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アルテミス欠損SCIDに対する自家遺伝子治療

2024年2月9日 更新者:Morton Cowan、University of California, San Francisco

自己不活性化レンチウイルスベクター (AProArt) を用いたアルテミス欠損型重症複合免疫不全症 (ART-SCID) に対する遺伝子導入の第 I/II 相実行可能性研究による自己 CD34 造血細胞の形質導入

この研究の目的は、DCLRE1C 遺伝子の変異によって引き起こされる重度の原発性免疫不全症であるアルテミス欠損型重症複合免疫不全症 (ART-SCID) を治療するために新しい方法を使用できるかどうかを判断することです。 この方法では、DCLRE1C 遺伝子の正常なコピーを患者の幹細胞に移します。 参加者は、DCLRE1C 遺伝子の正常なコピーを含む自己不活性化レンチウイルスベクターで形質導入された幹細胞の注入を受けます。 注入の前に、彼らはサブアブレーション、用量標的ブスルファンコンディショニングを受けます。 この研究では、手順が安全かどうか、プロトコルに記載されている方法に従って実行できるかどうか、手順が患者に正常な免疫システムを提供するかどうかを調査します。 合計 25 人の患者がカリフォルニア大学サンフランシスコ校のこの単一施設試験に登録され、注入後 15 年間追跡されます。 このタイプの遺伝子導入は、幹細胞移植のドナーとして使用できる兄弟または姉妹を欠いているART-SCID患者、または以前の幹細胞の後に機能する免疫系を発達させることができなかったART-SCID患者の転帰を改善する可能性があることが期待されています移植。

調査の概要

詳細な説明

一般に、SCID の小児は、決定的な治療を受けなければ生後 1 年を超えて生存することはできません。 最も効果的な現在の治療法は、ヒト白血球抗原 (HLA) が一致した兄弟を用いた造血幹細胞移植 (HCT) です。 一致した兄弟HCTはART-SCIDをうまく治療できますが、罹患した子供の20%未満がそのようなドナーを持っています. ART-SCID は、代替ドナーを使用した造血幹細胞移植によって治癒することが最も困難なタイプの SCID です。 生着は通常、拒絶反応を防ぎ、骨髄ニッチを開くために、高用量のアルキル化剤による集中的なコンディショニングを必要とします。 これらの患者は、代替ドナーが使用される場合、移植片対宿主病 (GVHD) を発症するリスクも高くなります。 大多数の患者は B 細胞の再構成がなく、免疫グロブリンの注入を生涯にわたって行う必要があります。 高用量のアルキル化剤を投与された ART-SCID 患者は、特に 2 種類の薬剤が使用されている場合、アルキル化剤をまったく使用していない、または限られた量しか使用していない子供や、 DNA修復欠陥とは関係ありません。 これらの理由から、ART-SCID を治すためのより安全で効果的なアプローチが必要です。 自家遺伝子修正造血幹細胞移植は、GVHD のリスクと、拒絶反応を防ぐためのアルキル化剤の必要性を両方排除する可能性があります。

研究デザインは、低用量のブスルファンでコンディショニングした後、アルテミス欠損SCIDの遺伝子修正のためにレンチウイルスベクターで1回治療された非無作為化患者を使用した単一コホートの縦断的実験です。 安全性を評価するための正式な管理グループは計画されていません。むしろ、最初の 6 名の登録者を集中的に監視することで、安全性のシグナルが存在する場合、継続的な登録者数の増加が妨げられ、長期的な安全性が 15 年間監視されます。 骨髄幹細胞は、体重が 7.5 キログラム以下の参加者または以前にサイトカイン動員に失敗した参加者から採取され、サイトカイン動員末梢血幹細胞は、体重が 7.5 キログラムを超える参加者から採取されます。 CD34 細胞は、CliniMACS® CD34 Reagent System セルソーター装置を使用して分離されます。 細胞は、AProArtレンチウイルスベクターで形質導入されます。 形質導入エンハンサーは、末梢血幹細胞収集を受ける患者からの末梢血 CD34+ 細胞における形質導入効率を高めるために使用されます。 これらの形質導入された細胞は凍結保存され、細胞のアリコートは安全性試験を受け、効力評価のために保存されます。 すべての患者は、20 mg * hr / Lの累積曲線下面積(AUC)を達成するために、2日間を対象としたブスルファンコンディショニングを受けます(除去累積AUCは60〜90 mg * hr / Lです)。 AProArt形質導入細胞の注入後、患者は4、6、8、16、および24週間で、遺伝子形質導入末梢血単核細胞の証拠、および可能であればT、B、NKおよび顆粒球/骨髄細胞を含む細胞系統を評価されます. 注入後 6 週間 (42 日) に遺伝子導入細胞の証拠がない場合は、さらなる治療に関する決定が下されます。

移植後 42 日後、レシピエントは、毒性と T および B 細胞免疫の耐久性のある再構成について追跡されます。 T細胞の免疫再構成は、定期的に監視されます。 形質導入細胞の注入後 42 日目に、3 回の独立した測定で好中球の絶対数が < 200/μl または血小板が < 20,000/μl である場合、患者はバックアップ細胞の注入または同種造血幹細胞移植を受けることができます。 コンディショニング前に好中球減少症 (SCID 関連の好中球減少症) であったが、顆粒球コロニー刺激因子 (GCSF) に反応する患者は、好中球の絶対数が GCSF で >500/μl を超えて維持できる場合、失敗したとは見なされません。

42日目以降、患者は移植後12週間まで毎週評価され、移植後16週間までは毎月、移植後6か月までは毎月、その後24か月までは3か月ごとに評価されます。 その後、2 年から 5 年までは 6 か月間隔で評価され、15 年までは毎年評価されます。 研究のフォローアップには、QOLアンケートの完了と神経発達検査の実施が含まれます。

臨床的に不十分な再構成、低VCN、または最初の遺伝子治療手順に対する臨床的に不十分な反応を示唆するその他の特徴の証拠がある患者には、遺伝子導入細胞の繰り返し注入が提供されます。 繰り返し遺伝子治療手順の前に行われるコンディショニング レジメンには、低用量のブスルファン、その他のコンディショニング、またはコンディショニングなしが含まれる場合があります。

独立したデータ安全監視委員会 (DSMB) が、この試験の安全監視のために任命されます。 DSMB は、登録された被験者の数に基づいて、安全性に関するすべてのデータを定期的にレビューし、プロトコルに関連する深刻な有害事象 (SAE) の特別な緊急レビューも実施します。 治験が開始されると、DSMB は最初の 3 例のそれぞれの結果を確認してから、後続の患者に進みます。

ART-SCID 遺伝子導入研究用の治験薬 (IND1711) は、拡張アクセス用には利用できません。 21 CFR パート 312.305(3) に従い、治験管理チームは、現時点で拡張アクセス使用のために治験薬を提供することは、臨床試験の実施と完了、および将来の拡張アクセス使用の開発の可能性を妨げると判断しました。 治験薬は、この臨床試験への参加を通じて適格な患者に提供されます。

研究の種類

介入

入学 (推定)

25

段階

  • フェーズ2
  • フェーズ 1

連絡先と場所

このセクションには、調査を実施する担当者の連絡先の詳細と、この調査が実施されている場所に関する情報が記載されています。

研究連絡先

研究連絡先のバックアップ

研究場所

    • California
      • San Francisco、California、アメリカ、94143
        • 募集
        • University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital

参加基準

研究者は、適格基準と呼ばれる特定の説明に適合する人を探します。これらの基準のいくつかの例は、人の一般的な健康状態または以前の治療です。

適格基準

就学可能な年齢

2ヶ月歳以上 (子、大人、高齢者)

健康ボランティアの受け入れ

いいえ

説明

包含基準:

  • -ブスルファンコンディショニングの開始時に生後2.0か月以上
  • 典型的または漏れやすいART-SCIDの診断:

新たに診断された ART-SCID 患者には以下が必要です。

  • アルテミス欠損;と
  • CD3 数が 300 自家細胞/μL 未満 (典型的な ART-SCID) または自発的な母体キメリズム、または CD3 数が 300/μL を超えるが、18/24 以下のポリクローナル ファミリーとして定義される T 細胞受容体 Vb の多様性が制限されている。

および - マイトジェン (PHA) に対する CD45 細胞応答 < ラボの正常範囲の下限の 50% (リーキー ART-SCID)。

上記の基準に従って ART-SCID と診断され、同種異系移植 (HLA 適合同胞移植を含む) に失敗した患者は、以下の基準を満たしている場合に参加できます。

-同種造血幹細胞移植後少なくとも3か月で、同種ドナー細胞の生着の証拠はありません(母体細胞を除く)

または、生着しているが、次の 4 つの条件のうち少なくとも 2 つを持っている:

  • -CD3ドナーキメリズムが減少し、少なくとも3回の評価が登録時間の少なくとも1か月前に分離されている、または移植後3か月以上の血液および骨髄中のドナーキメリズムが全体で5%未満。
  • -6か月以上で不完全に再構成されたT細胞免疫(次の2つのうちの1つ):

    • CD4 < 200/μL および CD45 細胞 PHA < ラボの正常下限の 50%;
    • CD4 CD45RA < 総 CD4 細胞の 20% または T 細胞受容体 Vb の多様性は制限されており、18/24 以下のポリクローナル ファミリーとして定義されています。
    • -ドナーB細胞がないか、B細胞機能の欠如(免疫グロブリンMイソヘマグルチニン<1:8(血液型ABではない)および免疫グロブリンA(IgA)またはIgM値が年齢の基準範囲を下回っており、静脈内免疫グロブリン(IVIG)を受けていない場合、保護なし破傷風予防接種に対する抗体のレベル x2)。
    • -持続的なTおよびB細胞免疫不全と一致する臨床症状、例えば、ノロウイルス、サイトメガロウイルス、ヒトヘルペスウイルス6を含む慢性感染;または急性または再発性感染症(PJPなど)、気管支拡張症、慢性副鼻腔炎。

  • -高用量のブスルファンへの以前の曝露がない(≥10 mg / kgの総用量または≥40 mg * hr / Lの平均累積曝露). 以前のブスルファン曝露とこのプロトコルで投与される用量を含む合計累積 AUC が ≤60 mg*hr/L であると予測される場合、他の基準が満たされていれば、患者は適格となります。
  • 同種骨髄ドナーとして役立つ可能性のある、正常な免疫システムを備えた医学的に適格なHLA同一の兄弟はいません(新たに診断された患者にのみ適用されます)。

治験審査委員会 (IRB) のガイドラインに従って書面によるインフォームド コンセント。

除外基準:

  • 肝機能検査(アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、アラニントランスアミナーゼ、ガンマグルタミルトランスフェラーゼ) > 実験室の正常上限の 3 倍および/または総ビリルビン > 1.50 mg/dl ブスルファンコンディショニングの計画的開始時。
  • -肝臓の静脈閉塞性疾患(類洞閉塞症候群)の既往歴。
  • -医学的に適格なHLAが一致した兄弟(新しく診断された患者のみに適用されます)。
  • -ポリメラーゼ連鎖反応またはp24抗原検査によるHIV感染の証拠。
  • -全身麻酔および/または骨髄採取または末梢血幹細胞採取(アフェレーシス)または中心静脈カテーテルの挿入に耐えられない。
  • 人工呼吸器の必要性、主要な臓器系の重度の障害、または医学的治療に抵抗性の深刻で進行性の感染症の証拠など、生存が4か月未満であると予測されることを示す病状の存在。
  • 妊娠
  • 家族がプロトコル手順および推奨される医療とフォローアップを遵守できない可能性があることを示す社会的状況。
  • -主任研究者および/または共同研究者の意見では、形質導入細胞の注入または研究への参加を禁忌とするその他の条件。

研究計画

このセクションでは、研究がどのように設計され、研究が何を測定しているかなど、研究計画の詳細を提供します。

研究はどのように設計されていますか?

デザインの詳細

  • 主な目的:処理
  • 割り当て:なし
  • 介入モデル:単一グループの割り当て
  • マスキング:なし(オープンラベル)

武器と介入

参加者グループ / アーム
介入・治療
実験的:遺伝子治療(AProArt)
自己不活性化レンチウイルスベクター (AProArt) を使用したアルテミス欠損重症複合免疫不全症 (ART-SCID) の遺伝子導入による自己 CD34 造血細胞の形質導入。 CliniMACS® CD34 Reagent System ソーター装置を使用して、CD34 細胞を選択します。 患者は、移植前に低用量のブスルファンで調整されます。
参加者は、サブアブレーション的露出標的ブスルファンコンディショニングを受けた後、正しい形態の DCLRE1C 相補的デオキシリボ核酸 DNA を含むレンチウイルスベクター AProArt で形質導入された自家造血細胞の注入を受けます。
他の名前:
  • AProArtを用いたレンチウイルス遺伝子治療
注入前に CliniMACS® CD34 Reagent System を使用して CD34 細胞を選択するための造血前駆細胞の処理。
ブスルファンは、アルキル スルホネートのクラスの細胞周期非特異的アルキル化抗腫瘍剤です。 患者は、20 mg * hr/L の累積曲線下面積 (AUC) を達成するために、2 日間を対象とした低用量のブスルファン コンディショニングを受けます。
他の名前:
  • ブスルフェックス

この研究は何を測定していますか?

主要な結果の測定

結果測定
メジャーの説明
時間枠
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) を導入した ART-SCID 患者の生存率 - 自家幹細胞移植による CD34 細胞の導入
時間枠:2年
患者の生存状態と(該当する場合)死因を記録して、全生存率を評価します。
2年

二次結果の測定

結果測定
メジャーの説明
時間枠
AProArt 形質導入細胞の投与量
時間枠:1ヶ月
体重 1 kg あたりに注入された AProArt 形質導入 CD34 細胞の数が計算され、1 キログラムあたり少なくとも 2x10e6 形質導入細胞、最大 15x10e6 形質導入細胞が目標となります。
1ヶ月
ブスルファン投与に関連する治療緊急有害事象の発生率
時間枠:42日
治療に伴う有害事象は、CTCAE バージョン 4.0 を使用して測定されます。
42日
自己不活性化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) を導入した ART-SCID 患者の造血回復 - 自家幹細胞移植による CD34 細胞の導入。
時間枠:1年
患者は、全血球数と分画を測定するために血液検査を受けます。
1年
低用量ブスルファン前処置後に AProArt レンチウイルスベクターで形質導入された自家 CD34 造血幹細胞移植を受けた患者の免疫系の再構成を測定するためのリンパ球研究
時間枠:2年
患者は血液検査を受けて、T細胞、B細胞、NK細胞の数と機能を測定します。
2年
低用量ブスルファン前処置後に AProArt レンチウイルスベクターで形質導入された自家 CD34 造血幹細胞移植を受けた患者の免疫機能の確立を測定するための特異的抗体価
時間枠:2年
患者は、予防接種後に防御レベルを達成することによって文書化されているように、破傷風トキソイドに対する抗体産生を測定するために血液検査を受けます。
2年
低用量ブスルファン前処置後に AProArt レンチウイルスベクターで形質導入された自家 CD34 造血幹細胞移植を受けた患者の B 細胞免疫機能の確立を測定するための免疫グロブリンレベル
時間枠:2年
患者は循環免疫グロブリンのレベルを測定するために血液検査を受けます。
2年
AProArtレンチウイルスベクターで形質導入された造血細胞の多系統生着
時間枠:2年
移植は、定量的PCRアッセイを実施して、T、B、NK、および顆粒球/骨髄系の少なくとも2つの系統で形質導入された細胞を検出することによって測定されます。
2年
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) 導入 CD34 細胞の自家幹細胞移植に関連する有害事象の発生率
時間枠:2年
有害事象は、CTCAE バージョン 4.0 を使用して測定され、発癌性イベントも含まれます。
2年

その他の成果指標

結果測定
メジャーの説明
時間枠
低用量ブスルファン暴露の最終曲線下面積 (AUC)
時間枠:42日
最終的な曲線下面積 (AUC) は、20±4 mg*hr/L の目標累積 AUC と比較されます。
42日
移植後の遺伝子治療のART-SCIDレシピエントにおけるレパートリーの多様性。
時間枠:2年
T細胞受容体Vb再構成受容体のスペクトラタイピングによる測定。
2年
ベクターコピー数は、形質導入された造血幹細胞移植の注入後、経時的に維持されます。
時間枠:2年
研究室での研究では、顆粒球、T 細胞、B 細胞、NK 細胞などの血中白血球集団に見られるベクターのコピー数を測定します。 細胞集団は、勾配遠心法によって分離され、続いてモノクローナル抗体で染色され、フローソーティングが行われます。
2年
多様な挿入部位レパートリーを維持するためのベクター組み込み部位の位置
時間枠:2年
血液白血球の混合集団から、勾配分離およびフローソートされた成分 (T、B、骨髄、および NK 細胞) は、リンカー媒介 PCR によって増幅されたゲノム DNA フラグメントを持ちます。 超並列シーケンスが実行され、統合されたベクターとリンカーの間のジャンクションホスト DNA シーケンスが、BLAST ソフトウェアを使用してヒトゲノムにマッピングされます。 各挿入部位のゲノム位置が決定され、同じ挿入部位を持つ細胞の数が監視されます。
2年
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) 形質導入 CD34 細胞の自家幹細胞移植に関連する長期有害事象の発生率。
時間枠:15年間
有害事象はCTCAE V4.0を使用して測定されます
15年間
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) 形質導入 CD34 細胞の自家幹細胞移植を受ける ART-SCID 患者の長期生存。
時間枠:15年間
T細胞およびB細胞の数と機能によって測定された免疫系機能を持つ参加者の数。
15年間
ART-SCID 患者の免疫再構築に影響を与える形質導入エンハンサー (dmPGE2 および LentiBOOST™) の有効性。
時間枠:5年
実験室での研究では、ベクター コピー数 (VCN) を測定します。
5年
ART-SCID 患者の T 細胞および B 細胞の免疫再構成に影響を与える形質導入エンハンサー (dmPGE2 および LentiBOOST™) の有効性。
時間枠:5年
実験室での研究では、リンパ球サブセットを測定します。
5年
遺伝子修正細胞の注入後の自己免疫性溶血性貧血の発生を減らすための予防的シロリムスの効果。
時間枠:7年間
注入後 12 週目から、網状赤血球、直接クームス、間接クームス、および LDH の定期的なモニタリングを開始します。
7年間
十分な免疫を獲得していない患者の生存に対する遺伝子修正細胞の反復注入による治療の効果
時間枠:15年間
患者の生存状態と(該当する場合)死因を記録して、全生存率を評価します。
15年間
遺伝子修正細胞の反復注入による AProArt 形質導入細胞の用量
時間枠:5年
体重 1 kg あたりに注入された AProArt 形質導入 CD34 細胞の数は、反復注入について計算され、キログラムあたり少なくとも 2x10e6 形質導入細胞および最大 15x10e6 形質導入細胞を目標とします。
5年
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) を導入した ART-SCID 患者の造血回復 - 反復注入自家幹細胞移植による CD34 細胞。
時間枠:5年
患者は、遺伝子修正された細胞の反復注入に続いて、全血球数と分画を測定するための血液検査を受けます。
5年
反復注入を受けた患者における免疫機能の確立を測定するための特異的抗体価 AProArt レンチウイルスベクター形質導入自己 CD34 造血幹細胞移植
時間枠:5年
患者は、予防接種後に防御レベルを達成することによって文書化されている破傷風トキソイドに対する抗体産生を測定するために、遺伝子修正細胞の反復注入後に血液検査を受けます。
5年
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) 形質導入 CD34 細胞の反復注入自家幹細胞移植に関連する有害事象の発生率
時間枠:5年
有害事象は、CTCAE バージョン 4.0 を使用して遺伝子修正細胞を繰り返し注入した後に測定されます。
5年
ART-SCIDレシピエントの遺伝子治療におけるレパートリーの多様性は、遺伝子修正細胞の反復注入後です。
時間枠:5年
遺伝子修正細胞の反復注入後の T 細胞受容体 Vb 再構成受容体のスペクトラタイピングによる測定。
5年
自己不活化 (SIN) レンチウイルスベクター (AProArt) 形質導入 CD34 細胞の反復自家幹細胞移植に関連する長期有害事象の発生率。
時間枠:15年間
有害事象は、遺伝子修正細胞を繰り返し注入した後、CTCAE V4.0 を使用して測定されます。
15年間
形質導入された造血幹細胞移植の反復注入後、ベクターコピー数は経時的に持続しました。
時間枠:5年
実験室での研究では、顆粒球、T細胞、B細胞、NK細胞などの遺伝子修正細胞を繰り返し注入した後、血中白血球集団に見られるベクターコピーの数を測定します。 細胞集団は、勾配遠心法によって分離され、続いてモノクローナル抗体で染色され、フローソーティングが行われます。
5年
患者は、PedsQLアンケートによって評価された遺伝子修正細胞による治療を受けた結果を報告しました。
時間枠:15年間
年齢に応じた PedsQL アンケートは、ベースラインと 1、2、4、8、10、12、および 15 年目に実施されます。
15年間
遺伝子修正細胞による治療を受ける家族への影響。
時間枠:15年間
PedsQL Family Impact モジュールは、ベースラインと 1、2、4、8、10、12、および 15 年目に投与されます。
15年間

協力者と研究者

ここでは、この調査に関係する人々や組織を見つけることができます。

捜査官

  • 主任研究者:Morton Cowan, MD、University of California, San Francisco

出版物と役立つリンク

研究に関する情報を入力する責任者は、自発的にこれらの出版物を提供します。これらは、研究に関連するあらゆるものに関するものである可能性があります。

一般刊行物

研究記録日

これらの日付は、ClinicalTrials.gov への研究記録と要約結果の提出の進捗状況を追跡します。研究記録と報告された結果は、国立医学図書館 (NLM) によって審査され、公開 Web サイトに掲載される前に、特定の品質管理基準を満たしていることが確認されます。

主要日程の研究

研究開始 (実際)

2018年5月31日

一次修了 (推定)

2038年6月1日

研究の完了 (推定)

2038年6月1日

試験登録日

最初に提出

2018年5月3日

QC基準を満たした最初の提出物

2018年5月15日

最初の投稿 (実際)

2018年5月29日

学習記録の更新

投稿された最後の更新 (実際)

2024年2月12日

QC基準を満たした最後の更新が送信されました

2024年2月9日

最終確認日

2024年2月1日

詳しくは

本研究に関する用語

個々の参加者データ (IPD) の計画

個々の参加者データ (IPD) を共有する予定はありますか?

はい

IPD プランの説明

匿名化後に科学ジャーナル (テキスト、表、図、および付録) で報告された結果の基礎となる個々の参加者データ。

IPD 共有時間枠

記事掲載後3ヶ月~5年

IPD 共有アクセス基準

研究者は研究運営委員会にアクセスのリクエストを提出できます。 提案が方法論的に適切であると判断された場合、データ要求者はアクセスを取得する前にデータ アクセス契約に署名する必要があります。

IPD 共有サポート情報タイプ

  • STUDY_PROTOCOL
  • SAP

医薬品およびデバイス情報、研究文書

米国FDA規制医薬品の研究

はい

米国FDA規制機器製品の研究

はい

この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。

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