- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT03538899
Autolog genterapi for Artemis-mangelfull SCID
En fase I/II mulighetsstudie av genoverføring for artemis-mangelfull alvorlig kombinert immunsvikt (ART-SCID) ved bruk av en selvinaktiverende lentiviral vektor (AProArt) for å transdusere autologe CD34 hematopoietiske celler
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Barn med SCID overlever vanligvis ikke utover det første leveåret uten definitiv behandling. Den mest effektive nåværende kuren er hematopoetisk stamcelletransplantasjon (HCT) med et humant leukocyttantigen (HLA) matchet søsken. Mens en matchet søsken-HCT med hell kan behandle ART-SCID, har færre enn 20 % av berørte barn en slik donor, og selv når en matchet søskendonor er tilgjengelig er det ofte ufullstendig T- og B-celle-immunrekonstitusjon. ART-SCID er den vanskeligste typen SCID å kurere ved hematopoetisk stamcelletransplantasjon ved bruk av alternative donorer. Engraftment krever vanligvis intensiv kondisjonering med høydose alkyleringsmidler for å forhindre avstøtning og for å åpne margnisjer. Disse pasientene har også høy risiko for å utvikle graft versus host disease (GVHD) når alternative donorer brukes. Det store flertallet av pasientene har fraværende B-celle-rekonstitusjon og krever livslang administrering av immunglobulininfusjoner. Pasienter med ART-SCID som får høye doser alkylatorer, spesielt når 2 midler brukes, har dårligere overlevelse, unormal tannutvikling, endokrinopatier og kortvoksthet sammenlignet med barn som er eksponert for ingen eller begrensede alkylatorer eller barn med SCID-typer som er ikke assosiert med en DNA-reparasjonsdefekt. Av disse grunner er det nødvendig med en sikrere og mer effektiv tilnærming til herding av ART-SCID. Autolog genkorrigert hematopoetisk stamcelletransplantasjon kan eliminere både risikoen for GVHD og behovet for alkylatorer for å forhindre avstøtning.
Studiedesignet er et enkelt-kohort, longitudinalt eksperiment med bruk av ikke-randomiserte pasienter behandlet én gang med en lentiviral vektor for genkorreksjon av Artemis-mangelfulle SCID etter kondisjonering med lavdose busulfan. Det er ikke planlagt noen formell kontrollgruppe for å måle sikkerhet; snarere vil intensiv overvåking av de første 6 påmeldte utelukke fortsatt opptjening i nærvær av sikkerhetssignaler, og langsiktig sikkerhet vil bli overvåket i 15 år. Benmargsstamceller vil bli høstet fra deltakere som veier ≤7,5 kilo eller har mislykket cytokinmobilisering tidligere, og cytokinmobiliserte perifere blodstamceller vil bli høstet fra deltakere som veier >7,5 kilo. CD34-celler vil bli isolert ved hjelp av CliniMACS® CD34 Reagent System-cellesorteringsenheten. Cellene vil bli transdusert med AProArt lentiviral vektor. Transduksjonsforsterkere vil bli brukt for å øke transduksjonseffektiviteten i CD34+-celler fra perifert blod fra pasienter som gjennomgår en perifer blodstamcelleinnsamling. Disse transduserte cellene vil deretter kryokonserveres, og alikvoter av cellene vil gjennomgå sikkerhetstesting og reserveres for potensevaluering. Alle pasienter vil motta busulfan-kondisjonering målrettet over 2 dager for å oppnå et kumulativt areal under kurven (AUC) på 20 mg*time/L (en ablativ kumulativ AUC er 60-90mg*time/L). Etter infusjon av AProArt-transduserte celler, vil pasienter bli evaluert etter 4, 6, 8, 16 og 24 uker for bevis på gentransduserte perifere blod mononukleære celler og når mulig cellelinjer inkludert T, B, NK og granulocytt/myeloidceller . Hvis det ikke er tegn på gentransduserte celler 6 uker (42 dager) etter infusjon, vil det bli tatt en beslutning om videre behandling.
Etter dag 42 etter transplantasjon vil mottakerne bli fulgt for toksisitet og varig rekonstituering av T- og B-celleimmunitet. Immunrekonstitusjon av T-celler vil bli overvåket regelmessig. Hvis det absolutte antallet nøytrofile celler er < 200/µl eller blodplater < 20 000/µl ved 3 uavhengige bestemmelser etter dag 42 etter infusjon av transduserte celler, kan pasienten få infusjon av reservecellene eller en allogen hematopoetisk stamcelletransplantasjon. Pasienter som var nøytropene før kondisjonering (SCID-relatert nøytropeni), men som responderte på granulocytt-kolonistimulerende faktor (GCSF), vil ikke anses å ha sviktet, forutsatt at det absolutte nøytrofiltallet kan opprettholdes over >500/µl med GCSF.
Etter dag 42 vil pasienter bli vurdert ukentlig gjennom 12 uker etter transplantasjon og ved uke 16, månedlig til og med måned 6 etter transplantasjon, og deretter 3 månedlig til og med måned 24. De vil deretter bli vurdert med 6 månedlige intervaller i løpet av år 2-5 og årlig gjennom år 15. Studieoppfølging vil omfatte utfylling av livskvalitetsspørreskjemaer og administrering av nevroutviklingstesting.
Pasienter med bevis på klinisk utilstrekkelig rekonstitusjon, lav VCN eller andre funksjoner som tyder på klinisk utilstrekkelig respons på den innledende genterapiprosedyren, vil bli tilbudt en gjentatt infusjon av gentransduserte celler. Konditioneringsregimer gitt før en gjentatt genterapiprosedyre kan inkludere lavdose busulfan, annen kondisjonering eller ingen kondisjonering.
Et uavhengig Data Safety Monitoring Board (DSMB) vil bli oppnevnt for sikkerhetsovervåking av dette forsøket. DSMB vil gjennomgå alle data for sikkerhet på en regelmessig tidsplan, basert på antall påmeldte forsøkspersoner, og vil også gjennomføre en spesiell hastegjennomgang av alle protokollrelaterte alvorlige bivirkninger (SAE). Etter hvert som rettssaken er igangsatt, vil DSMB gjennomgå resultatene av hver av de første 3 sakene før de fortsetter med påfølgende pasienter.
Undersøkelsesproduktet (IND1711) for ART-SCID-genoverføringsstudien er ikke tilgjengelig for utvidet tilgangsbruk. I henhold til 21 CFR Part 312.305(3) har studieledelsen bestemt at å tilby undersøkelsesproduktet for utvidet tilgangsbruk på dette tidspunktet vil forstyrre gjennomføringen og fullføringen av den kliniske utprøvingen og potensiell utvikling av fremtidig utvidet tilgangsbruk. Undersøkelsesproduktet er tilgjengelig for kvalifiserte pasienter gjennom deltakelse i denne kliniske studien.
Studietype
Registrering (Antatt)
Fase
- Fase 2
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Morton Cowan, MD
- Telefonnummer: 415-476-2188
- E-post: Mort.Cowan@ucsf.edu
Studer Kontakt Backup
- Navn: Jennifer Puck, MD
- Telefonnummer: 415 502-2090
- E-post: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Studiesteder
-
-
California
-
San Francisco, California, Forente stater, 94143
- Rekruttering
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- ≥2,0 måneders alder ved oppstart av busulfanbehandling
- Diagnose av typisk eller lekker ART-SCID:
Nydiagnostiserte ART-SCID-pasienter må ha:
- Artemis mangel; OG
- CD3-tall < 300 autologe celler/µL (typisk ART-SCID) ELLER spontan maternal kimærisme, ELLER CD3-tall >300/µL, men med begrenset T-cellereseptor Vb-diversitet, definert som 18/24 eller færre polyklonale familier.
OG - CD45-cellerespons på mitogener (PHA) < 50 % av den nedre grensen for normalområdet for laboratoriet (lekkende ART-SCID).
Pasienter diagnostisert med ART-SCID i henhold til kriteriene ovenfor som har mislyktes med en allogen transplantasjon (inkludert en HLA-matchet søskentransplantasjon) kan delta hvis de oppfyller kriteriene nedenfor:
- Er minst 3 måneder etter allogen hematopoetisk stamcelletransplantasjon uten tegn på engraftment av allogene donorceller (unntatt maternelle celler)
ELLER er podet, men har minst 2 av følgende 4 tilstander:
- Avtagende CD3-donorkimerisme med minst 3 evalueringer atskilt med minst 1 måned før registreringstidspunktet ELLER < 5 % total donorkimerisme i blod og marg ≥3 måneder etter transplantasjon.
Ufullstendig rekonstituert T-celleimmunitet ved ≥6 måneder (1 av følgende 2):
- CD4 < 200/μL OG CD45 celle PHA < 50 % av den nedre normalgrensen for lab;
- CD4 CD45RA < 20 % av totale CD4-celler ELLER T-cellereseptor Vb-diversitet er begrenset, definert som 18/24 eller færre polyklonale familier.
- Ingen donor B-celler ELLER mangel på B-cellefunksjon (immunoglobulin M isohemagglutininer < 1:8 (ikke blodtype AB) OG immunglobulin A (IgA) eller IgM verdier under referanseområdet for alder OG hvis ikke får intravenøst immunglobulin (IVIG), ingen beskyttende nivå av antistoff mot tetanus-immunisering x2).
- Kliniske manifestasjoner forenlig med vedvarende T- og B-celle-immunsvikt, f.eks. kronisk infeksjon inkludert norovirus, cytomegalovirus, humant herpesvirus 6; ELLER akutt eller tilbakevendende infeksjon (f.eks. PJP), bronkiektasi, kronisk bihulebetennelse.
OG
- Har ingen tidligere eksponering for høydose busulfan (≥10 mg/kg total dose eller gjennomsnittlig kumulativ eksponering på ≥40 mg*time/L). Hvis den totale kumulative AUC inkludert tidligere busulfaneksponering pluss dosen som skal administreres i denne protokollen antas å være ≤60 mg*time/L, vil pasienten være kvalifisert forutsatt at andre kriterier er oppfylt.
- Ingen medisinsk kvalifisert HLA-identisk søsken med normalt immunsystem som kan tjene som allogen benmargsdonor (gjelder kun nylig diagnostiserte pasienter).
Skriftlig informert samtykke i henhold til retningslinjer fra Institutional Review Board (IRB).
Ekskluderingskriterier:
- Leverfunksjonstester (aspartataminotransferase, alanintransaminase, gamma-glutamyltransferase) > tre ganger øvre normalgrense for laboratorie- og/eller totalbilirubin >1,50 mg/dl på tidspunktet for planlagt oppstart av busulfankondisjonering.
- Tidligere veno-okklusiv sykdom (sinusoidal obstruksjonssyndrom) i leveren.
- Medisinsk kvalifisert HLA-matchet søsken (gjelder kun nydiagnostiserte pasienter).
- Bevis på HIV-infeksjon ved polymerasekjedereaksjon eller p24-antigentesting.
- Ute av stand til å tolerere generell anestesi og/eller marginnhøsting eller innsamling av perifer blodstamcelle (aferese) eller innsetting av sentralt venekateter.
- Tilstedeværelse av en medisinsk tilstand som indikerer at overlevelse er spådd til å være mindre enn 4 måneder, slik som kravet om mekanisk ventilasjon, alvorlig svikt i et større organsystem eller tegn på en alvorlig, progressiv infeksjon som er motstandsdyktig mot medisinsk behandling.
- Svangerskap
- En sosial situasjon som indikerer at familien kanskje ikke er i stand til å overholde protokollprosedyrer og anbefalt medisinsk behandling og oppfølging.
- Andre forhold som etter hovedetterforskerens og/eller medetterforskernes mening kontraindiserer infusjon av transduserte celler eller studiedeltakelse.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Intervensjonsmodell: Enkeltgruppeoppdrag
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Genterapi (AProArt)
Genoverføring for alvorlig kombinert immunsvikt med artemismangel (ART-SCID) ved bruk av en selvinaktiverende lentiviral vektor (AProArt) for å transdusere autologe CD34 hematopoietiske celler.
Sorteringsenheten CliniMACS® CD34 Reagent System vil bli brukt til å velge CD34-celler.
Pasienter vil bli behandlet med lavdose busulfan før transplantasjon.
|
Behandling av hematopoietiske stamceller for å velge CD34-celler, ved bruk av CliniMACS® CD34-reagenssystemet, før infusjon.
Busulfan er et cellesyklus ikke-spesifikt alkylerende antineoplastisk middel, i klassen alkylsulfonater.
Pasienter vil få lavdose busulfan-kondisjonering målrettet over 2 dager for å oppnå et kumulativt areal under kurven (AUC) på 20 mg*time/L.
Andre navn:
Deltakerne vil gjennomgå infusjon med autologe hematopoietiske celler transdusert med en lentiviral vektor, AProArt, som inneholder den korrekte formen av DCLRE1C komplementær deoksyribonukleinsyre-DNA, etter å ha mottatt sub-ablativ, eksponeringsmålrettet busulfan-kondisjonering.
Andre navn:
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
For å vise at ART-SCID-pasienter som får AProArt-CD34-infusjon har overlegen total overlevelse (OS) 24 måneder etter behandling med AProArt-CD34 sammenlignet med det etablerte resultatet på 0 % OS for pasienter som ikke får noen behandling for ART-SCID
Tidsramme: 24 måneder
|
Pasientens overlevelsesstatus og (hvis aktuelt) dødsårsak vil bli registrert for å vurdere total overlevelse.
|
24 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
B-celle immunrekonstitusjon etter 24±2 måneder sammenlignet med historisk kontrollkohort av allogene transplantatmottakere
Tidsramme: 24 måneder
|
B-celle immunrekonstitusjon vil defineres som avslutning av immunoglobulin erstatningsterapi
|
24 måneder
|
|
Antall deltakere med T-celle immunrekonstitusjon sammenlignet med historiske kontroller som mottok allogene transplantasjoner for å behandle ART-SCID.
Tidsramme: 24 måneder
|
T-celle immunrekonstitusjon vil defineres som tilstedeværelsen av begge følgende: 1) a. CD3>1000/mm3; 2) CD4>500/mm3.
|
24 måneder
|
|
Hendelsesfri overlevelse
Tidsramme: 24 måneder
|
Hendelser er definert som død, bruk av en gjentatt infusjon av genkorrigerte celler for å forbedre T-/B-celle immunrekonstitusjon eller behov for utførelse av en allogen HCT.
|
24 måneder
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Hematopoetisk utvinning hos pasienter med ART-SCID som mottar selvinaktiverende (SIN) lentiviral vektor (AProArt)-transduserte CD34-celler gjennom en gjentatt infusjon av autolog stamcelletransplantasjon.
Tidsramme: 5 år
|
Pasienter vil gjennomgå blodprøver for å måle fullstendig blodtelling og differensial etter en gjentatt infusjon av genkorrigerte celler.
|
5 år
|
|
Bivirkningsprofil (AE) assosiert med studieintervensjonen fra behandling til 15 år etter genoverføringsprosedyren
Tidsramme: 15 år
|
Kliniske og laboratorieeffekter målt ved CTCAE V4
|
15 år
|
|
Antall deltakere med B-celle-rekonstituering utover 24 måneder, inkludert B-cellenummer og funksjon
Tidsramme: 15 år
|
B-celle-rekonstitusjon vil bli definert som tilstedeværelse av minst to av følgende: 1) B-cellenummer >40/mm3; 2) Seponering av immunglobulinerstatningsterapi; 3) Beskyttende spesifikke antistoffresponser.
Antall deltakere som oppfyller definisjonen for B-celle-rekonstituering vil bli tabellert.
|
15 år
|
|
Effekten av å målrette laveksponering av busulfan hos spedbarn og barn, beregnet etter prosentandelen av deltakerne hvis behandling oppfyller studieparametere ved bruk av en validert populasjonsfarmakokinetisk modell for å beregne individualisert busulfanclearance.
Tidsramme: 42 dager
|
Oppnåelse av endelig mål for kumulativ AUC på 20±2 mg*time/L hos omtrent 90 % av forsøkspersonene
|
42 dager
|
|
Repertoarmangfold av T- og B-celler, som vurdert ved å analysere T-cellereseptorgenvariabel betasekvens (TCR-Vb) og immunoglobulin tungkjede (IGH) omarrangerte reseptorer og beregne diversitets-Shannon-indeksen.
Tidsramme: 24 måneder
|
Målt ved dyp sekvensering av T-cellereseptor (TCR) genvariabel betasekvens (TCR-Vb) og immunoglobulin tungkjede (IGH) omarrangerte reseptorer.
Diversiteten Shannon Index forventes å være over 7,5 innen 24±2 måneder etter behandling hos 90 % av pasientene.
|
24 måneder
|
|
Bestem om B-celle-reseptordiversitet etter 6 måneder er prediktiv for B-celle-rekonstituering over 15 år ved å analysere B-cellereseptorgenets variabel betasekvens og immunoglobulin tungkjede-omorganiserte reseptorer og beregne diversitet Shannon Index.
Tidsramme: 15 år
|
En Shannon-indeks >5 forventes å være en biomarkør for B-celle-rekonstitusjon.
B-celle-reseptordiversitet vil bli målt gjennom hele studiedeltakelsen.
|
15 år
|
|
Bestem om T-cellereseptor (TCR)-diversitet og/eller absolutt CD3, CD4, naive CD4-tall forutsier T-celle-rekonstituering etter 24 måneder eller behov for andre behandling gjennom den 15-årige oppfølgingsperioden.
Tidsramme: 15 år
|
TCR-Vb-diversitet og absolutt CD3, CD4 og naive CD4-tall vil bli målt etter 6 måneder.
T-celle-rekonstitusjon vil bli målt gjennom hele studiedeltakelsen.
|
15 år
|
|
Stabilitet av gjennomsnittlig vektorkopinummer (VCN) og plasseringen av vektorintegrasjonssteder i sorterte T-, B- og naturlige dreperceller (NK), granulocytter og monocytter i perifert blod over tid etter infusjon av transdusert HSC.
Tidsramme: 24 måneder
|
Gjennomsnittlig vektorkopinummer (VCN) og plasseringen av vektorintegrasjonssteder vil bli målt ved 6±1, 12±1 og 24±2 måneder og deretter årlig gjennom 15 år etter infusjon av AProArt-CD34.
Gjennomsnittlig VCN bør være >0,5 kopier/celle i T- og B-celler og >0,01 i NK, myeloid og granulocytter innen 24±2 måneder etter behandling.
|
24 måneder
|
|
Karakterisering av innsettingssteder i flere cellelinjer som en indikator på mangfold, multilineage-engraftment og tabulering av enhver klonal ekspansjon som kan indikere utvikling av en malignitet.
Tidsramme: 24 måneder
|
Innsettingssteder vil bli målt ved 6±1, 12±1, 24±2 måneder og årlig gjennom 15 år etter infusjon av AProArt-CD34.
Celleinnsettingssteder forventes å være forskjellige uten klon som representerer >20 % av en avstamning etter 24 måneder.
|
24 måneder
|
|
Potensiell fordel med profylaktisk sirolimus ved å redusere forekomsten av forbigående autoimmun hemolytisk anemi (AIHA) etter infusjon av AProArt-CD34, vurdert av antall deltakere med klinisk diagnose av AIHA.
Tidsramme: 24 måneder
|
Forekomst av autoimmun hemolytisk anemi 24±2 måneder etter infusjon etter administrering av profylaktisk sirolimus, vurdert ved overvåking av hemoglobin-, direkte og indirekte Coombs-, retikulocytt- og laktatdehydrogenaseresultater.
Forekomsten av behandlingskrevende AIHA forventes å være <40 % av pasientene på profylaktisk sirolimus.
|
24 måneder
|
|
Måling av strålingsfølsomhet i NK-celler i perifert blod for utvikling og validering av en rask funksjonell analyse for strålingssensitiv SCID.
Tidsramme: 24 måneder
|
Utvikling og validering av en analyse for strålingssensitiv SCID i NK-celler i perifert blod
|
24 måneder
|
|
Styrken til AProArt-CD34 som indikert av kapasitet for in vitro differensiering av deltakerprøver til T-celler og vurdering av gjennomsnittlig VCN som en surrogatmarkør for potens.
Tidsramme: 5 år
|
Demonstrasjon at post-transduksjon pasient CD34+ celler har kapasitet for in vitro differensiering til T-celler og at gjennomsnittlig VCN er en surrogatmarkør for potens.
En eller flere potensanalyser vil bli utviklet og validert for AProArt-transdusert CD34+ HSC som gir resultater innen 52 dager etter transduksjon, og korrelasjon av disse med VCN oppnådd 6 og 14 dager etter transduksjon med AProArt.
|
5 år
|
|
Effekter av målrettet lav eksponering busulfan kondisjonering på pasientvekst/kroppsstørrelse
Tidsramme: 5 år
|
Pasientens høyde (cm) og vekt (kg) vil bli målt og sammenlignet med normer for alder
|
5 år
|
|
Effekter av busulfan på pasienters tannutvikling
Tidsramme: 5 år
|
Tannhelsehistorikk og kliniske notater vil bli gjennomgått for å sammenligne utviklingen av permanente tenner med utviklingsnormer for alder fra 5 til 15 år
|
5 år
|
|
Pasientrapportert utfall av å gjennomgå behandling med genkorrigerte celler som vurdert ved PedsQL-spørreskjemaene.
Tidsramme: 5 år
|
Alderspassende Pediatric Quality of Life Inventory (PedsQL) spørreskjemaer vil bli administrert ved baseline og år 1, 2, 4, 8, 10, 12 og 15.
Fire domener (Fysisk funksjon, Emosjonell funksjon, Sosial funksjon og Skolefunksjon) reverseres på en 5-punkts Likert-skala og transformeres til en 0-100 skala, der høyere poengsummer indikerer bedre resultater. |
5 år
|
|
Familiepåvirkning av å gjennomgå behandling med genkorrigerte celler.
Tidsramme: 15 år
|
Pediatric Quality of Life Inventory (PedsQL) Family Impact-modulen vil bli administrert ved baseline og år 1, 2, 4, 8, 10, 12 og 15.
Responser angis på en 5-punkts Likert-skala og transformeres til en 0-100 skala, hvor høyere skår indikerer bedre utfall.
|
15 år
|
|
Effekter av studieintervensjonen på nevro-utvikling over tid
Tidsramme: 5 år
|
Neuroutvikling vil bli vurdert ved alderen 3, 5, 8, 11, 14 og 17 år ved hjelp av passende aldersspesifikke instrumenter (Vineland Adaptive Behavior Scales, Behavior Rating Inventory of Executive Functioning, Behavioral Assessment for Children, Bayley Scales of Infant Development, Wechsler Intelligence Scales, California Verbal Learning Test, Conners Continuous Performance Test, Delis-Kaplan Executive Function System, og Wide Range Achievement Test).
Resultatene vil bli sammenlignet med normer for alderen 18 måneder og alderen 3, 5, 8, 11, 14 og 17 år.
|
5 år
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856.
- Cowan MJ, Yu J, Facchino J, Fraser-Browne C, Sanford U, Kawahara M, Dara J, Long-Boyle J, Oh J, Chan W, Chag S, Broderick L, Chellapandian D, Decaluwe H, Golski C, Hu D, Kuo CY, Miller HK, Petrovic A, Currier R, Hilton JF, Punwani D, Dvorak CC, Malech HL, McIvor RS, Puck JM. Lentiviral Gene Therapy for Artemis-Deficient SCID. N Engl J Med. 2022 Dec 22;387(25):2344-2355. doi: 10.1056/NEJMoa2206575.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Primære immunsviktsykdommer
- Genetiske sykdommer, medfødte
- Metabolske sykdommer
- Sykdommer i immunsystemet
- Spedbarn, nyfødte, sykdommer
- Immunologiske mangelsyndromer
- DNA-reparasjon-mangellidelser
- Medfødte, arvelige og neonatale sykdommer og abnormiteter
- Ernæringsmessige og metabolske sykdommer
- Alvorlig kombinert immunsvikt
- Svovelforbindelser
- Organiske kjemikalier
- Hydrokarboner, acyklisk
- Hydrokarboner
- Alkaner
- Alkoholer
- Butylenglykoler
- Glykoler
- Mesylater
- Alkanesulfonater
- Alkanesulfonsyrer
- Sulfonsyrer
- Svovelsyrer
- Busulfan
Andre studie-ID-numre
- 17-22799
- CLIN2-10830 (Annet stipend/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN2-17127 (Annet stipend/finansieringsnummer: California Institute of Regenerative Medicine)
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
IPD-planbeskrivelse
IPD-delingstidsramme
Tilgangskriterier for IPD-deling
IPD-deling Støtteinformasjonstype
- STUDY_PROTOCOL
- SEVJE
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .