- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03538899
Thérapie génique autologue pour le SCID déficient en artémis
Une étude de faisabilité de phase I / II du transfert de gènes pour le déficit immunitaire combiné sévère déficient en artémis (ART-SCID) à l'aide d'un vecteur lentiviral auto-inactivant (AProArt) pour transduire des cellules hématopoïétiques CD34 autologues
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Les enfants atteints de SCID ne survivent généralement pas au-delà de la première année de vie sans traitement définitif. Le remède actuel le plus efficace est la greffe de cellules souches hématopoïétiques (HCT) avec un frère ou une sœur compatible avec l'antigène leucocytaire humain (HLA). Alors qu'un HCT frère-soeur compatible peut traiter avec succès l'ART-SCID, moins de 20 % des enfants affectés ont un tel donneur, et même lorsqu'un donneur frère-soeur compatible est disponible, la reconstitution immunitaire des lymphocytes T et B est souvent incomplète. L'ART-SCID est le type de SCID le plus difficile à guérir par greffe de cellules souches hématopoïétiques utilisant des donneurs alternatifs. La prise de greffe nécessite généralement un conditionnement intensif avec des agents alkylants à forte dose pour prévenir le rejet et ouvrir les niches médullaires. Ces patients ont également un risque élevé de développer une maladie du greffon contre l'hôte (GVHD) lorsque des donneurs alternatifs sont utilisés. La grande majorité des patients n'ont pas de reconstitution des lymphocytes B et nécessitent l'administration à vie de perfusions d'immunoglobuline. Les patients atteints d'ART-SCID qui reçoivent des doses élevées d'alkylants, en particulier lorsque 2 agents sont utilisés, ont une survie plus faible, un développement dentaire anormal, des endocrinopathies et une petite taille par rapport aux enfants exposés à peu ou pas d'alkylants ou aux enfants atteints de types SCID qui sont n'est pas associé à un défaut de réparation de l'ADN. Pour ces raisons, une approche plus sûre et plus efficace pour guérir l'ART-SCID est nécessaire. La greffe autologue de cellules souches hématopoïétiques corrigées du gène peut éliminer à la fois le risque de GVHD et le besoin d'alkylants pour prévenir le rejet.
La conception de l'étude est une expérience longitudinale à une seule cohorte utilisant des patients non randomisés traités une fois avec un vecteur lentiviral pour la correction génétique du SCID déficient en Artemis après conditionnement avec du busulfan à faible dose. Aucun groupe de contrôle formel n'est prévu pour évaluer la sécurité ; au contraire, une surveillance intensive des 6 premiers inscrits empêchera une accumulation continue en présence de signaux de sécurité, et la sécurité à long terme sera surveillée pendant 15 ans. Les cellules souches de la moelle osseuse seront prélevées sur des participants pesant ≤ 7,5 kg ou pour lesquels la mobilisation des cytokines a échoué auparavant, et les cellules souches du sang périphérique mobilisées par les cytokines seront prélevées sur des participants pesant > 7,5 kg. Les cellules CD34 seront isolées à l'aide du dispositif de tri de cellules CliniMACS® CD34 Reagent System. Les cellules seront transduites avec le vecteur lentiviral AProArt. Des activateurs de transduction seront utilisés pour augmenter l'efficacité de la transduction dans les cellules CD34+ du sang périphérique des patients qui subissent une collecte de cellules souches du sang périphérique. Ces cellules transduites seront ensuite cryoconservées, et des aliquotes des cellules subiront des tests de sécurité et seront réservées pour l'évaluation de la puissance. Tous les patients recevront un conditionnement au busulfan ciblé sur 2 jours pour atteindre une aire sous la courbe (ASC) cumulée de 20 mg*h/L (une ASC cumulée ablative est de 60 à 90 mg*h/L). Après la perfusion de cellules transduites par AProArt, les patients seront évalués à 4, 6, 8, 16 et 24 semaines pour détecter des cellules mononucléaires du sang périphérique transduites par gène et, si possible, des lignées cellulaires, notamment des cellules T, B, NK et granulocytes/myéloïdes. . S'il n'y a aucune preuve de cellules géniques transduites 6 semaines (42 jours) après la perfusion, une décision sera prise concernant la poursuite du traitement.
Après le jour 42 post-transplantation, les receveurs seront suivis pour la toxicité et la reconstitution durable de l'immunité des lymphocytes T et B. La reconstitution immunitaire des lymphocytes T sera surveillée régulièrement. Si le nombre absolu de neutrophiles est < 200/µl ou de plaquettes < 20 000/µl sur 3 déterminations indépendantes après 42 jours après la perfusion des cellules transduites, le patient peut recevoir une perfusion des cellules de secours ou une allogreffe de cellules souches hématopoïétiques. Les patients qui étaient neutropéniques avant le conditionnement (neutropénie liée au SCID) mais qui répondent au facteur de stimulation des colonies de granulocytes (GCSF) ne seront pas considérés comme ayant échoué, à condition que le nombre absolu de neutrophiles puisse être maintenu au-dessus de > 500/µl avec le GCSF.
Après le jour 42, les patients seront évalués chaque semaine jusqu'à 12 semaines après la greffe et à la semaine 16, tous les mois jusqu'au mois 6 après la greffe, puis tous les 3 mois jusqu'au mois 24. Ils seront ensuite évalués tous les 6 mois pendant les années 2 à 5 et annuellement jusqu'à l'année 15. Le suivi de l'étude comprendra la réalisation de questionnaires sur la qualité de vie et l'administration de tests neurodéveloppementaux.
Les patients présentant des signes de reconstitution cliniquement inadéquate, un VCN faible ou toute autre caractéristique suggérant une réponse cliniquement inadéquate à la procédure de thérapie génique initiale se verront proposer une perfusion répétée de cellules transduites par le gène. Les régimes de conditionnement administrés avant une procédure de thérapie génique répétée peuvent inclure du busulfan à faible dose, un autre conditionnement ou aucun conditionnement.
Un comité indépendant de surveillance de la sécurité des données (DSMB) sera nommé pour surveiller la sécurité de cet essai. Le DSMB examinera toutes les données de sécurité selon un calendrier régulier, en fonction du nombre de sujets inscrits et procédera également à un examen urgent spécial de tout événement indésirable grave (EIG) lié au protocole. Au début de l'essai, le DSMB examinera les résultats de chacun des 3 premiers cas avant de poursuivre avec les patients suivants.
Le produit expérimental (IND1711) pour l'étude de transfert de gène ART-SCID n'est pas disponible pour une utilisation en accès étendu. Conformément à 21 CFR Part 312.305(3), l'équipe de gestion de l'étude a déterminé que la fourniture du produit expérimental pour une utilisation à accès élargi à ce stade interférerait avec la conduite et l'achèvement de l'essai clinique et le développement potentiel d'une future utilisation à accès élargi. Le produit expérimental est disponible pour les patients éligibles via la participation à cet essai clinique.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- Phase 2
- La phase 1
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Morton Cowan, MD
- Numéro de téléphone: 415-476-2188
- E-mail: Mort.Cowan@ucsf.edu
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Jennifer Puck, MD
- Numéro de téléphone: 415 502-2090
- E-mail: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Lieux d'étude
-
-
California
-
San Francisco, California, États-Unis, 94143
- Recrutement
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- ≥ 2,0 mois au début du conditionnement au busulfan
- Diagnostic d'ART-SCID typique ou qui fuit :
Les patients nouvellement diagnostiqués sous ART-SCID doivent avoir :
- carence en artémis ; ET
- Nombre de CD3 < 300 cellules autologues/µL (ART-SCID typique) OU chimérisme maternel spontané, OU nombre de CD3 > 300/µL mais avec une diversité restreinte du récepteur des cellules T Vb, définie comme 18/24 familles polyclonales ou moins.
ET - Réponse des cellules CD45 aux mitogènes (PHA) < 50 % de la limite inférieure de la plage normale pour le laboratoire (fuite ART-SCID).
Les patients diagnostiqués avec ART-SCID selon les critères ci-dessus qui ont échoué à une greffe allogénique (y compris une greffe de frère ou sœur compatible HLA) peuvent participer s'ils répondent aux critères ci-dessous :
- Sont au moins 3 mois après la greffe de cellules souches hématopoïétiques allogéniques sans preuve de greffe de cellules allogéniques du donneur (à l'exclusion des cellules maternelles)
OU sont greffés mais présentent au moins 2 des 4 conditions suivantes :
- Diminution du chimérisme du donneur CD3 avec au moins 3 évaluations séparées d'au moins 1 mois avant le moment de l'inscription OU < 5 % de chimérisme global du donneur dans le sang et la moelle à ≥ 3 mois après la greffe.
Immunité des lymphocytes T incomplètement reconstituée à ≥6 mois (1 des 2 suivants) :
- CD4 < 200/μL ET PHA des cellules CD45 < 50 % de la limite inférieure de la normale pour le laboratoire ;
- CD4 CD45RA < 20 % du nombre total de cellules CD4 OU la diversité Vb des récepteurs des lymphocytes T est restreinte, définie comme 18/24 familles polyclonales ou moins.
- Absence de lymphocytes B du donneur OU absence de fonction des lymphocytes B (isohémagglutinines d'immunoglobuline M < 1:8 (pas de groupe sanguin AB) ET valeurs d'immunoglobuline A (IgA) ou d'IgM inférieures à la plage de référence pour l'âge ET si l'on ne reçoit pas d'immunoglobuline intraveineuse (IgIV), aucune protection niveau d'anticorps contre la vaccination contre le tétanos x2).
- Manifestations cliniques compatibles avec une immunodéficience persistante des lymphocytes T et B, par exemple une infection chronique, y compris le norovirus, le cytomégalovirus, le virus de l'herpès humain 6 ; OU infection aiguë ou récurrente (p. ex., PJP), bronchectasie, sinusite chronique.
ET
- N'avoir jamais été exposé au busulfan à forte dose (dose totale ≥ 10 mg/kg ou exposition cumulée moyenne ≥ 40 mg*h/L). Si l'ASC cumulée totale, y compris l'exposition antérieure au busulfan plus la dose à administrer dans ce protocole, est prévue comme étant ≤ 60 mg*h/L, le patient serait éligible à condition que d'autres critères soient satisfaits.
- Aucun frère ou sœur HLA identique médicalement éligible avec un système immunitaire normal qui pourrait servir de donneur de moelle osseuse allogénique (s'applique uniquement aux patients nouvellement diagnostiqués).
Consentement éclairé écrit conformément aux directives de l'Institutional Review Board (IRB).
Critère d'exclusion:
- Tests de la fonction hépatique (aspartate aminotransférase, alanine transaminase, gamma-glutamyl transférase) > trois fois la limite supérieure de la normale pour le laboratoire et/ou bilirubine totale > 1,50 mg/dl au moment de l'initiation prévue du conditionnement au busulfan.
- Antécédents de maladie veino-occlusive (syndrome d'obstruction sinusoïdale) du foie.
- Frère ou sœur compatible HLA médicalement éligible (s'applique uniquement aux patients nouvellement diagnostiqués).
- Preuve d'infection par le VIH par réaction en chaîne par polymérase ou test de l'antigène p24.
- Incapable de tolérer une anesthésie générale et/ou un prélèvement de moelle ou un prélèvement de cellules souches du sang périphérique (aphérèse) ou l'insertion d'un cathéter veineux central.
- Présence d'une condition médicale indiquant que la survie devrait être inférieure à 4 mois, telle que la nécessité d'une ventilation mécanique, une défaillance grave d'un système organique majeur ou la preuve d'une infection grave et progressive réfractaire au traitement médical.
- Grossesse
- Une situation sociale indiquant que la famille peut ne pas être en mesure de respecter les procédures protocolaires et les soins et suivis médicaux recommandés.
- Autres conditions qui, de l'avis du chercheur principal et / ou des co-chercheurs, contre-indiquent la perfusion de cellules transduites ou la participation à l'étude.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Expérimental: Thérapie génique (AProArt)
Transfert De Gènes Pour Le Déficit Immunitaire Combiné Sévère Déficient En Artémis (ART-SCID) À L'aide D'un Vecteur Lentiviral Auto-inactivant (AProArt) Pour Transduire Des Cellules Hématopoïétiques CD34 Autologues.
Le dispositif de tri CliniMACS® CD34 Reagent System sera utilisé pour sélectionner les cellules CD34.
Les patients seront conditionnés avec du busulfan à faible dose avant la greffe.
|
Traitement des cellules progénitrices hématopoïétiques pour sélectionner les cellules CD34, à l'aide du système de réactifs CliniMACS® CD34, avant la perfusion.
Le busulfan est un agent antinéoplasique alkylant non spécifique du cycle cellulaire, de la classe des sulfonates d'alkyle.
Les patients recevront un conditionnement au busulfan à faible dose ciblé sur 2 jours pour atteindre une aire cumulée sous la courbe (ASC) de 20 mg*h/L.
Autres noms:
Les participants subiront une perfusion de cellules hématopoïétiques autologues transduites avec un vecteur lentiviral, AProArt, qui contient la forme correcte d'ADN d'acide désoxyribonucléique complémentaire DCLRE1C, après avoir reçu un conditionnement au busulfan sous-ablatif et ciblé sur l'exposition.
Autres noms:
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Démontrer que les patients atteints d'ART-SCID recevant une perfusion d'AProArt-CD34 ont une survie globale (OS) supérieure à 24 mois après le traitement par AProArt-CD34 par rapport au résultat établi de 0 % d'OS pour les patients qui ne reçoivent aucun traitement pour l'ART-SCID
Délai: 24 mois
|
Le statut de survie du patient et (le cas échéant) la cause du décès seront enregistrés pour évaluer la survie globale.
|
24 mois
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Reconstitution immunitaire des cellules B à 24±2 mois par rapport à la cohorte témoin historique des receveurs de greffe allogénique
Délai: 24 mois
|
La reconstitution immunitaire des lymphocytes B sera définie comme la cessation du traitement de substitution par immunoglobulines
|
24 mois
|
|
Nombre de participants avec reconstitution immunitaire à lymphocytes T comparé aux témoins historiques ayant reçu des greffes allogéniques pour traiter l'ART-SCID.
Délai: 24 mois
|
La reconstitution immunitaire des lymphocytes T sera définie par la présence simultanée des deux critères suivants : 1) a. CD3>1000/mm³ ; 2) CD4>500/mm³.
|
24 mois
|
|
Survie sans événement
Délai: 24 mois
|
Les événements sont définis comme le décès, l'utilisation d'une perfusion répétée de cellules corrigées par gène pour améliorer la reconstitution immunitaire des cellules T/B ou la nécessité de réaliser une greffe de cellules souches hématopoïétiques allogénique.
|
24 mois
|
Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Récupération hématopoïétique chez les patients atteints d'ART-SCID qui reçoivent des cellules CD34 transduites par un vecteur lentiviral auto-inactivant (SIN) (AProArt) par le biais d'une greffe de cellules souches autologues par perfusion répétée.
Délai: 5 années
|
Les patients subiront des tests sanguins pour mesurer la formule sanguine complète et différentielle après une perfusion répétée de cellules corrigées par le gène.
|
5 années
|
|
Profil d'événements indésirables (EI) associés à l'intervention de l'étude, depuis le traitement jusqu'à 15 ans après la procédure de transfert de gène
Délai: 15 ans
|
EI cliniques et de laboratoire mesurés par CTCAE V4
|
15 ans
|
|
Nombre de participants avec reconstitution de lymphocytes B au-delà de 24 mois, y compris le nombre et la fonction des lymphocytes B
Délai: 15 ans
|
La reconstitution des lymphocytes B sera définie comme la présence d'au moins deux des éléments suivants : 1) nombre de lymphocytes B > 40/mm3 ; 2) Arrêt du traitement de substitution par immunoglobulines ; 3) Réponses en anticorps spécifiques protectrices.
Le nombre de participants qui répondent à la définition de la reconstitution des cellules B sera compilé.
|
15 ans
|
|
Efficacité du ciblage du busulfan à faible exposition chez les nourrissons et les enfants, calculée par pourcentage de participants dont le traitement répond aux paramètres de l'étude à l'aide d'un modèle pharmacocinétique de population validé pour calculer la clairance individualisée du busulfan.
Délai: 42 jours
|
Atteinte de l'ASC cumulative cible finale de 20 ± 2 mg*h/L chez environ 90 % des sujets
|
42 jours
|
|
Diversité du répertoire des lymphocytes T et B, telle qu'évaluée en analysant la séquence bêta variable du gène du récepteur des lymphocytes T (TCR-Vb) et les récepteurs réarrangés de la chaîne lourde d'immunoglobuline (IGH) et en calculant l'indice de Shannon de diversité.
Délai: 24 mois
|
Mesuré par séquençage profond de la séquence bêta variable du gène du récepteur des lymphocytes T (TCR) (TCR-Vb) et des récepteurs réarrangés à chaîne lourde d'immunoglobuline (IGH).
L'indice de diversité de Shannon devrait être supérieur à 7,5 24 ± 2 mois après le traitement chez 90 % des patients.
|
24 mois
|
|
Déterminer si la diversité des récepteurs des lymphocytes B à 6 mois est prédictive de la reconstitution des lymphocytes B sur 15 ans en analysant la séquence bêta variable du gène du récepteur des lymphocytes B et les récepteurs réarrangés à chaîne lourde d'immunoglobuline et en calculant l'indice de Shannon de diversité.
Délai: 15 ans
|
Un indice de Shannon > 5 devrait être un biomarqueur pour la reconstitution des cellules B.
La diversité des récepteurs des lymphocytes B sera mesurée tout au long de la participation à l'étude.
|
15 ans
|
|
Déterminer si à 6 mois la diversité des récepteurs des lymphocytes T (TCR) et/ou les numérations absolues de CD3, CD4 et CD4 naïfs prédisent la reconstitution des lymphocytes T à 24 mois ou la nécessité d'un 2e traitement tout au long de la période de suivi de 15 ans.
Délai: 15 ans
|
La diversité TCR-Vb et les numérations absolues de CD3, CD4 et CD4 naïfs seront mesurées à 6 mois.
La reconstitution des lymphocytes T sera mesurée tout au long de la participation à l'étude.
|
15 ans
|
|
Stabilité du nombre moyen de copies du vecteur (VCN) et emplacement des sites d'intégration du vecteur dans les cellules T, B et tueuses naturelles (NK), les granulocytes et les monocytes triés dans le sang périphérique au fil du temps après la perfusion de HSC transduites.
Délai: 24 mois
|
Le nombre moyen de copies vectorielles (VCN) et l'emplacement des sites d'intégration vectorielle seront mesurés à 6 ± 1, 12 ± 1 et 24 ± 2 mois, puis annuellement jusqu'à 15 ans après la perfusion d'AProArt-CD34.
Le VCN moyen doit être > 0,5 copies/cellule dans les cellules T et B et > 0,01 dans les cellules NK, myéloïdes et granulocytes 24 ± 2 mois après le traitement.
|
24 mois
|
|
Caractérisation des sites d'insertion dans plusieurs lignées cellulaires comme indicateur de diversité, de prise de greffe multilignée et tabulation de toute expansion clonale pouvant indiquer le développement d'une tumeur maligne.
Délai: 24 mois
|
Les sites d'insertion seront mesurés à 6 ± 1, 12 ± 1, 24 ± 2 mois et annuellement jusqu'à 15 ans après la perfusion d'AProArt-CD34.
Les sites d'insertion cellulaire devraient être divers, aucun clone ne représentant plus de 20 % d'une lignée à 24 mois.
|
24 mois
|
|
Bénéfice potentiel du sirolimus prophylactique dans la réduction de l'incidence de l'anémie hémolytique auto-immune transitoire (AIHA) après la perfusion d'AProArt-CD34, tel qu'évalué par le nombre de participants avec un diagnostic clinique d'AIHA.
Délai: 24 mois
|
Incidence de l'anémie hémolytique auto-immune 24 ± 2 mois après la perfusion après l'administration de sirolimus prophylactique, telle qu'évaluée par la surveillance de l'hémoglobine, des résultats directs et indirects de Coombs, des réticulocytes et de la lactate déshydrogénase.
L'incidence de l'AIHA nécessitant un traitement devrait être inférieure à 40 % des patients sous sirolimus prophylactique.
|
24 mois
|
|
Mesure de la sensibilité aux radiations dans les cellules NK du sang périphérique pour le développement et la validation d'un test fonctionnel rapide pour le SCID sensible aux radiations.
Délai: 24 mois
|
Développement et validation d'un test pour le SCID sensible aux radiations dans les cellules NK du sang périphérique
|
24 mois
|
|
Puissance de l'AProArt-CD34, indiquée par la capacité de différenciation in vitro des échantillons de participants en cellules T et évaluation du VCN moyen comme marqueur de substitution de la puissance.
Délai: 5 ans
|
Démonstration que les cellules CD34+ du patient post-transduction ont la capacité de se différencier in vitro en cellules T et que le VCN moyen est un marqueur de substitution pour la puissance.
Un ou plusieurs tests de puissance seront développés et validés pour les CD34+ HSC transduites par AProArt qui donnent des résultats dans les 52 jours suivant la transduction, et une corrélation de ceux-ci avec le VCN obtenu 6 et 14 jours après la transduction avec AProArt.
|
5 ans
|
|
Effets d'un conditionnement ciblé par busulfan à faible exposition sur la croissance/la stature des patients
Délai: 5 ans
|
La taille (cm) et le poids (kg) du patient seront mesurés et comparés aux normes pour l'âge
|
5 ans
|
|
Effets du busulfan sur le développement dentaire des patients
Délai: 5 ans
|
Les antécédents dentaires et les notes cliniques seront examinés pour comparer le développement des dents permanentes avec les normes de développement pour l'âge de 5 à 15 ans
|
5 ans
|
|
Résultat rapporté par le patient concernant le traitement par cellules génétiquement corrigées, évalué par les questionnaires PedsQL.
Délai: 5 ans
|
Les questionnaires PedsQL (Pediatric Quality of Life Inventory) adaptés à l'âge seront administrés au départ et aux années 1, 2, 4, 8, 10, 12 et 15.
Quatre domaines (Fonctionnement physique, Fonctionnement émotionnel, Fonctionnement social et Fonctionnement scolaire) sont inversement notés sur une échelle de Likert à 5 points et transformés en une échelle de 0 à 100, les scores plus élevés indiquant de meilleurs résultats.
|
5 ans
|
|
Impact familial du traitement par cellules génétiquement corrigées.
Délai: 15 ans
|
Le module Impact familial de l'inventaire de qualité de vie pédiatrique (PedsQL) sera administré au départ et aux années 1, 2, 4, 8, 10, 12 et 15.
Les réponses sont indiquées sur une échelle de Likert en 5 points et transformées en une échelle de 0 à 100, des scores plus élevés indiquant de meilleurs résultats.
|
15 ans
|
|
Effets de l'intervention de l'étude sur le neurodéveloppement au fil du temps
Délai: 5 ans
|
Le neurodéveloppement sera évalué à 3, 5, 8, 11, 14 et 17 ans à l'aide d'instruments appropriés à l'âge (Échelles de comportement adaptatif de Vineland, Inventaire d'évaluation du fonctionnement exécutif, Évaluation comportementale pour enfants, Échelles de développement du nourrisson de Bayley, Échelles d'intelligence de Wechsler, Test d'apprentissage verbal de Californie, Test de performance continue de Conners, Système de fonction exécutive Delis-Kaplan et Test de réussite à grande échelle).
Les résultats seront comparés aux normes pour 18 mois et 3, 5, 8, 11, 14 et 17 ans.
|
5 ans
|
Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publications et liens utiles
Publications générales
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856.
- Cowan MJ, Yu J, Facchino J, Fraser-Browne C, Sanford U, Kawahara M, Dara J, Long-Boyle J, Oh J, Chan W, Chag S, Broderick L, Chellapandian D, Decaluwe H, Golski C, Hu D, Kuo CY, Miller HK, Petrovic A, Currier R, Hilton JF, Punwani D, Dvorak CC, Malech HL, McIvor RS, Puck JM. Lentiviral Gene Therapy for Artemis-Deficient SCID. N Engl J Med. 2022 Dec 22;387(25):2344-2355. doi: 10.1056/NEJMoa2206575.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Maladies d'immunodéficience primaire
- Maladies génétiques, innées
- Maladies métaboliques
- Maladies du système immunitaire
- Nourrisson, nouveau-né, maladies
- Syndromes d'immunodéficience
- Troubles de la réparation de l'ADN
- Maladies et anomalies congénitales, héréditaires et néonatales
- Maladies nutritionnelles et métaboliques
- Déficit immunitaire combiné sévère
- Composés de soufre
- Produits chimiques organiques
- Hydrocarbures, acyclique
- Hydrocarbures
- Alcanes
- Alcools
- Butylène glycols
- Glycols
- Mésylates
- Alcanesulfonates
- Acides alcanesulfoniques
- Acides sulfoniques
- Acides de soufre
- Busulfan
Autres numéros d'identification d'étude
- 17-22799
- CLIN2-10830 (Autre subvention/numéro de financement: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN2-17127 (Autre subvention/numéro de financement: California Institute of Regenerative Medicine)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Description du régime IPD
Délai de partage IPD
Critères d'accès au partage IPD
Type d'informations de prise en charge du partage d'IPD
- PROTOCOLE D'ÉTUDE
- SÈVE
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .