- ICH GCP
- Yhdysvaltain kliinisten tutkimusten rekisteri
- Kliininen tutkimus NCT03538899
Autologinen geeniterapia artemispuutteelliselle SCID:lle
Vaiheen I/II toteutettavuustutkimus geeninsiirrosta artemispuutteisen vakavan yhdistetyn immuunivajavuuden (ART-SCID) tapauksessa käyttämällä itsestään inaktivoivaa lentivirusvektoria (AProArt) autologisten CD34-verisolujen muuntamiseen
Tutkimuksen yleiskatsaus
Tila
Interventio / Hoito
Yksityiskohtainen kuvaus
Lapset, joilla on SCID, eivät yleensä selviä ensimmäisen elinvuoden jälkeen ilman lopullista hoitoa. Tehokkain nykyinen parannuskeino on hematopoieettinen kantasolusiirto (HCT) ihmisen leukosyyttiantigeenin (HLA) kanssa yhteensopivalla sisaruksella. Vaikka vastaava sisarus-HCT voi hoitaa menestyksekkäästi ART-SCID:tä, alle 20 %:lla sairastuneista lapsista on tällainen luovuttaja, ja vaikka vastaava sisarusluovuttaja on saatavilla, T- ja B-solujen immuunimuodostus on usein epätäydellinen. ART-SCID on vaikein SCID-tyyppi, joka voidaan parantaa hematopoieettisilla kantasolusiirroilla käyttämällä vaihtoehtoisia luovuttajia. Siirtyminen vaatii tyypillisesti intensiivistä käsittelyä suuriannoksisilla alkyloivilla aineilla hylkimisen estämiseksi ja luuydinrakojen avaamiseksi. Näillä potilailla on myös suuri riski saada graft versus host -tauti (GVHD), kun käytetään vaihtoehtoisia luovuttajia. Suurimmalla osalla potilaista B-solujen palautuminen puuttuu ja he tarvitsevat elinikäisen immunoglobuliini-infuusioiden antamista. Potilailla, joilla on ART-SCID ja jotka saavat suuria annoksia alkylaattoreita, erityisesti kun käytetään kahta ainetta, on huonompi eloonjääminen, hampaiden epänormaali kehitys, endokrinopatiat ja lyhytkasvuisuus verrattuna lapsiin, jotka eivät saa alkylaattoreita tai ovat saaneet vain vähän tai SCID-tyyppejä, jotka ovat ei liity DNA-korjausvirheeseen. Näistä syistä tarvitaan turvallisempi ja tehokkaampi lähestymistapa ART-SCID:n kovettamiseksi. Autologinen geenikorjattu hematopoeettinen kantasolusiirto voi poistaa sekä GVHD:n riskin että alkylaattoreiden tarpeen hylkimisen estämiseksi.
Tutkimussuunnitelma on yhden kohortin pitkittäinen koe, jossa käytetään ei-satunnaistettuja potilaita, joita hoidettiin kerran lentivirusvektorilla Artemis-puutteellisen SCID:n geenikorjaukseen pieniannoksisella busulfaaniannoksella tehdyn hoitotyön jälkeen. Turvallisuuden mittaamiseksi ei ole suunniteltu virallista valvontaryhmää; Pikemminkin ensimmäisten kuuden ilmoittautuneen intensiivinen seuranta estää jatkuvan kertymisen turvasignaalien läsnä ollessa, ja pitkäaikaista turvallisuutta seurataan 15 vuoden ajan. Luuytimen kantasolut kerätään osallistujilta, jotka painavat ≤7,5 kiloa tai joiden sytokiinimobilisaatio on aiemmin epäonnistunut, ja sytokiinimobilisoidut perifeerisen veren kantasolut kerätään yli 7,5 kiloa painavilta osallistujilta. CD34-solut eristetään käyttämällä CliniMACS® CD34 Reagent System -solulajittelulaitetta. Solut transdusoidaan AProArt-lentivirusvektorilla. Transduktion tehostajia käytetään lisäämään transduktiotehokkuutta perifeerisen veren CD34+-soluissa potilailta, joille suoritetaan perifeerisen veren kantasolukeräys. Nämä transdusoidut solut sitten kylmäsäilytetään, ja solujen alikvooteille tehdään turvallisuustestaus ja ne varataan tehon arviointia varten. Kaikki potilaat saavat busulfaanihoitoa, joka on kohdistettu 2 päivän aikana, jotta saavutetaan kumulatiivinen käyrän alla oleva pinta-ala (AUC) 20 mg*h/l (ablatiivinen kumulatiivinen AUC on 60-90mg*h/l). AProArt-transdusoitujen solujen infuusion jälkeen potilaat arvioidaan 4, 6, 8, 16 ja 24 viikon kohdalla todisteiden geenitransdusoimien perifeerisen veren mononukleaarisolujen ja mahdollisuuksien mukaan solulinjojen, mukaan lukien T-, B-, NK- ja granulosyytti-/myeloidisolut, varalta. . Jos 6 viikkoa (42 päivää) infuusion jälkeen ei ole näyttöä geenitransdusoituneista soluista, jatkohoidosta tehdään päätös.
Siirron jälkeisen päivän 42 jälkeen vastaanottajia seurataan toksisuuden ja T- ja B-soluimmuniteetin kestävän palautumisen suhteen. T-solujen immuunirakennetta seurataan säännöllisesti. Jos absoluuttinen neutrofiilien määrä on < 200/µl tai verihiutaleet < 20 000/µl kolmella riippumattomalla määrityksellä päivän 42 jälkeen transdusoitujen solujen infuusion jälkeen, potilas voi saada varasolujen infuusion tai allogeenisen hematopoeettisen kantasolusiirron. Potilaiden, jotka olivat neutropeenisia ennen hoitoa (SCID:hen liittyvä neutropenia), mutta jotka reagoivat granulosyyttipesäkkeitä stimuloivaan tekijään (GCSF), ei katsota epäonnistuneen, mikäli absoluuttinen neutrofiilien määrä voidaan pitää yli > 500/µl GCSF:llä.
Päivän 42 jälkeen potilaat arvioidaan viikoittain 12 viikkoon elinsiirron jälkeen ja viikolla 16, kuukausittain kuukauteen 6 elinsiirron jälkeen ja sitten 3 kuukausittain 24 kuukauteen. Sen jälkeen ne arvioidaan kuuden kuukauden välein vuosina 2-5 ja vuosittain vuoteen 15 asti. Tutkimuksen seurantaan kuuluu elämänlaatukyselyiden täyttäminen ja hermoston kehitystestien suorittaminen.
Potilaille, joilla on todisteita kliinisesti riittämättömästä rekonstituutiosta, alhaisesta VCN:stä tai muista piirteistä, jotka viittaavat kliinisesti riittämättömään vasteeseen alkuperäiseen geeniterapiatoimenpiteeseen, tarjotaan geenitransdusoitujen solujen toistuva infuusio. Hoito-ohjelmat, jotka annetaan ennen toistuvaa geeniterapiamenettelyä, voivat sisältää pienen annoksen busulfaania, muuta hoitoa tai ei hoitoa.
Tämän kokeilun turvallisuusseurantaa varten nimitetään riippumaton Data Safety Monitoring Board (DSMB). DSMB tarkistaa kaikki tiedot turvallisuussyistä säännöllisen aikataulun mukaisesti ilmoittautuneiden koehenkilöiden määrän perusteella ja suorittaa myös erityisen kiireellisen tarkastelun kaikista protokollaan liittyvistä vakavista haittatapahtumista (SAE). Kun tutkimus aloitetaan, DSMB tarkistaa kunkin kolmen ensimmäisen tapauksen tulokset ennen kuin jatkaa seuraavien potilaiden kanssa.
Tutkimustuote (IND1711) ART-SCID-geeninsiirtotutkimukseen ei ole saatavilla laajennettuun käyttöön. 21 CFR:n osan 312.305(3) mukaisesti tutkimuksen johtoryhmä on todennut, että tutkimustuotteen tarjoaminen laajennettuun käyttöön tällä hetkellä häiritsee kliinisen tutkimuksen suorittamista ja loppuun saattamista sekä mahdollista tulevaa laajennettua käyttöä. Tutkimustuote on kelvollisten potilaiden saatavilla osallistumalla tähän kliiniseen tutkimukseen.
Opintotyyppi
Ilmoittautuminen (Arvioitu)
Vaihe
- Vaihe 2
- Vaihe 1
Yhteystiedot ja paikat
Opiskeluyhteys
- Nimi: Morton Cowan, MD
- Puhelinnumero: 415-476-2188
- Sähköposti: Mort.Cowan@ucsf.edu
Tutki yhteystietojen varmuuskopiointi
- Nimi: Jennifer Puck, MD
- Puhelinnumero: 415 502-2090
- Sähköposti: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Opiskelupaikat
-
-
California
-
San Francisco, California, Yhdysvallat, 94143
- Rekrytointi
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Osallistumiskriteerit
Kelpoisuusvaatimukset
Opintokelpoiset iät
Hyväksyy terveitä vapaaehtoisia
Kuvaus
Sisällyttämiskriteerit:
- ≥ 2,0 kuukauden ikäinen busulfaanihoitoa aloitettaessa
- Tyypillisen tai vuotavan ART-SCID:n diagnoosi:
Äskettäin diagnosoiduilla ART-SCID-potilailla tulee olla:
- Artemiksen puutos; JA
- CD3-määrä < 300 autologista solua/µL (tyypillinen ART-SCID) TAI spontaani äidin kimerismi, TAI CD3-määrä > 300/µl, mutta T-solureseptorin Vb-diversiteetti on rajoitettu, määriteltynä 18/24 tai vähemmän polyklonaalisia perheitä.
JA - CD45-soluvaste mitogeeneille (PHA) < 50 % laboratorion normaalin alueen alarajasta (vuotava ART-SCID).
Potilaat, joilla on diagnosoitu ART-SCID yllä olevien kriteerien mukaisesti ja jotka ovat epäonnistuneet allogeenisessa siirrossa (mukaan lukien HLA-yhteensopiva sisarussiirto), voivat osallistua, jos he täyttävät seuraavat kriteerit:
- Ovatko vähintään 3 kuukautta allogeenisen hematopoeettisen kantasolusiirron jälkeen ilman todisteita allogeenisten luovuttajasolujen (lukuun ottamatta äidin soluja) istutuksesta
TAI ovat istutettuja, mutta niillä on vähintään 2 seuraavista neljästä ehdosta:
- Vähentynyt CD3-luovuttajakimeerismi vähintään kolmella arvioinnilla, joiden välillä on vähintään 1 kuukausi ennen rekisteröintiä TAI < 5 % luovuttajan kimerismi kokonaisuudessaan veressä ja luuytimessä ≥ 3 kuukautta siirron jälkeen.
Epätäydellisesti rekonstituoitunut T-soluimmuniteetti ≥ 6 kuukauden iässä (1 seuraavista kahdesta):
- CD4 < 200/μL JA CD45-solujen PHA < 50 % laboratorion normaalin alarajasta;
- CD4 CD45RA < 20 % kaikista CD4-soluista TAI T-solureseptorin Vb-diversiteetti on rajoitettu, määriteltynä 18/24 tai vähemmän polyklonaalisia perheitä.
- Ei luovuttajien B-soluja TAI B-solujen toiminnan puute (immunoglobuliini M isohemagglutiniinit < 1:8 (ei veriryhmä AB) JA immunoglobuliini A (IgA) tai IgM-arvot alle iän viitealueen JA jos ei saa suonensisäistä immunoglobuliinia (IVIG), ei suojaa tetanusimmunisaation vasta-ainetaso x2).
- Kliiniset ilmenemismuodot, jotka vastaavat jatkuvaa T- ja B-solujen immuunikatoa, esim. krooninen infektio, mukaan lukien norovirus, sytomegalovirus, ihmisen herpesvirus 6; TAI akuutti tai toistuva infektio (esim. PJP), keuhkoputkentulehdus, krooninen sinuiitti.
JA
- Sinulla ei ole aiempaa altistumista suuriannoksiselle busulfaaniannokselle (≥10 mg/kg kokonaisannos tai keskimääräinen kumulatiivinen altistus ≥40 mg*h/l). Jos kumulatiivisen kokonais-AUC:n, mukaan lukien aiempi busulfaanialtistus plus tässä protokollassa annettava annos, ennustetaan olevan ≤60 mg*h/l, potilas on kelvollinen, mikäli muut kriteerit täyttyvät.
- Ei lääketieteellisesti kelvollista HLA-identtistä sisarusta, jolla on normaali immuunijärjestelmä ja joka voisi toimia allogeenisena luuytimen luovuttajana (koskee vain äskettäin diagnosoituja potilaita).
Kirjallinen tietoinen suostumus Institutional Review Boardin (IRB) ohjeiden mukaisesti.
Poissulkemiskriteerit:
- Maksan toimintakokeet (aspartaattiaminotransferaasi, alaniinitransaminaasi, gammaglutamyylitransferaasi) > kolme kertaa normaalin yläraja laboratorio- ja/tai kokonaisbilirubiinin osalta > 1,50 mg/dl suunnitellun busulfaanihoidon aloitushetkellä.
- Aiempi maksan laskimotukossairaus (sinusoidaalinen obstruktiooireyhtymä).
- Lääketieteellisesti kelvollinen HLA-yhteensopiva sisarus (koskee vain äskettäin diagnosoituja potilaita).
- Todisteet HIV-infektiosta polymeraasiketjureaktiolla tai p24-antigeenitestillä.
- Ei voi sietää yleisanestesiaa ja/tai luuytimen keräämistä tai perifeerisen veren kantasolujen keräämistä (afereesia) tai keskuslaskimokatetrin asettamista.
- Sellainen sairaus, joka osoittaa, että eloonjäämisajan ennustetaan olevan alle 4 kuukautta, kuten mekaanisen ventilaation tarve, tärkeän elinjärjestelmän vakava toimintahäiriö tai todisteet vakavasta, etenevästä infektiosta, joka ei kestä lääkehoitoa.
- Raskaus
- Sosiaalinen tilanne, joka osoittaa, että perhe ei ehkä pysty noudattamaan protokollamenettelyjä ja suositeltua lääketieteellistä hoitoa ja seurantaa.
- Muut olosuhteet, jotka johtavan tutkijan ja/tai tutkijoiden mukaan estävät transdusoitujen solujen infuusion tai tutkimukseen osallistumisen.
Opintosuunnitelma
Miten tutkimus on suunniteltu?
Suunnittelun yksityiskohdat
- Ensisijainen käyttötarkoitus: Hoito
- Jako: Ei käytössä
- Inventiomalli: Yksittäinen ryhmätehtävä
- Naamiointi: Ei mitään (avoin tarra)
Aseet ja interventiot
Osallistujaryhmä / Arm |
Interventio / Hoito |
---|---|
Kokeellinen: Geeniterapia (AProArt)
Geeninsiirto artemispuutteisen vakavan yhdistetyn immuunivajavuuden (ART-SCID) varalta käyttämällä itseinaktivoivaa lentivirusvektoria (AProArt) autologisten CD34-hematopoieettisten solujen muuntamiseen.
CliniMACS® CD34 Reagent System -lajittelulaitetta käytetään CD34-solujen valitsemiseen.
Potilaita hoidetaan pienellä annoksella busulfaania ennen elinsiirtoa.
|
Osallistujille suoritetaan infuusio autologisilla hematopoieettisilla soluilla, jotka on transdusoitu lentivirusvektorilla AProArt, joka sisältää oikean muodon DCLRE1C:n komplementaarista deoksiribonukleiinihappo-DNA:ta, saatuaan subablatiivisen, altistumiseen kohdistetun busulfaanikäsittelyn.
Muut nimet:
Hematopoieettisten progenitorisolujen käsittely CD34-solujen valitsemiseksi CliniMACS® CD34 -reagenssijärjestelmällä ennen infuusiota.
Busulfaani on solusyklin epäspesifinen alkyloiva antineoplastinen aine, joka kuuluu alkyylisulfonaattien luokkaan.
Potilaat saavat pienen annoksen busulfaanihoitoa, joka on kohdistettu 2 päivän aikana, jotta saavutetaan kumulatiivinen käyrän alla oleva pinta-ala (AUC) 20 mg*h/l.
Muut nimet:
|
Mitä tutkimuksessa mitataan?
Ensisijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
Selviytyvät ART-SCID-potilaat, jotka saavat itsestään inaktivoivan (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoimia CD34-soluja autologisen kantasolusiirron kautta
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Potilaan eloonjäämistila ja (jos mahdollista) kuolinsyy kirjataan kokonaiseloonjäämisen arvioimiseksi.
|
2 vuotta
|
Toissijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
AProArt-transdusoitujen solujen annos
Aikaikkuna: 1 kuukausi
|
AProArt-transdusoitujen CD34-solujen lukumäärä ruumiinpainokiloa kohti lasketaan siten, että tavoite on vähintään 2x10e6 transdusoitua solua ja enintään 15x10e6 transdusoitua solua kilogrammaa kohti.
|
1 kuukausi
|
Hoidon ilmaantuvuus Busulfaanin antamiseen liittyvät haittatapahtumat
Aikaikkuna: 42 päivää
|
Hoidosta aiheutuvat haittatapahtumat mitataan CTCAE-versiolla 4.0.
|
42 päivää
|
Hematopoieettinen palautuminen potilailla, joilla on ART-SCID ja jotka saavat itsestään inaktivoivan (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoimia CD34-soluja autologisen kantasolusiirron kautta.
Aikaikkuna: 1 vuosi
|
Potilaille tehdään verikokeita täydellisen verenkuvan ja erotuksen mittaamiseksi.
|
1 vuosi
|
Lymfosyyttitutkimukset immuunijärjestelmän palautumisen mittaamiseksi potilailla, jotka ovat saaneet AProArt-lentivirusvektoritransdusoimia autologisia CD34-hematopoieettisia kantasolusiirtoja pieniannoksisen busulfaanihoidon jälkeen
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Potilaille tehdään verikokeita T-, B- ja NK-solujen määrän ja toiminnan mittaamiseksi.
|
2 vuotta
|
Spesifiset vasta-ainetiitterit immuunitoiminnan muodostumisen mittaamiseksi potilailla, jotka ovat saaneet AProArt-lentivirusvektoritransdusoidun autologisen CD34-hematopoieettisen kantasolun siirron pienen annoksen busulfaanihoidon jälkeen
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Potilaille tehdään verikokeita jäykkäkouristustoksoidin vasta-aineiden tuotannon mittaamiseksi, mikä on dokumentoitu saavuttamalla suojaavat tasot immunisaation jälkeen.
|
2 vuotta
|
Immunoglobuliinitasot B-solujen immuunitoiminnan muodostumisen mittaamiseksi potilailla, jotka ovat saaneet AProArt-lentivirusvektorin transdusoimia autologisia CD34-hematopoieettisia kantasolusiirtoja pieniannoksisen busulfaanihoidon jälkeen
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Potilaille tehdään verikokeita kiertävien immunoglobuliinien tason mittaamiseksi.
|
2 vuotta
|
AProArt lentivirusvektorin transdusoitujen hematopoieettisten solujen monilinjainen istutus
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Siirrännäinen mitataan suorittamalla kvantitatiivisia PCR-määrityksiä transdusoituneiden solujen havaitsemiseksi vähintään kahdessa seuraavista linjasta: T, B, NK ja granulosyytti/myeloidi.
|
2 vuotta
|
Itseinaktivoituvien (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoitujen CD34-solujen autologiseen kantasolusiirtoon liittyvien haittatapahtumien ilmaantuvuus
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Haittatapahtumat mitataan käyttämällä CTCAE-versiota 4.0, mukaan lukien kaikki onkogeeniset tapahtumat.
|
2 vuotta
|
Muut tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
Pienen annoksen busulfaanialtistuksen lopullinen käyrän alla oleva pinta-ala (AUC).
Aikaikkuna: 42 päivää
|
Lopullista käyrän alla olevaa pinta-alaa (AUC) verrataan kumulatiiviseen tavoitearvoon 20±4 mg*h/l.
|
42 päivää
|
Repertuaarin monimuotoisuus geeniterapian ART-SCID-saatajilla transplantaation jälkeen.
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Mittaus T-solureseptorin Vb uudelleenjärjestäytyneiden reseptorien spektrityypityksen avulla.
|
2 vuotta
|
Vektorikopioiden määrä säilyi ajan mittaan transdusoidun hematopoeettisen kantasolusiirron infuusion jälkeen.
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Laboratoriotutkimuksissa mitataan veren leukosyyttipopulaatioista löydettyjen vektorikopioiden lukumäärää, mukaan lukien granulosyytit, T-solut, B-solut ja NK-solut.
Solupopulaatiot eristetään gradienttisentrifugoinnilla, jota seuraa värjäys monoklonaalisilla vasta-aineilla ja virtauslajittelu.
|
2 vuotta
|
Vektoriintegraatiokohtien sijainti monipuolisen insertiokohdan repertuaarin ylläpitämiseksi
Aikaikkuna: 2 vuotta
|
Veren leukosyyttien sekapopulaatiosta gradienttieristetyt ja virtauksen mukaan lajitellut komponentit (T-, B-, myeloidi- ja NK-solut) sisältävät genomisia DNA-fragmentteja, jotka monistetaan linkkerivälitteisellä PCR:llä.
Massiivinen rinnakkaissekvensointi suoritetaan ja integroidun vektorin ja linkkereiden väliset liitos-isäntä-DNA-sekvenssit kartoitetaan ihmisen genomiin käyttämällä BLAST-ohjelmistoa.
Jokaisen insertiokohdan genominen sijainti määritetään ja solujen lukumäärää, joilla on sama insertiokohta, seurataan.
|
2 vuotta
|
Itseinaktivoituvien (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoitujen CD34-solujen autologiseen kantasolusiirtoon liittyvien pitkäaikaisten haittatapahtumien ilmaantuvuus.
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
Haittatapahtumat mitataan CTCAE V4.0:lla
|
15 vuotta
|
Pitkäaikainen eloonjääminen ART-SCID-potilailla, joille tehdään itseinaktivoituvien (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoimien CD34-solujen autologinen kantasolusiirto.
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
Osallistujien lukumäärä, joiden immuunijärjestelmä toimii T- ja B-solujen määrällä ja toiminnalla mitattuna.
|
15 vuotta
|
Transduktion tehostajien (dmPGE2 ja LentiBOOST™) tehokkuus immuunijärjestelmän palautumiseen ART-SCID-potilailla.
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Laboratoriotutkimuksissa mitataan vektorin kopiomäärää (VCN).
|
5 vuotta
|
Transduktion tehostajien (dmPGE2 ja LentiBOOST™) tehokkuus T- ja B-solujen immuunijärjestelmän palautumiseen ART-SCID-potilailla.
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Laboratoriotutkimuksissa mitataan lymfosyyttialaryhmiä.
|
5 vuotta
|
Ennaltaehkäisevän sirolimuusin vaikutus autoimmuuni hemolyyttisen anemian esiintymisen vähentämiseen geenikorjattujen solujen infuusion jälkeen.
Aikaikkuna: 7 vuotta
|
Retikulosyyttien, suoran Coombsin, epäsuoran Coombsin ja LDH:n säännöllinen seuranta viikosta 12 infuusion jälkeen.
|
7 vuotta
|
Geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion hoidon vaikutukset eloonjäämiseen potilailla, joille ei kehity riittävää immuniteettia
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
Potilaan eloonjäämistila ja (jos mahdollista) kuolinsyy kirjataan kokonaiseloonjäämisen arvioimiseksi.
|
15 vuotta
|
AProArt-transdusoitujen solujen annos geenikorjattujen solujen toistuvalla infuusiolla
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
AProArt-transdusoitujen CD34-solujen määrä painokiloa kohden lasketaan toistuvaa infuusiota varten siten, että tavoite on vähintään 2x10e6 transdusoitua solua ja enintään 15x10e6 transdusoitua solua kilogrammaa kohti.
|
5 vuotta
|
Hematopoieettinen palautuminen potilailla, joilla on ART-SCID ja jotka saavat itsestään inaktivoivan (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoimia CD34-soluja autologisten kantasolujen toistuvan infuusiosiirron kautta.
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Potilaille tehdään verikokeita täydellisen verenkuvan ja erotuksen mittaamiseksi geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen.
|
5 vuotta
|
Spesifiset vasta-ainetiitterit immuunitoiminnan muodostumisen mittaamiseksi potilailla, jotka ovat saaneet toistuvan AProArt-lentivirusvektorin transdusoidun autologisen CD34-hematopoieettisen kantasolusiirron
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Potilaille tehdään verikokeita geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen, jotta voidaan mitata vasta-aineiden tuotanto tetanustoksoidille, mikä on dokumentoitu suojaavien tasojen saavuttamisella immunisoinnin jälkeen.
|
5 vuotta
|
Itseinaktivoituvien (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoitujen CD34-solujen autologisten kantasolujen toistuvaan infuusioon liittyvien haittavaikutusten ilmaantuvuus
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Haittatapahtumat mitataan geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen käyttämällä CTCAE-versiota 4.0, mukaan lukien kaikki onkogeeniset tapahtumat.
|
5 vuotta
|
Repertuaarin monimuotoisuus ART-SCID-saajien geeniterapiassa geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen.
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Mittaus T-solureseptorin Vb uudelleenjärjestäytyneiden reseptorien spektrityypityksen avulla geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen.
|
5 vuotta
|
Itseinaktivoituvien (SIN) lentivirusvektorin (APoArt) transdusoitujen CD34-solujen toistuvaan autologiseen kantasolusiirtoon liittyvien pitkäaikaisten haittatapahtumien ilmaantuvuus.
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
Haittatapahtumat mitataan käyttämällä CTCAE V4.0:aa geenikorjattujen solujen toistuvan infuusion jälkeen.
|
15 vuotta
|
Vektorikopioiden määrä säilyi ajan mittaan transdusoidun hematopoeettisen kantasolusiirron toistetun infuusion jälkeen.
Aikaikkuna: 5 vuotta
|
Laboratoriotutkimuksissa mitataan veren leukosyyttipopulaatioista löydettyjen vektorikopioiden lukumäärää geenikorjattujen solujen, mukaan lukien granulosyytit, T-solut, B-solut ja NK-solut, toistuvan infuusion jälkeen.
Solupopulaatiot eristetään gradienttisentrifugoinnilla, jota seuraa värjäys monoklonaalisilla vasta-aineilla ja virtauslajittelu.
|
5 vuotta
|
Potilas raportoi geenikorjattujen solujen hoidon tuloksen PedsQL-kyselylomakkeilla arvioituna.
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
Ikäkohtaisia PedsQL-kyselylomakkeita annetaan lähtötilanteessa ja vuosina 1, 2, 4, 8, 10, 12 ja 15.
|
15 vuotta
|
Geenikorjattujen solujen hoidon perhevaikutus.
Aikaikkuna: 15 vuotta
|
PedsQL Family Impact -moduulia annetaan lähtötilanteessa ja vuosina 1, 2, 4, 8, 10, 12 ja 15.
|
15 vuotta
|
Yhteistyökumppanit ja tutkijat
Tutkijat
- Päätutkija: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Julkaisuja ja hyödyllisiä linkkejä
Yleiset julkaisut
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21. Erratum In: Blood. 2018 Dec 6;132(23):2527.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856. Erratum In: Sci Transl Med. 2016 Jun 1;8(341):341er5.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
Opintojen ennätyspäivät
Opi tärkeimmät päivämäärät
Opiskelun aloitus (Todellinen)
Ensisijainen valmistuminen (Arvioitu)
Opintojen valmistuminen (Arvioitu)
Opintoihin ilmoittautumispäivät
Ensimmäinen lähetetty
Ensimmäinen toimitettu, joka täytti QC-kriteerit
Ensimmäinen Lähetetty (Todellinen)
Tutkimustietojen päivitykset
Viimeisin päivitys julkaistu (Todellinen)
Viimeisin lähetetty päivitys, joka täytti QC-kriteerit
Viimeksi vahvistettu
Lisää tietoa
Tähän tutkimukseen liittyvät termit
Muita asiaankuuluvia MeSH-ehtoja
- Metaboliset sairaudet
- Immuunijärjestelmän sairaudet
- Vauva, vastasyntynyt, sairaudet
- Geneettiset sairaudet, synnynnäiset
- DNA:n korjaus-puutoshäiriöt
- Primaariset immuunipuutostaudit
- Immunologiset puutosoireyhtymät
- Vaikea yhdistetty immuunipuutos
- Huumeiden fysiologiset vaikutukset
- Farmakologisen vaikutuksen molekyylimekanismit
- Antineoplastiset aineet
- Immunosuppressiiviset aineet
- Immunologiset tekijät
- Antineoplastiset aineet, alkyloiva
- Alkylointiaineet
- Myeloablatiiviset agonistit
- Busulfaani
Muut tutkimustunnusnumerot
- 17-22799
- TR3-05535 (Muu apuraha/rahoitusnumero: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN1-08363 (Muu apuraha/rahoitusnumero: California Institute of Regenerative Medicine)
Yksittäisten osallistujien tietojen suunnitelma (IPD)
Aiotko jakaa yksittäisten osallistujien tietoja (IPD)?
IPD-suunnitelman kuvaus
IPD-jaon aikakehys
IPD-jaon käyttöoikeuskriteerit
IPD-jakamista tukeva tietotyyppi
- STUDY_PROTOCOL
- MAHLA
Lääke- ja laitetiedot, tutkimusasiakirjat
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää lääkevalmistetta
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää laitetuotetta
Nämä tiedot haettiin suoraan verkkosivustolta clinicaltrials.gov ilman muutoksia. Jos sinulla on pyyntöjä muuttaa, poistaa tai päivittää tutkimustietojasi, ota yhteyttä register@clinicaltrials.gov. Heti kun muutos on otettu käyttöön osoitteessa clinicaltrials.gov, se päivitetään automaattisesti myös verkkosivustollemme .
Kliiniset tutkimukset Vaikea yhdistetty immuunipuutos
-
University of MiamiJackson Health SystemEi ole enää käytettävissä
-
Jiangsu HengRui Medicine Co., Ltd.Valmis
-
Oslo University HospitalValmis
-
Jiangsu HengRui Medicine Co., Ltd.Valmis
-
Jiangsu HengRui Medicine Co., Ltd.Valmis
-
Fujian Cancer HospitalEi vielä rekrytointiaHawthorn Red Combined Refractory Cancer Pain
-
IMMUNOe Research CentersValmisCVI - Common Variable ImmunodeficiencyYhdysvallat
-
Novartis PharmaceuticalsValmisCommon Variable Immunodeficiency (CVID), APDS / PASLISaksa, Venäjän federaatio, Irlanti, Italia, Yhdistynyt kuningaskunta, Valko-Venäjä, Alankomaat, Tšekki, Yhdysvallat
-
University of California, Los AngelesJeffrey Modell FoundationTuntematonCVI - Common Variable ImmunodeficiencyYhdysvallat
-
Zagazig UniversityUniversity of Ha'il , Saudi Arabia.ValmisAkuutti munuaisvaurio | Sever akuutti hengitystieoireyhtymä ja akuutti munuaisvaurioEgypti