, cella cumuliforme, pozzetto vuoto.
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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-
-
Ho Chi Minh City, Vietnam
- My Duc Hospital
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- 18-42 anni
- Diagnosi di sindrome dell'ovaio policistico secondo i criteri di Rotterdam (2003)
- Avere un'indicazione per il trattamento CAPA-IVM
- Avere almeno 20 follicoli il giorno del prelievo degli ovociti
- Accettare il trasferimento di embrioni congelati
- Accettare di partecipare al processo
Criteri di esclusione:
- Cicli con donazione di ovociti, Test Genetici Preimpianto (PGT)
- Coppie con grave fattore maschile (concentrazione di spermatozoi <5 milioni/ml, motilità <10%), recupero chirurgico degli spermatozoi
- Anamnesi precedente di ovociti immaturi inspiegabili dopo il trattamento di fecondazione in vitro
- Anomalie uterine
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Non randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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Sperimentale: Concentrazione di ossigeno nell'aria Coltura CAPA-IVM
La metà dei COC verrà coltivata nella fase CAPA e nella fase IVM a 37 gradi Celsius in concentrazione di ossigeno nell'aria (20%) e 6% di anidride carbonica.
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Comparatore attivo: Coltura CAPA-IVM a bassa concentrazione di ossigeno
La metà dei COC verranno coltivati nella fase CAPA a una bassa concentrazione di ossigeno (5%) e nella fase IVM a una concentrazione di ossigeno nell'aria (20%); tutti e due i passaggi combinano il 6% di anidride carbonica a 37 gradi Celsius.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Tasso di maturazione
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Il tasso di maturazione degli ovociti era solitamente definito dal numero di ovociti MII diviso per il numero totale di COC
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Modalità di spedizione
Lasso di tempo: Alla nascita
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Parto vaginale, taglio cesareo (elettivo, sospetto di sofferenza fetale, travaglio non progressivo)
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Alla nascita
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Numero totale di ovociti prelevati
Lasso di tempo: Il giorno del prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di ovociti recuperati
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Il giorno del prelievo degli ovociti
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Numero di pazienti senza ovociti recuperati
Lasso di tempo: Il giorno del prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di pazienti senza ovociti recuperati
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Il giorno del prelievo degli ovociti
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Numero di ovociti MII
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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La maturazione degli ovociti era solitamente definita dal numero di ovociti MII
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di ovociti GV
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di ovociti GV
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di pazienti senza ovociti maturi
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di pazienti senza ovociti maturi
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di ovociti 2PN
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'ICSI
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Numero di zigoti con 2 pronuclei dopo ICSI
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16-18 ore dopo l'ICSI
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Tasso di fecondazione
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'ICSI
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Numero di ovociti fecondati/numero di ovociti inseminati
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16-18 ore dopo l'ICSI
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Tasso di fecondazione anormale
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'ICSI
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La percentuale di zigoti con 1,3 o 4 pronuclei dopo ICSI/numero di ovociti inseminati
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16-18 ore dopo l'ICSI
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Numero di pazienti senza embrione al terzo giorno
Lasso di tempo: Cinque giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di pazienti senza embrione
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Cinque giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di embrioni al terzo giorno
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di embrioni del terzo giorno a 64±2 ore dall'ICSI
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Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di embrioni del terzo giorno di buona qualità
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di embrioni di grado 1 e grado 2 al terzo giorno
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Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di embrioni congelati al terzo giorno
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'ICSI
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Conteggio del numero di embrioni congelati al terzo giorno
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Tre giorni dopo l'ICSI
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Numero di blastocisti (embrione del giorno 5 o del giorno 6)
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'ICSI
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Conteggio del numero di blastocisti a 114±2h/140±2h dopo ICSI
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Cinque o sei giorni dopo l'ICSI
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Numero di pazienti senza blastocisti
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'ICSI
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Conteggio del numero di pazienti senza blastocisti
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Cinque o sei giorni dopo l'ICSI
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Numero di blastocisti di buona qualità
Lasso di tempo: Cinque giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di blastocisti di grado 1 e grado 2
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Cinque giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di blastocisti congelate
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'ICSI
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Contare il numero di blastocisti congelate
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Tre giorni dopo l'ICSI
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Numero di embrioni trasferiti
Lasso di tempo: Il giorno del trasferimento degli embrioni
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Embrioni totali trasferiti
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Il giorno del trasferimento degli embrioni
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Qualità degli embrioni trasferiti (Grado 1, Grado 2, Grado 3)
Lasso di tempo: Il giorno del trasferimento degli embrioni
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La qualità dell'embrione trasferito è classificata secondo Alpha Scientists in Reproductive Medicine e ESHRE Special Interest Group of Embryology, 2011; D. Gardner, 1999; DK Gardner e Schoolcrati, 1999
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Il giorno del trasferimento degli embrioni
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Tasso di test di gravidanza positivo
Lasso di tempo: 11 giorni dopo il giorno del trasferimento della blastocisti e 13 giorni dopo il giorno del trasferimento dell'embrione del terzo giorno
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Test di gravidanza positivo definito come livello sierico di gonadotropina corionica umana superiore a 25 mIU/mL
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11 giorni dopo il giorno del trasferimento della blastocisti e 13 giorni dopo il giorno del trasferimento dell'embrione del terzo giorno
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Tasso di impianto
Lasso di tempo: A 3 settimane dal trasferimento dell'embrione dopo il completamento del trasferimento dell'embrione
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Il tasso di impianto è spiegato come il numero di sacchi gestazionali per numero di embrioni trasferiti.
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A 3 settimane dal trasferimento dell'embrione dopo il completamento del trasferimento dell'embrione
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Tasso di gravidanza clinica
Lasso di tempo: 5 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Diagnosi mediante visualizzazione ecografica di uno o più sacchi gestazionali o segni clinici definitivi di gravidanza a 6 settimane o più dopo l'inizio dell'ultimo periodo mestruale.
Oltre alla gravidanza intrauterina, comprende una gravidanza ectopica clinicamente documentata
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5 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso di gravidanza ectopica
Lasso di tempo: 3 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Una gravidanza al di fuori della cavità uterina, diagnosticata mediante ecografia, visualizzazione chirurgica o istopatologia
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3 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso di gravidanza in corso
Lasso di tempo: 10 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Per gravidanza in corso si intende una gravidanza con frequenza cardiaca rilevabile alla 12a settimana di gestazione o oltre.
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10 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso di aborto <12 settimane (aborto precoce)
Lasso di tempo: 2-10 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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La perdita spontanea della gravidanza fino alla 12a settimana di gestazione viene definita precoce
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2-10 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso di aborto <22 settimane (aborto tardivo)
Lasso di tempo: A >10-20 settimane dal trasferimento
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La perdita spontanea della gravidanza tra le 12 e le 22 settimane è definita aborto spontaneo
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A >10-20 settimane dal trasferimento
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Tasso di natalità dal vivo
Lasso di tempo: A 22 settimane di gestazione
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Si definisce nascita viva la completa espulsione o estrazione da una donna di un prodotto della fecondazione, dopo 22 settimane compiute di gestazione; che, dopo tale separazione, respira o mostra qualsiasi altro segno di vita, come battito cardiaco, pulsazione del cordone ombelicale o movimento definito dei muscoli volontari, indipendentemente dal fatto che il cordone ombelicale sia stato tagliato o che la placenta sia attaccata.
Se l'età gestazionale non è nota, è possibile utilizzare un peso alla nascita pari o superiore a 500 grammi.
I gemelli contavano come un nato vivo.
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A 22 settimane di gestazione
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Tasso di gravidanze multiple
Lasso di tempo: 4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Definita come la presenza di più di un sacco gestazionale all'ecografia all'inizio della gravidanza (6-9 settimane di gestazione)
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4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso di consegna multipla
Lasso di tempo: Alla 22a settimana di gestazione
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Definita come la completa espulsione o estrazione da una donna di più di un feto, dopo 22 settimane complete di età gestazionale, indipendentemente dal fatto che si tratti di un nato vivo o di un feto morto
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Alla 22a settimana di gestazione
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Età gestazionale alla nascita
Lasso di tempo: Alla nascita
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Calcolato per età gestazionale di tutti i nati vivi
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Alla nascita
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Peso alla nascita
Lasso di tempo: Al momento della consegna
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in grammi; di single e gemelli
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Al momento della consegna
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Tasso di peso alla nascita molto basso
Lasso di tempo: Alla nascita
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Peso alla nascita inferiore a 1.500 g
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Alla nascita
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Tasso di basso peso alla nascita
Lasso di tempo: Alla nascita
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Peso alla nascita inferiore a 2.500 g
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Alla nascita
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Alto tasso di peso alla nascita
Lasso di tempo: Alla nascita
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Implica una crescita oltre il peso assoluto alla nascita, storicamente 4.000 go 4.500 g, indipendentemente dall'età gestazionale
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Alla nascita
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Tasso di peso alla nascita molto elevato
Lasso di tempo: Alla nascita
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Peso alla nascita superiore a 4.500 g per le donne con diabete e soglia di 5.000 g per le donne senza diabete
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Alla nascita
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Piccolo per il tasso di età gestazionale
Lasso di tempo: Alla nascita
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Grande per l'età gestazionale è stato definito come un peso alla nascita inferiore al 10° percentile
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Alla nascita
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Grande per il tasso di età gestazionale
Lasso di tempo: Alla nascita
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Grande per l'età gestazionale è stato definito come un peso alla nascita superiore al 90° percentile
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Alla nascita
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Ipertensione nel tasso di gravidanza
Lasso di tempo: A 20 settimane di gestazione o oltre
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Comprende l'ipertensione indotta dalla gravidanza (PIH), la preeclampsia (PET), l'eclampsia e la sindrome HELLP.
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A 20 settimane di gestazione o oltre
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Tasso di diabete mellito gestazionale
Lasso di tempo: Tra la 24a e la 28a settimana di gestazione
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Diagnosticato secondo l'ultima versione delle linee guida ADA. un OGTT da 75 g, con misurazione della glicemia a digiuno e a 1 e 2 ore, a 24-28 settimane di gestazione in donne a cui non era stato precedentemente diagnosticato il diabete.
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Tra la 24a e la 28a settimana di gestazione
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Ancora tasso di natalità
Lasso di tempo: Dopo 20 settimane complete di età gestazionale
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definita come la morte di un feto prima della completa espulsione o estrazione dalla madre dopo 20 settimane complete di gestazione.
La morte è determinata dal fatto che, dopo tale separazione, il feto non respira né mostra nessun altro segno di vita, come battito cardiaco, pulsazione del cordone ombelicale o movimento definito dei muscoli volontari.
Include i decessi avvenuti durante il travaglio
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Dopo 20 settimane complete di età gestazionale
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Tasso di natalità prematura
Lasso di tempo: Il giorno della consegna
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Definita come consegna a <24, <28, <32, <37 settimane completate.
Una nascita che avviene dopo le 22 settimane e prima delle 37 settimane complete di età gestazionale.
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Il giorno della consegna
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Tasso di emorragia antepartum
Lasso di tempo: Alla nascita
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Definito come sanguinamento da o nel tratto genitale, che si verifica a partire dalla 24a settimana di gravidanza e prima della nascita del bambino.
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Alla nascita
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Tasso di anomalie congenite maggiori
Lasso di tempo: Alla nascita
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Anomalie strutturali, funzionali e genetiche che si verificano durante la gravidanza e vengono identificate prima della nascita, alla nascita o più tardi nella vita e richiedono la riparazione chirurgica di un difetto o sono visivamente evidenti o mettono in pericolo la vita o causano la morte.
Qualsiasi anomalia congenita sarà inclusa come segue definizione di anomalie congenite in Surveillance of Congenital Anomalies by Division of Birth Defects and Development Disabilities, NCBDDD, Centers for Disease Control and Prevention (2020).
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Alla nascita
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Tasso di mortalità neonatale
Lasso di tempo: tra otto e 28 giorni dopo il parto
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Mortalità neonatale definita come la morte di un bambino nato vivo entro 28 giorni dalla nascita.
Questa può essere suddivisa in mortalità neonatale precoce, se la morte avviene nei primi sette giorni dopo la nascita, e neonatale tardiva, se la morte avviene tra otto e 28 giorni dopo il parto.
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tra otto e 28 giorni dopo il parto
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Tasso di ricovero in terapia intensiva neonatale
Lasso di tempo: Alla nascita
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Conteggio dei neonati ricoverati nel reparto di terapia intensiva neonatale
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Alla nascita
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Motivo del ricovero in terapia intensiva neonatale
Lasso di tempo: Alla nascita
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Distress respiratorio, emorragia intraventricolare, enterocolite necrotizzante, sepsi
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Alla nascita
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Collaboratori
Investigatori
- Investigatore principale: Lan N Vuong, MD, PhD, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Fischer B, Bavister BD. Oxygen tension in the oviduct and uterus of rhesus monkeys, hamsters and rabbits. J Reprod Fertil. 1993 Nov;99(2):673-9. doi: 10.1530/jrf.0.0990673.
- Paulson RJ, Fauser BCJM, Vuong LTN, Doody K. Can we modify assisted reproductive technology practice to broaden reproductive care access? Fertil Steril. 2016 May;105(5):1138-1143. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.03.013. Epub 2016 Apr 4.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Zhao X, Liu X, Feng Y, Shi D, Lu F. Regulation of hypoxia-inducible factor 1alpha by optimal oxygen concentration enhances oocyte maturation and early embryonic development in buffalo. Theriogenology. 2023 Aug;206:50-59. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.05.006. Epub 2023 May 8.
- Bahrami M, Cottee PA. Culture conditions for in vitro maturation of oocytes - A review. Reproduction and Breeding. 2022 Jun 1;2(2):31-6
- Increased susceptibility to oxidative stress as a proximate cost of reproduction - Alonso-Alvarez - 2004 - Ecology Letters - Wiley Online Library [Internet]. [cited 2023 Sep 19]. Available from: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1461-0248.2004.00594.x
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
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