- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT02310919
Administration d'hormone folliculo-stimulante (FSH) et de gonadotrophine chorionique humaine (hCG) à faible dose pour la maturité des ovocytes tout en diminuant l'exposition à l'hCG dans les cycles de fécondation in vitro (FIV)
L'administration concomitante de FSH avec une faible dose d'hCG (1 500 UI) a une compétence de développement des ovocytes équivalente tout en diminuant l'exposition à l'hCG dans les cycles de FIV : un essai contrôlé randomisé en double aveugle
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le taux de réussite de la technologie de procréation assistée (ART) a considérablement augmenté en raison des améliorations de la culture d'embryons, des conditions de laboratoire et de l'optimisation des différents protocoles de stimulation ovarienne. Des données récentes montrent que si l'hCG n'est pas administrée pour la maturation des ovocytes, le SHO sévère est très rare. Cependant, avec les cycles d'agonistes de la gonadolibérine (GnRH), l'hCG est nécessaire. Des études antérieures ont révélé qu'une dose plus faible d'hCG utilisée pour déclencher l'ovulation par rapport à la dose standard peut avoir le même effet sur l'induction de la maturation finale des ovocytes et peut éventuellement réduire le risque de SHO. Cependant, la dose minimale requise d'hCG pour maintenir les taux de réussite maximaux de la FIV n'est pas connue car elle n'a pas été suffisamment étudiée dans des essais contrôlés randomisés. Fait intéressant, notre précédente étude contrôlée randomisée a révélé que l'administration concomitante de FSH et d'hCG (10 000 UI), un processus plus physiologique, améliorait la compétence développementale des ovocytes. Dans cette étude, il n'y avait pas de SHO dans le groupe ayant reçu le co-déclencheur FSH. Une étude ultérieure a réalisé un essai randomisé pour déterminer si le co-déclencheur de la FSH réduisait l'incidence du SHO et a constaté qu'il pouvait prévenir le SHO. De plus, notre propre expérience clinique (données non publiées) révèle que l'administration de 1 500 UI d'hCG plus 450 UI de co-déclencheur de FSH est suffisante pour favoriser un traitement adéquat (c.-à-d. maturation ovocytaire non inférieure) tout en n'augmentant pas le risque de développer un SHO chez les patientes à haut risque. Compte tenu de ces résultats, nous proposons une autre modification du déclencheur de l'ovulation avec une diminution de l'exposition à l'hCG. Notre objectif est de déterminer si l'administration concomitante de FSH avec une dose réduite d'hCG par rapport à une dose standard d'hCG seule pour l'ovulation favorisera une maturation et une qualité adéquates des ovocytes, tout en diminuant le risque de SHO. On pense que la dose de FSH sélectionnée de 450 UI est parallèle à la poussée physiologique de FSH observée dans un cycle naturel. Nous avons choisi 1 500 UI comme faible dose d'hCG désignée sur la base d'études antérieures montrant que même des doses d'hCG aussi faibles que 2 000 UI permettent aux ovocytes de subir une maturation ainsi que notre propre expérience clinique qui a démontré une maturité et une fécondation adéquates des ovocytes chez les patients choisis pour recevoir 1 500 UI d'hCG, en raison du risque de SHO.
Les participants à l'étude seront recrutés à la Clinique d'endocrinologie reproductive et d'infertilité de l'Université de Californie au Centre de santé reproductive de San Francisco. Les couples subissant une FIV se verront proposer de participer à l'étude.
Environ 100 sujets seront randomisés au moment de l'inscription pour recevoir soit la dose standard d'hCG seule, soit une faible dose d'hCG (1 500 UI) + FSH (450 UI) pour le déclenchement de la maturation des ovocytes par le coordinateur de la recherche. Il y aura environ 50 sujets dans chaque groupe d'étude.
Chaque sujet subira un protocole de stimulation FIV standard choisi par son médecin traitant. Les participants à l'étude recevront une seringue (préparée par le coordinateur de la recherche) le jour du déclenchement de l'ovulation contenant soit la dose standard d'hCG, soit une faible dose d'hCG + FSH selon la randomisation. Les sujets seront déclenchés avec ce qui suit :
- Groupe témoin : Dose standard d'hCG (10 000 ou 5 000 UI) ou
- Bras expérimental : hCG 1 500 UI SQ + FSH 450 UI SQ.
Pour le groupe témoin, la dose standard d'hCG sera administrée en fonction du taux d'œstradiol (E2). Si le niveau d'E2 est inférieur à 3 500 pg/ml, nous déclencherons avec 10 000 UI d'hCG. Si le niveau d'E2 est supérieur à 3 500 pg/ml mais inférieur à 5 000 pg/ml, nous déclencherons avec 5 000 UI.
Interventions pour prévenir le SHO chez les patients à haut risque :
Tous les patients dans l'un ou l'autre bras avec un taux sérique d'E2> 5 000 pg / ml le jour de l'administration prévue du déclencheur seront exclus de l'étude. Ces patients seront évalués individuellement par leur médecin traitant. Leur médecin traitant décidera de l'option de déclenchement la plus sûre en fonction du risque de SHO du patient. D'après notre propre expérience clinique, nous nous attendons à ce que 5 000 pg/ml soient exclus.
Les injections de déclenchement de hCG et de FSH pour chaque patient seront préparées par un médecin non aveugle le jour même où le patient administrera les médicaments. Les sujets s'auto-administreront le déclencheur d'ovulation à l'heure désignée donnée par le médecin traitant.
Le prélèvement d'ovocytes sera effectué 36 heures après le déclenchement de la maturation des ovocytes. Toutes les extractions d'ovules seront effectuées à l'aide d'une échographie transvaginale et du guide-aiguille associé de la manière standard. Le médecin et le personnel du laboratoire ne seront pas informés de l'étude. Tous les follicules visibles seront aspirés. Le premier follicule de chaque ovaire sur chaque patient sera aspiré et le système (aiguille et tubulure) sera rincé dans un tube séparé avant d'aspirer les follicules restants afin que la corrélation directe de la taille folliculaire avec la maturation de la récupération des ovocytes et le développement de l'embryon puisse être évalué séparément. De plus, le liquide folliculaire de la première aspiration sera collecté pour de futurs dosages hormonaux. Le stripping des ovocytes sera effectué selon le protocole standard. L'état de la maturation des ovocytes au moment du stripping (environ 38 à 40 heures après l'administration d'hCG) et à la fin de la procédure d'injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI) (environ 40 à 42 heures après l'administration d'hCG) sera enregistré. La fécondation sera évaluée 16 à 19 heures après l'insémination. Les embryons seront transférés dans des milieux de croissance et cultivés avec des protocoles standards.
Les sujets reviendront 12 heures après le déclenchement (T + 1), lors de la récupération des ovocytes (T + 2) et 5 jours après le déclenchement (T + 5) pour évaluer les taux sériques d'estradiol, de progestérone, d'hCG, de FSH, de LH et d'endothélium vasculaire facteur de croissance (VEGF), le cas échéant, en fonction du jour de la visite d'étude.
Pour évaluer l'incidence du SHO, les patients seront évalués objectivement par un changement de la circonférence abdominale ainsi que subjectivement par la symptomatologie clinique basée sur les symptômes de ballonnement du patient.
Avant de commencer la stimulation, la circonférence abdominale (C) et le poids corporel (BW) seront également mesurés en centimètres lors de la visite échographique de référence (C de base, BW de base). Cinq jours après le prélèvement d'ovocytes, la circonférence abdominale et le poids corporel seront à nouveau mesurés en centimètres (C stimulé, BW stimulé). La différence de circonférence abdominale et de poids corporel sera calculée comme suit : C de base - C stimulé = CΔ. ; BW ligne de base - BW stimulé = BWΔ.
Les symptômes cliniques du patient seront évalués sur la base d'un score de ballonnement rapporté par chaque patient avant l'administration de la gâchette, puis 5 jours après le prélèvement des ovocytes seront déterminés. Une ponction veineuse sera également obtenue pour les dosages hormonaux 5 jours après le prélèvement des ovocytes.
Les patients diagnostiqués avec le SHO seront pris en charge par un médecin selon les indications cliniques. Le nombre de visites de suivi à la clinique et d'hospitalisations secondaires à des symptômes de SHO sera enregistré.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- Phase 3
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
California
-
San Francisco, California, États-Unis, 94143
- University of California at San Francisco
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critères d'inclusion : La population cible comprend les couples subissant une FIV. Tous les couples éligibles seront invités à participer à l'étude. Les participants à l'étude seront recrutés à la Clinique d'endocrinologie de la reproduction de l'Université de Californie au Centre de santé reproductive de San Francisco. Les patients recevant tout type de protocole de stimulation pour la FIV se verront proposer de participer à l'étude.
Critère d'exclusion:
- Âge >41 ans
- Nombre de follicules antraux (AFC ; 2-10 mm) < 8
- Indice de masse corporelle > 30 kg/m2
- Antécédents d'au moins 2 cycles de FIV annulés en raison d'une mauvaise réponse
- Diagnostic du cancer
- Toute maladie, maladie ou trouble psychiatrique concomitant important qui compromettrait la sécurité ou l'observance du patient, interférerait avec le consentement, la participation à l'étude, le suivi ou l'interprétation des résultats de l'étude
- En cours de co-culture d'embryons
- Utilisation de l'un des médicaments suivants : hormone de croissance, sildénafil ou aspirine (sauf s'il est utilisé pour un état d'hypercoagulabilité)
- Diagnostic d'infertilité masculine sévère. Le diagnostic d'infertilité masculine doit être autorisé par l'IP sur la base des antécédents du patient en matière de résultats de fécondation et/ou des résultats de fécondation attendus de la cause de l'infertilité masculine sur la base de données scientifiques connues.
- Déclenchement de l'ovulation inférieur ou supérieur à 36 heures avant la récupération des ovocytes
- Taux sérique d'œstradiol > 5 000 pg/ml le jour du déclenchement prévu en raison d'un risque élevé de SHO
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Double
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
---|---|
Expérimental: Co-déclencheur hCG plus FSH à faible dose
Le jour du déclenchement de l'ovulation, la patiente recevra de l'hCG 1 500 UI SQ plus de la FSH 450 UI SQ
|
HCG à faible dose (1 500 UI) plus FSH (450 UI) co-déclencheur
|
Comparateur actif: Dose standard d'hCG seule
Le jour du déclenchement de l'ovulation, la patiente recevra une dose standard d'hCG (10 000 ou 5 000 UI SQ)
|
Dose standard d'hCG (10 000 ou 5 000 UI) déclencheur
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
---|---|---|
Proportion totale de fertilisation (c.-à-d. Proportion totale compétente)
Délai: 2 jours
|
Le nombre d'ovocytes fécondés (2-pronucléi) après une fécondation in vitro standard ou une injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes divisé par le nombre total d'ovocytes récupérés comme mesure de la compétence ovocytaire.
|
2 jours
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
---|---|---|
Nombre d'ovocytes récupérés
Délai: Un jour
|
Le nombre total d'ovocytes récupérés lors du prélèvement d'ovocytes.
|
Un jour
|
Nombre d'ovocytes MII
Délai: Un jour
|
Le nombre d'ovocytes en métaphase 2 (MII) récupérés qui ne peut être calculé que chez les patients ayant subi une injection intracytoplasmique de sperme.
|
Un jour
|
Taux de maturité totale des ovocytes
Délai: Un jour
|
Le taux de maturité des ovocytes a été déterminé par le nombre d'ovocytes en métaphase 2 (MII) divisé par le nombre d'ovocytes récupérés.
Ce résultat n'a été évalué que chez les patients subissant une injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI).
|
Un jour
|
Proportion de récupération des ovocytes matures
Délai: Un jour
|
La proportion de récupération des ovocytes matures est définie comme le nombre de MII divisé par le nombre total de follicules d'une taille supérieure ou égale à 13 mm le jour du déclenchement.
|
Un jour
|
Taux de fécondation ICSI
Délai: 2 jours
|
Le taux de fécondation ICSI a été déterminé par le nombre de 2 pro-noyaux (2PN) divisé par le nombre d'ovocytes MII.
Cela n'a été évalué que chez les patients subissant une ICSI.
|
2 jours
|
Embryons au stade de clivage de haute qualité
Délai: 4 jours
|
Le développement d'embryons de bonne qualité a été comparé entre les groupes déclencheurs en calculant le rapport entre les embryons de bonne qualité et le nombre total d'embryons au stade de clivage.
Un embryon au stade de clivage de bonne qualité a été défini comme ayant un nombre de cellules de 7 à 10 et
|
4 jours
|
Embryons de blastocyste de haute qualité
Délai: 6 jours
|
Un blastocyste de haute qualité a été défini comme une expansion de grade 3 ou plus, plus une masse cellulaire interne et un classement du trophectoderme de A ou B sur la base des critères de Gardner.
Le nombre décrit le degré d'expansion de l'embryon sur une échelle de 1 à 6.
Au fur et à mesure que l'embryon se développe, le degré d'expansion augmente.
La première lettre indique sur une échelle de A à C (A étant la plus élevée) la qualité de la masse cellulaire interne.
La deuxième lettre est également sur une échelle de A à C (A étant la plus élevée) et indique la qualité du trophectoderme.
|
6 jours
|
Taux de naissances vivantes de tous les transferts frais
Délai: 10 mois
|
Le taux de naissances vivantes (LBR) a été défini comme un né vivant au moment de l'analyse.
Les issues de grossesse ont été calculées pour tous les nouveaux transferts.
|
10 mois
|
Score de ballonnement
Délai: environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
Changement des scores de ballonnement du jour de l'échographie de base au jour 5 après le déclenchement. Les symptômes cliniques du patient seront évalués sur la base d'un score de ballonnement rapporté par chaque patient le jour du déclenchement de l'ovulation, puis 5 jours après le prélèvement d'ovocytes seront déterminés. Le score de ballonnement se situera sur une échelle de 0 à 5. Le nombre décrit le degré de ballonnement et augmentera à mesure que le degré de ballonnement augmente. Le score de ballonnement sera déterminé comme suit : 0 - Pas de ballonnement
|
environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
Circonférence abdominale
Délai: environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
Changement de la circonférence abdominale (en centimètres) entre le jour de l'échographie de base et le jour 5 après le déclenchement.
|
environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
Poids
Délai: environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
Changement de poids corporel entre le jour de l'échographie de base et le jour 5 après le déclenchement.
|
environ 16 jours (varie selon le sujet), explique la durée médiane de la stimulation de la FIV dans cette étude étant de 11 jours à partir de la ligne de base à 5 jours après le déclenchement
|
HCG sérique T+1
Délai: Un jour
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 12 heures après le déclenchement (T+1) pour évaluer la concentration sérique de gonadotrophine chorionique humaine (hCG).
|
Un jour
|
Sérum FSH T+1
Délai: Un jour
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 12 heures après le déclenchement (T+1) pour évaluer la concentration sérique de l'hormone folliculo-stimulante (FSH).
|
Un jour
|
Sérum P4 à T+1
Délai: Un jour
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 12 heures après le déclenchement (T+1) pour évaluer la concentration sérique de progestérone (P4).
|
Un jour
|
Sérum E2 à J+1
Délai: Un jour
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 12 heures après le déclenchement (T+1) pour évaluer la concentration sérique d'estradiol (E2).
|
Un jour
|
LH sérique à T+1
Délai: Un jour
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 12 heures après le déclenchement (T+1) pour évaluer la concentration sérique de l'hormone lutéinisante (LH).
|
Un jour
|
HCG sérique à T+2
Délai: 2 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 2 jours après le déclenchement (T+2) pour évaluer la concentration sérique de gonadotrophine chorionique humaine (hCG).
|
2 jours
|
FSH sérique à T+2
Délai: 2 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés 2 jours après le déclenchement (T+2) pour évaluer la concentration sérique de l'hormone folliculo-stimulante (FSH).
|
2 jours
|
Sérum P4 à T+2
Délai: 2 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés 2 jours après le déclenchement (T+2) pour évaluer la concentration sérique de progestérone (P4).
|
2 jours
|
Sérum E2 à J+2
Délai: 2 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés 2 jours après le déclenchement (T+2) pour évaluer la concentration sérique d'estradiol (E2).
|
2 jours
|
HCG sérique à T+5
Délai: 5 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés 5 jours après le déclenchement (T+5) pour évaluer la concentration sérique de gonadotrophine chorionique humaine (hCG).
|
5 jours
|
FSH sérique à T+5
Délai: 5 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés 5 jours après le déclenchement (T + 5) pour évaluer la concentration sérique de l'hormone folliculo-stimulante (FSH).
|
5 jours
|
LH sérique à T+5
Délai: 5 jours
|
Des échantillons de sang ont été prélevés environ 5 jours après le déclenchement (T+5) pour évaluer la concentration sérique de l'hormone lutéinisante (LH).
|
5 jours
|
HCG folliculaire
Délai: 2 jours
|
Le fluide folliculaire a été aspiré individuellement lors de la récupération des ovocytes du follicule principal dans chaque ovaire à l'aide d'une aiguille à lumière unique.
La concentration moyenne entre les follicules droit et gauche collectés a été comparée pour évaluer la concentration folliculaire de la gonadotrophine chorionique humaine (hCG).
|
2 jours
|
FSH folliculaire
Délai: 2 jours
|
Le fluide folliculaire a été aspiré individuellement lors de la récupération des ovocytes du follicule principal dans chaque ovaire à l'aide d'une aiguille à lumière unique.
La concentration moyenne entre les follicules droit et gauche collectés a été comparée pour évaluer la concentration folliculaire de l'hormone folliculo-stimulante (FSH).
|
2 jours
|
P4 folliculaire
Délai: 2 jours
|
Le fluide folliculaire a été aspiré individuellement lors de la récupération des ovocytes du follicule principal dans chaque ovaire à l'aide d'une aiguille à lumière unique.
La concentration moyenne entre les follicules droit et gauche collectés a été comparée pour évaluer la concentration folliculaire de progestérone (P4).
|
2 jours
|
Folliculaire E2
Délai: 2 jours
|
Le fluide folliculaire a été aspiré individuellement lors de la récupération des ovocytes du follicule principal dans chaque ovaire à l'aide d'une aiguille à lumière unique.
La concentration moyenne entre les follicules droit et gauche collectés a été comparée pour évaluer la concentration folliculaire d'estradiol (E2).
|
2 jours
|
VEGF folliculaire
Délai: 2 jours
|
Le fluide folliculaire a été aspiré individuellement lors de la récupération des ovocytes du follicule principal dans chaque ovaire à l'aide d'une aiguille à lumière unique.
La concentration moyenne entre les follicules droit et gauche collectés a été comparée pour évaluer la concentration folliculaire du facteur de croissance endothélial vasculaire (VEGF).
|
2 jours
|
Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Mitchell Rosen, M.D., University of California, San Francisco
Publications et liens utiles
Publications générales
- McClure N, Healy DL, Rogers PA, Sullivan J, Beaton L, Haning RV Jr, Connolly DT, Robertson DM. Vascular endothelial growth factor as capillary permeability agent in ovarian hyperstimulation syndrome. Lancet. 1994 Jul 23;344(8917):235-6. doi: 10.1016/s0140-6736(94)93001-5.
- Schmidt DW, Maier DB, Nulsen JC, Benadiva CA. Reducing the dose of human chorionic gonadotropin in high responders does not affect the outcomes of in vitro fertilization. Fertil Steril. 2004 Oct;82(4):841-6. doi: 10.1016/j.fertnstert.2004.03.055.
- Golan A, Ron-el R, Herman A, Soffer Y, Weinraub Z, Caspi E. Ovarian hyperstimulation syndrome: an update review. Obstet Gynecol Surv. 1989 Jun;44(6):430-40. doi: 10.1097/00006254-198906000-00004. No abstract available.
- Lamb JD, Shen S, McCulloch C, Jalalian L, Cedars MI, Rosen MP. Follicle-stimulating hormone administered at the time of human chorionic gonadotropin trigger improves oocyte developmental competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Fertil Steril. 2011 Apr;95(5):1655-60. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.01.019.
- Navot D, Bergh PA, Laufer N. Ovarian hyperstimulation syndrome in novel reproductive technologies: prevention and treatment. Fertil Steril. 1992 Aug;58(2):249-61. doi: 10.1016/s0015-0282(16)55188-7. Erratum In: Fertil Steril 1993 Jun;59(6):1334.
- Klemetti R, Sevon T, Gissler M, Hemminki E. Complications of IVF and ovulation induction. Hum Reprod. 2005 Dec;20(12):3293-300. doi: 10.1093/humrep/dei253. Epub 2005 Aug 26.
- Kashyap S, Parker K, Cedars MI, Rosenwaks Z. Ovarian hyperstimulation syndrome prevention strategies: reducing the human chorionic gonadotropin trigger dose. Semin Reprod Med. 2010 Nov;28(6):475-85. doi: 10.1055/s-0030-1265674. Epub 2010 Nov 16.
- Tsoumpou I, Muglu J, Gelbaya TA, Nardo LG. Symposium: Update on prediction and management of OHSS. Optimal dose of HCG for final oocyte maturation in IVF cycles: absence of evidence? Reprod Biomed Online. 2009 Jul;19(1):52-8. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60045-4.
- Kolibianakis EM, Papanikolaou EG, Tournaye H, Camus M, Van Steirteghem AC, Devroey P. Triggering final oocyte maturation using different doses of human chorionic gonadotropin: a randomized pilot study in patients with polycystic ovary syndrome treated with gonadotropin-releasing hormone antagonists and recombinant follicle-stimulating hormone. Fertil Steril. 2007 Nov;88(5):1382-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.12.058. Epub 2007 Apr 18.
- Chen X, Chen SL, He YX, Ye DS. Minimum dose of hCG to trigger final oocyte maturation and prevent OHSS in a long GnRHa protocol. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci. 2013 Feb;33(1):133-136. doi: 10.1007/s11596-013-1085-z. Epub 2013 Feb 8.
- Zelinski-Wooten MB, Hutchison JS, Hess DL, Wolf DP, Stouffer RL. A bolus of recombinant human follicle stimulating hormone at midcycle induces periovulatory events following multiple follicular development in macaques. Hum Reprod. 1998 Mar;13(3):554-60. doi: 10.1093/humrep/13.3.554.
- Bianchi V, Dal Prato L, Maccolini A, Mazzone S, Borini A. Inadvertent recombinant human follicle stimulating hormone bolus instead of human chorionic gonadotrophin leads to the retrieval of competent oocytes in IVF program. Fertil Steril. 2009 Nov;92(5):1747.e1-3. doi: 10.1016/j.fertnstert.2009.07.998. Epub 2009 Sep 3.
- Wikland M, Borg J, Forsberg AS, Jakobsson AH, Svalander P, Waldenstrom U. Human chorionic gonadotrophin self-administered by the subcutaneous route to induce oocyte maturation in an in-vitro fertilization and embryo transfer programme. Hum Reprod. 1995 Jul;10(7):1667-70. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136152.
- Hoff JD, Quigley ME, Yen SS. Hormonal dynamics at midcycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab. 1983 Oct;57(4):792-6. doi: 10.1210/jcem-57-4-792.
- Egbase PE, Sharhan MA, Masangcay M, Egbase E. Follicle stimulating hormone (FSH) administer with trigger dose human chorionic gonadotropin (hCG) completely prevents ovarian hyperstimulation (OHSS): Randomised controlled study. [Abstract] Fertil Steril 2011; 96(3): S20.
- Anaya Y, Cakmak H, Mata DA, Letourneau J, Zhang L, Lenhart N, Juarez-Hernandez F, Jalalian L, Cedars MI, Rosen M. Triggering with 1,500 IU of human chorionic gonadotropin plus follicle-stimulating hormone compared to a standard human chorionic gonadotropin trigger dose for oocyte competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double-blinded, controlled noninferiority trial. Fertil Steril. 2022 Aug;118(2):266-278. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.05.006. Epub 2022 Jun 12.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimation)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- P0503461
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .
Essais cliniques sur Co-déclencheur hCG plus FSH à faible dose
-
AZ Jan Palfijn GentOnze Lieve Vrouw HospitalComplété