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Cultivo CAPA-IVM con baja tensión de oxígeno

9 de junio de 2025 actualizado por: Mỹ Đức Hospital
La maduración in vitro de capacitación (CAPA-IVM) ha avanzado recientemente en el cultivo de ovocitos desde la etapa de vesícula germinal (GV) después de una estimulación ovárica leve o no controlada. Investigaciones recientes sugirieron que la concentración de O2 puede regular significativamente la maduración de los ovocitos y el desarrollo embrionario temprano a través del factor inducible por hipoxia (HIF). No obstante, ha sido un desafío crear las condiciones ambientales de cultivo para abordar el número óptimo de ovocitos y la mayor posibilidad de desarrollo embrionario, ya que no se ha alcanzado un consenso sobre el índice de concentración de oxígeno (O2) en el entorno de cultivo IVM. Con base en los resultados de la concentración atmosférica de O2 (20%) y la baja concentración de O2 (5%) durante el cultivo CAPA-IVM en ratones, se ha planteado la hipótesis de que un 5% de O2 era la condición de cultivo óptima para el paso previo a la IVM. Un 20% de O2 fue más adecuado para el paso de cultivo IVM. Por lo tanto, este estudio está diseñado para mejorar el sistema de cultivo CAPA-IVM, mejorando la eficiencia del tratamiento y brindando diversos beneficios a los pacientes sometidos a tecnología de reproducción asistida.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

La maduración in vitro por capacitación (CAPA-IVM) ha avanzado recientemente en el cultivo de ovocitos desde la etapa de vesícula germinal (GV). Este enfoque es una versión modificada de la fertilización in vitro (FIV) convencional y la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI), después de una estimulación leve o sin que se haya producido una estimulación ovárica controlada. Específicamente, la MIV puede estar indicada para pacientes diagnosticadas con síndrome de ovario poliquístico (SOP), un mayor número de folículos secundarios (que constituyen casi el 15% del total de pacientes) y tratar una variedad de pacientes con riesgos de hiperestimulación ovárica, tromboembolismo venoso o enfermedad ovárica. torsión. Además, CAPA-IVM ayuda a acortar el tiempo de tratamiento, es menos costoso y mejora la comodidad del paciente sin múltiples exámenes de seguimiento. La tasa de nacidos vivos después de la primera transferencia de embriones en el grupo CAPA-IVM fue del 35,2 %, lo que no fue estadísticamente diferente del grupo de FIV con 43,2 % (diferencia de riesgo -8,1 %; intervalo de confianza del 95 % de -16,6 % a 0,5 % ). Sin embargo, la cantidad de embriones de alta calidad en cada ciclo y la tasa acumulada de embarazo clínico en CAPA-IVM fueron aún más bajas que en cIVF.

Además, se debe considerar realizar más investigaciones debido a la falta de evidencia de alta calidad de informes simultáneos. Por lo tanto, es esencial mejorar las condiciones de maduración de los ovocitos en CAPA-IVM para recolectar el número óptimo de ovocitos y la mayor posibilidad de desarrollo embrionario. Muchos estudios realizados en modelos animales y humanos han demostrado que la eficacia de CAPA-IVM depende de varios factores. Entre ellas, las condiciones ambientales de cultivo, como la concentración de oxígeno (O2), desempeñan un papel crucial en la producción de ovocitos maduros sanos. El O2 es un componente físico y químico vital de las trompas de Falopio, el útero y el folículo ovárico, está estrechamente relacionado con la actividad metabólica, la maduración de los ovocitos y el desarrollo embrionario temprano. Investigaciones recientes sugirieron que la concentración de O2 puede regular significativamente la maduración de los ovocitos y el desarrollo embrionario temprano a través del factor inducible por hipoxia (HIF). No se ha llegado a un consenso sobre el índice de concentración de O2 en el entorno de cultivo MIV. Los sistemas de cultivo incluidos en ovocitos se han utilizado comúnmente en dos concentraciones de O2, 5% y 20% en todo el mundo. En el cuerpo humano, los complejos cúmulo-ovocitos (COC) maduran en condiciones con bajas concentraciones de O2 que oscilan entre el 2% y el 9%.

Por el contrario, los AOC están expuestos a una concentración atmosférica de O2 del 20% durante la manipulación y el cultivo de IVM. Aunque la concentración del 5% imita el entorno más adecuado en las trompas de Falopio y el útero, el O2 al 20% se aplica ampliamente en las técnicas de MIV. El uso de altas concentraciones facilita una mejor progresión de los procesos de diferenciación y aumenta la tasa de maduración de los ovocitos. Sin embargo, algunos marcos referenciales indicaron que un 20% de O2 puede representar un riesgo de estrés oxidativo reactivo (ROS), lo que lleva a un desequilibrio en la proporción de prooxidantes y antioxidantes, lo que resulta en daño celular. Además, el análisis de la respiración en tiempo real de ovocitos cultivados con 5% de O2 es similar al de los ovocitos desarrollados in vivo, pero induce actividad celular y consumo de oxígeno con 20% de O2. El impacto de la concentración atmosférica de O2 (20%) y la baja concentración de O2 (5%) durante el cultivo CAPA-IVM en ratones demostró en el estudio de la Vrije Universiteit Brussel (VUB) - Bélgica que la capacidad respiratoria de los AOC cultivados con un 5% de O2 era relativamente similar a los AOC que se desarrollan y maduran in vivo.

No obstante, los AOC cultivados con 20% de O2 aumentaron notablemente la actividad respiratoria y el consumo de oxígeno. El estudio observó que el cultivo de AOC con 20% de O2 antes de la IVM causaba alteraciones en el desarrollo. Además, el resultado fue desfavorable si los AOC de ratón se cultivaban en el paso IVM con 5 % de O2. Con base en estos análisis, los investigadores plantearon la hipótesis de que un 5 % de O2 era la condición de cultivo óptima para el paso previo a la IVM, mientras que un 20 % de O2 era más relevante para el paso de cultivo de IVM. Combinando estos hallazgos con los resultados de VUB y las características del proceso de diferenciación en ovocitos CAPA-IVM, este estudio se divide en dos grupos principales, que incluyen 5% pre-IVM y 20% IVM versus 20% pre-IVM e IVM) y demuestra si Esta hipótesis debería aplicarse CAPA-IVM en humanos. La mejora del sistema de cultivo CAPA-IVM conduce a una mayor eficiencia del tratamiento de esta técnica y proporciona diversos beneficios a los pacientes sometidos a tecnología de reproducción asistida.

Procedimiento de estudio:

Detección de elegibilidad y aleatorización

  • Este ensayo se llevará a cabo en el Hospital My Duc, Ciudad Ho Chi Minh, Vietnam.
  • Las mujeres que sean potencialmente elegibles recibirán información sobre el ensayo en el momento de la indicación del tratamiento con MIV.
  • La evaluación de elegibilidad se realizará el día de la primera visita cuando esté indicado el tratamiento IVM.
  • Los pacientes recibirán información relacionada con el estudio junto con los documentos de consentimiento informado. Los investigadores obtendrán formularios de consentimiento informado firmados de todas las mujeres antes de la inscripción.

Los ovocitos se dividirán en 2 grupos:

Grupo 1 (incluye 2 subgrupos: 1A y 1B): Concentración de oxígeno en el aire Cultivo CAPA-IVM T = Número total de ovocitos después de la operación y hay dos subgrupos.

El número de ovocitos se divide a continuación:

Si T es un número par:

  • Número de ovocitos en el Grupo 1A: Un ovocito.
  • Número de ovocitos en el Grupo 1B: T1B = (T-2)/2.

Si T es un número impar:

  • Número de ovocitos en el Grupo 1A: Un ovocito.
  • Número de ovocitos en el Grupo 1B: T1B = ([T-1]-2)/2. Un ovocito restante del primer paciente se asignará al grupo 1B y el resto del siguiente paciente se asignará al grupo 2B. Continuar haciéndolo secuencialmente durante el siguiente resto.

Grupo 2 (incluye 2 subgrupos: 2A y 2B): cultivo CAPA-MIV de baja concentración de oxígeno T = Número total de ovocitos después de la operación y hay dos subgrupos.

El número de ovocitos se divide a continuación:

Si T es un número par:

  • Número de ovocitos en el Grupo 2A: Un ovocito.
  • Número de ovocitos en el Grupo 2B: T2B = (T-2)/2.

Si T es un número impar:

  • Número de ovocitos en el Grupo 2A: Un ovocito.
  • Número de ovocitos en el Grupo 2B: T2B = ([T-1]-2)/2. Un ovocito restante del primer paciente se asignará al grupo 1B y el resto del siguiente paciente se asignará al grupo 2B. Continuar haciéndolo secuencialmente durante el siguiente resto.

Grupo 1A, 2A: Recolección después de la capacitación: ovocito y célula del cúmulo.

Grupo 1B, 2B: Recolección después de la capacitación: medios gastados, pozo en blanco. Recolección después de la maduración: medio gastado, cúmulo de células, pocillo en blanco.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Actual)

20

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

      • Ho Chi Minh City, Vietnam
        • My Duc Hospital

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

  • Adulto

Acepta Voluntarios Saludables

No

Descripción

Criterios de inclusión:

  • 18-42 años
  • Diagnosticada de síndrome de ovario poliquístico según los criterios de Rotterdam (2003)
  • Tener indicación de tratamiento CAPA-IVM
  • Tener al menos 20 folículos el día de la extracción de ovocitos.
  • Aceptar la transferencia de embriones congelados
  • Aceptar participar en el ensayo.

Criterio de exclusión:

  • Ciclos con donación de ovocitos, Test Genético Preimplantacional (PGT)
  • Parejas con factor masculino severo (concentración de esperma <5 millones/ml, motilidad <10%), recuperación quirúrgica de esperma
  • Historia previa de ovocitos inmaduros inexplicables después del tratamiento de FIV
  • anomalías uterinas

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Tratamiento
  • Asignación: No aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación paralela
  • Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: Concentración de oxígeno en el aire Cultivo CAPA-IVM
La mitad de los AOC se cultivarán en el paso CAPA y en el paso IVM a 37 grados Celsius en una concentración de oxígeno en el aire (20%) y 6% de dióxido de carbono.
  • Grupo 1A: COC se cultivará en el paso CAPA a una concentración de oxígeno en el aire (20%) durante 24 horas y 6% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius.
  • Grupo 1B: los AOC se cultivarán en el paso CAPA a una concentración de oxígeno en el aire (20%) durante 24 horas y en el paso IVM a una concentración de oxígeno en el aire (20%) durante 30 horas; los dos pasos combinan un 6% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius.
Comparador activo: Cultivo CAPA-IVM de baja concentración de oxígeno
La mitad de los AOC se cultivarán en el paso CAPA a una concentración baja de oxígeno (5%) y al paso IVM a una concentración de oxígeno en el aire (20%); los dos pasos combinan un 6% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius.
  • Grupo 2A: COC se cultivará en el paso CAPA a una baja concentración de oxígeno (5%) durante 24 horas y 6% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius.
  • Grupo 2B: los AOC se cultivarán en el paso CAPA a una concentración baja de oxígeno (5%) durante 24 horas y el paso IVM a una concentración de oxígeno en el aire (20%) durante 30 horas; los dos pasos combinan un 6% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius.

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de maduración
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos
La tasa de maduración de los ovocitos generalmente se definió mediante el número de ovocitos MII dividido por el número total de AOC.
Dos días después de la extracción de ovocitos

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Modo de entrega
Periodo de tiempo: Al nacer
Parto vaginal, cesárea (electiva, sospecha de sufrimiento fetal, trabajo de parto no progresivo)
Al nacer
Número total de ovocitos recuperados.
Periodo de tiempo: El día de la extracción de ovocitos.
Contando el número de ovocitos recuperados
El día de la extracción de ovocitos.
Número de pacientes sin ovocitos recuperados
Periodo de tiempo: El día de la extracción de ovocitos.
Contando el número de pacientes sin ovocitos recuperados
El día de la extracción de ovocitos.
Número de ovocitos MII
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos
La maduración de los ovocitos generalmente se definió por el número de ovocitos MII.
Dos días después de la extracción de ovocitos
Número de ovocitos GV
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos
Contando el número de ovocitos GV
Dos días después de la extracción de ovocitos
Número de pacientes sin ovocitos maduros
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos
Contando el número de pacientes sin ovocitos maduros
Dos días después de la extracción de ovocitos
Número de ovocitos 2PN
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de ICSI
Número de cigotos con 2 pronúcleos después de ICSI
16-18 horas después de ICSI
Tasa de fertilización
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de ICSI
Número de ovocitos fecundados / número de ovocitos inseminados
16-18 horas después de ICSI
Tasa de fertilización anormal
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de ICSI
El porcentaje de cigotos con 1, 3 o 4 pronúcleos después de ICSI / número de ovocitos inseminados
16-18 horas después de ICSI
Número de pacientes sin embrión del día 3
Periodo de tiempo: Cinco días después de la extracción de ovocitos
Contando el número de pacientes sin embrión
Cinco días después de la extracción de ovocitos
Número de embriones del día 3
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
Contando el número de embriones del día 3 a las 64 ± 2 h después de la ICSI
Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
Número de embriones de día 3 de buena calidad
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
Número de embriones de día 3 de grado 1 y 2
Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
Número de embriones congelados del día 3
Periodo de tiempo: Tres días después de la ICSI
Contando el número de embriones congelados del día 3
Tres días después de la ICSI
Número de blastocisto (embrión del día 5 o del día 6)
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la ICSI
Contando el número de blastocistos a las 114±2h/140±2h después de la ICSI
Cinco o seis días después de la ICSI
Número de pacientes sin blastocisto
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la ICSI
Contando el número de pacientes sin blastocisto
Cinco o seis días después de la ICSI
Número de blastocistos de buena calidad.
Periodo de tiempo: Cinco días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
Número de blastocistos de grado 1 y 2
Cinco días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
Número de blastocistos congelados
Periodo de tiempo: Tres días después de la ICSI
Contando el número de blastocistos congelados
Tres días después de la ICSI
Número de embriones transferidos
Periodo de tiempo: El día de la transferencia de embriones.
Total de embriones transferidos
El día de la transferencia de embriones.
Calidad de los embriones transferidos (Grado 1, Grado 2, Grado 3)
Periodo de tiempo: El día de la transferencia de embriones.
La calidad del embrión transferido se clasifica según Alpha Scientists in Reproductive Medicine y ESHRE Special Interest Group of Embryology, 2011; D. Gardner, 1999; DK Gardner y Schoolcrati, 1999
El día de la transferencia de embriones.
Tasa de pruebas de embarazo positivas
Periodo de tiempo: 11 días después del día de la transferencia de blastocisto y 13 días después del día de la transferencia de embriones del día 3
Prueba de embarazo positiva definida como un nivel sérico de gonadotropina coriónica humana superior a 25 mUI/ml
11 días después del día de la transferencia de blastocisto y 13 días después del día de la transferencia de embriones del día 3
Tasa de implantación
Periodo de tiempo: A las 3 semanas después de la transferencia de embriones después de completar la transferencia de embriones
La tasa de implantación se explica como el número de sacos gestacionales por número de embriones transferidos.
A las 3 semanas después de la transferencia de embriones después de completar la transferencia de embriones
Tasa de embarazo clínico
Periodo de tiempo: 5 semanas después de la transferencia de embriones
Se diagnostica mediante visualización ecográfica de uno o más sacos gestacionales o signos clínicos definitivos de embarazo a las 6 semanas o más del inicio del último período menstrual. Además del embarazo intrauterino, incluye un embarazo ectópico clínicamente documentado.
5 semanas después de la transferencia de embriones
Tasa de embarazo ectópico
Periodo de tiempo: 3 semanas después de la transferencia de embriones
Un embarazo fuera de la cavidad uterina, diagnosticado mediante ecografía, visualización quirúrgica o histopatología.
3 semanas después de la transferencia de embriones
Tasa de embarazo en curso
Periodo de tiempo: 10 semanas después de la transferencia de embriones
El embarazo en curso se define como un embarazo con una frecuencia cardíaca detectable a las 12 semanas de gestación o más.
10 semanas después de la transferencia de embriones
Tasa de aborto espontáneo <12 semanas (aborto espontáneo temprano)
Periodo de tiempo: 2-10 semanas después de la transferencia de embriones
La pérdida espontánea del embarazo hasta las 12 semanas de gestación se denomina pérdida temprana.
2-10 semanas después de la transferencia de embriones
Tasa de aborto espontáneo <22 semanas (aborto espontáneo tardío)
Periodo de tiempo: >10 a 20 semanas después de la transferencia
La pérdida espontánea del embarazo entre las semanas 12 y 22 se denomina aborto espontáneo tardío.
>10 a 20 semanas después de la transferencia
Tasa de nacidos vivos
Periodo de tiempo: A las 22 semanas de gestación
Se define nacimiento vivo como la expulsión o extracción completa de una mujer de un producto de la fecundación, después de 22 semanas completas de edad gestacional; que, después de dicha separación, respire o presente cualquier otro signo de vida, como latidos del corazón, pulsaciones del cordón umbilical o movimientos definidos de los músculos voluntarios, independientemente de que se haya cortado el cordón umbilical o se haya adherido la placenta. Se puede utilizar un peso al nacer de 500 gramos o más si se desconoce la edad gestacional. Los gemelos cuentan como un nacido vivo.
A las 22 semanas de gestación
Tasa de embarazo múltiple
Periodo de tiempo: 4 semanas después de la transferencia de embriones
Definido como la presencia de más de un saco gestacional en la ecografía temprana del embarazo (6-9 semanas de gestación)
4 semanas después de la transferencia de embriones
Tasa de entrega múltiple
Periodo de tiempo: A las 22 semanas de gestación
Definida como la expulsión o extracción completa de una mujer de más de un feto, después de las 22 semanas completas de edad gestacional, independientemente de que se trate de un nacido vivo o de un mortinato.
A las 22 semanas de gestación
Edad gestacional al nacer
Periodo de tiempo: Al nacer
Calculado por edad gestacional de todos los nacidos vivos.
Al nacer
Peso de nacimiento
Periodo de tiempo: En el momento de la entrega
en gramos; de solteros y gemelos
En el momento de la entrega
Tasa de peso al nacer muy bajo
Periodo de tiempo: Al nacer
Peso al nacer inferior a 1.500 g.
Al nacer
Tasa de bajo peso al nacer
Periodo de tiempo: Al nacer
Peso al nacer inferior a 2.500 g.
Al nacer
Alto índice de peso al nacer
Periodo de tiempo: Al nacer
Implica un crecimiento más allá de un peso absoluto al nacer, históricamente 4.000 g o 4.500 g, independientemente de la edad gestacional.
Al nacer
Tasa de peso al nacer muy alta
Periodo de tiempo: Al nacer
Peso al nacer superior a 4.500 g para mujeres con diabetes y un umbral de 5.000 g para mujeres sin diabetes
Al nacer
Tasa pequeña para la edad gestacional
Periodo de tiempo: Al nacer
Grande para la edad gestacional se definió como un peso al nacer por debajo del percentil 10.
Al nacer
Tasa grande para la edad gestacional
Periodo de tiempo: Al nacer
Grande para la edad gestacional se definió como un peso al nacer por encima del percentil 90.
Al nacer
Hipertensión en la tasa de embarazo.
Periodo de tiempo: A las 20 semanas de gestación o más
Comprende hipertensión inducida por el embarazo (PIH), preeclampsia (PET), eclampsia y síndrome HELLP.
A las 20 semanas de gestación o más
Tasa de diabetes mellitus gestacional
Periodo de tiempo: Entre las 24 y 28 semanas de gestación

Diagnosticado según la última versión de las directrices de la ADA. una SOG de 75 g, con medición de glucosa plasmática en ayunas y a la 1 y 2 h, a las 24-28 semanas de gestación en mujeres sin diagnóstico previo de diabetes.

  • En ayunas: 92 mg/dL (5,1 mmol/L)
  • 1 hora: 180 mg/dL (10,0 mmol/L)
  • 2 h: 153 mg/dL (8,5 mmol/L)
Entre las 24 y 28 semanas de gestación
Todavía tasa de natalidad
Periodo de tiempo: Después de 20 semanas completas de edad gestacional
definida como la muerte de un feto antes de la expulsión completa o extracción de su madre después de 20 semanas completas de edad gestacional. La muerte está determinada por el hecho de que, después de dicha separación, el feto no respira ni muestra ninguna otra evidencia de vida, como latidos del corazón, pulsaciones del cordón umbilical o movimientos definidos de los músculos voluntarios. Incluye muertes ocurridas durante el parto.
Después de 20 semanas completas de edad gestacional
Tasa de natalidad prematura
Periodo de tiempo: El día de la entrega
Definido como parto en <24, <28, <32, <37 semanas completas. Nacimiento que se produce después de las 22 semanas y antes de las 37 semanas completas de edad gestacional.
El día de la entrega
Tasa de hemorragia anteparto
Periodo de tiempo: Al nacer
Definido como sangrado desde o hacia el tracto genital, que ocurre a partir de las 24 semanas de embarazo y antes del nacimiento del bebé.
Al nacer
Tasa de anomalías congénitas mayores
Periodo de tiempo: Al nacer
Anomalías estructurales, funcionales y genéticas que ocurren durante el embarazo y se identifican antes del nacimiento, en el nacimiento o más adelante en la vida, y requieren reparación quirúrgica de un defecto, o son visualmente evidentes, ponen en peligro la vida o causan la muerte. Cualquier anomalía congénita se incluirá según la siguiente definición de anomalías congénitas en Vigilancia de anomalías congénitas de la División de Defectos Congénitos y Discapacidades del Desarrollo, NCBDDD, Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades (2020).
Al nacer
Tasa de mortalidad neonatal
Periodo de tiempo: entre ocho y 28 días después del parto
Mortalidad neonatal definida como la muerte de un bebé nacido vivo dentro de los 28 días posteriores al nacimiento. Esta se puede dividir en mortalidad neonatal temprana, si la muerte ocurre en los primeros siete días después del nacimiento, y neonatal tardía si la muerte ocurre entre ocho y 28 días después del parto.
entre ocho y 28 días después del parto
Tasa de admisión a la UCIN
Periodo de tiempo: Al nacer
Contando el número de bebés ingresados ​​en la unidad de cuidados intensivos neonatales
Al nacer
Motivo del ingreso a la UCIN
Periodo de tiempo: Al nacer
Dificultad respiratoria, hemorragia intraventricular, enterocolitis necrotizante, sepsis
Al nacer

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Patrocinador

Investigadores

  • Investigador principal: Lan N Vuong, MD, PhD, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Publicaciones Generales

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

13 de mayo de 2024

Finalización primaria (Actual)

11 de julio de 2024

Finalización del estudio (Actual)

1 de junio de 2025

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

26 de marzo de 2024

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

10 de abril de 2024

Publicado por primera vez (Actual)

16 de abril de 2024

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

12 de junio de 2025

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

9 de junio de 2025

Última verificación

1 de junio de 2025

Más información

Términos relacionados con este estudio

Otros números de identificación del estudio

  • 03/24/DD-BVMD

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

producto fabricado y exportado desde los EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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