- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT02310919
Podawanie hormonu folikulotropowego (FSH) i małej dawki ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG) w celu uzyskania dojrzałości oocytów przy jednoczesnym zmniejszeniu ekspozycji na hCG w cyklach zapłodnienia in vitro (IVF)
Jednoczesne podawanie FSH z niską dawką hCG (1500 j.m.) ma równoważną kompetencję rozwojową oocytów przy jednoczesnym zmniejszeniu ekspozycji na hCG w cyklach IVF: randomizowana próba kontrolna z podwójnie ślepą próbą
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Wskaźnik sukcesu technologii wspomaganego rozrodu (ART) dramatycznie wzrósł dzięki poprawie hodowli zarodków, warunków laboratoryjnych i optymalizacji różnych protokołów stymulacji jajników. Ostatnie dane pokazują, że jeśli hCG nie jest podawana w celu dojrzewania oocytów, ciężki OHSS występuje bardzo rzadko. Jednak w przypadku cykli z agonistą hormonu uwalniającego gonadotropiny (GnRH) wymagana jest hCG. Wcześniejsze badania wykazały, że mniejsza dawka hCG stosowana do wywołania owulacji w porównaniu ze standardową dawką może mieć taki sam wpływ na indukcję ostatecznego dojrzewania oocytów i być może zmniejsza ryzyko wystąpienia OHSS. Jednak minimalna dawka hCG wymagana do utrzymania maksymalnego wskaźnika powodzenia IVF nie jest znana, ponieważ nie została odpowiednio zbadana w randomizowanych badaniach kontrolowanych. Co ciekawe, nasze poprzednie randomizowane badanie kontrolowane wykazało, że jednoczesne podawanie FSH i hCG (10 000 IU), proces bardziej fizjologiczny, poprawiło kompetencje rozwojowe oocytów. W tym badaniu nie było OHSS w grupie, która otrzymała współwyzwalacz FSH. W kolejnym badaniu przeprowadzono randomizowaną próbę w celu ustalenia, czy współwyzwalacz FSH zmniejsza częstość występowania OHSS i wykazał, że może zapobiegać OHSS. Dodatkowo, nasze własne doświadczenie kliniczne (dane niepublikowane) ujawnia, że podanie 1500 IU hCG plus 450 IU FSH jako środka wyzwalającego wystarcza do promowania odpowiedniego (tj. non-inferior) dojrzewania oocytów, nie zwiększając jednocześnie ryzyka rozwoju OHSS u pacjentek z grupy wysokiego ryzyka. Biorąc pod uwagę te wyniki, proponujemy dalszą modyfikację wyzwalacza owulacji ze zmniejszoną ekspozycją na hCG. Naszym celem jest ustalenie, czy jednoczesne podawanie FSH ze zmniejszoną dawką hCG w porównaniu ze standardową dawką samego hCG do owulacji będzie promować odpowiednie dojrzewanie i jakość oocytów, jednocześnie zmniejszając ryzyko OHSS. Uważa się, że wybrana dawka FSH wynosząca 450 j.m. odpowiada fizjologicznemu wzrostowi FSH obserwowanemu w naturalnym cyklu. Wybraliśmy 1500 j.m. jako wyznaczoną niską dawkę hCG na podstawie wcześniejszych badań wykazujących, że nawet tak niskie dawki hCG, jak 2 000 j.m. umożliwiają dojrzewanie oocytów, a także nasze własne doświadczenie kliniczne, które wykazało odpowiednią dojrzałość oocytów i zapłodnienie otrzymać 1500 j.m. hCG ze względu na ryzyko OHSS.
Uczestnicy badania będą rekrutowani z Kliniki Endokrynologii Rozrodu i Niepłodności na Uniwersytecie Kalifornijskim w San Francisco Center for Reproductive Health. Udział w badaniu zostaną zaoferowane parom poddawanym IVF.
Około 100 pacjentek zostanie losowo przydzielonych w momencie rekrutacji do grupy otrzymującej albo standardową dawkę samej hCG, albo małą dawkę hCG (1500 IU) + FSH (450 IU) w celu wywołania dojrzewania oocytów przez koordynatora badań. W każdym ramieniu badania będzie uczestniczyć około 50 osób.
Każdy pacjent zostanie poddany standardowemu protokołowi stymulacji IVF, wybranemu przez lekarza pierwszego kontaktu. Uczestnicy badania otrzymają w dniu rozpoczęcia owulacji strzykawkę (przygotowaną przez koordynatora badania) zawierającą standardową dawkę hCG lub niską dawkę hCG + FSH zgodnie z randomizacją. Przedmioty zostaną uruchomione w następujący sposób:
- Ramię kontrolne: Standardowa dawka hCG (10 000 lub 5 000 IU) lub
- Ramię eksperymentalne: hCG 1500 IU SQ + FSH 450 IU SQ.
W grupie kontrolnej standardowa dawka hCG zostanie podana na podstawie poziomu estradiolu (E2). Jeśli poziom E2 jest mniejszy niż 3500 pg/ml, uruchomimy 10 000 IU hCG. Jeśli poziom E2 jest większy niż 3500 pg/ml, ale mniejszy niż 5000 pg/ml, uruchomimy 5000 IU.
Interwencje zapobiegające OHSS u pacjentów z grupy wysokiego ryzyka:
Wszyscy pacjenci w którymkolwiek ramieniu z poziomem E2 w surowicy > 5000 pg/ml w dniu spodziewanego podania wyzwalacza zostaną wykluczeni z badania. Pacjenci ci będą indywidualnie oceniani przez lekarza pierwszego kontaktu. Ich lekarz pierwszego kontaktu zadecyduje o najbezpieczniejszej opcji wyzwalania w oparciu o ryzyko wystąpienia OHSS u pacjenta. Na podstawie własnego doświadczenia klinicznego spodziewamy się, że 5000 pg/ml zostanie wykluczone.
Zastrzyki wyzwalające hCG i FSH dla każdego pacjenta będą przygotowywane przez jednego nieślepego lekarza tego samego dnia, w którym pacjent będzie podawał leki. Osobnicy sami podają środek wyzwalający owulację w wyznaczonym czasie podanym przez lekarza pierwszego kontaktu.
Pobranie oocytów zostanie przeprowadzone 36 godzin po wyzwoleniu dojrzewania oocytów. Wszystkie pobrania komórek jajowych będą przeprowadzane przy użyciu ultrasonografii przezpochwowej i odpowiedniej prowadnicy igły w standardowy sposób. Zarówno lekarz, jak i personel laboratorium będą zaślepieni na temat badania. Wszystkie widoczne pęcherzyki zostaną odessane. Pierwszy pęcherzyk z każdego jajnika każdej pacjentki zostanie zaaspirowany, a system (igła i rurka) zostanie przepłukany do osobnej probówki przed aspiracją pozostałych pęcherzyków, tak aby można było ustalić bezpośrednią korelację wielkości pęcherzyka z dojrzewaniem komórki jajowej i rozwojem zarodka. oddzielnie oceniane. Dodatkowo, płyn pęcherzykowy z pierwszej aspiracji zostanie pobrany do przyszłych badań hormonalnych. Stripping oocytów zostanie przeprowadzony zgodnie ze standardowym protokołem. Zarejestrowany zostanie stan dojrzewania oocytów w czasie usuwania (około 38-40 godzin po podaniu hCG) oraz pod koniec procedury docytoplazmatycznego wstrzyknięcia plemnika (ICSI) (około 40-42 godzin po podaniu hCG). Zapłodnienie będzie oceniane 16-19 godzin po inseminacji. Zarodki zostaną przeniesione do pożywek wzrostowych i hodowane zgodnie ze standardowymi protokołami.
Pacjenci wrócą 12 godzin po wyzwoleniu (T+1), po pobraniu oocytów (T+2) i 5 dni po wyzwoleniu (T+5), aby ocenić poziomy estradiolu, progesteronu, hCG, FSH, LH i śródbłonka naczyń w surowicy czynnik wzrostu (VEGF), odpowiednio, na podstawie dnia wizyty w ramach badania.
Aby ocenić częstość występowania OHSS, pacjenci będą oceniani obiektywnie na podstawie zmiany obwodu brzucha oraz subiektywnie na podstawie symptomatologii klinicznej opartej na objawach wzdęcia u pacjenta.
Przed rozpoczęciem stymulacji obwód brzucha (C) i masa ciała (BW) zostaną również zmierzone w centymetrach podczas podstawowej wizyty USG (C bazowa, BW bazowa). Pięć dni po pobraniu komórki jajowej ponownie mierzy się obwód brzucha i masę ciała w centymetrach (stymulacja C, stymulacja BW). Różnica w obwodzie brzucha i masie ciała zostanie obliczona w następujący sposób: C linia podstawowa - C stymulowane = CΔ.; Linia podstawowa BW - BW stymulowana = BWΔ.
Objawy kliniczne pacjenta zostaną ocenione na podstawie oceny wzdęcia zgłaszanej przez każdego pacjenta przed podaniem zastrzyku spustowego, a następnie zostaną określone 5 dni po pobraniu komórki jajowej. Nakłucie żyły zostanie również wykonane do badań hormonalnych 5 dni po pobraniu komórki jajowej.
Pacjenci, u których zdiagnozowano OHSS, będą kierowani przez lekarza zgodnie ze wskazaniami klinicznymi. Rejestrowana będzie liczba wizyt kontrolnych w klinice i hospitalizacji w następstwie objawów OHSS.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 3
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
California
-
San Francisco, California, Stany Zjednoczone, 94143
- University of California at San Francisco
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria włączenia: Populacja docelowa obejmuje pary przechodzące in vitro. Wszystkie kwalifikujące się pary zostaną poproszone o dołączenie do badania. Uczestnicy badania będą rekrutowani z Kliniki Endokrynologii Rozrodu Uniwersytetu Kalifornijskiego w San Francisco Center for Reproductive Health. Pacjenci otrzymujący dowolny protokół stymulacji do IVF otrzymają propozycję udziału w badaniu.
Kryteria wyłączenia:
- Wiek > 41 lat
- Liczba pęcherzyków antralnych (AFC; 2-10 mm) < 8
- Wskaźnik masy ciała > 30 kg/m2
- Historia ≥ 2 wcześniej anulowanych cykli IVF wtórna do słabej odpowiedzi
- Rozpoznanie raka
- Jakakolwiek istotna współistniejąca choroba, choroba lub zaburzenie psychiczne, które zagrażałyby bezpieczeństwu pacjenta lub przestrzeganiu zaleceń, zakłócały zgodę, udział w badaniu, obserwację lub interpretację wyników badania
- W trakcie wspólnej hodowli zarodków
- Stosowanie któregokolwiek z następujących leków: hormon wzrostu, syldenafil lub aspiryna (z wyjątkiem przypadków stosowania w stanie nadkrzepliwości)
- Rozpoznanie ciężkiej niepłodności męskiej. Diagnoza niepłodności męskiej powinna zostać zatwierdzona przez PI na podstawie wcześniejszej historii wyników zapłodnienia pacjenta i/lub oczekiwanych wyników zapłodnienia przyczyny niepłodności męskiej w oparciu o znane dane naukowe.
- Wyzwalacz owulacji krótszy lub dłuższy niż 36 godzin do pobrania komórki jajowej
- Stężenie estradiolu w surowicy >5000 pg/ml w dniu spodziewanego wyzwolenia ze względu na wysokie ryzyko OHSS
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Podwójnie
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Niska dawka hCG plus współwyzwalacz FSH
W dniu wywołania owulacji pacjentka otrzyma hCG 1500 IU SQ plus FSH 450 IU SQ
|
Niska dawka hCG (1500 j.m.) plus FSH (450 j.m.) współwyzwalacz
|
|
Aktywny komparator: Standardowa dawka samej hCG
W dniu wywołania owulacji pacjentka otrzyma standardową dawkę hCG (10 000 lub 5 000 IU SQ)
|
Standardowa dawka wyzwalacza hCG (10 000 lub 5 000 IU).
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Całkowita proporcja zapłodnienia (tj. Całkowita proporcja kompetentna)
Ramy czasowe: 2 dni
|
Liczba zapłodnionych oocytów (2-przedjądrza) po standardowym zapłodnieniu in vitro lub docytoplazmatycznej iniekcji plemnika podzielona przez całkowitą liczbę pobranych oocytów jako miara kompetencji oocytów.
|
2 dni
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Liczba pobranych oocytów
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Całkowita liczba oocytów odzyskanych podczas pobierania oocytów.
|
1 dzień
|
|
Liczba oocytów MII
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Liczbę odzyskanych oocytów metafazy 2 (MII), którą można obliczyć tylko u pacjentek, które przeszły wewnątrzcytoplazmatyczną iniekcję plemnika.
|
1 dzień
|
|
Całkowity wskaźnik dojrzałości oocytów
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Szybkość dojrzałości oocytów określono na podstawie liczby oocytów meta fazy 2 (MII) podzielonej przez liczbę pobranych oocytów.
Ten wynik oceniano tylko u pacjentów poddawanych docytoplazmatycznej iniekcji plemnika (ICSI).
|
1 dzień
|
|
Proporcja regeneracji dojrzałych oocytów
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Odsetek odzyskanych dojrzałych oocytów definiuje się jako liczbę MII podzieloną przez całkowitą liczbę pęcherzyków o wielkości większej lub równej 13 mm w dniu wyzwalania.
|
1 dzień
|
|
Współczynnik zapłodnienia ICSI
Ramy czasowe: 2 dni
|
Współczynnik zapłodnienia metodą ICSI określono na podstawie liczby 2 przedjądrzy (2PN) podzielonej przez liczbę oocytów MII.
Oceniono to tylko u pacjentów poddawanych ICSI.
|
2 dni
|
|
Wysokiej jakości zarodki w fazie rozszczepiania
Ramy czasowe: 4 dni
|
Rozwój zarodków dobrej jakości porównano między grupami wyzwalającymi, obliczając stosunek zarodków dobrej jakości do całkowitej liczby zarodków w fazie rozszczepienia.
Dobrej jakości zarodek w fazie rozszczepiania został zdefiniowany jako liczba komórek od 7 do 10 i
|
4 dni
|
|
Wysokiej jakości zarodki blastocysty
Ramy czasowe: 6 dni
|
Wysokiej jakości blastocystę zdefiniowano jako ekspansję stopnia 3 lub wyższego plus masę komórek wewnętrznych i stopień trofektodermy A lub B na podstawie kryteriów Gardnera.
Liczba opisuje stopień ekspansji zarodka w skali od 1-6.
W miarę rozszerzania się zarodka zwiększa się stopień ekspansji.
Pierwsza litera wskazuje na skali od A do C (gdzie A oznacza najwyższą) jakość wewnętrznej masy komórkowej.
Druga litera jest również w skali od A do C (A oznacza najwyższą) i wskazuje na jakość trofektodermy.
|
6 dni
|
|
Współczynnik urodzeń żywych ze wszystkich świeżych transferów
Ramy czasowe: 10 miesięcy
|
Współczynnik żywych urodzeń (LBR) został zdefiniowany jako żywy urodzony w momencie analizy.
Wyniki ciąży obliczono dla wszystkich świeżych transferów.
|
10 miesięcy
|
|
Wynik wzdęcia
Ramy czasowe: około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
Zmiana oceny wzdęć od dnia podstawowego badania ultrasonograficznego do dnia 5 po wyzwoleniu. Objawy kliniczne pacjentki zostaną ocenione na podstawie oceny wzdęć zgłoszonej przez każdą pacjentkę w dniu wywołania owulacji, a następnie 5 dni po pobraniu komórki jajowej. Wynik wzdęcia będzie mieścił się w skali od 0 do 5. Liczba opisuje stopień wzdęcia i będzie rosła wraz ze wzrostem stopnia wzdęcia. Wynik wzdęć zostanie określony w następujący sposób: 0 - Brak wzdęć
|
około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
|
Obwód brzucha
Ramy czasowe: około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
Zmiana obwodu brzucha (w centymetrach) od dnia podstawowego badania ultrasonograficznego do dnia 5 po wyzwoleniu.
|
około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
|
Masy ciała
Ramy czasowe: około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
Zmiana masy ciała od dnia podstawowego badania ultrasonograficznego do dnia 5 po wyzwoleniu.
|
około 16 dni (różni się w zależności od podmiotu), odpowiada za medianę długości stymulacji IVF w tym badaniu wynoszącą 11 dni od wartości początkowej do 5 dni po wyzwoleniu
|
|
Surowica hCG T+1
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Próbki krwi pobrano około 12 godzin po wyzwoleniu (T+1) w celu oceny stężenia w surowicy ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG).
|
1 dzień
|
|
Surowica FSH T+1
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Próbki krwi pobrano około 12 godzin po wyzwoleniu (T+1) w celu oceny stężenia hormonu folikulotropowego (FSH) w surowicy.
|
1 dzień
|
|
Surowica P4 na T+1
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Próbki krwi pobrano około 12 godzin po wyzwoleniu (T+1) w celu oceny stężenia progesteronu w surowicy (P4).
|
1 dzień
|
|
Surowica E2 na T+1
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Próbki krwi pobrano około 12 godzin po wyzwoleniu (T+1) w celu oceny stężenia estradiolu w surowicy (E2).
|
1 dzień
|
|
Surowica LH na T+1
Ramy czasowe: 1 dzień
|
Próbki krwi pobrano około 12 godzin po wyzwoleniu (T+1) w celu oceny stężenia hormonu luteinizującego (LH) w surowicy.
|
1 dzień
|
|
Surowica hCG na T+2
Ramy czasowe: 2 dni
|
Próbki krwi pobrano około 2 dni po wyzwoleniu (T+2) w celu oceny stężenia ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG) w surowicy.
|
2 dni
|
|
Surowica FSH na T+2
Ramy czasowe: 2 dni
|
Próbki krwi pobrano 2 dni po wywołaniu (T+2) w celu oceny stężenia hormonu folikulotropowego (FSH) w surowicy.
|
2 dni
|
|
Surowica P4 na T+2
Ramy czasowe: 2 dni
|
Próbki krwi pobrano 2 dni po wyzwoleniu (T+2) w celu oceny stężenia progesteronu w surowicy (P4).
|
2 dni
|
|
Surowica E2 na T+2
Ramy czasowe: 2 dni
|
Próbki krwi pobrano 2 dni po wyzwoleniu (T+2) w celu oceny stężenia estradiolu w surowicy (E2).
|
2 dni
|
|
Surowica HCG na T+5
Ramy czasowe: 5 dni
|
Próbki krwi pobrano 5 dni po wyzwoleniu (T+5) w celu oceny stężenia ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG) w surowicy.
|
5 dni
|
|
Surowica FSH na T+5
Ramy czasowe: 5 dni
|
Próbki krwi pobrano 5 dni po wyzwoleniu (T+5) w celu oceny stężenia hormonu folikulotropowego (FSH) w surowicy.
|
5 dni
|
|
Surowica LH na T+5
Ramy czasowe: 5 dni
|
Próbki krwi pobrano około 5 dni po wyzwoleniu (T+5) w celu oceny stężenia hormonu luteinizującego (LH) w surowicy.
|
5 dni
|
|
Pęcherzykowa hCG
Ramy czasowe: 2 dni
|
Płyn pęcherzykowy aspirowano indywidualnie podczas pobierania oocytów z pęcherzyka wiodącego w każdym jajniku za pomocą igły z pojedynczym światłem.
Średnie stężenie między zebranymi pęcherzykami prawym i lewym porównano w celu oceny stężenia pęcherzykowej ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG).
|
2 dni
|
|
Pęcherzykowy FSH
Ramy czasowe: 2 dni
|
Płyn pęcherzykowy aspirowano indywidualnie podczas pobierania oocytów z pęcherzyka wiodącego w każdym jajniku za pomocą igły z pojedynczym światłem.
Porównano średnie stężenie pomiędzy prawym i lewym pobranym pęcherzykiem, aby ocenić stężenie hormonu folikulotropowego (FSH) w pęcherzyku.
|
2 dni
|
|
Pęcherzykowy P4
Ramy czasowe: 2 dni
|
Płyn pęcherzykowy aspirowano indywidualnie podczas pobierania oocytów z pęcherzyka wiodącego w każdym jajniku za pomocą igły z pojedynczym światłem.
Porównywano średnie stężenie między pobranymi pęcherzykami prawym i lewym, aby ocenić stężenie progesteronu w pęcherzykach (P4).
|
2 dni
|
|
Pęcherzykowy E2
Ramy czasowe: 2 dni
|
Płyn pęcherzykowy aspirowano indywidualnie podczas pobierania oocytów z pęcherzyka wiodącego w każdym jajniku za pomocą igły z pojedynczym światłem.
W celu oceny stężenia estradiolu w pęcherzykach (E2) porównano średnie stężenie między prawym a lewym pęcherzykiem.
|
2 dni
|
|
Pęcherzykowy VEGF
Ramy czasowe: 2 dni
|
Płyn pęcherzykowy aspirowano indywidualnie podczas pobierania oocytów z pęcherzyka wiodącego w każdym jajniku za pomocą igły z pojedynczym światłem.
Średnie stężenie między zebranymi prawymi i lewymi pęcherzykami porównano w celu oceny stężenia pęcherzykowego czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF).
|
2 dni
|
Współpracownicy i badacze
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Mitchell Rosen, M.D., University of California, San Francisco
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- McClure N, Healy DL, Rogers PA, Sullivan J, Beaton L, Haning RV Jr, Connolly DT, Robertson DM. Vascular endothelial growth factor as capillary permeability agent in ovarian hyperstimulation syndrome. Lancet. 1994 Jul 23;344(8917):235-6. doi: 10.1016/s0140-6736(94)93001-5.
- Schmidt DW, Maier DB, Nulsen JC, Benadiva CA. Reducing the dose of human chorionic gonadotropin in high responders does not affect the outcomes of in vitro fertilization. Fertil Steril. 2004 Oct;82(4):841-6. doi: 10.1016/j.fertnstert.2004.03.055.
- Golan A, Ron-el R, Herman A, Soffer Y, Weinraub Z, Caspi E. Ovarian hyperstimulation syndrome: an update review. Obstet Gynecol Surv. 1989 Jun;44(6):430-40. doi: 10.1097/00006254-198906000-00004. No abstract available.
- Lamb JD, Shen S, McCulloch C, Jalalian L, Cedars MI, Rosen MP. Follicle-stimulating hormone administered at the time of human chorionic gonadotropin trigger improves oocyte developmental competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Fertil Steril. 2011 Apr;95(5):1655-60. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.01.019.
- Navot D, Bergh PA, Laufer N. Ovarian hyperstimulation syndrome in novel reproductive technologies: prevention and treatment. Fertil Steril. 1992 Aug;58(2):249-61. doi: 10.1016/s0015-0282(16)55188-7. Erratum In: Fertil Steril 1993 Jun;59(6):1334.
- Klemetti R, Sevon T, Gissler M, Hemminki E. Complications of IVF and ovulation induction. Hum Reprod. 2005 Dec;20(12):3293-300. doi: 10.1093/humrep/dei253. Epub 2005 Aug 26.
- Kashyap S, Parker K, Cedars MI, Rosenwaks Z. Ovarian hyperstimulation syndrome prevention strategies: reducing the human chorionic gonadotropin trigger dose. Semin Reprod Med. 2010 Nov;28(6):475-85. doi: 10.1055/s-0030-1265674. Epub 2010 Nov 16.
- Tsoumpou I, Muglu J, Gelbaya TA, Nardo LG. Symposium: Update on prediction and management of OHSS. Optimal dose of HCG for final oocyte maturation in IVF cycles: absence of evidence? Reprod Biomed Online. 2009 Jul;19(1):52-8. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60045-4.
- Kolibianakis EM, Papanikolaou EG, Tournaye H, Camus M, Van Steirteghem AC, Devroey P. Triggering final oocyte maturation using different doses of human chorionic gonadotropin: a randomized pilot study in patients with polycystic ovary syndrome treated with gonadotropin-releasing hormone antagonists and recombinant follicle-stimulating hormone. Fertil Steril. 2007 Nov;88(5):1382-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.12.058. Epub 2007 Apr 18.
- Chen X, Chen SL, He YX, Ye DS. Minimum dose of hCG to trigger final oocyte maturation and prevent OHSS in a long GnRHa protocol. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci. 2013 Feb;33(1):133-136. doi: 10.1007/s11596-013-1085-z. Epub 2013 Feb 8.
- Zelinski-Wooten MB, Hutchison JS, Hess DL, Wolf DP, Stouffer RL. A bolus of recombinant human follicle stimulating hormone at midcycle induces periovulatory events following multiple follicular development in macaques. Hum Reprod. 1998 Mar;13(3):554-60. doi: 10.1093/humrep/13.3.554.
- Bianchi V, Dal Prato L, Maccolini A, Mazzone S, Borini A. Inadvertent recombinant human follicle stimulating hormone bolus instead of human chorionic gonadotrophin leads to the retrieval of competent oocytes in IVF program. Fertil Steril. 2009 Nov;92(5):1747.e1-3. doi: 10.1016/j.fertnstert.2009.07.998. Epub 2009 Sep 3.
- Wikland M, Borg J, Forsberg AS, Jakobsson AH, Svalander P, Waldenstrom U. Human chorionic gonadotrophin self-administered by the subcutaneous route to induce oocyte maturation in an in-vitro fertilization and embryo transfer programme. Hum Reprod. 1995 Jul;10(7):1667-70. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136152.
- Hoff JD, Quigley ME, Yen SS. Hormonal dynamics at midcycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab. 1983 Oct;57(4):792-6. doi: 10.1210/jcem-57-4-792.
- Egbase PE, Sharhan MA, Masangcay M, Egbase E. Follicle stimulating hormone (FSH) administer with trigger dose human chorionic gonadotropin (hCG) completely prevents ovarian hyperstimulation (OHSS): Randomised controlled study. [Abstract] Fertil Steril 2011; 96(3): S20.
- Anaya Y, Cakmak H, Mata DA, Letourneau J, Zhang L, Lenhart N, Juarez-Hernandez F, Jalalian L, Cedars MI, Rosen M. Triggering with 1,500 IU of human chorionic gonadotropin plus follicle-stimulating hormone compared to a standard human chorionic gonadotropin trigger dose for oocyte competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blinded, controlled noninferiority trial. Fertil Steril. 2022 Aug;118(2):266-278. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.05.006. Epub 2022 Jun 12.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- P0503461
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .