- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT02310919
Administração de Hormônio Folículo Estimulante (FSH) e Gonadotrofina Coriônica Humana de Baixa Dose (hCG) para a Maturidade Oocitária Enquanto Diminui a Exposição de hCG em Ciclos de Fertilização In Vitro (FIV)
A administração concomitante de FSH com uma dose baixa de hCG (1.500 UI) tem competência equivalente no desenvolvimento de oócitos enquanto diminui a exposição a hCG em ciclos de fertilização in vitro: um estudo de controle randomizado duplo-cego
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
A taxa de sucesso da tecnologia de reprodução assistida (ART) aumentou dramaticamente devido às melhorias na cultura de embriões, condições de laboratório e otimização de diferentes protocolos de estimulação ovariana. Dados recentes mostram que, se o hCG não for administrado para a maturação oocitária, a OHSS grave é muito rara. No entanto, com ciclos agonistas do hormônio liberador de gonadotropina (GnRH), hCG é necessária. Estudos anteriores revelaram que uma dose menor de hCG usada para desencadear a ovulação versus a dose padrão pode ter o mesmo efeito na indução da maturação final do oócito e possivelmente reduzir o risco de OHSS. No entanto, a dose mínima necessária de hCG para manter as taxas máximas de sucesso da fertilização in vitro não é conhecida, pois não foi adequadamente estudada em ensaios clínicos randomizados. Curiosamente, nosso estudo randomizado controlado anterior revelou que a administração concomitante de FSH e hCG (10.000 UI), um processo mais fisiológico, melhorou a competência oocitária de desenvolvimento. Nesse estudo, não houve SHO no grupo que recebeu o co-trigger FSH. Um estudo subsequente realizou um estudo randomizado para determinar se o co-desencadeador FSH reduzia a incidência de OHSS e descobriu que isso pode prevenir a OHSS. Além disso, nossa própria experiência clínica (dados não publicados) revela que a administração de 1.500 UI de hCG mais 450 UI de FSH co-desencadeador é suficiente para promover adequada (i.e. não inferior) maturação oocitária sem aumentar o risco de desenvolver OHSS em pacientes de alto risco. Dados esses achados, propomos uma modificação adicional do gatilho da ovulação com diminuição da exposição ao hCG. Nosso objetivo é determinar se a administração concomitante de FSH com uma dose reduzida de hCG versus uma dose padrão de hCG sozinha para a ovulação promoverá maturação e qualidade oocitária adequada, enquanto diminui o risco de OHSS. Acredita-se que a dose selecionada de FSH de 450 UI seja paralela ao pico fisiológico de FSH observado em um ciclo natural. Escolhemos 1.500 UI como a dose baixa designada de hCG com base em estudos anteriores que mostram que mesmo doses de hCG tão baixas quanto 2.000 UI permitem que os oócitos sofram maturação, bem como nossa própria experiência clínica que demonstrou maturidade oocitária e fertilização adequadas em pacientes escolhidas para receber 1.500 UI de hCG, devido ao risco de OHSS.
Os participantes do estudo serão recrutados na Clínica de Endocrinologia e Infertilidade Reprodutiva da Universidade da Califórnia em San Francisco Center for Reproductive Health. Casais submetidos a fertilização in vitro serão convidados a participar do estudo.
Aproximadamente 100 indivíduos serão randomizados no momento da inscrição para receber a dose padrão de hCG sozinho ou dose baixa de hCG (1.500 UI) + FSH (450 UI) para maturação oocitária desencadeada pelo coordenador da pesquisa. Haverá cerca de 50 indivíduos em cada braço do estudo.
Cada sujeito será submetido a um protocolo de estimulação de fertilização in vitro padrão escolhido por seu médico principal. As participantes do estudo receberão uma seringa (preparada pelo coordenador da pesquisa) no dia do gatilho da ovulação contendo a dose padrão de hCG ou baixa dose de hCG + FSH de acordo com a randomização. Os assuntos serão acionados com o seguinte:
- Braço de controle: Dose padrão de hCG (10.000 ou 5.000 UI) ou
- Braço experimental: hCG 1.500 UI SQ + FSH 450 UI SQ.
Para o braço de controle, a dose padrão de hCG será dada com base no nível de estradiol (E2). Se o nível de E2 for inferior a 3.500 pg/ml, acionaremos 10.000 UI de hCG. Se o nível de E2 for superior a 3.500 pg/ml, mas inferior a 5.000 pg/ml, acionaremos com 5.000 UI.
Intervenções para prevenir SHO em pacientes de alto risco:
Quaisquer pacientes em qualquer um dos braços com um nível sérico de E2 >5.000 pg/ml no dia da administração inicial esperada serão excluídos do estudo. Esses pacientes serão avaliados individualmente por seu médico assistente. Seu médico principal decidirá a opção de gatilho mais segura com base no risco de OHSS do paciente. Pela nossa própria experiência clínica, esperamos que 5.000 pg/ml sejam excluídos.
As injeções de hCG e FSH para cada paciente serão preparadas por um médico não cego no mesmo dia em que o paciente administrará os medicamentos. Os sujeitos irão auto-administrar o gatilho de ovulação no horário designado pelo médico principal.
A captação oocitária será realizada 36 horas após o início da maturação oocitária. Todas as coletas de óvulos serão realizadas usando ultrassom transvaginal e o guia de agulha associado da maneira padrão. Tanto o médico quanto o pessoal do laboratório estarão cegos para o estudo. Todos os folículos visíveis serão aspirados. O primeiro folículo de cada ovário em cada paciente será aspirado e o sistema (agulha e tubo) será lavado em um tubo separado antes de aspirar os folículos restantes, de modo que a correlação direta do tamanho folicular com a maturação da recuperação do oócito e o desenvolvimento do embrião possa ser avaliados separadamente. Além disso, o fluido folicular do primeiro aspirado será coletado para futuros ensaios hormonais. A remoção de oócitos será realizada de acordo com o protocolo padrão. O status da maturação do oócito no momento da remoção (aproximadamente 38-40 horas após a administração de hCG) e no final do procedimento de injeção intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) (aproximadamente 40-42 horas após a administração de hCG) será registrado. A fertilização será avaliada 16-19 horas após a inseminação. Os embriões serão transferidos para meios de crescimento e cultivados com protocolos padrão.
Os indivíduos retornarão 12 horas após o gatilho (T+1), na recuperação do oócito (T+2) e 5 dias após o gatilho (T+5) para avaliar os níveis séricos de estradiol, progesterona, hCG, FSH, LH e endotelial vascular fator de crescimento (VEGF), conforme apropriado, com base no dia da visita do estudo.
Para avaliar a incidência de OHSS, os pacientes serão avaliados objetivamente por uma mudança na circunferência abdominal, bem como subjetivamente pela sintomatologia clínica baseada nos sintomas de inchaço do paciente.
Antes de iniciar a estimulação, a circunferência abdominal (C) e o peso corporal (BW) também serão medidos em centímetros na consulta de ultrassom basal (C basal, BW basal). Cinco dias após a coleta dos oócitos, a circunferência abdominal e o peso corporal serão novamente medidos em centímetros (C estimulado, BW estimulado). A diferença da circunferência abdominal e do peso corporal será calculada da seguinte forma: C basal - C estimulado = CΔ.; BW basal - BW estimulado = BWΔ.
Os sintomas clínicos do paciente serão avaliados com base em uma pontuação de inchaço relatada por cada paciente antes da injeção de gatilho ser administrada e, em seguida, 5 dias após a recuperação do oócito será determinada. Uma punção venosa também será obtida para dosagens hormonais 5 dias após a coleta do oócito.
Os pacientes diagnosticados com OHSS serão tratados por um médico conforme indicação clínica. O número de visitas clínicas de acompanhamento e hospitalizações secundárias a sintomas de OHSS serão registrados.
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Fase 3
Contactos e Locais
Locais de estudo
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-
California
-
San Francisco, California, Estados Unidos, 94143
- University of California at San Francisco
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critérios de inclusão: A população-alvo inclui casais submetidos a fertilização in vitro. Todos os casais elegíveis serão convidados a participar do estudo. Os participantes do estudo serão recrutados na Clínica de Endocrinologia Reprodutiva da Universidade da Califórnia em San Francisco Center for Reproductive Health. Os pacientes que receberem qualquer tipo de protocolo de estimulação para fertilização in vitro serão convidados a participar do estudo.
Critério de exclusão:
- Idade > 41 anos
- Contagem de folículos antrais (AFC; 2-10 mm) <8
- Índice de Massa Corporal > 30 kg/m2
- Histórico de ≥ 2 ciclos de fertilização in vitro anteriores cancelados secundários a uma resposta ruim
- Diagnóstico de câncer
- Qualquer doença concomitante significativa, doença ou distúrbio psiquiátrico que comprometa a segurança ou a adesão do paciente, interfira no consentimento, na participação no estudo, no acompanhamento ou na interpretação dos resultados do estudo
- Submetendo-se a co-cultura de embriões
- Uso de qualquer um dos seguintes medicamentos: Hormônio do Crescimento, Sildenafil ou Aspirina (exceto se usado para estado de hipercoagulabilidade)
- Diagnóstico de infertilidade por fator masculino grave. O diagnóstico de infertilidade de fator masculino deve ser liberado para elegibilidade pelo PI com base no histórico anterior do paciente de resultados de fertilização e/ou resultados de fertilização esperados da causa de infertilidade de fator masculino com base em dados científicos conhecidos.
- Ovulação desencadeia menos ou mais de 36 horas para a recuperação do oócito
- Nível sérico de estradiol > 5.000 pg/ml no dia do gatilho esperado devido ao alto risco de OHSS
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Tratamento
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Dobro
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Experimental: Co-desencadeador de baixa dose de hCG mais FSH
No dia do início da ovulação, a paciente receberá hCG 1.500 UI SQ mais FSH 450 UI SQ
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Co-desencadeador de baixa dose de hCG (1.500 UI) mais FSH (450 UI)
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Comparador Ativo: Dose padrão de hCG sozinho
No dia do início da ovulação, a paciente receberá dose padrão de hCG (10.000 ou 5.000 UI SQ)
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Dose padrão de gatilho de hCG (10.000 ou 5.000 UI)
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Proporção Total de Fertilização (ou seja, Proporção Competente Total)
Prazo: 2 dias
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O número de oócitos fertilizados (2 pró-núcleos) após fertilização in vitro padrão ou injeção intracitoplasmática de esperma dividido pelo número total de oócitos recuperados como uma medida da competência oocitária.
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2 dias
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Número de oócitos recuperados
Prazo: 1 dia
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O número total de oócitos recuperados na recuperação de oócitos.
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1 dia
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Número de Oócitos MII
Prazo: 1 dia
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O número de oócitos metafásicos 2 (MII) recuperados, que só pode ser calculado em pacientes submetidos à injeção intracitoplasmática de espermatozoides.
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1 dia
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Taxa Total de Maturidade Oocitária
Prazo: 1 dia
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A taxa de maturidade oocitária foi determinada pelo número de oócitos meta fase 2 (MII) dividido pelo número de oócitos recuperados.
Este resultado foi avaliado apenas em pacientes submetidos à injeção intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI).
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1 dia
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Proporção de recuperação de oócitos maduros
Prazo: 1 dia
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A proporção de recuperação de oócitos maduros é definida como o número de MIIs dividido pelo número total de folículos maiores ou iguais a 13mm de tamanho no dia do gatilho.
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1 dia
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Taxa de Fertilização ICSI
Prazo: 2 dias
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A taxa de fertilização ICSI foi determinada pelo número de 2 pró-núcleos (2PN) dividido pelo número de oócitos MII.
Isso foi avaliado apenas em pacientes submetidos à ICSI.
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2 dias
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Embriões em estágio de clivagem de alta qualidade
Prazo: 4 dias
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O desenvolvimento embrionário de boa qualidade foi comparado entre os grupos desencadeadores, calculando a proporção de embriões de boa qualidade para o número total de embriões em estágio de clivagem.
Um embrião em estágio de clivagem de boa qualidade foi definido por ter um número de células de 7 a 10 e
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4 dias
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Embriões de Blastocisto de Alta Qualidade
Prazo: 6 dias
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Um blastocisto de alta qualidade foi definido como expansão de grau 3 ou superior mais massa celular interna e trofectoderma de classificação A ou B com base nos critérios de Gardner.
O número descreve o grau de expansão do embrião em uma escala de 1 a 6.
À medida que o embrião se expande, o grau de expansão aumenta.
A primeira letra indica em uma escala de A a C (sendo A a mais alta) a qualidade da massa celular interna.
A segunda letra também está em uma escala de A a C (sendo A a mais alta) e indica a qualidade do trofectoderma.
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6 dias
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Taxa de nascidos vivos de todas as transferências recentes
Prazo: 10 meses
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A taxa de nascidos vivos (LBR) foi definida como um nascido vivo no momento da análise.
Os resultados da gravidez foram calculados para todas as transferências recentes.
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10 meses
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Pontuação de Inchaço
Prazo: cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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Mudança nas pontuações de inchaço desde o dia do ultrassom de linha de base até o dia 5 após o disparo. Os sintomas clínicos da paciente serão avaliados com base em uma pontuação de inchaço relatada por cada paciente no dia do início da ovulação e, em seguida, 5 dias após a recuperação do oócito será determinada. A pontuação de inchaço varia em uma escala de 0 a 5. O número descreve o grau de inchaço e aumentará à medida que o grau de inchaço aumenta. A pontuação de inchaço será determinada da seguinte forma: 0 - Sem inchaço
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cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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Circunferência abdominal
Prazo: cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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Mudança na circunferência abdominal (em centímetros) desde o dia do ultrassom basal até o dia 5 pós-trigger.
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cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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Peso corporal
Prazo: cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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Mudança no peso corporal desde o dia da ultrassonografia inicial até o dia 5 pós-trigger.
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cerca de 16 dias (varia de acordo com o assunto), representa a duração média da estimulação de fertilização in vitro neste estudo, sendo 11 dias desde a linha de base até 5 dias após o gatilho
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HCG T+1 sérico
Prazo: 1 dia
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 12 horas após o gatilho (T+1) para avaliar a concentração sérica de gonadotrofina coriônica humana (hCG).
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1 dia
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FSH T+1 sérico
Prazo: 1 dia
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 12 horas após o gatilho (T+1) para avaliar a concentração sérica do hormônio folículo estimulante (FSH).
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1 dia
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Soro P4 em T+1
Prazo: 1 dia
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 12 horas após o gatilho (T+1) para avaliar a concentração sérica de Progesterona (P4).
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1 dia
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Soro E2 em T+1
Prazo: 1 dia
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 12 horas após o gatilho (T+1) para avaliar a concentração sérica de estradiol (E2).
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1 dia
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LH sérico em T+1
Prazo: 1 dia
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 12 horas após o gatilho (T+1) para avaliar a concentração sérica do hormônio luteinizante (LH).
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1 dia
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HCG sérico em T+2
Prazo: 2 dias
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 2 dias após o gatilho (T+2) para avaliar a concentração sérica de gonadotrofina coriônica humana (hCG).
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2 dias
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FSH sérico em T+2
Prazo: 2 dias
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Amostras de sangue foram coletadas 2 dias após o gatilho (T+2) para avaliar a concentração sérica do hormônio folículo estimulante (FSH).
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2 dias
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Soro P4 em T+2
Prazo: 2 dias
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Amostras de sangue foram coletadas 2 dias após o gatilho (T+2) para avaliar a concentração sérica de progesterona (P4).
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2 dias
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Soro E2 em T+2
Prazo: 2 dias
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Amostras de sangue foram coletadas 2 dias após o gatilho (T+2) para avaliar a concentração sérica de estradiol (E2).
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2 dias
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HCG sérico em T+5
Prazo: 5 dias
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Amostras de sangue foram coletadas 5 dias após o gatilho (T+5) para avaliar a concentração sérica de gonadotrofina coriônica humana (hCG).
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5 dias
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FSH sérico em T+5
Prazo: 5 dias
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Amostras de sangue foram coletadas 5 dias após o gatilho (T+5) para avaliar a concentração sérica do hormônio folículo estimulante (FSH).
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5 dias
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LH sérico em T+5
Prazo: 5 dias
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Amostras de sangue foram coletadas cerca de 5 dias após o gatilho (T+5) para avaliar a concentração sérica do hormônio luteinizante (LH).
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5 dias
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HCG folicular
Prazo: 2 dias
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O fluido folicular foi aspirado individualmente na coleta de oócitos do folículo principal em cada ovário usando uma agulha de lúmen único.
A concentração média entre os folículos colhidos direito e esquerdo foi comparada para avaliar a concentração folicular de gonadotrofina coriônica humana (hCG).
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2 dias
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Folicular FSH
Prazo: 2 dias
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O fluido folicular foi aspirado individualmente na coleta de oócitos do folículo principal em cada ovário usando uma agulha de lúmen único.
A concentração média entre os folículos colhidos direito e esquerdo foi comparada para avaliar a concentração folicular do hormônio folículo estimulante (FSH).
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2 dias
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Folicular P4
Prazo: 2 dias
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O fluido folicular foi aspirado individualmente na coleta de oócitos do folículo principal em cada ovário usando uma agulha de lúmen único.
A concentração média entre os folículos colhidos direito e esquerdo foi comparada para avaliar a concentração folicular de progesterona (P4).
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2 dias
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Folicular E2
Prazo: 2 dias
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O fluido folicular foi aspirado individualmente na coleta de oócitos do folículo principal em cada ovário usando uma agulha de lúmen único.
A concentração média entre os folículos colhidos direito e esquerdo foi comparada para avaliar a concentração folicular de estradiol (E2).
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2 dias
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Folicular VEGF
Prazo: 2 dias
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O fluido folicular foi aspirado individualmente na coleta de oócitos do folículo principal em cada ovário usando uma agulha de lúmen único.
A concentração média entre os folículos colhidos direito e esquerdo foi comparada para avaliar a concentração folicular do fator de crescimento endotelial vascular (VEGF).
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2 dias
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Mitchell Rosen, M.D., University of California, San Francisco
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- McClure N, Healy DL, Rogers PA, Sullivan J, Beaton L, Haning RV Jr, Connolly DT, Robertson DM. Vascular endothelial growth factor as capillary permeability agent in ovarian hyperstimulation syndrome. Lancet. 1994 Jul 23;344(8917):235-6. doi: 10.1016/s0140-6736(94)93001-5.
- Schmidt DW, Maier DB, Nulsen JC, Benadiva CA. Reducing the dose of human chorionic gonadotropin in high responders does not affect the outcomes of in vitro fertilization. Fertil Steril. 2004 Oct;82(4):841-6. doi: 10.1016/j.fertnstert.2004.03.055.
- Golan A, Ron-el R, Herman A, Soffer Y, Weinraub Z, Caspi E. Ovarian hyperstimulation syndrome: an update review. Obstet Gynecol Surv. 1989 Jun;44(6):430-40. doi: 10.1097/00006254-198906000-00004. No abstract available.
- Lamb JD, Shen S, McCulloch C, Jalalian L, Cedars MI, Rosen MP. Follicle-stimulating hormone administered at the time of human chorionic gonadotropin trigger improves oocyte developmental competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Fertil Steril. 2011 Apr;95(5):1655-60. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.01.019.
- Navot D, Bergh PA, Laufer N. Ovarian hyperstimulation syndrome in novel reproductive technologies: prevention and treatment. Fertil Steril. 1992 Aug;58(2):249-61. doi: 10.1016/s0015-0282(16)55188-7. Erratum In: Fertil Steril 1993 Jun;59(6):1334.
- Klemetti R, Sevon T, Gissler M, Hemminki E. Complications of IVF and ovulation induction. Hum Reprod. 2005 Dec;20(12):3293-300. doi: 10.1093/humrep/dei253. Epub 2005 Aug 26.
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- Hoff JD, Quigley ME, Yen SS. Hormonal dynamics at midcycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab. 1983 Oct;57(4):792-6. doi: 10.1210/jcem-57-4-792.
- Egbase PE, Sharhan MA, Masangcay M, Egbase E. Follicle stimulating hormone (FSH) administer with trigger dose human chorionic gonadotropin (hCG) completely prevents ovarian hyperstimulation (OHSS): Randomised controlled study. [Abstract] Fertil Steril 2011; 96(3): S20.
- Anaya Y, Cakmak H, Mata DA, Letourneau J, Zhang L, Lenhart N, Juarez-Hernandez F, Jalalian L, Cedars MI, Rosen M. Triggering with 1,500 IU of human chorionic gonadotropin plus follicle-stimulating hormone compared to a standard human chorionic gonadotropin trigger dose for oocyte competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blinded, controlled noninferiority trial. Fertil Steril. 2022 Aug;118(2):266-278. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.05.006. Epub 2022 Jun 12.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Real)
Conclusão do estudo (Real)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Estimativa)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Real)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Termos MeSH relevantes adicionais
Outros números de identificação do estudo
- P0503461
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