- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk forsøg NCT03538899
Autolog genterapi for Artemis-deficient SCID
En fase I/II-gennemførlighedsundersøgelse af genoverførsel for artemis-deficiente svær kombineret immundefekt (ART-SCID) ved brug af en selvinaktiverende lentiviral vektor (AProArt) til at transducere autologe CD34 hæmatopoietiske celler
Studieoversigt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljeret beskrivelse
Børn med SCID overlever generelt ikke ud over det første leveår uden endelig behandling. Den mest effektive nuværende kur er hæmatopoietisk stamcelletransplantation (HCT) med et humant leukocytantigen (HLA) matchet søskende. Mens en matchet søskende-HCT med succes kan behandle ART-SCID, har færre end 20 % af de berørte børn en sådan donor, og selv når en matchet søskendedonor er tilgængelig, er der ofte ufuldstændig T- og B-celle-immunrekonstitution. ART-SCID er den sværeste type SCID at helbrede ved hæmatopoietisk stamcelletransplantation ved hjælp af alternative donorer. Engraftment kræver typisk intensiv konditionering med højdosis alkyleringsmidler for at forhindre afstødning og for at åbne marvnicher. Disse patienter har også en høj risiko for at udvikle graft versus host disease (GVHD), når alternative donorer anvendes. Langt de fleste patienter mangler B-celle-rekonstitution og kræver livslang administration af immunglobulin-infusioner. Patienter med ART-SCID, som får høje doser af alkylatorer, især når 2 midler anvendes, har dårligere overlevelse, unormal tandudvikling, endokrinopatier og kort statur sammenlignet med børn, der er udsat for ingen eller begrænsede alkylatorer eller børn med SCID-typer, der er ikke forbundet med en DNA-reparationsdefekt. Af disse grunde er der behov for en sikrere og mere effektiv tilgang til helbredelse af ART-SCID. Autolog genkorrigeret hæmatopoeitisk stamcelletransplantation kan eliminere både risikoen for GVHD og behovet for alkylatorer for at forhindre afstødning.
Undersøgelsesdesignet er et longitudinalt enkelt-kohorte-eksperiment med anvendelse af ikke-randomiserede patienter behandlet én gang med en lentiviral vektor til genkorrektion af Artemis-deficient SCID efter konditionering med lavdosis busulfan. Der er ikke planlagt nogen formel kontrolgruppe til at måle sikkerheden; snarere vil intensiv overvågning af de første 6 tilmeldte udelukke fortsat optjening i nærvær af sikkerhedssignaler, og langsigtet sikkerhed vil blive overvåget i 15 år. Knoglemarvsstamceller vil blive høstet fra deltagere, der vejer ≤7,5 kg eller tidligere har mislykket cytokinmobilisering, og cytokinmobiliserede perifere blodstamceller vil blive høstet fra deltagere, der vejer >7,5 kg. CD34-celler vil blive isoleret ved hjælp af CliniMACS® CD34 Reagent System-cellesorteringsenheden. Cellerne vil blive transduceret med den AProArt lentivirale vektor. Transduktionsforstærkere vil blive brugt til at øge transduktionseffektiviteten i CD34+-celler fra perifert blod fra patienter, der gennemgår en perifer blodstamcelleopsamling. Disse transducerede celler vil derefter blive kryokonserveret, og alikvoter af cellerne vil gennemgå sikkerhedstestning og blive reserveret til styrkeevaluering. Alle patienter vil modtage busulfan-konditionering målrettet over 2 dage for at opnå et kumulativt areal under kurven (AUC) på 20 mg*time/L (en ablativ kumulativ AUC er 60-90mg*time/L). Efter infusionen af AProArt-transducerede celler vil patienter blive evalueret efter 4, 6, 8, 16 og 24 uger for tegn på gentransducerede mononukleære blodceller fra perifert blod og, når det er muligt, cellelinjer inklusive T, B, NK og granulocyt/myeloidceller . Hvis der ikke er tegn på gentransducerede celler 6 uger (42 dage) efter infusion, vil der blive truffet en beslutning om yderligere behandling.
Efter dag 42 efter transplantation vil modtagerne blive fulgt for toksicitet og varig rekonstitution af T- og B-celleimmunitet. Immunrekonstitution af T-celler vil blive overvåget regelmæssigt. Hvis det absolutte neutrofiltal er < 200/µl eller blodplader < 20.000/µl efter 3 uafhængige bestemmelser efter dag 42 efter infusion af transducerede celler, kan patienten modtage infusion af backup-cellerne eller en allogen hæmatopoeitisk stamcelletransplantation. Patienter, der var neutropene før konditionering (SCID-relateret neutropeni), men som reagerede på granulocyt-kolonistimulerende faktor (GCSF), vil ikke blive anset for at have svigtet, forudsat at det absolutte neutrofiltal kan opretholdes over >500/µl med GCSF.
Efter dag 42 vil patienterne blive vurderet ugentligt gennem 12 uger efter transplantationen og i uge 16, månedligt til måned 6 efter transplantationen, og derefter 3 månedligt til og med måned 24. De vil derefter blive vurderet med 6 månedlige intervaller i år 2-5 og årligt til og med år 15. Opfølgning på undersøgelsen vil omfatte udfyldelse af livskvalitetsspørgeskemaer og administration af neuroudviklingstest.
Patienter med tegn på klinisk utilstrækkelig rekonstitution, lav VCN eller andre træk, der tyder på klinisk utilstrækkelig respons på den indledende genterapiprocedure, vil blive tilbudt en gentagen infusion af gentransducerede celler. Konditioneringsregimer givet før en genterapiprocedure kan omfatte lavdosis busulfan, anden konditionering eller ingen konditionering.
Et uafhængigt Data Safety Monitoring Board (DSMB) vil blive udpeget til sikkerhedsovervågning af dette forsøg. DSMB vil gennemgå alle data for sikkerhed på en regelmæssig tidsplan baseret på antallet af tilmeldte forsøgspersoner og vil også gennemføre en særlig presserende gennemgang af alle protokolrelaterede alvorlige bivirkninger (SAE). Efterhånden som forsøget påbegyndes, vil DSMB gennemgå resultaterne af hver af de første 3 sager, før de fortsætter med efterfølgende patienter.
Undersøgelsesproduktet (IND1711) til ART-SCID-genoverførselsstudiet er ikke tilgængeligt til udvidet adgangsbrug. I henhold til 21 CFR Part 312.305(3) har undersøgelsens ledelsesteam fastslået, at levering af forsøgsproduktet til udvidet adgangsbrug på dette tidspunkt ville forstyrre udførelsen og afslutningen af det kliniske forsøg og den potentielle udvikling af fremtidig udvidet adgangsbrug. Afprøvningsproduktet er tilgængeligt for kvalificerede patienter gennem deltagelse i dette kliniske forsøg.
Undersøgelsestype
Tilmelding (Anslået)
Fase
- Fase 2
- Fase 1
Kontakter og lokationer
Studiekontakt
- Navn: Morton Cowan, MD
- Telefonnummer: 415-476-2188
- E-mail: Mort.Cowan@ucsf.edu
Undersøgelse Kontakt Backup
- Navn: Jennifer Puck, MD
- Telefonnummer: 415 502-2090
- E-mail: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Studiesteder
-
-
California
-
San Francisco, California, Forenede Stater, 94143
- Rekruttering
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- ≥2,0 måneders alder ved påbegyndelse af busulfan-konditionering
- Diagnose af typisk eller utæt ART-SCID:
Nydiagnosticerede ART-SCID-patienter skal have:
- Artemis mangel; OG
- CD3-tal < 300 autologe celler/µL (typisk ART-SCID) ELLER spontan maternal kimærisme, ELLER CD3-tal >300/µL, men med begrænset T-cellereceptor Vb-diversitet, defineret som 18/24 eller færre polyklonale familier.
OG - CD45-cellerespons på mitogener (PHA) < 50 % af den nedre grænse for normalområdet for laboratoriet (utæt ART-SCID).
Patienter diagnosticeret med ART-SCID i henhold til kriterierne ovenfor, som har fejlet en allogen transplantation (inklusive en HLA-matchet søskendetransplantation), kan deltage, hvis de opfylder nedenstående kriterier:
- Er mindst 3 måneder efter allogen hæmatopoeitisk stamcelletransplantation uden tegn på indpodning af allogene donorceller (eksklusive maternelle celler)
ELLER er podet, men har mindst 2 af følgende 4 tilstande:
- Faldende CD3-donorkimerisme med mindst 3 evalueringer adskilt af mindst 1 måned før indskrivningstidspunktet ELLER < 5 % samlet donorkimerisme i blod og marv ≥3 måneder efter transplantation.
Ufuldstændigt rekonstitueret T-celleimmunitet efter ≥6 måneder (1 af følgende 2):
- CD4 < 200/μL OG CD45 celle PHA < 50 % af den nedre grænse for normal for laboratoriet;
- CD4 CD45RA < 20 % af de samlede CD4-celler OR T-cellereceptor Vb-diversitet er begrænset, defineret som 18/24 eller færre polyklonale familier.
- Ingen donor B-celler ELLER mangel på B-cellefunktion (immunoglobulin M isohemagglutininer < 1:8 (ikke blodtype AB) OG immunglobulin A (IgA) eller IgM værdier under referenceinterval for alder OG hvis man ikke får intravenøst immunglobulin (IVIG), ingen beskyttende niveau af antistof mod tetanus-immunisering x2).
- Kliniske manifestationer i overensstemmelse med vedvarende T- og B-celle-immundefekt, f.eks. kronisk infektion, herunder norovirus, cytomegalovirus, human herpesvirus 6; ELLER akut eller tilbagevendende infektion (f.eks. PJP), bronkiektasi, kronisk bihulebetændelse.
OG
- Har ingen tidligere eksponering for højdosis busulfan (≥10 mg/kg total dosis eller gennemsnitlig kumulativ eksponering på ≥40 mg*time/L). Hvis den samlede kumulative AUC inklusive tidligere busulfaneksponering plus den dosis, der skal administreres i denne protokol, forudsiges til at være ≤60 mg*time/L, vil patienten være kvalificeret, forudsat at andre kriterier er opfyldt.
- Ingen medicinsk kvalificeret HLA-identisk søskende med et normalt immunsystem, der kunne tjene som allogen knoglemarvsdonor (gælder kun for nyligt diagnosticerede patienter).
Skriftligt informeret samtykke i henhold til retningslinjer fra Institutional Review Board (IRB).
Ekskluderingskriterier:
- Leverfunktionsprøver (aspartataminotransferase, alanintransaminase, gamma-glutamyltransferase) > tre gange den øvre grænse for normal for laboratorie- og/eller total bilirubin >1,50 mg/dl på tidspunktet for planlagt påbegyndelse af busulfan-konditionering.
- Tidligere veno-okklusiv sygdom (sinusoidal obstruktionssyndrom) i leveren.
- Medicinsk kvalificeret HLA-matchede søskende (gælder kun for nyligt diagnosticerede patienter).
- Bevis på HIV-infektion ved polymerasekædereaktion eller p24-antigentest.
- Ude af stand til at tolerere generel anæstesi og/eller marvhøst eller perifer blodstamcelleopsamling (aferese) eller indsættelse af centralt venekateter.
- Tilstedeværelse af en medicinsk tilstand, der indikerer, at overlevelse forventes at være mindre end 4 måneder, såsom kravet om mekanisk ventilation, alvorlig svigt af et større organsystem eller tegn på en alvorlig, fremadskridende infektion, der er modstandsdygtig over for medicinsk behandling.
- Graviditet
- En social situation, der indikerer, at familien muligvis ikke er i stand til at overholde protokolprocedurer og anbefalet lægehjælp og opfølgning.
- Andre forhold, som efter hovedforskerens og/eller co-investigatorernes mening kontraindikerer infusion af transducerede celler eller deltagelse i undersøgelsen.
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Interventionel model: Enkelt gruppeopgave
- Maskning: Ingen (Åben etiket)
Våben og indgreb
Deltagergruppe / Arm |
Intervention / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentel: Genterapi (AProArt)
Genoverførsel for artemis-deficient alvorlig kombineret immundefekt (ART-SCID) ved hjælp af en selvinaktiverende lentiviral vektor (AProArt) til at transducere autologe CD34 hæmatopoietiske celler.
CliniMACS® CD34 Reagent System sorteringsenheden vil blive brugt til at udvælge CD34-celler.
Patienter vil blive konditioneret med lavdosis busulfan før transplantation.
|
Behandling af hæmatopoietiske progenitorceller for at selektere CD34-celler ved hjælp af CliniMACS® CD34-reagenssystemet før infusion.
Busulfan er et cellecyklus ikke-specifikt alkylerende antineoplastisk middel i klassen af alkylsulfonater.
Patienterne vil modtage lavdosis busulfan-konditionering målrettet over 2 dage for at opnå et kumulativt areal under kurven (AUC) på 20 mg*time/l.
Andre navne:
Deltagerne vil gennemgå infusion med autologe hæmatopoietiske celler transduceret med en lentiviral vektor, AProArt, som indeholder den korrekte form af DCLRE1C komplementær deoxyribonukleinsyre-DNA, efter at have modtaget sub-ablativ, eksponeringsmålrettet busulfan-konditionering.
Andre navne:
|
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
For at demonstrere, at ART-SCID-patienter, der modtager AProArt-CD34-infusion, har en overlegen overlevelsesrate (OS) 24 måneder efter behandling med AProArt-CD34 sammenlignet med det etablerede resultat på 0% OS for patienter, der ikke modtager behandling for ART-SCID
Tidsramme: 24 måneder
|
Patientens overlevelsestatus og (hvis relevant) dødsårsag vil blive registreret for at vurdere den samlede overlevelse.
|
24 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
B-celle immunrekonstitution efter 24±2 måneder sammenlignet med historisk kontrolkohorte af allogene transplantatmodtagere
Tidsramme: 24 måneder
|
B-celle immunrekonstitution vil blive defineret som ophør af immunoglobulin erstatningsterapi
|
24 måneder
|
|
Antal deltagere med T-celle immunrekonstitution sammenlignet med historiske kontrolgrupper, der modtog allogene transplantationer for at behandle ART-SCID.
Tidsramme: 24 måneder
|
T-celle immunrekonstitution defineres som tilstedeværelsen af begge følgende: 1) a. CD3>1000/mm3; 2) CD4>500/mm3.
|
24 måneder
|
|
Begivenhedsfri Overlevelse
Tidsramme: 24 måneder
|
Begivenheder defineres som død, anvendelse af en gentagen infusion af genkorrigerede celler for at forbedre T-/B-celle immunrekonstitution eller behov for udførelse af en allogen HCT.
|
24 måneder
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Hæmatopoietisk genopretning hos patienter med ART-SCID, som modtager selvinaktiverende (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerede CD34-celler gennem en gentagen infusion af autolog stamcelletransplantation.
Tidsramme: 5 år
|
Patienterne vil gennemgå blodprøver for at måle fuldstændigt blodtal og differential efter en gentagen infusion af genkorrigerede celler.
|
5 år
|
|
Bivirkningsprofil (AE) forbundet med undersøgelsesinterventionen fra behandling til 15 år efter genoverførselsproceduren
Tidsramme: 15 år
|
Kliniske og laboratoriemæssige bivirkninger målt ved CTCAE V4
|
15 år
|
|
Antal deltagere med B-celle-rekonstituering ud over 24 måneder, inklusive B-celletal og funktion
Tidsramme: 15 år
|
B-celle-rekonstitution vil blive defineret som tilstedeværelse af mindst to af følgende: 1) B-cellenummer >40/mm3; 2) Ophør af immunoglobulinerstatningsterapi; 3) Beskyttende specifikke antistofresponser.
Antallet af deltagere, der opfylder definitionen for B-celle-rekonstitution, vil blive opstillet i tabelform.
|
15 år
|
|
Effektiviteten af at målrette laveksponeret busulfan hos spædbørn og børn, beregnet efter procentdel af deltagere, hvis behandling opfylder undersøgelsesparametre ved hjælp af en valideret populationsfarmakokinetisk model til at beregne individualiseret busulfan-clearance.
Tidsramme: 42 dage
|
Opnåelse af endelig målkumulativ AUC på 20±2 mg*time/L hos ca. 90 % af forsøgspersonerne
|
42 dage
|
|
Repertoire-diversitet af T- og B-celler, som vurderet ved at analysere T-cellereceptorgenets variabel beta-sekvens (TCR-Vb) og immunglobulin tung kæde (IGH) omarrangerede receptorer og beregne diversitet Shannon Index.
Tidsramme: 24 måneder
|
Målt ved dyb sekventering af T-cellereceptoren (TCR) genvariabel betasekvens (TCR-Vb) og immunoglobulin tung kæde (IGH) omarrangerede receptorer.
Diversiteten Shannon Index forventes at være over 7,5 24±2 måneder efter behandling hos 90 % af patienterne.
|
24 måneder
|
|
Bestem, om B-celle-receptor-diversitet efter 6 måneder er forudsigelig for B-celle-rekonstitution over 15 år ved at analysere B-celle-receptorgenets variable beta-sekvens og immunoglobulins tunge kæde-omlejrede receptorer og beregne diversitet Shannon Index.
Tidsramme: 15 år
|
Et Shannon-indeks >5 forventes at være en biomarkør for B-celle-rekonstitution.
B-celle-receptordiversitet vil blive målt gennem hele studiedeltagelsen.
|
15 år
|
|
Bestem, om T-cellereceptordiversitet (TCR) og/eller absolutte CD3, CD4, naive CD4-tal efter 6 måneder forudsiger T-celle-rekonstitution efter 24 måneder eller behov for 2. behandling gennem den 15-årige opfølgningsperiode.
Tidsramme: 15 år
|
TCR-Vb-diversitet og absolutte CD3-, CD4- og naive CD4-tal vil blive målt efter 6 måneder.
T-celle-rekonstitution vil blive målt under hele undersøgelsesdeltagelsen.
|
15 år
|
|
Stabilitet af middel vektorkopiantal (VCN) og placeringen af vektorintegrationssteder i sorterede T-, B- og naturlige dræberceller (NK), granulocytter og monocytter i perifert blod over tid efter infusion af transduceret HSC.
Tidsramme: 24 måneder
|
Gennemsnitligt vektorkopital (VCN) og placeringen af vektorintegrationssteder vil blive målt ved 6±1, 12±1 og 24±2 måneder og derefter årligt gennem 15 år efter infusion af AProArt-CD34.
Den gennemsnitlige VCN bør være >0,5 kopier/celle i T- og B-celler og >0,01 i NK, myeloid og granulocytter 24±2 måneder efter behandling.
|
24 måneder
|
|
Karakterisering af insertionssteder i flere cellelinjer som en indikator for diversitet, multilineage-engraftment og tabulering af enhver klonal ekspansion, der kan indikere udvikling af en malignitet.
Tidsramme: 24 måneder
|
Indsættelsessteder vil blive målt ved 6±1, 12±1, 24±2 måneder og årligt gennem 15 år efter infusion af AProArt-CD34.
Celleindsættelsessteder forventes at være forskellige uden klon, der repræsenterer >20% af en afstamning efter 24 måneder.
|
24 måneder
|
|
Potentielle fordele ved profylaktisk sirolimus ved at reducere forekomsten af forbigående autoimmun hæmolytisk anæmi (AIHA) efter infusion af AProArt-CD34, vurderet af antallet af deltagere med klinisk diagnose af AIHA.
Tidsramme: 24 måneder
|
Forekomst af autoimmun hæmolytisk anæmi 24±2 måneder efter infusion efter administration af profylaktisk sirolimus, vurderet ved monitorering af hæmoglobin-, direkte og indirekte Coombs-, retikulocyt- og lactatdehydrogenase-resultater.
Hyppigheden af behandlingskrævende AIHA forventes at være <40 % af patienterne på profylaktisk sirolimus.
|
24 måneder
|
|
Måling af strålingsfølsomhed i NK-celler i perifert blod til udvikling og validering af et hurtigt funktionelt assay for strålingsfølsomt SCID.
Tidsramme: 24 måneder
|
Udvikling og validering af et assay for strålingsfølsomt SCID i NK-celler i perifert blod
|
24 måneder
|
|
Styrken af AProArt-CD34 som angivet ved kapacitet til in vitro differentiering af deltagerprøver til T-celler og vurdering af gennemsnitlig VCN som en surrogatmarkør for potens.
Tidsramme: 5 år
|
Demonstration af, at CD34+-patientceller efter transduktion har kapacitet til in vitro-differentiering til T-celler, og at gennemsnitlig VCN er en surrogatmarkør for potens.
En eller flere potensanalyser vil blive udviklet og valideret for AProArt-transduceret CD34+ HSC, der giver resultater inden for 52 dage efter transduktion, og korrelation af disse med VCN opnået 6 og 14 dage efter transduktion med AProArt.
|
5 år
|
|
Effekter af målrettet lavdosis busulfan konditionering på patienters vækst/højde
Tidsramme: 5 år
|
Patientens højde (cm) og vægt (kg) vil blive målt og sammenlignet med normerne for alderen
|
5 år
|
|
Effekter af busulfan på patienters tandudvikling
Tidsramme: 5 år
|
Tandlægehistorier og kliniske noter vil blive gennemgået for at sammenligne udviklingen af permanente tænder med udviklingsnormer for alder fra 5 år til 15 år
|
5 år
|
|
Patientrapporteret udbytte af behandling med genkorrigerede celler som vurderet ved PedsQL-spørgeskemaerne.
Tidsramme: 5 år
|
Alderssvarende Pediatric Quality of Life Inventory (PedsQL) spørgeskemaer vil blive administreret ved baseline og år 1, 2, 4, 8, 10, 12 og 15.
Fire domæner (Fysisk Funktion, Emotionel Funktion, Social Funktion og Skole Funktion) er reverse-scoret på en 5-punkts Likert-skala og transformeret til en 0-100 skala, hvor højere score indikerer bedre resultater.
|
5 år
|
|
Families indvirkning af at gennemgå behandling med genkorrigerede celler.
Tidsramme: 15 år
|
PedsQL Family Impact-modulet (Pediatric Quality of Life Inventory) vil blive administreret ved baseline og efter 1, 2, 4, 8, 10, 12 og 15 år.
Svar angives på en 5-point Likert-skala og omregnes til en 0-100 skala, hvor højere score indikerer bedre resultater.
|
15 år
|
|
Effekter af studieinterventionen på neuroudviklingen over tid
Tidsramme: 5 år
|
Neuroudviklingen vil blive vurderet ved alderen 3, 5, 8, 11, 14 og 17 år ved hjælp af relevante alderspassende instrumenter (Vineland Adaptive Behavior Scales, Behavior Rating Inventory of Executive Functioning, Behavioral Assessment for Children, Bayley Scales of Infant Development, Wechsler Intelligence Scales, California Verbal Learning Test, Conners Continuous Performance Test, Delis-Kaplan Executive Function System og Wide Range Achievement Test).
Resultaterne vil blive sammenlignet med normer for alderen 18 måneder samt alderen 3, 5, 8, 11, 14 og 17 år.
|
5 år
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Efterforskere
- Ledende efterforsker: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856.
- Cowan MJ, Yu J, Facchino J, Fraser-Browne C, Sanford U, Kawahara M, Dara J, Long-Boyle J, Oh J, Chan W, Chag S, Broderick L, Chellapandian D, Decaluwe H, Golski C, Hu D, Kuo CY, Miller HK, Petrovic A, Currier R, Hilton JF, Punwani D, Dvorak CC, Malech HL, McIvor RS, Puck JM. Lentiviral Gene Therapy for Artemis-Deficient SCID. N Engl J Med. 2022 Dec 22;387(25):2344-2355. doi: 10.1056/NEJMoa2206575.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Primær færdiggørelse (Anslået)
Studieafslutning (Anslået)
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Yderligere relevante MeSH-vilkår
- Primære immundefektsygdomme
- Genetiske sygdomme, medfødte
- Metaboliske sygdomme
- Sygdomme i immunsystemet
- Spædbarn, Nyfødt, Sygdomme
- Immunologiske mangelsyndromer
- DNA-reparation-mangellidelser
- Medfødte, arvelige og neonatale sygdomme og abnormiteter
- Ernæringsmæssige og metaboliske sygdomme
- Alvorlig kombineret immundefekt
- Svovlforbindelser
- Organiske kemikalier
- Kulbrinter, acyklisk
- Kulbrinter
- Alkaner
- Alkoholer
- Butylenglycoler
- Glycols
- Mesylater
- Alkanesulfonater
- Alkanesulfonsyrer
- Sulfonsyrer
- Svovlsyrer
- Busulfan
Andre undersøgelses-id-numre
- 17-22799
- CLIN2-10830 (Andet bevillings-/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN2-17127 (Andet bevillings-/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
IPD-planbeskrivelse
IPD-delingstidsramme
IPD-delingsadgangskriterier
IPD-deling Understøttende informationstype
- STUDY_PROTOCOL
- SAP
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .