- ICH GCP
- Amerikanska kliniska prövningsregistret
- Klinisk prövning NCT03538899
Autolog genterapi för artemisbrist SCID
En fas I/II genomförbarhetsstudie av genöverföring för artemisbrist, allvarlig kombinerad immunbrist (ART-SCID) med användning av en självinaktiverande lentiviral vektor (AProArt) för att transducera autologa CD34 hematopoetiska celler
Studieöversikt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljerad beskrivning
Barn med SCID överlever i allmänhet inte efter det första levnadsåret utan definitiv behandling. Det mest effektiva botemedlet är hematopoetisk stamcellstransplantation (HCT) med ett humant leukocytantigen (HLA) matchat syskon. Medan ett matchat syskon HCT framgångsrikt kan behandla ART-SCID, har färre än 20 % av de drabbade barnen en sådan donator, och även när en matchad syskondonator finns tillgänglig är det ofta ofullständig T- och B-cellsimmunrekonstitution. ART-SCID är den svåraste typen av SCID att bota genom hematopoetisk stamcellstransplantation med alternativa donatorer. Enymping kräver vanligtvis intensiv konditionering med högdos alkyleringsmedel för att förhindra avstötning och för att öppna märgnischer. Dessa patienter har också en hög risk att utveckla graft versus host disease (GVHD) när alternativa donatorer används. Den stora majoriteten av patienterna saknar B-cellsrekonstitution och kräver livslång administrering av immunglobulininfusioner. Patienter med ART-SCID som får höga doser av alkylatorer, särskilt när 2 medel används, har sämre överlevnad, onormal tandutveckling, endokrinopatier och kortväxthet jämfört med barn som exponeras för inga eller begränsade alkylatorer eller barn med SCID-typer som är inte associerat med en DNA-reparationsdefekt. Av dessa skäl behövs ett säkrare och mer effektivt tillvägagångssätt för att bota ART-SCID. Autolog genkorrigerad hematopoetisk stamcellstransplantation kan eliminera både risken för GVHD och behovet av alkylatorer för att förhindra avstötning.
Studiedesignen är ett longitudinellt experiment med en kohort med icke-randomiserade patienter som behandlats en gång med en lentiviral vektor för genkorrigering av Artemis-defekt SCID efter konditionering med lågdos busulfan. Ingen formell kontrollgrupp är planerad för att mäta säkerheten; snarare kommer intensiv övervakning av de första 6 inskrivna att förhindra fortsatt ackumulering i närvaro av säkerhetssignaler, och långsiktig säkerhet kommer att övervakas i 15 år. Benmärgsstamceller kommer att skördas från deltagare som väger ≤7,5 kilogram eller har misslyckats med cytokinmobilisering tidigare, och cytokinmobiliserade perifera blodstamceller kommer att skördas från deltagare som väger >7,5 kilogram. CD34-celler kommer att isoleras med hjälp av cellsorteraren CliniMACS® CD34 Reagent System. Cellerna kommer att transduceras med den AProArt lentivirala vektorn. Transduktionsförstärkare kommer att användas för att öka transduktionseffektiviteten i CD34+-celler från perifert blod från patienter som genomgår en perifer blodstamcellsinsamling. Dessa transducerade celler kommer sedan att kryokonserveras och alikvoter av cellerna kommer att genomgå säkerhetstestning och reserveras för utvärdering av styrkan. Alla patienter kommer att få busulfankonditionering riktad under 2 dagar för att uppnå en kumulativ yta under kurvan (AUC) på 20 mg*h/L (en ablativ kumulativ AUC är 60-90mg*h/L). Efter infusionen av AProArt-transducerade celler kommer patienterna att utvärderas vid 4, 6, 8, 16 och 24 veckor för bevis på gentransducerade mononukleära celler från perifert blod och när så är möjligt celllinjer inklusive T, B, NK och granulocyt-/myeloidceller . Om det inte finns några tecken på gentransducerade celler 6 veckor (42 dagar) efter infusion, kommer ett beslut att fattas om ytterligare behandling.
Efter dag 42 efter transplantationen kommer mottagarna att följas för toxicitet och varaktig rekonstitution av T- och B-cellsimmunitet. Immunrekonstitution av T-celler kommer att övervakas regelbundet. Om det absoluta antalet neutrofiler är < 200/µl eller trombocyter < 20 000/µl vid 3 oberoende bestämningar efter dag 42 efter infusion av transducerade celler, kan patienten få infusion av reservcellerna eller en allogen hematopoetisk stamcellstransplantation. Patienter som var neutropena före konditionering (SCID-relaterad neutropeni) men som svarade på granulocytkolonistimulerande faktor (GCSF) kommer inte att anses ha misslyckats, förutsatt att det absoluta neutrofilantalet kan bibehållas över >500/µl med GCSF.
Efter dag 42 kommer patienter att utvärderas varje vecka till och med 12 veckor efter transplantationen och vid vecka 16, månadsvis till och med månad 6 efter transplantation, och sedan 3 månader till och med månad 24. De kommer sedan att bedömas med sex månaders mellanrum under år 2-5 och årligen till och med år 15. Uppföljning av studien kommer att omfatta ifyllande av livskvalitetsfrågor och administrering av neuroutvecklingstester.
Patienter med tecken på kliniskt otillräcklig rekonstitution, låg VCN eller andra egenskaper som tyder på kliniskt otillräckligt svar på den initiala genterapiproceduren kommer att erbjudas en upprepad infusion av gentransducerade celler. Konditioneringsregimer som ges före en upprepad genterapiprocedur kan innefatta lågdos busulfan, annan konditionering eller ingen konditionering.
En oberoende Data Safety Monitoring Board (DSMB) kommer att utses för säkerhetsövervakning av detta försök. DSMB kommer att granska all data för säkerhet på ett regelbundet schema, baserat på antalet inskrivna försökspersoner och kommer också att genomföra en särskild brådskande granskning av alla protokollrelaterade allvarliga biverkningar (SAE). När prövningen inleds kommer DSMB att granska resultaten av vart och ett av de första 3 fallen innan det går vidare med efterföljande patienter.
Undersökningsprodukten (IND1711) för ART-SCID-genöverföringsstudien är inte tillgänglig för utökad tillgång. Enligt 21 CFR Part 312.305(3) har studieledningsgruppen bestämt att tillhandahållande av undersökningsprodukten för utökad tillgångsanvändning vid denna tidpunkt skulle störa genomförandet och slutförandet av den kliniska prövningen och potentiell utveckling av framtida utökad tillgångsanvändning. Undersökningsprodukten är tillgänglig för kvalificerade patienter genom deltagande i denna kliniska prövning.
Studietyp
Inskrivning (Beräknad)
Fas
- Fas 2
- Fas 1
Kontakter och platser
Studiekontakt
- Namn: Morton Cowan, MD
- Telefonnummer: 415-476-2188
- E-post: Mort.Cowan@ucsf.edu
Studera Kontakt Backup
- Namn: Jennifer Puck, MD
- Telefonnummer: 415 502-2090
- E-post: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Studieorter
-
-
California
-
San Francisco, California, Förenta staterna, 94143
- Rekrytering
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Deltagandekriterier
Urvalskriterier
Åldrar som är berättigade till studier
Tar emot friska volontärer
Beskrivning
Inklusionskriterier:
- ≥2,0 månaders ålder vid påbörjad busulfanbehandling
- Diagnos av typisk eller läckande ART-SCID:
Nydiagnostiserade ART-SCID-patienter måste ha:
- Artemisbrist; OCH
- CD3-antal < 300 autologa celler/µL (typiskt ART-SCID) ELLER spontan maternell chimerism, ELLER CD3-antal >300/µL men med begränsad T-cellsreceptor Vb-diversitet, definierad som 18/24 eller färre polyklonala familjer.
OCH - CD45-cellsvar på mitogener (PHA) < 50 % av den nedre gränsen för normalområdet för labbet (läckande ART-SCID).
Patienter som diagnostiserats med ART-SCID enligt kriterierna ovan och som har misslyckats med en allogen transplantation (inklusive en HLA-matchad syskontransplantation) kan delta om de uppfyller kriterierna nedan:
- Är minst 3 månader efter allogen hematopoetisk stamcellstransplantation utan tecken på intransplantation av allogena donatorceller (exklusive moderns celler)
ELLER är ympade men har minst 2 av följande 4 tillstånd:
- Minskande CD3-donatorchimerism med minst 3 utvärderingar åtskilda av minst 1 månad före tidpunkten för inskrivning ELLER < 5 % total donatorchimerism i blod och märg ≥3 månader efter transplantation.
Ofullständigt rekonstituerad T-cellsimmunitet vid ≥6 månader (1 av följande 2):
- CD4 < 200/μL OCH CD45-cell-PHA < 50 % av den nedre normalgränsen för lab;
- CD4 CD45RA < 20 % av totala CD4-celler ELLER T-cellreceptor Vb-diversitet är begränsad, definierad som 18/24 eller färre polyklonala familjer.
- Inga donator-B-celler ELLER brist på B-cellsfunktion (immunoglobulin M isohemagglutininer < 1:8 (ej blodgrupp AB) OCH immunglobulin A (IgA) eller IgM-värden under referensintervallet för ålder OCH om man inte får intravenöst immunglobulin (IVIG), inget skyddande nivå av antikropp mot stelkrampsimmunisering x2).
- Kliniska manifestationer som överensstämmer med ihållande T- och B-cellsimmunbrist, t.ex. kronisk infektion inklusive norovirus, cytomegalovirus, humant herpesvirus 6; ELLER akut eller återkommande infektion (t.ex. PJP), bronkiektasis, kronisk bihåleinflammation.
OCH
- Ha ingen tidigare exponering för hög dos busulfan (≥10 mg/kg total dos eller genomsnittlig kumulativ exponering på ≥40 mg*timme/L). Om den totala kumulativa AUC inklusive tidigare busulfanexponering plus den dos som ska administreras i detta protokoll förutsägs vara ≤60 mg*timme/L, skulle patienten vara berättigad förutsatt att andra kriterier är uppfyllda.
- Inget medicinskt kvalificerat HLA-identiskt syskon med normalt immunsystem som skulle kunna fungera som allogen benmärgsdonator (gäller endast nydiagnostiserade patienter).
Skriftligt informerat samtycke enligt riktlinjer från Institutional Review Board (IRB).
Exklusions kriterier:
- Leverfunktionstester (aspartataminotransferas, alanintransaminas, gamma-glutamyltransferas) > tre gånger den övre normalgränsen för laboratorie- och/eller totalbilirubin >1,50 mg/dl vid tidpunkten för planerad start av busulfankonditionering.
- Tidigare veno-ocklusiv sjukdom (sinusoidal obstruktionssyndrom) i levern.
- Medicinskt kvalificerade HLA-matchade syskon (gäller endast nydiagnostiserade patienter).
- Bevis på HIV-infektion genom polymeraskedjereaktion eller p24-antigentestning.
- Kan inte tolerera generell anestesi och/eller märgskörd eller perifer blodstamcellsuppsamling (aferes) eller införande av central venkateter.
- Förekomst av ett medicinskt tillstånd som indikerar att överlevnaden förutspås vara mindre än 4 månader, såsom kravet på mekanisk ventilation, allvarligt fel i ett större organsystem eller tecken på en allvarlig, progressiv infektion som är motståndskraftig mot medicinsk behandling.
- Graviditet
- En social situation som indikerar att familjen kanske inte kan följa protokollsprocedurer och rekommenderad medicinsk vård och uppföljning.
- Andra tillstånd som enligt huvudutredarens och/eller medutredarnas uppfattning kontraindikerar infusion av transducerade celler eller deltagande i studien.
Studieplan
Hur är studien utformad?
Designdetaljer
- Primärt syfte: Behandling
- Tilldelning: N/A
- Interventionsmodell: Enskild gruppuppgift
- Maskning: Ingen (Open Label)
Vapen och interventioner
Deltagargrupp / Arm |
Intervention / Behandling |
---|---|
Experimentell: Genterapi (AProArt)
Genöverföring för artemis-brist, allvarlig kombinerad immunbrist (ART-SCID) med hjälp av en självinaktiverande lentiviral vektor (AProArt) för att transducera autologa CD34-hematopoetiska celler.
Sorteringsenheten CliniMACS® CD34 Reagent System kommer att användas för att välja CD34-celler.
Patienterna kommer att konditioneras med lågdos busulfan före transplantation.
|
Deltagarna kommer att genomgå infusion med autologa hematopoetiska celler transducerade med en lentiviral vektor, AProArt, som innehåller den korrekta formen av DCLRE1C komplementär deoxiribonukleinsyra-DNA, efter att ha fått subablativ, exponeringsinriktad busulfan-konditionering.
Andra namn:
Bearbetning av hematopoetiska progenitorceller för att selektera CD34-celler, med hjälp av CliniMACS® CD34-reagenssystemet, före infusion.
Busulfan är ett icke-specifikt alkylerande antineoplastiskt medel i cellcykeln, i klassen alkylsulfonater.
Patienterna kommer att få lågdos busulfankonditionering riktad under 2 dagar för att uppnå en kumulativ yta under kurvan (AUC) på 20 mg*timme/L.
Andra namn:
|
Vad mäter studien?
Primära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Överlevnad av patienter med ART-SCID som får självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler genom autolog stamcellstransplantation
Tidsram: 2 år
|
Patientöverlevnadsstatus och (om tillämpligt) dödsorsak kommer att registreras för att bedöma den totala överlevnaden.
|
2 år
|
Sekundära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Dos av AProArt-transducerade celler
Tidsram: 1 månad
|
Antalet AProArt-transducerade CD34-celler infunderade per kg kroppsvikt kommer att beräknas, med ett mål på minst 2x10e6 transducerade celler och upp till 15x10e6 transducerade celler per kilogram.
|
1 månad
|
Förekomst av behandlingsuppkomna biverkningar relaterade till administrering av busulfan
Tidsram: 42 dagar
|
Behandlingsuppkomna biverkningar kommer att mätas med CTCAE version 4.0.
|
42 dagar
|
Hematopoetisk återhämtning hos patienter med ART-SCID som får självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler genom autolog stamcellstransplantation.
Tidsram: 1 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprov för att mäta fullständigt blodantal och differential.
|
1 år
|
Lymfocytstudier för att mäta immunsystemets rekonstitution hos patienter som har fått AProArt lentiviral vektor-transducerad autolog CD34 hematopoetisk stamcellstransplantation efter lågdos busulfankonditionering
Tidsram: 2 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprover för att mäta T-, B- och NK-cellsantal och funktion.
|
2 år
|
Specifika antikroppstitrar för att mäta etableringen av immunfunktion hos patienter som har fått AProArt lentiviral vektor-transducerad autolog CD34 hematopoetisk stamcellstransplantation efter lågdos busulfankonditionering
Tidsram: 2 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprov för att mäta antikroppsproduktionen mot stelkrampstoxoid som dokumenterats genom att uppnå skyddsnivåer efter immunisering.
|
2 år
|
Immunoglobulinnivåer för att mäta etableringen av B-cells immunfunktion hos patienter som har fått AProArt lentiviral vektor-transducerad autolog CD34 hematopoetisk stamcellstransplantation efter lågdos busulfankonditionering
Tidsram: 2 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprover för att mäta nivåerna av cirkulerande immunglobuliner.
|
2 år
|
Multilineage engraftment av AProArt lentiviral vektor-transducerade hematopoetiska celler
Tidsram: 2 år
|
Engraftment kommer att mätas genom att utföra kvantitativa PCR-analyser för att detektera transducerade celler i minst två av följande linjer: T, B, NK och granulocyt/myeloid.
|
2 år
|
Förekomst av biverkningar relaterade till autolog stamcellstransplantation av självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler
Tidsram: 2 år
|
Biverkningar kommer att mätas med CTCAE version 4.0, inklusive eventuella onkogena händelser.
|
2 år
|
Andra resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Slutlig area under kurvan (AUC) för lågdos busulfanexponering
Tidsram: 42 dagar
|
Slutlig area under kurvan (AUC) kommer att jämföras med den kumulativa mål-AUC på 20±4 mg*h/L.
|
42 dagar
|
Repertoarmångfald hos ART-SCID-mottagare av genterapi efter transplantation.
Tidsram: 2 år
|
Mätning via spektratypning av T-cellsreceptorn Vb omarrangerade receptorer.
|
2 år
|
Antal vektorkopior upprätthålls över tid efter infusion av transducerad hematopoetisk stamcellstransplantation.
Tidsram: 2 år
|
Laboratoriestudier kommer att mäta antalet vektorkopior som finns i blodleukocytpopulationer, inklusive granulocyter, T-celler, B-celler och NK-celler.
Cellpopulationerna kommer att isoleras genom gradientcentrifugering följt av färgning med monoklonala antikroppar och flödessortering.
|
2 år
|
Placering av vektorintegrationsställen för upprätthållande av en mångsidig repertoar för insättningsställen
Tidsram: 2 år
|
Från en blandad population av blodleukocyter kommer gradientisolerade och flödessorterade komponenter (T-, B-, myeloid- och NK-celler) att ha genomiska DNA-fragment amplifierade genom linkermedierad PCR.
Massivt parallell sekvensering kommer att utföras och kopplingsvärdens DNA-sekvenser mellan den integrerade vektorn och länkarna kommer att kartläggas till det mänskliga genomet med hjälp av BLAST-mjukvara.
Den genomiska platsen för varje insättningsställe kommer att bestämmas och antalet celler med samma insättningsställe kommer att övervakas.
|
2 år
|
Incidensen av långvariga biverkningar relaterade till autolog stamcellstransplantation av självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler.
Tidsram: 15 år
|
Biverkningar kommer att mätas med CTCAE V4.0
|
15 år
|
Långtidsöverlevnad hos ART-SCID-patienter som genomgår autolog stamcellstransplantation av självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler.
Tidsram: 15 år
|
Antal deltagare med immunsystemets funktion mätt med T- och B-cellsantal och funktion.
|
15 år
|
Effekten av transduktionsförstärkare (dmPGE2 och LentiBOOST™) för att påverka immunrekonstitutionen hos ART-SCID-patienter.
Tidsram: 5 år
|
Laboratoriestudier kommer att mäta vektorkopietal (VCN).
|
5 år
|
Effekten av transduktionsförstärkare (dmPGE2 och LentiBOOST™) för att påverka T- och B-cells immunrekonstitution hos ART-SCID-patienter.
Tidsram: 5 år
|
Laboratoriestudier kommer att mäta lymfocytundergrupper.
|
5 år
|
Effekt av profylaktisk sirolimus för att minska förekomsten av autoimmun hemolytisk anemi efter infusion av genkorrigerade celler.
Tidsram: 7 år
|
Regelbunden övervakning av retikulocyter, direkta Coombs, indirekta Coombs och LDH, med start vecka 12 efter infusion.
|
7 år
|
Effekter av behandling med upprepad infusion av genkorrigerade celler på överlevnad för patienter som inte utvecklar adekvat immunitet
Tidsram: 15 år
|
Patientöverlevnadsstatus och (om tillämpligt) dödsorsak kommer att registreras för att bedöma den totala överlevnaden.
|
15 år
|
Dos av AProArt-transducerade celler med en upprepad infusion av genkorrigerade celler
Tidsram: 5 år
|
Antalet AProArt-transducerade CD34-celler infunderade per kg kroppsvikt kommer att beräknas för den upprepade infusionen, med ett mål på minst 2x10e6 transducerade celler och upp till 15x10e6 transducerade celler per kilogram.
|
5 år
|
Hematopoetisk återhämtning hos patienter med ART-SCID som får självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler genom en upprepad infusion av autolog stamcellstransplantation.
Tidsram: 5 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprover för att mäta fullständigt blodantal och differential efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler.
|
5 år
|
Specifika antikroppstitrar för att mäta etableringen av immunfunktion hos patienter som har fått en upprepad infusion AProArt lentiviral vektor-transducerad autolog CD34 hematopoetisk stamcellstransplantation
Tidsram: 5 år
|
Patienterna kommer att genomgå blodprov efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler för att mäta antikroppsproduktionen mot stelkrampstoxoid som dokumenterats genom att uppnå skyddsnivåer efter immunisering.
|
5 år
|
Förekomst av biverkningar relaterade till en upprepad infusion av autolog stamcellstransplantation av självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler
Tidsram: 5 år
|
Biverkningar kommer att mätas efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler med användning av CTCAE version 4.0, inklusive eventuella onkogena händelser.
|
5 år
|
Repertoarmångfald hos ART-SCID-mottagare genterapi efter upprepad infusion av genkorrigerade celler.
Tidsram: 5 år
|
Mätning via spektratypning av T-cellsreceptorn Vb omarrangerade receptorer efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler.
|
5 år
|
Incidensen av långvariga biverkningar relaterade till en upprepad autolog stamcellstransplantation av självinaktiverande (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transducerade CD34-celler.
Tidsram: 15 år
|
Biverkningar kommer att mätas med CTCAE V4.0 efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler.
|
15 år
|
Antalet vektorkopior bibehölls över tid efter en upprepad infusion av transducerad hematopoetisk stamcellstransplantation.
Tidsram: 5 år
|
Laboratoriestudier kommer att mäta antalet vektorkopior som finns i blodleukocytpopulationer efter en upprepad infusion av genkorrigerade celler, inklusive granulocyter, T-celler, B-celler och NK-celler.
Cellpopulationerna kommer att isoleras genom gradientcentrifugering följt av färgning med monoklonala antikroppar och flödessortering.
|
5 år
|
Patienten rapporterade resultatet av att genomgå behandling med genkorrigerade celler enligt bedömningen av PedsQL-enkäterna.
Tidsram: 15 år
|
Åldersanpassade PedsQL-frågeformulär kommer att administreras vid baslinjen och år 1, 2, 4, 8, 10, 12 och 15.
|
15 år
|
Familjepåverkan av att genomgå behandling med genkorrigerade celler.
Tidsram: 15 år
|
PedsQL Family Impact-modulen kommer att administreras vid baslinjen och år 1, 2, 4, 8, 10, 12 och 15.
|
15 år
|
Samarbetspartners och utredare
Utredare
- Huvudutredare: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publikationer och användbara länkar
Allmänna publikationer
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21. Erratum In: Blood. 2018 Dec 6;132(23):2527.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856. Erratum In: Sci Transl Med. 2016 Jun 1;8(341):341er5.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
Studieavstämningsdatum
Studera stora datum
Studiestart (Faktisk)
Primärt slutförande (Beräknad)
Avslutad studie (Beräknad)
Studieregistreringsdatum
Först inskickad
Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna
Första postat (Faktisk)
Uppdateringar av studier
Senaste uppdatering publicerad (Faktisk)
Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna
Senast verifierad
Mer information
Termer relaterade till denna studie
Ytterligare relevanta MeSH-villkor
- Metaboliska sjukdomar
- Immunsystemets sjukdomar
- Spädbarn, nyfödda, sjukdomar
- Genetiska sjukdomar, medfödda
- DNA-reparation-briststörningar
- Primära immunbristsjukdomar
- Immunologiska bristsyndrom
- Svår kombinerad immunbrist
- Läkemedels fysiologiska effekter
- Molekylära mekanismer för farmakologisk verkan
- Antineoplastiska medel
- Immunsuppressiva medel
- Immunologiska faktorer
- Antineoplastiska medel, Alkylering
- Alkyleringsmedel
- Myeloablativa agonister
- Busulfan
Andra studie-ID-nummer
- 17-22799
- TR3-05535 (Annat bidrag/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN1-08363 (Annat bidrag/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
Plan för individuella deltagardata (IPD)
Planerar du att dela individuella deltagardata (IPD)?
IPD-planbeskrivning
Tidsram för IPD-delning
Kriterier för IPD Sharing Access
IPD-delning som stöder informationstyp
- STUDY_PROTOCOL
- SAV
Läkemedels- och apparatinformation, studiedokument
Studerar en amerikansk FDA-reglerad läkemedelsprodukt
Studerar en amerikansk FDA-reglerad produktprodukt
Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .
Kliniska prövningar på Svår kombinerad immunbrist
-
MagIA DiagnosticsRekryteringCombined Point of Care Diagnostik av HIV, HBV och HCVFrankrike
-
Janssen-Cilag International NVAvslutadInfektioner av humant immunbristvirus (HIV). | Aids-virus (Acquired Immunodeficiency Syndrome).Frankrike, Storbritannien, Belgien, Tyskland, Spanien, Schweiz, Danmark, Israel, Österrike, Polen, Ungern, Sverige, Irland