- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT02310919
Verabreichung von Follikel-stimulierendem Hormon (FSH) und niedrig dosiertem humanem Choriongonadotropin (hCG) für die Oozytenreife bei gleichzeitiger Verringerung der hCG-Exposition in In-vitro-Fertilisationszyklen (IVF).
Die gleichzeitige Verabreichung von FSH mit einer niedrigen hCG-Dosis (1.500 IE) hat eine gleichwertige Oozytenentwicklungskompetenz, während die hCG-Exposition in IVF-Zyklen verringert wird: Eine doppelblinde, randomisierte Kontrollstudie
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Die Erfolgsrate der assistierten Reproduktionstechnologie (ART) hat sich aufgrund der Verbesserungen der Embryokultur, der Laborbedingungen und der Optimierung verschiedener Protokolle zur Stimulation der Eierstöcke dramatisch erhöht. Neuere Daten zeigen, dass ein schweres OHSS sehr selten ist, wenn hCG nicht zur Oozytenreifung verabreicht wird. Bei Gonadotropin-Releasing-Hormon (GnRH)-Agonisten-Zyklen ist jedoch hCG erforderlich. Frühere Studien haben gezeigt, dass eine geringere hCG-Dosis zur Auslösung des Eisprungs im Vergleich zur Standarddosis die gleiche Wirkung auf die Induktion der endgültigen Oozytenreifung haben und möglicherweise das Risiko eines OHSS verringern kann. Die Mindestdosis von hCG, die erforderlich ist, um die maximalen Erfolgsraten der IVF aufrechtzuerhalten, ist jedoch nicht bekannt, da sie in randomisierten kontrollierten Studien nicht ausreichend untersucht wurde. Interessanterweise zeigte unsere vorherige randomisierte kontrollierte Studie, dass die gleichzeitige Verabreichung von FSH und hCG (10.000 IE), ein eher physiologischer Prozess, die Entwicklungsfähigkeit der Oozyten verbesserte. In dieser Studie gab es kein OHSS in der Gruppe, die den FSH-Co-Trigger erhielt. Eine nachfolgende Studie führte eine randomisierte Studie durch, um festzustellen, ob der FSH-Co-Trigger die Inzidenz von OHSS verringerte, und fand heraus, dass er OHSS verhindern kann. Darüber hinaus zeigt unsere eigene klinische Erfahrung (unveröffentlichte Daten), dass die Verabreichung von 1.500 IE hCG plus 450 IE FSH als Co-Trigger ausreicht, um eine angemessene (d. h. nicht minderwertiger) Oozytenreifung, ohne das Risiko für die Entwicklung eines OHSS bei Hochrisikopatientinnen zu erhöhen. Angesichts dieser Ergebnisse schlagen wir eine weitere Modifikation des Ovulationsauslösers mit verringerter hCG-Exposition vor. Unser Ziel ist es festzustellen, ob die gleichzeitige Verabreichung von FSH mit einer verringerten hCG-Dosis im Vergleich zu einer Standarddosis hCG allein für den Eisprung eine angemessene Oozytenreifung und -qualität fördert und gleichzeitig das Risiko eines OHSS verringert. Es wird angenommen, dass die gewählte FSH-Dosis von 450 IE dem physiologischen FSH-Anstieg entspricht, der in einem natürlichen Zyklus beobachtet wird. Wir haben 1.500 IE als designierte niedrige hCG-Dosis gewählt, basierend auf früheren Studien, die zeigen, dass selbst so niedrige hCG-Dosen wie 2.000 IE eine Reifung der Eizellen ermöglichen, sowie auf unserer eigenen klinischen Erfahrung, die eine angemessene Oozytenreife und Befruchtung bei ausgewählten Patientinnen gezeigt hat aufgrund des OHSS-Risikos 1.500 IE hCG erhalten.
Die Studienteilnehmer werden von der Reproductive Endocrinology and Infertility Clinic der University of California im San Francisco Center for Reproductive Health rekrutiert. Paaren, die sich einer IVF unterziehen, wird die Teilnahme an der Studie angeboten.
Ungefähr 100 Probanden werden zum Zeitpunkt der Registrierung randomisiert, um entweder die Standarddosis von hCG allein oder eine niedrige Dosis von hCG (1.500 IE) + FSH (450 IE) für den Oozytenreifungsauslöser durch den Forschungskoordinator zu erhalten. Es wird etwa 50 Probanden in jedem Studienarm geben.
Jeder Proband wird einem Standard-IVF-Stimulationsprotokoll unterzogen, das von seinem Hauptarzt ausgewählt wird. Die Studienteilnehmerinnen erhalten am Tag des Ovulationsauslösers eine Spritze (vom Forschungskoordinator vorbereitet), die je nach Randomisierung entweder die Standarddosis hCG oder eine niedrig dosierte hCG + FSH enthält. Die Themen werden wie folgt ausgelöst:
- Kontrollarm: Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE) oder
- Experimenteller Arm: hCG 1.500 IE SQ + FSH 450 IE SQ.
Für den Kontrollarm wird die hCG-Standarddosis basierend auf dem Östradiolspiegel (E2) verabreicht. Wenn der E2-Spiegel unter 3.500 pg/ml liegt, lösen wir mit 10.000 IE hCG aus. Wenn der E2-Wert mehr als 3.500 pg/ml, aber weniger als 5.000 pg/ml beträgt, lösen wir mit 5.000 IE aus.
Interventionen zur Vorbeugung von OHSS bei Hochrisikopatienten:
Alle Patienten in beiden Armen mit einem E2-Serumspiegel von > 5.000 pg/ml am Tag der erwarteten Auslöseverabreichung werden von der Studie ausgeschlossen. Diese Patienten werden individuell von ihrem Hausarzt untersucht. Ihr Hausarzt entscheidet anhand des OHSS-Risikos des Patienten über die sicherste Triggeroption. Aus unserer eigenen klinischen Erfahrung erwarten wir, dass 5.000 pg/ml ausgeschlossen werden.
Die hCG- und FSH-Triggerschüsse für jeden Patienten werden von einem unverblindeten Arzt am selben Tag vorbereitet, an dem der Patient die Medikamente verabreicht. Die Probanden verabreichen sich den Ovulationsauslöser zu der vom Hausarzt vorgegebenen Zeit selbst.
Die Eizellentnahme wird 36 Stunden nach dem Eizellreifungsauslöser durchgeführt. Alle Eizellentnahmen werden standardmäßig mit transvaginalem Ultraschall und der zugehörigen Nadelführung durchgeführt. Sowohl der Arzt als auch das Laborpersonal sind gegenüber der Studie verblindet. Alle sichtbaren Follikel werden abgesaugt. Der erste Follikel aus jedem Eierstock wird bei jeder Patientin abgesaugt und das System (Nadel und Schlauch) wird in ein separates Röhrchen gespült, bevor die restlichen Follikel abgesaugt werden, sodass eine direkte Korrelation zwischen der Follikelgröße und der Reifung der Oozytenregeneration und der Embryonalentwicklung besteht getrennt bewertet. Zusätzlich wird die Follikelflüssigkeit aus dem ersten Aspirat für zukünftige Hormontests gesammelt. Das Oozytenstripping wird nach dem Standardprotokoll durchgeführt. Der Status der Oozytenreifung zum Zeitpunkt des Strippens (ca. 38-40 Stunden nach der hCG-Verabreichung) und am Ende des Verfahrens der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (ICSI) (ca. 40-42 Stunden nach der hCG-Verabreichung) wird aufgezeichnet. Die Befruchtung wird 16-19 Stunden nach der Besamung beurteilt. Die Embryonen werden auf Wachstumsmedien übertragen und mit Standardprotokollen kultiviert.
Die Probanden werden 12 Stunden nach dem Trigger (T+1), bei der Oozytenentnahme (T+2) und 5 Tage nach dem Trigger (T+5) zurückkehren, um die Serumspiegel von Östradiol, Progesteron, hCG, FSH, LH und vaskulärem Endothel zu bestimmen Wachstumsfaktor (VEGF), je nach Bedarf, basierend auf dem Tag des Studienbesuchs.
Um die Inzidenz von OHSS zu beurteilen, werden die Patienten objektiv anhand einer Veränderung des Bauchumfangs sowie subjektiv anhand der klinischen Symptomatologie auf der Grundlage der Blähungssymptome des Patienten bewertet.
Vor Beginn der Stimulation werden außerdem der Bauchumfang (C) und das Körpergewicht (BW) in Zentimetern bei der Baseline-Ultraschallvisite gemessen (C-Baseline, BW-Baseline). Fünf Tage nach der Eizellentnahme werden erneut der Bauchumfang und das Körpergewicht in Zentimetern gemessen (C stimuliert, BW stimuliert). Die Differenz des Bauchumfangs und des Körpergewichts wird wie folgt berechnet: C Basislinie – C stimuliert = CΔ.; BW-Basislinie – BW stimuliert = BWΔ.
Die klinischen Symptome der Patientin werden basierend auf einem Blähungsscore bewertet, der von jeder Patientin vor der Verabreichung des Trigger-Schusses gemeldet wird, und dann 5 Tage nach der Oozytenentnahme bestimmt. 5 Tage nach der Oozytenentnahme wird auch eine Venenpunktion für Hormontests durchgeführt.
Patienten, bei denen OHSS diagnostiziert wurde, werden nach klinischer Indikation von einem Arzt behandelt. Die Anzahl der Folgebesuche in Kliniken und Krankenhauseinweisungen aufgrund von OHSS-Symptomen wird aufgezeichnet.
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Phase 3
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
California
-
San Francisco, California, Vereinigte Staaten, 94143
- University of California at San Francisco
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien: Die Zielgruppe umfasst Paare, die sich einer IVF unterziehen. Alle in Frage kommenden Paare werden gebeten, an der Studie teilzunehmen. Die Studienteilnehmer werden von der Reproductive Endocrinology Clinic der University of California im San Francisco Center for Reproductive Health rekrutiert. Patienten, die ein beliebiges Stimulationsprotokoll für IVF erhalten, wird die Teilnahme an der Studie angeboten.
Ausschlusskriterien:
- Alter >41 Jahre alt
- Antrumfollikelzahl (AFC; 2-10 mm) < 8
- Body-Mass-Index > 30 kg/m2
- Geschichte von ≥ 2 vorherigen abgebrochenen IVF-Zyklen aufgrund eines schlechten Ansprechens
- Diagnose von Krebs
- Jede signifikante gleichzeitige Erkrankung, Krankheit oder psychiatrische Störung, die die Patientensicherheit oder -compliance beeinträchtigen, die Einwilligung, die Studienteilnahme, die Nachsorge oder die Interpretation der Studienergebnisse beeinträchtigen würde
- Durchlaufende Embryo-Co-Kultur
- Verwendung eines der folgenden Medikamente: Wachstumshormon, Sildenafil oder Aspirin (außer bei Verwendung bei hyperkoagulablem Zustand)
- Schwere männliche Unfruchtbarkeitsdiagnose. Die Diagnose der männlichen Faktor-Unfruchtbarkeit sollte vom PI auf der Grundlage der Fertilisationsergebnisse in der Vorgeschichte der Patientin und/oder der erwarteten Fertilisationsergebnisse der Ursache der männlichen Faktor-Unfruchtbarkeit auf der Grundlage bekannter wissenschaftlicher Daten für die Eignung freigegeben werden.
- Ovulationsauslöser weniger als oder mehr als 36 Stunden bis zur Entnahme der Eizelle
- Serumöstradiolspiegel > 5.000 pg/ml am Tag des erwarteten Triggers aufgrund des hohen OHSS-Risikos
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Doppelt
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Experimental: Niedrig dosiertes hCG plus FSH-Co-Trigger
Am Tag des Ovulationsauslösers erhält die Patientin 1.500 IE SQ hCG plus 450 IE SQ FSH
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Niedrig dosiertes hCG (1.500 IE) plus FSH (450 IE) Co-Trigger
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Aktiver Komparator: Standarddosis hCG allein
Am Tag des Eisprungauslösers erhält die Patientin eine Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE SQ)
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Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE) auslösen
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Gesamtdüngungsanteil (d. h. Gesamtkompetenter Anteil)
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Anzahl befruchteter Eizellen (2-Vorkerne) nach standardmäßiger In-vitro-Fertilisation oder intrazytoplasmatischer Spermieninjektion dividiert durch die Gesamtzahl gewonnener Eizellen als Maß für die Eizellkompetenz.
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2 Tage
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Anzahl der entnommenen Eizellen
Zeitfenster: 1 Tag
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Die Gesamtzahl der bei der Eizellentnahme gewonnenen Eizellen.
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1 Tag
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Anzahl der MII-Oozyten
Zeitfenster: 1 Tag
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Die Anzahl der gewonnenen Metaphase-2-Oozyten (MII), die nur bei Patientinnen berechnet werden kann, die sich einer intrazytoplasmatischen Spermieninjektion unterzogen haben.
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1 Tag
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Gesamtreifungsrate der Oozyten
Zeitfenster: 1 Tag
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Die Reiferate der Oozyten wurde durch die Anzahl der Oozyten der Metaphase 2 (MII) dividiert durch die Anzahl der entnommenen Oozyten bestimmt.
Dieser Endpunkt wurde nur bei Patienten untersucht, die sich einer intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (ICSI) unterzogen.
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1 Tag
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Anteil der Erholung reifer Eizellen
Zeitfenster: 1 Tag
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Der Anteil der Erholung reifer Eizellen ist definiert als die Anzahl der MIIs dividiert durch die Gesamtzahl der Follikel mit einer Größe von mindestens 13 mm am Triggertag.
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1 Tag
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ICSI-Fertilisationsrate
Zeitfenster: 2 Tage
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Die ICSI-Fertilisationsrate wurde durch die Anzahl der 2 Vorkerne (2PN) dividiert durch die Anzahl der MII-Oozyten bestimmt.
Dies wurde nur bei Patienten untersucht, die sich einer ICSI unterziehen.
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2 Tage
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Hochwertige Embryonen im Spaltungsstadium
Zeitfenster: 4 Tage
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Die Embryoentwicklung von guter Qualität wurde zwischen den Triggergruppen verglichen, indem das Verhältnis von Embryonen von guter Qualität zur Gesamtzahl der Embryonen im Teilungsstadium berechnet wurde.
Ein Embryo im Teilungsstadium von guter Qualität wurde durch eine Zellzahl von 7 bis 10 definiert
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4 Tage
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Hochwertige Blastozysten-Embryonen
Zeitfenster: 6 Tage
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Eine qualitativ hochwertige Blastozyste wurde definiert als Ausdehnungsgrad 3 oder höher plus innere Zellmasse und Trophektoderm-Einstufung von A oder B basierend auf den Kriterien von Gardner.
Die Zahl beschreibt den Grad der embryonalen Expansion auf einer Skala von 1-6.
Wenn sich der Embryo ausdehnt, nimmt der Ausdehnungsgrad zu.
Der erste Buchstabe gibt auf einer Skala von A bis C (wobei A die höchste ist) die Qualität der inneren Zellmasse an.
Der zweite Buchstabe befindet sich ebenfalls auf einer Skala von A bis C (wobei A am höchsten ist) und gibt die Qualität des Trophektoderms an.
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6 Tage
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Lebendgeburtenrate von allen frischen Transfers
Zeitfenster: 10 Monate
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Die Lebendgeburtenrate (LBR) wurde zum Zeitpunkt der Analyse als Lebendgeburt definiert.
Die Schwangerschaftsergebnisse wurden für alle frischen Transfers berechnet.
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10 Monate
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Blähungen
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Veränderung der Blähungen vom Tag des Basis-Ultraschalls bis zum 5. Tag nach dem Auslösen. Die klinischen Symptome der Patientin werden auf der Grundlage eines von jeder Patientin am Tag des Eisprungauslösers gemeldeten Blähungsscores bewertet und dann 5 Tage nach der Oozytenentnahme bestimmt. Der Blähungs-Score liegt auf einer Skala von 0-5. Die Zahl beschreibt den Grad der Blähungen und steigt mit zunehmendem Grad der Blähungen. Der Blähungs-Score wird wie folgt ermittelt: 0 - Keine Blähungen
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etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Bauchumfang
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Veränderung des Bauchumfangs (in Zentimetern) vom Tag des Ausgangs-Ultraschalls bis zum Post-Trigger-Tag 5.
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etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Körpergewicht
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Veränderung des Körpergewichts vom Tag des Ausgangs-Ultraschalls bis zum 5. Tag nach der Auslösung.
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etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
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Serum-hCG T+1
Zeitfenster: 1 Tag
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Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Trigger (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
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1 Tag
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Serum-FSH T+1
Zeitfenster: 1 Tag
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Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
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1 Tag
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Serum P4 auf T+1
Zeitfenster: 1 Tag
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Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
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1 Tag
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Serum E2 auf T+1
Zeitfenster: 1 Tag
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Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) gesammelt, um die Serumkonzentration von Östradiol (E2) zu bestimmen.
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1 Tag
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Serum-LH bei T+1
Zeitfenster: 1 Tag
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Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Trigger (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration des luteinisierenden Hormons (LH) zu bestimmen.
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1 Tag
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Serum-hCG auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
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Blutproben wurden etwa 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) entnommen, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
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2 Tage
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Serum-FSH auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
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Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) entnommen, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
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2 Tage
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Serum P4 auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
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Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) gesammelt, um die Serumkonzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
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2 Tage
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Serum E2 auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
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Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) gesammelt, um die Serumkonzentration von Östradiol (E2) zu bestimmen.
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2 Tage
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Serum-HCG auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
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Blutproben wurden 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) gesammelt, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
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5 Tage
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Serum-FSH auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
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Blutproben wurden 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) gesammelt, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
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5 Tage
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Serum-LH auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
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Blutproben wurden etwa 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) entnommen, um die Serumkonzentration des luteinisierenden Hormons (LH) zu bestimmen.
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5 Tage
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Follikuläres hCG
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt.
Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
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2 Tage
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Follikuläres FSH
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt.
Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
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2 Tage
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Follikel P4
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt.
Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
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2 Tage
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Follikel E2
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt.
Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von Estradiol (E2) zu bestimmen.
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2 Tage
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Follikulärer VEGF
Zeitfenster: 2 Tage
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Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt.
Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration des vaskulären endothelialen Wachstumsfaktors (VEGF) zu bestimmen.
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2 Tage
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Mitarbeiter und Ermittler
Mitarbeiter
Ermittler
- Hauptermittler: Mitchell Rosen, M.D., University of California, San Francisco
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- McClure N, Healy DL, Rogers PA, Sullivan J, Beaton L, Haning RV Jr, Connolly DT, Robertson DM. Vascular endothelial growth factor as capillary permeability agent in ovarian hyperstimulation syndrome. Lancet. 1994 Jul 23;344(8917):235-6. doi: 10.1016/s0140-6736(94)93001-5.
- Schmidt DW, Maier DB, Nulsen JC, Benadiva CA. Reducing the dose of human chorionic gonadotropin in high responders does not affect the outcomes of in vitro fertilization. Fertil Steril. 2004 Oct;82(4):841-6. doi: 10.1016/j.fertnstert.2004.03.055.
- Golan A, Ron-el R, Herman A, Soffer Y, Weinraub Z, Caspi E. Ovarian hyperstimulation syndrome: an update review. Obstet Gynecol Surv. 1989 Jun;44(6):430-40. doi: 10.1097/00006254-198906000-00004. No abstract available.
- Lamb JD, Shen S, McCulloch C, Jalalian L, Cedars MI, Rosen MP. Follicle-stimulating hormone administered at the time of human chorionic gonadotropin trigger improves oocyte developmental competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Fertil Steril. 2011 Apr;95(5):1655-60. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.01.019.
- Navot D, Bergh PA, Laufer N. Ovarian hyperstimulation syndrome in novel reproductive technologies: prevention and treatment. Fertil Steril. 1992 Aug;58(2):249-61. doi: 10.1016/s0015-0282(16)55188-7. Erratum In: Fertil Steril 1993 Jun;59(6):1334.
- Klemetti R, Sevon T, Gissler M, Hemminki E. Complications of IVF and ovulation induction. Hum Reprod. 2005 Dec;20(12):3293-300. doi: 10.1093/humrep/dei253. Epub 2005 Aug 26.
- Kashyap S, Parker K, Cedars MI, Rosenwaks Z. Ovarian hyperstimulation syndrome prevention strategies: reducing the human chorionic gonadotropin trigger dose. Semin Reprod Med. 2010 Nov;28(6):475-85. doi: 10.1055/s-0030-1265674. Epub 2010 Nov 16.
- Tsoumpou I, Muglu J, Gelbaya TA, Nardo LG. Symposium: Update on prediction and management of OHSS. Optimal dose of HCG for final oocyte maturation in IVF cycles: absence of evidence? Reprod Biomed Online. 2009 Jul;19(1):52-8. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60045-4.
- Kolibianakis EM, Papanikolaou EG, Tournaye H, Camus M, Van Steirteghem AC, Devroey P. Triggering final oocyte maturation using different doses of human chorionic gonadotropin: a randomized pilot study in patients with polycystic ovary syndrome treated with gonadotropin-releasing hormone antagonists and recombinant follicle-stimulating hormone. Fertil Steril. 2007 Nov;88(5):1382-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.12.058. Epub 2007 Apr 18.
- Chen X, Chen SL, He YX, Ye DS. Minimum dose of hCG to trigger final oocyte maturation and prevent OHSS in a long GnRHa protocol. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci. 2013 Feb;33(1):133-136. doi: 10.1007/s11596-013-1085-z. Epub 2013 Feb 8.
- Zelinski-Wooten MB, Hutchison JS, Hess DL, Wolf DP, Stouffer RL. A bolus of recombinant human follicle stimulating hormone at midcycle induces periovulatory events following multiple follicular development in macaques. Hum Reprod. 1998 Mar;13(3):554-60. doi: 10.1093/humrep/13.3.554.
- Bianchi V, Dal Prato L, Maccolini A, Mazzone S, Borini A. Inadvertent recombinant human follicle stimulating hormone bolus instead of human chorionic gonadotrophin leads to the retrieval of competent oocytes in IVF program. Fertil Steril. 2009 Nov;92(5):1747.e1-3. doi: 10.1016/j.fertnstert.2009.07.998. Epub 2009 Sep 3.
- Wikland M, Borg J, Forsberg AS, Jakobsson AH, Svalander P, Waldenstrom U. Human chorionic gonadotrophin self-administered by the subcutaneous route to induce oocyte maturation in an in-vitro fertilization and embryo transfer programme. Hum Reprod. 1995 Jul;10(7):1667-70. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136152.
- Hoff JD, Quigley ME, Yen SS. Hormonal dynamics at midcycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab. 1983 Oct;57(4):792-6. doi: 10.1210/jcem-57-4-792.
- Egbase PE, Sharhan MA, Masangcay M, Egbase E. Follicle stimulating hormone (FSH) administer with trigger dose human chorionic gonadotropin (hCG) completely prevents ovarian hyperstimulation (OHSS): Randomised controlled study. [Abstract] Fertil Steril 2011; 96(3): S20.
- Anaya Y, Cakmak H, Mata DA, Letourneau J, Zhang L, Lenhart N, Juarez-Hernandez F, Jalalian L, Cedars MI, Rosen M. Triggering with 1,500 IU of human chorionic gonadotropin plus follicle-stimulating hormone compared to a standard human chorionic gonadotropin trigger dose for oocyte competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blinded, controlled noninferiority trial. Fertil Steril. 2022 Aug;118(2):266-278. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.05.006. Epub 2022 Jun 12.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Schätzen)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
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- P0503461
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