- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT03538899
Autologiczna terapia genowa dla SCID z niedoborem Artemidy
Studium wykonalności fazy I/II transferu genów w przypadku ciężkiego złożonego niedoboru odporności z niedoborem artemidy (ART-SCID) przy użyciu samoinaktywującego się wektora lentiwirusowego (AProArt) do transdukcji autologicznych komórek krwiotwórczych CD34
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Dzieci z SCID na ogół nie przeżywają pierwszego roku życia bez ostatecznego leczenia. Obecnie najskuteczniejszym lekarstwem jest przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych (HCT) z dopasowanym antygenem ludzkich leukocytów (HLA). Podczas gdy dopasowane rodzeństwo HCT może z powodzeniem leczyć ART-SCID, mniej niż 20% dzieci dotkniętych chorobą ma takiego dawcę, a nawet gdy dostępny jest dopasowany dawca z rodzeństwa, często dochodzi do niepełnej rekonstrukcji immunologicznej limfocytów T i B. ART-SCID jest najtrudniejszym rodzajem SCID do wyleczenia przez przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych z wykorzystaniem alternatywnych dawców. Wszczepienie zazwyczaj wymaga intensywnego kondycjonowania dużymi dawkami środków alkilujących, aby zapobiec odrzuceniu i otworzyć nisze szpiku. Pacjenci ci są również narażeni na wysokie ryzyko rozwoju choroby przeszczep przeciwko gospodarzowi (GVHD), gdy używa się alternatywnych dawców. Zdecydowana większość pacjentów nie ma rekonstytucji limfocytów B i wymaga podawania infuzji immunoglobulin przez całe życie. Pacjenci z ART-SCID, którzy otrzymują duże dawki alkilatorów, zwłaszcza gdy stosuje się 2 środki, mają gorszą przeżywalność, nieprawidłowy rozwój zębów, endokrynopatie i niski wzrost w porównaniu z dziećmi narażonymi na żadne lub ograniczone alkilatory lub dzieci z typami SCID, które są niezwiązane z defektem naprawy DNA. Z tych powodów potrzebne jest bezpieczniejsze i skuteczniejsze podejście do leczenia ART-SCID. Autologiczny przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych z korekcją genów może wyeliminować zarówno ryzyko GVHD, jak i potrzebę stosowania alkilatorów w celu zapobiegania odrzuceniu.
Projekt badania jest jednokohortowym, podłużnym eksperymentem z udziałem nierandomizowanych pacjentów leczonych raz wektorem lentiwirusowym w celu korekty genu SCID z niedoborem Artemidy po kondycjonowaniu busulfanem w małej dawce. Nie planuje się żadnej formalnej grupy kontrolnej do oceny bezpieczeństwa; raczej intensywne monitorowanie pierwszych 6 zapisanych wykluczy dalsze naliczanie w obecności sygnałów bezpieczeństwa, a długoterminowe bezpieczeństwo będzie monitorowane przez 15 lat. Komórki macierzyste szpiku kostnego zostaną pobrane od uczestników ważących ≤7,5 kilograma lub u których wcześniej nie powiodła się mobilizacja cytokin, a komórki macierzyste krwi obwodowej zmobilizowane cytokinami zostaną pobrane od uczestników ważących >7,5 kilograma. Komórki CD34 zostaną wyizolowane przy użyciu urządzenia do sortowania komórek CliniMACS® CD34 Reagent System. Komórki będą transdukowane wektorem lentiwirusowym AProArt. Wzmacniacze transdukcji zostaną wykorzystane do zwiększenia wydajności transdukcji w komórkach CD34+ krwi obwodowej od pacjentów poddawanych pobraniu komórek macierzystych krwi obwodowej. Te transdukowane komórki będą następnie kriokonserwowane, a porcje komórek zostaną poddane testom bezpieczeństwa i zarezerwowane do oceny mocy. Wszyscy pacjenci otrzymają ukierunkowane kondycjonowanie busulfanem przez 2 dni, aby osiągnąć skumulowane pole pod krzywą (AUC) wynoszące 20 mg*godz./l (ablacyjne skumulowane AUC wynosi 60-90 mg*godz./l). Po infuzji komórek stransdukowanych AProArt pacjenci będą oceniani po 4, 6, 8, 16 i 24 tygodniach w celu wykrycia transdukowanych genów jednojądrzastych komórek krwi obwodowej i, jeśli to możliwe, linii komórkowych, w tym komórek T, B, NK i granulocytów/komórek szpiku . Jeśli po 6 tygodniach (42 dniach) od infuzji nie ma dowodów na obecność komórek transdukowanych genami, zostanie podjęta decyzja dotycząca dalszego leczenia.
Po 42 dniu po przeszczepie biorcy będą obserwowani pod kątem toksyczności i trwałej rekonstytucji odporności komórek T i B. Rekonstytucja immunologiczna limfocytów T będzie regularnie monitorowana. Jeśli bezwzględna liczba neutrofilów wynosi < 200/µl lub liczba płytek krwi < 20 000/µl w 3 niezależnych oznaczeniach po 42 dniu po infuzji transdukowanych komórek, pacjent może otrzymać infuzję komórek zapasowych lub allogeniczny przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych. Pacjenci z neutropenią przed kondycjonowaniem (neutropenia związana z SCID), ale reagujący na czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów (GCSF), nie zostaną uznani za pacjentów z niepowodzeniem, pod warunkiem, że za pomocą GCSF można utrzymać bezwzględną liczbę neutrofili powyżej >500/µl.
Po 42 dniu pacjenci będą oceniani co tydzień do 12 tygodni po przeszczepie i od 16 tygodnia, co miesiąc do 6 miesiąca po przeszczepie, a następnie od 3 miesięcy do 24 miesiąca. Będą one następnie oceniane w odstępach 6-miesięcznych w latach 2-5 i corocznie do roku 15. Kontynuacja badania będzie obejmowała wypełnienie kwestionariuszy jakości życia i wykonanie testów neurorozwojowych.
Pacjentom z klinicznie nieodpowiednią rekonstytucją, niskim VCN lub innymi cechami sugerującymi klinicznie nieodpowiednią odpowiedź na początkową procedurę terapii genowej zostanie zaproponowany powtórny wlew komórek poddanych transdukcji genowej. Schematy kondycjonowania podawane przed powtórną procedurą terapii genowej mogą obejmować małe dawki busulfanu, inne kondycjonowanie lub brak kondycjonowania.
Do monitorowania bezpieczeństwa tego badania zostanie powołana niezależna Rada ds. Monitorowania Bezpieczeństwa Danych (DSMB). DSMB będzie przeglądać wszystkie dane pod kątem bezpieczeństwa w regularnych odstępach czasu, w oparciu o liczbę zapisanych pacjentów, a także przeprowadzi specjalny pilny przegląd wszelkich poważnych zdarzeń niepożądanych (SAE) związanych z protokołem. Po rozpoczęciu badania DSMB dokona przeglądu wyników każdego z pierwszych 3 przypadków przed przystąpieniem do kolejnych pacjentów.
Produkt eksperymentalny (IND1711) do badania transferu genów ART-SCID nie jest dostępny w rozszerzonym dostępie. Zgodnie z 21 CFR Part 312.305(3) zespół zarządzający badaniem ustalił, że udostępnienie badanego produktu do rozszerzonego dostępu w tym czasie kolidowałoby z prowadzeniem i zakończeniem badania klinicznego oraz potencjalnym rozwojem przyszłego rozszerzonego dostępu. Badany produkt jest dostępny dla kwalifikujących się pacjentów poprzez udział w tym badaniu klinicznym.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Faza
- Faza 2
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Morton Cowan, MD
- Numer telefonu: 415-476-2188
- E-mail: Mort.Cowan@ucsf.edu
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Jennifer Puck, MD
- Numer telefonu: 415 502-2090
- E-mail: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Lokalizacje studiów
-
-
California
-
San Francisco, California, Stany Zjednoczone, 94143
- Rekrutacyjny
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- ≥2,0 miesięcy w chwili rozpoczęcia kondycjonowania busulfanem
- Diagnoza typowego lub nieszczelnego ART-SCID:
Nowo zdiagnozowani pacjenci z ART-SCID muszą mieć:
- niedobór artemidy; I
- Liczba CD3 < 300 autologicznych komórek/µl (typowy ART-SCID) LUB spontaniczny chimeryzm matki, LUB liczba CD3 > 300/µl, ale z ograniczoną różnorodnością receptorów limfocytów T Vb, zdefiniowaną jako 18/24 lub mniej rodzin poliklonalnych.
ORAZ - odpowiedź komórek CD45 na mitogeny (PHA) < 50% dolnej granicy normy dla laboratorium (nieszczelny ART-SCID).
Pacjenci, u których zdiagnozowano ART-SCID zgodnie z powyższymi kryteriami, u których nie powiódł się przeszczep allogeniczny (w tym przeszczep rodzeństwa z dopasowanym HLA), mogą wziąć udział, jeśli spełniają poniższe kryteria:
- co najmniej 3 miesiące po allogenicznym przeszczepie hematopoetycznych komórek macierzystych bez dowodów wszczepienia allogenicznych komórek dawcy (z wyłączeniem komórek matczynych)
LUB są wszczepione, ale mają co najmniej 2 z następujących 4 warunków:
- Spadający chimeryzm dawcy CD3 z co najmniej 3 ocenami oddzielonymi co najmniej 1 miesiącem przed czasem włączenia LUB < 5% ogólnego chimeryzmu dawcy we krwi i szpiku ≥3 miesiące po przeszczepie.
Niecałkowicie odtworzona odporność limfocytów T po ≥6 miesiącach (1 z następujących 2):
- CD4 < 200/μl ORAZ CD45 komórkowa PHA < 50% dolnej granicy normy dla laboratorium;
- CD4 CD45RA < 20% wszystkich komórek CD4 LUB Różnorodność receptorów komórek T Vb jest ograniczona, zdefiniowana jako 18/24 lub mniej rodzin poliklonalnych.
- Brak komórek B dawcy LUB brak funkcji komórek B (immunoglobulina M izohemaglutyniny < 1:8 (nie grupa krwi AB) ORAZ wartości immunoglobuliny A (IgA) lub IgM poniżej zakresu referencyjnego dla wieku ORAZ jeśli nie otrzymują dożylnie immunoglobuliny (IVIG), brak ochrony poziom przeciwciał przeciwko immunizacji przeciw tężcowi x2).
- Objawy kliniczne zgodne z uporczywym niedoborem odporności komórek T i B, np. przewlekła infekcja, w tym norowirus, wirus cytomegalii, ludzki wirus opryszczki typu 6; LUB ostra lub nawracająca infekcja (np. PJP), rozstrzenie oskrzeli, przewlekłe zapalenie zatok.
I
- Nie mieć wcześniejszej ekspozycji na duże dawki busulfanu (dawka całkowita ≥10 mg/kg lub średnie narażenie skumulowane ≥40 mg*godz./l). Jeśli przewiduje się, że całkowita skumulowana wartość AUC, obejmująca poprzednią ekspozycję na busulfan plus dawkę do podania w tym protokole, wyniesie ≤60 mg*godz./l, wówczas pacjent kwalifikuje się, o ile spełnione są inne kryteria.
- Brak kwalifikującego się medycznie rodzeństwa identycznego z HLA z prawidłowym układem odpornościowym, które mogłoby służyć jako alogeniczny dawca szpiku kostnego (dotyczy tylko nowo zdiagnozowanych pacjentów).
Pisemna świadoma zgoda zgodnie z wytycznymi Institutional Review Board (IRB).
Kryteria wyłączenia:
- Testy czynnościowe wątroby (aminotransferaza asparaginianowa, transaminaza alaninowa, gamma-glutamylotransferaza) > trzykrotność górnej granicy normy dla laboratoryjnej i/lub bilirubiny całkowitej >1,50 mg/dl w momencie planowanego rozpoczęcia kondycjonowania busulfanem.
- Wcześniejsza historia choroby żylno-okluzyjnej (zespół niedrożności zatok sinusoidalnych) wątroby.
- Kwalifikujące się medycznie rodzeństwo dopasowane pod względem HLA (dotyczy tylko nowo zdiagnozowanych pacjentów).
- Dowód zakażenia wirusem HIV przez reakcję łańcuchową polimerazy lub test antygenu p24.
- Nietolerancja znieczulenia ogólnego i/lub pobrania szpiku lub pobrania komórek macierzystych krwi obwodowej (afereza) lub wprowadzenia cewnika do żyły centralnej.
- Obecność stanu medycznego wskazującego, że przewiduje się, że przeżycie będzie krótsze niż 4 miesiące, na przykład konieczność wentylacji mechanicznej, ciężka niewydolność głównego układu narządów lub dowód poważnej, postępującej infekcji, która jest oporna na leczenie farmakologiczne.
- Ciąża
- Sytuacja społeczna wskazująca, że rodzina może nie być w stanie przestrzegać procedur protokołu oraz zalecanej opieki medycznej i obserwacji.
- Inne warunki, które w opinii kierownika badania i/lub współbadaczy stanowią przeciwwskazanie do infuzji transdukowanych komórek lub udziału w badaniu.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nie dotyczy
- Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
---|---|
Eksperymentalny: Terapia genowa (AProArt)
Transfer genów dla ciężkiego złożonego niedoboru odporności z niedoborem Artemidy (ART-SCID) przy użyciu samoinaktywującego wektora lentiwirusowego (AProArt) do transdukcji autologicznych komórek krwiotwórczych CD34.
Do selekcji komórek CD34 zostanie użyte urządzenie sortujące CliniMACS® CD34 Reagent System.
Przed przeszczepem pacjenci będą kondycjonowani małą dawką busulfanu.
|
Uczestnicy zostaną poddani infuzji autologicznych komórek krwiotwórczych transdukowanych wektorem lentiwirusowym AProArt, który zawiera prawidłową postać komplementarnego DNA kwasu dezoksyrybonukleinowego DCLRE1C, po otrzymaniu subablacyjnego, ukierunkowanego na ekspozycję kondycjonowania busulfanem.
Inne nazwy:
Przetwarzanie hematopoetycznych komórek progenitorowych w celu wyselekcjonowania komórek CD34 przy użyciu systemu odczynników CliniMACS® CD34 przed infuzją.
Busulfan jest nieswoistym dla cyklu komórkowego alkilującym środkiem przeciwnowotworowym, należącym do klasy alkilosulfonianów.
Pacjenci otrzymają kondycjonującą dawkę busulfanu w małej dawce ukierunkowanej na 2 dni, aby osiągnąć skumulowane pole pod krzywą (AUC) wynoszące 20 mg*godz./l.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Przeżycie pacjentów z ART-SCID, którzy otrzymują samoinaktywujące się (SIN) komórki CD34 transdukowane wektorem lentiwirusowym (AProArt) poprzez autologiczny przeszczep komórek macierzystych
Ramy czasowe: 2 lata
|
Status przeżycia pacjenta i (jeśli dotyczy) przyczyna śmierci zostaną zapisane w celu oceny całkowitego przeżycia.
|
2 lata
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Dawka transdukowanych komórek AProArt
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
Zostanie obliczona liczba komórek CD34 stransdukowanych AProArt podanych we wlewie na kg masy ciała, z docelową liczbą co najmniej 2x10e6 stransdukowanych komórek i do 15x10e6 stransdukowanych komórek na kilogram.
|
1 miesiąc
|
Częstość występowania zdarzeń niepożądanych związanych z leczeniem busulfanu
Ramy czasowe: 42 dni
|
Zdarzenia niepożądane związane z leczeniem będą mierzone przy użyciu wersji 4.0 CTCAE.
|
42 dni
|
Odzyskiwanie hematopoezy u pacjentów z ART-SCID, którzy otrzymują samoinaktywujące się (SIN) komórki CD34 transdukowane wektorem lentiwirusowym (AProArt) poprzez autologiczny przeszczep komórek macierzystych.
Ramy czasowe: 1 rok
|
Pacjenci zostaną poddani badaniu krwi w celu zmierzenia pełnej morfologii krwi i różnicowania.
|
1 rok
|
Badania limfocytów w celu zmierzenia rekonstytucji układu odpornościowego u pacjentów, którzy otrzymali autologiczny przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych CD34 transdukowanych wektorem lentiwirusowym AProArt po kondycjonowaniu małą dawką busulfanu
Ramy czasowe: 2 lata
|
Pacjenci zostaną poddani badaniom krwi w celu zmierzenia liczby i funkcji komórek T, B i NK.
|
2 lata
|
Swoiste miana przeciwciał do pomiaru ustanowienia funkcji odpornościowej u pacjentów, którzy otrzymali autologiczny przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych CD34 transdukowanych wektorem lentiwirusowym AProArt po kondycjonowaniu małą dawką busulfanu
Ramy czasowe: 2 lata
|
Pacjenci zostaną poddani badaniom krwi w celu zmierzenia produkcji przeciwciał przeciwko toksoidowi tężcowemu, co udokumentowano osiągnięciem poziomów ochronnych po immunizacji.
|
2 lata
|
Poziomy immunoglobulin w celu pomiaru ustanowienia funkcji odpornościowej limfocytów B u pacjentów, którzy otrzymali autologiczny przeszczep hematopoetycznych komórek macierzystych CD34 transdukowanych wektorem lentiwirusowym AProArt po kondycjonowaniu małą dawką busulfanu
Ramy czasowe: 2 lata
|
Pacjenci zostaną poddani badaniom krwi w celu zmierzenia poziomów krążących immunoglobulin.
|
2 lata
|
Wieloliniowe wszczepienie komórek krwiotwórczych transdukowanych wektorem lentiwirusowym AProArt
Ramy czasowe: 2 lata
|
Wszczepienie będzie mierzone poprzez wykonanie ilościowych testów PCR w celu wykrycia transdukowanych komórek w co najmniej dwóch z następujących linii: T, B, NK i granulocyt/szpik.
|
2 lata
|
Częstość występowania zdarzeń niepożądanych związanych z autologicznym przeszczepem komórek macierzystych komórek CD34 stransdukowanych wektorem lentiwirusowym (AProArt) z autoinaktywacji (SIN)
Ramy czasowe: 2 lata
|
Zdarzenia niepożądane będą mierzone za pomocą CTCAE wersja 4.0, w tym wszelkie zdarzenia onkogenne.
|
2 lata
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Końcowe pole pod krzywą (AUC) ekspozycji na busulfan w małej dawce
Ramy czasowe: 42 dni
|
Końcowe pole pod krzywą (AUC) zostanie porównane z docelową skumulowaną wartością AUC wynoszącą 20±4 mg*godz./l.
|
42 dni
|
Różnorodność repertuaru u biorców terapii genowej ART-SCID po przeszczepie.
Ramy czasowe: 2 lata
|
Pomiar poprzez spektratypowanie rearanżowanych receptorów Vb receptora limfocytów T.
|
2 lata
|
Liczba kopii wektora utrzymująca się w czasie po infuzji transdukowanego przeszczepu hematopoetycznych komórek macierzystych.
Ramy czasowe: 2 lata
|
Badania laboratoryjne zmierzą liczbę kopii wektorów znalezionych w populacjach leukocytów krwi, w tym granulocytach, komórkach T, komórkach B i komórkach NK.
Populacje komórek będą izolowane przez wirowanie w gradiencie, a następnie barwienie przeciwciałami monoklonalnymi i sortowanie przepływowe.
|
2 lata
|
Lokalizacja miejsc integracji wektorów w celu utrzymania zróżnicowanego repertuaru miejsc wstawiania
Ramy czasowe: 2 lata
|
Z mieszanej populacji leukocytów krwi, składników wyizolowanych gradientowo i sortowanych przepływowo (komórki T, B, szpikowe i NK), będą miały fragmenty genomowego DNA amplifikowane przez PCR za pośrednictwem łącznika.
Przeprowadzone zostanie masowo równoległe sekwencjonowanie, a sekwencje DNA gospodarza łączące się między zintegrowanym wektorem a linkerami zostaną zmapowane do ludzkiego genomu przy użyciu oprogramowania BLAST.
Określona zostanie genomowa lokalizacja każdego miejsca insercji i będzie monitorowana liczba komórek z tym samym miejscem insercji.
|
2 lata
|
Częstość występowania długotrwałych zdarzeń niepożądanych związanych z autologicznym przeszczepem komórek macierzystych komórek CD34 stransdukowanych wektorem lentiwirusowym (SIN) (AProArt).
Ramy czasowe: 15 lat
|
Zdarzenia niepożądane będą mierzone przy użyciu CTCAE V4.0
|
15 lat
|
Długoterminowe przeżycie u pacjentów ART-SCID, którzy przeszli autologiczny przeszczep komórek macierzystych samoinaktywujących się (SIN) komórek CD34 stransdukowanych wektorem lentiwirusowym (AProArt).
Ramy czasowe: 15 lat
|
Liczba uczestników z funkcją układu odpornościowego mierzoną liczbą i funkcją komórek T i B.
|
15 lat
|
Skuteczność wzmacniaczy transdukcji (dmPGE2 i LentiBOOST™) we wpływaniu na rekonstytucję immunologiczną u pacjentów ART-SCID.
Ramy czasowe: 5 lat
|
Badania laboratoryjne zmierzą liczbę kopii wektorowych (VCN).
|
5 lat
|
Skuteczność wzmacniaczy transdukcji (dmPGE2 i LentiBOOST™) we wpływaniu na rekonstytucję immunologiczną limfocytów T i B u pacjentów ART-SCID.
Ramy czasowe: 5 lat
|
Badania laboratoryjne będą mierzyć podzbiory limfocytów.
|
5 lat
|
Wpływ profilaktycznego sirolimusu na zmniejszenie występowania autoimmunologicznej niedokrwistości hemolitycznej po infuzji komórek z korekcją genów.
Ramy czasowe: 7 lat
|
Regularne monitorowanie retikulocytów, bezpośredniego, pośredniego Coombsa i LDH, począwszy od 12 tygodnia po infuzji.
|
7 lat
|
Wpływ leczenia powtórnym wlewem komórek skorygowanych genetycznie na przeżycie pacjentów, u których nie rozwinęła się odpowiednia odporność
Ramy czasowe: 15 lat
|
Status przeżycia pacjenta i (jeśli dotyczy) przyczyna śmierci zostaną zapisane w celu oceny całkowitego przeżycia.
|
15 lat
|
Dawka komórek transdukowanych AProArt z powtórną infuzją komórek z korekcją genów
Ramy czasowe: 5 lat
|
Liczba komórek CD34 stransdukowanych AProArt podanych we infuzji na kg masy ciała zostanie obliczona dla powtórnej infuzji, z docelową liczbą co najmniej 2x10e6 stransdukowanych komórek i do 15x10e6 stransdukowanych komórek na kilogram.
|
5 lat
|
Odzyskiwanie układu krwiotwórczego u pacjentów z ART-SCID, którzy otrzymują samoinaktywujące się (SIN) komórki CD34 transdukowane wektorem lentiwirusowym (AProArt) poprzez autologiczny przeszczep autologicznych komórek macierzystych z powtórnym wlewem.
Ramy czasowe: 5 lat
|
Pacjenci zostaną poddani badaniom krwi w celu zmierzenia pełnej morfologii krwi i różnicowania po powtórnym wlewie komórek skorygowanych genetycznie.
|
5 lat
|
Swoiste miana przeciwciał do pomiaru ustanowienia funkcji odpornościowej u pacjentów, którzy otrzymali powtórną infuzję AProArt transdukowanego wektorem lentiwirusowym autologicznego przeszczepu hematopoetycznych komórek macierzystych CD34
Ramy czasowe: 5 lat
|
Pacjenci zostaną poddani badaniom krwi po powtórnej infuzji komórek z korekcją genów w celu zmierzenia produkcji przeciwciał przeciwko toksoidowi tężcowemu, co udokumentowano osiągnięciem poziomów ochronnych po immunizacji.
|
5 lat
|
Częstość występowania zdarzeń niepożądanych związanych z autologicznym przeszczepem autologicznych komórek macierzystych z powtórnym wlewem samoinaktywujących się (SIN) komórek CD34 stransdukowanych wektorem lentiwirusowym (AProArt)
Ramy czasowe: 5 lat
|
Zdarzenia niepożądane będą mierzone po powtórnej infuzji komórek z korekcją genów przy użyciu CTCAE wersja 4.0, w tym wszelkie zdarzenia onkogenne.
|
5 lat
|
Różnorodność repertuaru w terapii genowej biorców ART-SCID po powtórzeniu infuzji komórek z korekcją genów.
Ramy czasowe: 5 lat
|
Pomiar poprzez spektratypowanie rearanżowanych receptorów komórek T Vb po powtórnym wlewie komórek z korekcją genu.
|
5 lat
|
Częstość występowania długotrwałych zdarzeń niepożądanych związanych z powtórnym przeszczepem autologicznych komórek macierzystych komórek CD34 transdukowanych wektorem lentiwirusowym (SIN) (AProArt).
Ramy czasowe: 15 lat
|
Zdarzenia niepożądane będą mierzone za pomocą CTCAE V4.0 po powtórnym wlewie komórek z korekcją genów.
|
15 lat
|
Liczba kopii wektora utrzymywała się w czasie po powtórnym wlewie transdukowanego przeszczepu hematopoetycznych komórek macierzystych.
Ramy czasowe: 5 lat
|
Badania laboratoryjne zmierzą liczbę kopii wektorów znalezionych w populacjach leukocytów krwi po powtórnym wlewie komórek z korekcją genów, w tym granulocytów, komórek T, komórek B i komórek NK.
Populacje komórek będą izolowane przez wirowanie w gradiencie, a następnie barwienie przeciwciałami monoklonalnymi i sortowanie przepływowe.
|
5 lat
|
Zgłaszane przez pacjentów wyniki leczenia komórkami z korekcją genów, oceniane za pomocą kwestionariuszy PedsQL.
Ramy czasowe: 15 lat
|
Odpowiednie do wieku kwestionariusze PedsQL będą podawane na początku badania oraz w 1, 2, 4, 8, 10, 12 i 15 roku.
|
15 lat
|
Wpływ rodziny na poddanie się leczeniu komórkami z korekcją genów.
Ramy czasowe: 15 lat
|
Moduł PedsQL Family Impact będzie prowadzony na początku badania oraz w latach 1, 2, 4, 8, 10, 12 i 15.
|
15 lat
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Główny śledczy: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21. Erratum In: Blood. 2018 Dec 6;132(23):2527.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856. Erratum In: Sci Transl Med. 2016 Jun 1;8(341):341er5.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby metaboliczne
- Choroby układu odpornościowego
- Niemowlę, noworodek, choroby
- Choroby genetyczne, wrodzone
- Zaburzenia związane z niedoborem naprawy DNA
- Pierwotne niedobory odporności
- Zespoły niedoboru odporności
- Ciężki złożony niedobór odporności
- Fizjologiczne skutki leków
- Molekularne mechanizmy działania farmakologicznego
- Środki przeciwnowotworowe
- Środki immunosupresyjne
- Czynniki immunologiczne
- Środki przeciwnowotworowe, alkilujące
- Środki alkilujące
- Agoniści mieloablacyjni
- Busulfan
Inne numery identyfikacyjne badania
- 17-22799
- TR3-05535 (Inny numer grantu/finansowania: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN1-08363 (Inny numer grantu/finansowania: California Institute of Regenerative Medicine)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
- SOK ROŚLINNY
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .