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Verabreichung von Follikel-stimulierendem Hormon (FSH) und niedrig dosiertem humanem Choriongonadotropin (hCG) für die Oozytenreife bei gleichzeitiger Verringerung der hCG-Exposition in In-vitro-Fertilisationszyklen (IVF).

4. April 2022 aktualisiert von: University of California, San Francisco

Die gleichzeitige Verabreichung von FSH mit einer niedrigen hCG-Dosis (1.500 IE) hat eine gleichwertige Oozytenentwicklungskompetenz, während die hCG-Exposition in IVF-Zyklen verringert wird: Eine doppelblinde, randomisierte Kontrollstudie

Dies ist eine randomisierte, doppelblinde, monozentrische klinische Studie zum Vergleich der Oozytenkompetenz und des Risikos eines ovariellen Hyperstimulationssyndroms (OHSS) nach Erhalt der Standarddosis von humanem Choriongonadotropin (hCG) als Ovulationsauslöser oder einer niedrigeren Dosis von hCG plus begleitendem Follikel stimulierendes Hormon (FSH) Co-Trigger bei Frauen, die sich einer In-vitro-Fertilisation (IVF) unterziehen.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Die Erfolgsrate der assistierten Reproduktionstechnologie (ART) hat sich aufgrund der Verbesserungen der Embryokultur, der Laborbedingungen und der Optimierung verschiedener Protokolle zur Stimulation der Eierstöcke dramatisch erhöht. Neuere Daten zeigen, dass ein schweres OHSS sehr selten ist, wenn hCG nicht zur Oozytenreifung verabreicht wird. Bei Gonadotropin-Releasing-Hormon (GnRH)-Agonisten-Zyklen ist jedoch hCG erforderlich. Frühere Studien haben gezeigt, dass eine geringere hCG-Dosis zur Auslösung des Eisprungs im Vergleich zur Standarddosis die gleiche Wirkung auf die Induktion der endgültigen Oozytenreifung haben und möglicherweise das Risiko eines OHSS verringern kann. Die Mindestdosis von hCG, die erforderlich ist, um die maximalen Erfolgsraten der IVF aufrechtzuerhalten, ist jedoch nicht bekannt, da sie in randomisierten kontrollierten Studien nicht ausreichend untersucht wurde. Interessanterweise zeigte unsere vorherige randomisierte kontrollierte Studie, dass die gleichzeitige Verabreichung von FSH und hCG (10.000 IE), ein eher physiologischer Prozess, die Entwicklungsfähigkeit der Oozyten verbesserte. In dieser Studie gab es kein OHSS in der Gruppe, die den FSH-Co-Trigger erhielt. Eine nachfolgende Studie führte eine randomisierte Studie durch, um festzustellen, ob der FSH-Co-Trigger die Inzidenz von OHSS verringerte, und fand heraus, dass er OHSS verhindern kann. Darüber hinaus zeigt unsere eigene klinische Erfahrung (unveröffentlichte Daten), dass die Verabreichung von 1.500 IE hCG plus 450 IE FSH als Co-Trigger ausreicht, um eine angemessene (d. h. nicht minderwertiger) Oozytenreifung, ohne das Risiko für die Entwicklung eines OHSS bei Hochrisikopatientinnen zu erhöhen. Angesichts dieser Ergebnisse schlagen wir eine weitere Modifikation des Ovulationsauslösers mit verringerter hCG-Exposition vor. Unser Ziel ist es festzustellen, ob die gleichzeitige Verabreichung von FSH mit einer verringerten hCG-Dosis im Vergleich zu einer Standarddosis hCG allein für den Eisprung eine angemessene Oozytenreifung und -qualität fördert und gleichzeitig das Risiko eines OHSS verringert. Es wird angenommen, dass die gewählte FSH-Dosis von 450 IE dem physiologischen FSH-Anstieg entspricht, der in einem natürlichen Zyklus beobachtet wird. Wir haben 1.500 IE als designierte niedrige hCG-Dosis gewählt, basierend auf früheren Studien, die zeigen, dass selbst so niedrige hCG-Dosen wie 2.000 IE eine Reifung der Eizellen ermöglichen, sowie auf unserer eigenen klinischen Erfahrung, die eine angemessene Oozytenreife und Befruchtung bei ausgewählten Patientinnen gezeigt hat aufgrund des OHSS-Risikos 1.500 IE hCG erhalten.

Die Studienteilnehmer werden von der Reproductive Endocrinology and Infertility Clinic der University of California im San Francisco Center for Reproductive Health rekrutiert. Paaren, die sich einer IVF unterziehen, wird die Teilnahme an der Studie angeboten.

Ungefähr 100 Probanden werden zum Zeitpunkt der Registrierung randomisiert, um entweder die Standarddosis von hCG allein oder eine niedrige Dosis von hCG (1.500 IE) + FSH (450 IE) für den Oozytenreifungsauslöser durch den Forschungskoordinator zu erhalten. Es wird etwa 50 Probanden in jedem Studienarm geben.

Jeder Proband wird einem Standard-IVF-Stimulationsprotokoll unterzogen, das von seinem Hauptarzt ausgewählt wird. Die Studienteilnehmerinnen erhalten am Tag des Ovulationsauslösers eine Spritze (vom Forschungskoordinator vorbereitet), die je nach Randomisierung entweder die Standarddosis hCG oder eine niedrig dosierte hCG + FSH enthält. Die Themen werden wie folgt ausgelöst:

  1. Kontrollarm: Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE) oder
  2. Experimenteller Arm: hCG 1.500 IE SQ + FSH 450 IE SQ.

Für den Kontrollarm wird die hCG-Standarddosis basierend auf dem Östradiolspiegel (E2) verabreicht. Wenn der E2-Spiegel unter 3.500 pg/ml liegt, lösen wir mit 10.000 IE hCG aus. Wenn der E2-Wert mehr als 3.500 pg/ml, aber weniger als 5.000 pg/ml beträgt, lösen wir mit 5.000 IE aus.

Interventionen zur Vorbeugung von OHSS bei Hochrisikopatienten:

Alle Patienten in beiden Armen mit einem E2-Serumspiegel von > 5.000 pg/ml am Tag der erwarteten Auslöseverabreichung werden von der Studie ausgeschlossen. Diese Patienten werden individuell von ihrem Hausarzt untersucht. Ihr Hausarzt entscheidet anhand des OHSS-Risikos des Patienten über die sicherste Triggeroption. Aus unserer eigenen klinischen Erfahrung erwarten wir, dass 5.000 pg/ml ausgeschlossen werden.

Die hCG- und FSH-Triggerschüsse für jeden Patienten werden von einem unverblindeten Arzt am selben Tag vorbereitet, an dem der Patient die Medikamente verabreicht. Die Probanden verabreichen sich den Ovulationsauslöser zu der vom Hausarzt vorgegebenen Zeit selbst.

Die Eizellentnahme wird 36 Stunden nach dem Eizellreifungsauslöser durchgeführt. Alle Eizellentnahmen werden standardmäßig mit transvaginalem Ultraschall und der zugehörigen Nadelführung durchgeführt. Sowohl der Arzt als auch das Laborpersonal sind gegenüber der Studie verblindet. Alle sichtbaren Follikel werden abgesaugt. Der erste Follikel aus jedem Eierstock wird bei jeder Patientin abgesaugt und das System (Nadel und Schlauch) wird in ein separates Röhrchen gespült, bevor die restlichen Follikel abgesaugt werden, sodass eine direkte Korrelation zwischen der Follikelgröße und der Reifung der Oozytenregeneration und der Embryonalentwicklung besteht getrennt bewertet. Zusätzlich wird die Follikelflüssigkeit aus dem ersten Aspirat für zukünftige Hormontests gesammelt. Das Oozytenstripping wird nach dem Standardprotokoll durchgeführt. Der Status der Oozytenreifung zum Zeitpunkt des Strippens (ca. 38-40 Stunden nach der hCG-Verabreichung) und am Ende des Verfahrens der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (ICSI) (ca. 40-42 Stunden nach der hCG-Verabreichung) wird aufgezeichnet. Die Befruchtung wird 16-19 Stunden nach der Besamung beurteilt. Die Embryonen werden auf Wachstumsmedien übertragen und mit Standardprotokollen kultiviert.

Die Probanden werden 12 Stunden nach dem Trigger (T+1), bei der Oozytenentnahme (T+2) und 5 Tage nach dem Trigger (T+5) zurückkehren, um die Serumspiegel von Östradiol, Progesteron, hCG, FSH, LH und vaskulärem Endothel zu bestimmen Wachstumsfaktor (VEGF), je nach Bedarf, basierend auf dem Tag des Studienbesuchs.

Um die Inzidenz von OHSS zu beurteilen, werden die Patienten objektiv anhand einer Veränderung des Bauchumfangs sowie subjektiv anhand der klinischen Symptomatologie auf der Grundlage der Blähungssymptome des Patienten bewertet.

Vor Beginn der Stimulation werden außerdem der Bauchumfang (C) und das Körpergewicht (BW) in Zentimetern bei der Baseline-Ultraschallvisite gemessen (C-Baseline, BW-Baseline). Fünf Tage nach der Eizellentnahme werden erneut der Bauchumfang und das Körpergewicht in Zentimetern gemessen (C stimuliert, BW stimuliert). Die Differenz des Bauchumfangs und des Körpergewichts wird wie folgt berechnet: C Basislinie – C stimuliert = CΔ.; BW-Basislinie – BW stimuliert = BWΔ.

Die klinischen Symptome der Patientin werden basierend auf einem Blähungsscore bewertet, der von jeder Patientin vor der Verabreichung des Trigger-Schusses gemeldet wird, und dann 5 Tage nach der Oozytenentnahme bestimmt. 5 Tage nach der Oozytenentnahme wird auch eine Venenpunktion für Hormontests durchgeführt.

Patienten, bei denen OHSS diagnostiziert wurde, werden nach klinischer Indikation von einem Arzt behandelt. Die Anzahl der Folgebesuche in Kliniken und Krankenhauseinweisungen aufgrund von OHSS-Symptomen wird aufgezeichnet.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

105

Phase

  • Phase 3

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

    • California
      • San Francisco, California, Vereinigte Staaten, 94143
        • University of California at San Francisco

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

18 Jahre bis 41 Jahre (Erwachsene)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Weiblich

Beschreibung

Einschlusskriterien: Die Zielgruppe umfasst Paare, die sich einer IVF unterziehen. Alle in Frage kommenden Paare werden gebeten, an der Studie teilzunehmen. Die Studienteilnehmer werden von der Reproductive Endocrinology Clinic der University of California im San Francisco Center for Reproductive Health rekrutiert. Patienten, die ein beliebiges Stimulationsprotokoll für IVF erhalten, wird die Teilnahme an der Studie angeboten.

Ausschlusskriterien:

  • Alter >41 Jahre alt
  • Antrumfollikelzahl (AFC; 2-10 mm) < 8
  • Body-Mass-Index > 30 kg/m2
  • Geschichte von ≥ 2 vorherigen abgebrochenen IVF-Zyklen aufgrund eines schlechten Ansprechens
  • Diagnose von Krebs
  • Jede signifikante gleichzeitige Erkrankung, Krankheit oder psychiatrische Störung, die die Patientensicherheit oder -compliance beeinträchtigen, die Einwilligung, die Studienteilnahme, die Nachsorge oder die Interpretation der Studienergebnisse beeinträchtigen würde
  • Durchlaufende Embryo-Co-Kultur
  • Verwendung eines der folgenden Medikamente: Wachstumshormon, Sildenafil oder Aspirin (außer bei Verwendung bei hyperkoagulablem Zustand)
  • Schwere männliche Unfruchtbarkeitsdiagnose. Die Diagnose der männlichen Faktor-Unfruchtbarkeit sollte vom PI auf der Grundlage der Fertilisationsergebnisse in der Vorgeschichte der Patientin und/oder der erwarteten Fertilisationsergebnisse der Ursache der männlichen Faktor-Unfruchtbarkeit auf der Grundlage bekannter wissenschaftlicher Daten für die Eignung freigegeben werden.
  • Ovulationsauslöser weniger als oder mehr als 36 Stunden bis zur Entnahme der Eizelle
  • Serumöstradiolspiegel > 5.000 pg/ml am Tag des erwarteten Triggers aufgrund des hohen OHSS-Risikos

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Behandlung
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Doppelt

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Experimental: Niedrig dosiertes hCG plus FSH-Co-Trigger
Am Tag des Ovulationsauslösers erhält die Patientin 1.500 IE SQ hCG plus 450 IE SQ FSH
Niedrig dosiertes hCG (1.500 IE) plus FSH (450 IE) Co-Trigger
Aktiver Komparator: Standarddosis hCG allein
Am Tag des Eisprungauslösers erhält die Patientin eine Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE SQ)
Standarddosis hCG (10.000 oder 5.000 IE) auslösen

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Gesamtdüngungsanteil (d. h. Gesamtkompetenter Anteil)
Zeitfenster: 2 Tage
Die Anzahl befruchteter Eizellen (2-Vorkerne) nach standardmäßiger In-vitro-Fertilisation oder intrazytoplasmatischer Spermieninjektion dividiert durch die Gesamtzahl gewonnener Eizellen als Maß für die Eizellkompetenz.
2 Tage

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Anzahl der entnommenen Eizellen
Zeitfenster: 1 Tag
Die Gesamtzahl der bei der Eizellentnahme gewonnenen Eizellen.
1 Tag
Anzahl der MII-Oozyten
Zeitfenster: 1 Tag
Die Anzahl der gewonnenen Metaphase-2-Oozyten (MII), die nur bei Patientinnen berechnet werden kann, die sich einer intrazytoplasmatischen Spermieninjektion unterzogen haben.
1 Tag
Gesamtreifungsrate der Oozyten
Zeitfenster: 1 Tag
Die Reiferate der Oozyten wurde durch die Anzahl der Oozyten der Metaphase 2 (MII) dividiert durch die Anzahl der entnommenen Oozyten bestimmt. Dieser Endpunkt wurde nur bei Patienten untersucht, die sich einer intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (ICSI) unterzogen.
1 Tag
Anteil der Erholung reifer Eizellen
Zeitfenster: 1 Tag
Der Anteil der Erholung reifer Eizellen ist definiert als die Anzahl der MIIs dividiert durch die Gesamtzahl der Follikel mit einer Größe von mindestens 13 mm am Triggertag.
1 Tag
ICSI-Fertilisationsrate
Zeitfenster: 2 Tage
Die ICSI-Fertilisationsrate wurde durch die Anzahl der 2 Vorkerne (2PN) dividiert durch die Anzahl der MII-Oozyten bestimmt. Dies wurde nur bei Patienten untersucht, die sich einer ICSI unterziehen.
2 Tage
Hochwertige Embryonen im Spaltungsstadium
Zeitfenster: 4 Tage
Die Embryoentwicklung von guter Qualität wurde zwischen den Triggergruppen verglichen, indem das Verhältnis von Embryonen von guter Qualität zur Gesamtzahl der Embryonen im Teilungsstadium berechnet wurde. Ein Embryo im Teilungsstadium von guter Qualität wurde durch eine Zellzahl von 7 bis 10 definiert
4 Tage
Hochwertige Blastozysten-Embryonen
Zeitfenster: 6 Tage
Eine qualitativ hochwertige Blastozyste wurde definiert als Ausdehnungsgrad 3 oder höher plus innere Zellmasse und Trophektoderm-Einstufung von A oder B basierend auf den Kriterien von Gardner. Die Zahl beschreibt den Grad der embryonalen Expansion auf einer Skala von 1-6. Wenn sich der Embryo ausdehnt, nimmt der Ausdehnungsgrad zu. Der erste Buchstabe gibt auf einer Skala von A bis C (wobei A die höchste ist) die Qualität der inneren Zellmasse an. Der zweite Buchstabe befindet sich ebenfalls auf einer Skala von A bis C (wobei A am höchsten ist) und gibt die Qualität des Trophektoderms an.
6 Tage
Lebendgeburtenrate von allen frischen Transfers
Zeitfenster: 10 Monate
Die Lebendgeburtenrate (LBR) wurde zum Zeitpunkt der Analyse als Lebendgeburt definiert. Die Schwangerschaftsergebnisse wurden für alle frischen Transfers berechnet.
10 Monate
Blähungen
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen

Veränderung der Blähungen vom Tag des Basis-Ultraschalls bis zum 5. Tag nach dem Auslösen.

Die klinischen Symptome der Patientin werden auf der Grundlage eines von jeder Patientin am Tag des Eisprungauslösers gemeldeten Blähungsscores bewertet und dann 5 Tage nach der Oozytenentnahme bestimmt. Der Blähungs-Score liegt auf einer Skala von 0-5. Die Zahl beschreibt den Grad der Blähungen und steigt mit zunehmendem Grad der Blähungen. Der Blähungs-Score wird wie folgt ermittelt:

0 - Keine Blähungen

  1. - Leichte Blähungen. Kann die täglichen Aktivitäten ohne Beschwerden fortsetzen.
  2. - Leichte bis mäßige Blähungen. Kann die täglichen Aktivitäten fortsetzen, aber mit leichten Beschwerden.
  3. - Mäßige Blähungen. Kann die täglichen Aktivitäten fortsetzen, aber mit mäßigen Beschwerden.
  4. - Mäßige bis starke Blähungen. Schwierigkeiten bei der Durchführung täglicher Aktivitäten.
  5. - Starke Blähungen. Der Bauch fühlt sich sehr angespannt an und ist nicht in der Lage, die täglichen Aktivitäten auszuführen.
etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
Bauchumfang
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
Veränderung des Bauchumfangs (in Zentimetern) vom Tag des Ausgangs-Ultraschalls bis zum Post-Trigger-Tag 5.
etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
Körpergewicht
Zeitfenster: etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
Veränderung des Körpergewichts vom Tag des Ausgangs-Ultraschalls bis zum 5. Tag nach der Auslösung.
etwa 16 Tage (variiert je nach Proband), erklärt die mediane Dauer der IVF-Stimulation in dieser Studie von 11 Tagen vom Ausgangswert bis 5 Tage nach dem Auslösen
Serum-hCG T+1
Zeitfenster: 1 Tag
Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Trigger (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
1 Tag
Serum-FSH T+1
Zeitfenster: 1 Tag
Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
1 Tag
Serum P4 auf T+1
Zeitfenster: 1 Tag
Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
1 Tag
Serum E2 auf T+1
Zeitfenster: 1 Tag
Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Auslösen (T+1) gesammelt, um die Serumkonzentration von Östradiol (E2) zu bestimmen.
1 Tag
Serum-LH bei T+1
Zeitfenster: 1 Tag
Blutproben wurden etwa 12 Stunden nach dem Trigger (T+1) entnommen, um die Serumkonzentration des luteinisierenden Hormons (LH) zu bestimmen.
1 Tag
Serum-hCG auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
Blutproben wurden etwa 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) entnommen, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
2 Tage
Serum-FSH auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) entnommen, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
2 Tage
Serum P4 auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) gesammelt, um die Serumkonzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
2 Tage
Serum E2 auf T+2
Zeitfenster: 2 Tage
Blutproben wurden 2 Tage nach dem Auslösen (T+2) gesammelt, um die Serumkonzentration von Östradiol (E2) zu bestimmen.
2 Tage
Serum-HCG auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
Blutproben wurden 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) gesammelt, um die Serumkonzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
5 Tage
Serum-FSH auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
Blutproben wurden 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) gesammelt, um die Serumkonzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
5 Tage
Serum-LH auf T+5
Zeitfenster: 5 Tage
Blutproben wurden etwa 5 Tage nach dem Auslösen (T+5) entnommen, um die Serumkonzentration des luteinisierenden Hormons (LH) zu bestimmen.
5 Tage
Follikuläres hCG
Zeitfenster: 2 Tage
Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt. Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von humanem Choriongonadotropin (hCG) zu bestimmen.
2 Tage
Follikuläres FSH
Zeitfenster: 2 Tage
Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt. Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration des follikelstimulierenden Hormons (FSH) zu bestimmen.
2 Tage
Follikel P4
Zeitfenster: 2 Tage
Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt. Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von Progesteron (P4) zu bestimmen.
2 Tage
Follikel E2
Zeitfenster: 2 Tage
Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt. Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration von Estradiol (E2) zu bestimmen.
2 Tage
Follikulärer VEGF
Zeitfenster: 2 Tage
Die Follikelflüssigkeit wurde bei der Eizellentnahme aus dem Leitfollikel in jedem Eierstock unter Verwendung einer einlumigen Nadel einzeln abgesaugt. Die mittlere Konzentration zwischen den gesammelten rechten und linken Follikeln wurde verglichen, um die follikuläre Konzentration des vaskulären endothelialen Wachstumsfaktors (VEGF) zu bestimmen.
2 Tage

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Mitchell Rosen, M.D., University of California, San Francisco

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Allgemeine Veröffentlichungen

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

1. September 2014

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

20. Juni 2018

Studienabschluss (Tatsächlich)

20. Juni 2018

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

4. September 2014

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

4. Dezember 2014

Zuerst gepostet (Schätzen)

8. Dezember 2014

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

29. April 2022

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

4. April 2022

Zuletzt verifiziert

1. April 2022

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • P0503461

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