- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT02772679
T1DM-Immuntherapie mit polyklonalen Tregs + IL-2 (TILT)
Eine Phase-1-Studie zur adoptiven Immuntherapie mit CD4+CD127lo/-CD25+ polyklonalem Treg mit Interleukin-2 zur Behandlung von Typ-1-Diabetes
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Die Forscher gehen davon aus, dass ex vivo expandierte humane autologe CD4+CD127lo/-CD25+ polyklonale regulatorische T-Zellen (polyklonale Tregs) plus Interleukin-2 (IL-2), die Patienten mit Diabetes mellitus Typ 1 (T1DM) verabreicht werden, sicher und biologisch aktiv sind. Eine Phase-I-Studie mit dieser Zelltherapie plus IL-2 wird den Weg für Phase-II-Studien weisen, die die Wirksamkeit auf der Grundlage der Erhaltung des C-Peptids, des reduzierten exogenen Insulinbedarfs und der verbesserten glykämischen Kontrolle testen.
Dies ist eine Sicherheits-/Dosierungsstudie der Phase I mit polyklonalen Tregs + IL-2 bei Patienten mit T1DM.
Die Tregs werden unter Verwendung eines etablierten Protokolls unter Verwendung von Anti-CD3/Anti-CD28-Kügelchen plus IL-2 expandiert. Die Studie umfasst 2 Dosierungskohorten mit jeweils 6–8 T1DM-Patienten. Das Hauptziel dieser Studie ist die Bewertung der Sicherheit von Tregs + IL-2 und des Überlebens von Tregs bei Patienten mit kürzlich aufgetretenem T1DM, die Infusionen von autologem Tregs + IL-2 erhalten. Die Studie wird auch mögliche Wirkungen von Tregs auf die Betazellfunktion und die Autoimmunreaktion bewerten.
Die Probanden erhalten polyklonale Tregs in Dosen von 3 oder 20x10^6 Zellen/kg. Die Dosis von Tregs wird basierend auf einer Kombination von Überlegungen zur Herstellungskapazität, einer vorhergesagten wirksamen Dosis und den verfügbaren Sicherheitsdaten des Treg-Produkts, das sich derzeit in klinischen Studien befindet, ausgewählt. Die IL-2-Dosis beträgt 1 x 10^6 IE subkutan, die täglich an 5 aufeinanderfolgenden Tagen nach Abschluss der Zellinfusion und erneut nach 1 Monat verabreicht wird. Diese Dosis basiert auf aktuellen Studien von Klatzmann et al. bei T1DM, wo sich die Dosis bei einer selektiven Treg-Expansion als wirksam, gut verträglich und ohne akute Abnahme der Betazellfunktion erwiesen hat (Rosenzwajg et al., 2015).
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Phase 1
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
California
-
San Francisco, California, Vereinigte Staaten, 94143
- University of California, San Francisco Medical Center
-
-
Connecticut
-
New Haven, Connecticut, Vereinigte Staaten, 06519
- Yale University
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Diagnose von T1DM innerhalb von >3 und <24 Monaten nach Tag 0 gemäß den Standardkriterien der American Diabetes Association.
- 18 bis 45 Jahre am Tag des Screening-Besuchs.
- Positiv für mindestens einen Inselzell-Autoantikörper (Glutamat-Decarboxylase; Insulin, falls innerhalb von 10 Tagen nach Beginn der Insulintherapie erhalten; ICA 512-Antikörper; und/oder ZnT8).
- Stimulierter C-Peptid-Spitzenspiegel > 0,2 pmol/ml (0,6 ng/ml) nach einem MMTT.
- Gewicht von >= 40 kg und <= 90,7 kg
- Angemessener venöser Zugang zur Unterstützung einer Blutentnahme von 5 ml/kg bis maximal 400 ml Vollblut und späterer Infusion der Prüftherapie
Ausschlusskriterien:
- Hämoglobin < 10,0 g/dl; Leukozyten < 3.000/μl; Neutrophile <1.500/μl; Lymphozyten <800 μl; Blutplättchen < 100.000/μl
- Alle Anzeichen einer signifikanten chronischen aktiven Infektion (z. B. Hepatitis, Tuberkulose, EBV oder CMV) oder Screening-Labornachweise, die mit einer signifikanten chronischen aktiven Infektion übereinstimmen (z. B. positiv für HIV, PPD oder HBsAg).
- Voraussichtliche andauernde Anwendung anderer Diabetesmedikamente als Insulin, die die Glukosehomöostase beeinflussen, wie Metformin, Sulfonylharnstoffe, Thiazolidindione, Glucagon-like Peptid 1 (GLP-1)-Mimetika, Dipeptidylpeptidase IV (DPP-IV)-Inhibitoren, SGLT2-Inhibitoren oder Amylin.
- Chronische Anwendung von systemischen Glukokortikoiden oder anderen immunsuppressiven Mitteln oder biologischen Immunmodulatoren innerhalb von 6 Monaten vor Studienbeginn. Insbesondere werden Probanden, die innerhalb von 6 Monaten vor Studieneintritt über 7 Tage mit 7,5 mg Prednison (oder dem Äquivalent) behandelt wurden, ausgeschlossen.
- Malignität in der Vorgeschichte (einschließlich Plattenepithelkarzinom der Haut oder des Gebärmutterhalses), mit Ausnahme eines angemessen behandelten Basalzellkarzinoms
- Schwangere oder stillende Frauen oder jede Frau, die nicht bereit ist, für 1 Jahr nach der Treg +/- IL-2-Dosierung eine zuverlässige und wirksame Form der Empfängnisverhütung anzuwenden, und jeder Mann, der nicht bereit ist, für 3 Jahre eine zuverlässige und wirksame Form der Empfängnisverhütung anzuwenden Monate nach Treg +/- IL-2-Dosierung
- Jede Bedingung, die nach Ansicht des Prüfarztes die Teilnahme an der Studie beeinträchtigen oder die Interpretation der Studienergebnisse verfälschen kann.
- Patienten, die nicht einverstanden sind, mindestens 1 Jahr nach der Treg-Infusion nicht an einer anderen klinischen Studie teilzunehmen, die nach Meinung des Prüfarztes die Ergebnisse dieser Studie verfälschen könnte.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: N / A
- Interventionsmodell: Einzelgruppenzuweisung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
|
Experimental: PolyTregs+IL-2
Patienten mit Diabetes mellitus Typ 1 erhalten ex vivo expandierte humane autologe polyklonale regulatorische T-Zellen plus IL-2
|
PolyTregs wird dem Patienten in einer einzigen Infusion infundiert.
Die erste Kohorte erhält 3 x10^6 Zellen.
Die zweite Kohorte erhält 20x10^6 Zellen.
Nach der Tag-0-Infusion von polyklonalen Tregs erhalten die Probanden zwei 5-Tages-Zyklen von IL-2 (1 x 106 IE täglich), die erste an den Tagen 3-7 und die zweite an den Tagen 38-42.
Die Verabreichung des zweiten IL-2-Zyklus kann in Abhängigkeit von Schwellenwertkriterien für periphere Blut-Treg-Frequenzen und MMTT-stimulierte C-Peptid-Spiegel, die an Tag 28 bestimmt wurden, verzögert oder ausgesetzt werden.
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Nebenwirkungen
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
Unerwünschte Ereignisse von besonderem Interesse: einschließlich Infektionen, bösartige Erkrankungen, Sicherheit von Treg-Infusionen und lokale und systemische Reaktionen auf IL-2.
|
bis 3 Jahre
|
|
Überleben von Tregs
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
Vergleich des Überlebens von abgestuften Dosen von Tregs und IL-2.
Die Berechnung der Halbwertszeit von infundierten Deuterium-markierten Tregs im peripheren Kreislauf wird verwendet, um das Überleben von Tregs zu beurteilen.
|
bis 3 Jahre
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
C-Peptid-Antwort
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
Veränderung der Beta-Zellfunktion im Laufe der Zeit, bestimmt durch Veränderung der C-Peptid-Fläche unter der Kurve als Reaktion auf serielle Verträglichkeitstests für gemischte Mahlzeiten.
Die Analyse umfasst einen Vergleich mit aktuellen Daten, die von mit TrialNet-Placebo behandelten Probanden verfügbar sind.
|
bis 3 Jahre
|
|
Insulingebrauch
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
Insulinverbrauch in Einheiten pro Kilogramm Körpergewicht pro Tag
|
bis 3 Jahre
|
|
HbA1c-Werte
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
|
|
Schwere hypoglykämische Ereignisse
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
Schwere hypoglykämische Ereignisse, definiert durch die Unfähigkeit zur Selbstbehandlung und/oder die Notwendigkeit einer Glukagoninjektion
|
bis 3 Jahre
|
|
Anteil der Probanden, die in jedem Behandlungsarm eine mindestens 13-wöchige Reduktion der Insulindosis auf < 0,5 Einheiten/kg erreichen
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
|
|
Analyse der Wirkungen von IL-2 auf die Treg-Kinetik und den Phänotyp
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
|
|
Spiegel von unmethylierter Insulin-DNA (Test auf Beta-Zelltod)
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
|
|
Analyse von Autoantikörpern, Zählung und Phänotypen Inselantigen-Tetramer+ CD8, intrazelluläre Zytokinfärbung von T-Zellen, Serumproteomik, Zytokine und Treg-Phänotypisierung und funktionelle Assays
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
|
|
Analyse der allgemeinen Immunantwort, wie beispielsweise durch virale Tetramer+-CD8-Zellen beurteilt, und Wirkungen von Treg-Infusionen auf periphere Blutzellen, gemessen durch Durchflusszytometrie, einschließlich T-Zell-Untergruppen, B-Zellen und andere angeborene Zell-Untergruppen
Zeitfenster: bis 3 Jahre
|
bis 3 Jahre
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Mitarbeiter
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Chatenoud L, Bluestone JA. CD3-specific antibodies: a portal to the treatment of autoimmunity. Nat Rev Immunol. 2007 Aug;7(8):622-32. doi: 10.1038/nri2134. Epub 2007 Jul 20.
- Ahmadzadeh M, Rosenberg SA. IL-2 administration increases CD4+ CD25(hi) Foxp3+ regulatory T cells in cancer patients. Blood. 2006 Mar 15;107(6):2409-14. doi: 10.1182/blood-2005-06-2399. Epub 2005 Nov 22.
- Ash S, Yarkoni S, Askenasy N. Lymphopenia is detrimental to therapeutic approaches to type 1 diabetes using regulatory T cells. Immunol Res. 2014 Jan;58(1):101-5. doi: 10.1007/s12026-013-8476-x.
- Atkins MB. Interleukin-2: clinical applications. Semin Oncol. 2002 Jun;29(3 Suppl 7):12-7. doi: 10.1053/sonc.2002.33077.
- Bailey-Bucktrout SL, Martinez-Llordella M, Zhou X, Anthony B, Rosenthal W, Luche H, Fehling HJ, Bluestone JA. Self-antigen-driven activation induces instability of regulatory T cells during an inflammatory autoimmune response. Immunity. 2013 Nov 14;39(5):949-62. doi: 10.1016/j.immuni.2013.10.016.
- Bayer AL, Pugliese A, Malek TR. The IL-2/IL-2R system: from basic science to therapeutic applications to enhance immune regulation. Immunol Res. 2013 Dec;57(1-3):197-209. doi: 10.1007/s12026-013-8452-5.
- Bluestone JA. Regulatory T-cell therapy: is it ready for the clinic? Nat Rev Immunol. 2005 Apr;5(4):343-9. doi: 10.1038/nri1574.
- Buckner JH. Mechanisms of impaired regulation by CD4(+)CD25(+)FOXP3(+) regulatory T cells in human autoimmune diseases. Nat Rev Immunol. 2010 Dec;10(12):849-59. doi: 10.1038/nri2889.
- Castela E, Le Duff F, Butori C, Ticchioni M, Hofman P, Bahadoran P, Lacour JP, Passeron T. Effects of low-dose recombinant interleukin 2 to promote T-regulatory cells in alopecia areata. JAMA Dermatol. 2014 Jul;150(7):748-51. doi: 10.1001/jamadermatol.2014.504.
- Churlaud G, Jimenez V, Ruberte J, Amadoudji Zin M, Fourcade G, Gottrand G, Casana E, Lambrecht B, Bellier B, Piaggio E, Bosch F, Klatzmann D. Sustained stimulation and expansion of Tregs by IL2 control autoimmunity without impairing immune responses to infection, vaccination and cancer. Clin Immunol. 2014 Apr;151(2):114-26. doi: 10.1016/j.clim.2014.02.003. Epub 2014 Feb 19.
- Couri CE, Oliveira MC, Stracieri AB, Moraes DA, Pieroni F, Barros GM, Madeira MI, Malmegrim KC, Foss-Freitas MC, Simoes BP, Martinez EZ, Foss MC, Burt RK, Voltarelli JC. C-peptide levels and insulin independence following autologous nonmyeloablative hematopoietic stem cell transplantation in newly diagnosed type 1 diabetes mellitus. JAMA. 2009 Apr 15;301(15):1573-9. doi: 10.1001/jama.2009.470.
- Diaz-de-Durana Y, Lau J, Knee D, Filippi C, Londei M, McNamara P, Nasoff M, DiDonato M, Glynne R, Herman AE. IL-2 immunotherapy reveals potential for innate beta cell regeneration in the non-obese diabetic mouse model of autoimmune diabetes. PLoS One. 2013 Oct 24;8(10):e78483. doi: 10.1371/journal.pone.0078483. eCollection 2013.
- Dirice E, Kahraman S, Jiang W, El Ouaamari A, De Jesus DF, Teo AK, Hu J, Kawamori D, Gaglia JL, Mathis D, Kulkarni RN. Soluble factors secreted by T cells promote beta-cell proliferation. Diabetes. 2014 Jan;63(1):188-202. doi: 10.2337/db13-0204. Epub 2013 Oct 2.
- Garg G, Tyler JR, Yang JH, Cutler AJ, Downes K, Pekalski M, Bell GL, Nutland S, Peakman M, Todd JA, Wicker LS, Tree TI. Type 1 diabetes-associated IL2RA variation lowers IL-2 signaling and contributes to diminished CD4+CD25+ regulatory T cell function. J Immunol. 2012 May 1;188(9):4644-53. doi: 10.4049/jimmunol.1100272. Epub 2012 Mar 28.
- Grinberg-Bleyer Y, Baeyens A, You S, Elhage R, Fourcade G, Gregoire S, Cagnard N, Carpentier W, Tang Q, Bluestone J, Chatenoud L, Klatzmann D, Salomon BL, Piaggio E. IL-2 reverses established type 1 diabetes in NOD mice by a local effect on pancreatic regulatory T cells. J Exp Med. 2010 Aug 30;207(9):1871-8. doi: 10.1084/jem.20100209. Epub 2010 Aug 2.
- Hartemann A, Bensimon G, Payan CA, Jacqueminet S, Bourron O, Nicolas N, Fonfrede M, Rosenzwajg M, Bernard C, Klatzmann D. Low-dose interleukin 2 in patients with type 1 diabetes: a phase 1/2 randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Diabetes Endocrinol. 2013 Dec;1(4):295-305. doi: 10.1016/S2213-8587(13)70113-X. Epub 2013 Oct 8.
- Johnson MC, Garland AL, Nicolson SC, Li C, Samulski RJ, Wang B, Tisch R. beta-cell-specific IL-2 therapy increases islet Foxp3+Treg and suppresses type 1 diabetes in NOD mice. Diabetes. 2013 Nov;62(11):3775-84. doi: 10.2337/db13-0669. Epub 2013 Jul 24.
- Liu R, Zhou Q, La Cava A, Campagnolo DI, Van Kaer L, Shi FD. Expansion of regulatory T cells via IL-2/anti-IL-2 mAb complexes suppresses experimental myasthenia. Eur J Immunol. 2010 Jun;40(6):1577-89. doi: 10.1002/eji.200939792.
- Macallan DC, Asquith B, Zhang Y, de Lara C, Ghattas H, Defoiche J, Beverley PC. Measurement of proliferation and disappearance of rapid turnover cell populations in human studies using deuterium-labeled glucose. Nat Protoc. 2009;4(9):1313-27. doi: 10.1038/nprot.2009.117. Epub 2009 Aug 20.
- Malek TR, Pugliese A. Low-dose IL-2 as a therapeutic agent for tolerance induction. Immunotherapy. 2011 Nov;3(11):1281-4. doi: 10.2217/imt.11.120. No abstract available.
- Marek-Trzonkowska N, Mysliwiec M, Dobyszuk A, Grabowska M, Derkowska I, Juscinska J, Owczuk R, Szadkowska A, Witkowski P, Mlynarski W, Jarosz-Chobot P, Bossowski A, Siebert J, Trzonkowski P. Therapy of type 1 diabetes with CD4(+)CD25(high)CD127-regulatory T cells prolongs survival of pancreatic islets - results of one year follow-up. Clin Immunol. 2014 Jul;153(1):23-30. doi: 10.1016/j.clim.2014.03.016. Epub 2014 Apr 1.
- Marek-Trzonkowska N, Mysliwiec M, Dobyszuk A, Grabowska M, Techmanska I, Juscinska J, Wujtewicz MA, Witkowski P, Mlynarski W, Balcerska A, Mysliwska J, Trzonkowski P. Administration of CD4+CD25highCD127- regulatory T cells preserves beta-cell function in type 1 diabetes in children. Diabetes Care. 2012 Sep;35(9):1817-20. doi: 10.2337/dc12-0038. Epub 2012 Jun 20.
- Miller KM, Foster NC, Beck RW, Bergenstal RM, DuBose SN, DiMeglio LA, Maahs DM, Tamborlane WV; T1D Exchange Clinic Network. Current state of type 1 diabetes treatment in the U.S.: updated data from the T1D Exchange clinic registry. Diabetes Care. 2015 Jun;38(6):971-8. doi: 10.2337/dc15-0078.
- Monti P, Heninger AK, Bonifacio E. Differentiation, expansion, and homeostasis of autoreactive T cells in type 1 diabetes mellitus. Curr Diab Rep. 2009 Apr;9(2):113-8. doi: 10.1007/s11892-009-0020-y.
- Putnam AL, Brusko TM, Lee MR, Liu W, Szot GL, Ghosh T, Atkinson MA, Bluestone JA. Expansion of human regulatory T-cells from patients with type 1 diabetes. Diabetes. 2009 Mar;58(3):652-62. doi: 10.2337/db08-1168. Epub 2008 Dec 15.
- Salomon B, Bluestone JA. Complexities of CD28/B7: CTLA-4 costimulatory pathways in autoimmunity and transplantation. Annu Rev Immunol. 2001;19:225-52. doi: 10.1146/annurev.immunol.19.1.225.
- Sitrin J, Ring A, Garcia KC, Benoist C, Mathis D. Regulatory T cells control NK cells in an insulitic lesion by depriving them of IL-2. J Exp Med. 2013 Jun 3;210(6):1153-65. doi: 10.1084/jem.20122248. Epub 2013 May 6.
- Tang Q, Adams JY, Penaranda C, Melli K, Piaggio E, Sgouroudis E, Piccirillo CA, Salomon BL, Bluestone JA. Central role of defective interleukin-2 production in the triggering of islet autoimmune destruction. Immunity. 2008 May;28(5):687-97. doi: 10.1016/j.immuni.2008.03.016. Epub 2008 May 8.
- Tang Q, Bluestone JA. Regulatory T-cell physiology and application to treat autoimmunity. Immunol Rev. 2006 Aug;212:217-37. doi: 10.1111/j.0105-2896.2006.00421.x.
- Tang Q, Bluestone JA. The Foxp3+ regulatory T cell: a jack of all trades, master of regulation. Nat Immunol. 2008 Mar;9(3):239-44. doi: 10.1038/ni1572.
- Tang Q, Boden EK, Henriksen KJ, Bour-Jordan H, Bi M, Bluestone JA. Distinct roles of CTLA-4 and TGF-beta in CD4+CD25+ regulatory T cell function. Eur J Immunol. 2004 Nov;34(11):2996-3005. doi: 10.1002/eji.200425143.
- Tang Q, Henriksen KJ, Bi M, Finger EB, Szot G, Ye J, Masteller EL, McDevitt H, Bonyhadi M, Bluestone JA. In vitro-expanded antigen-specific regulatory T cells suppress autoimmune diabetes. J Exp Med. 2004 Jun 7;199(11):1455-65. doi: 10.1084/jem.20040139.
- Waldron-Lynch F, Kareclas P, Irons K, Walker NM, Mander A, Wicker LS, Todd JA, Bond S. Rationale and study design of the Adaptive study of IL-2 dose on regulatory T cells in type 1 diabetes (DILT1D): a non-randomised, open label, adaptive dose finding trial. BMJ Open. 2014 Jun 4;4(6):e005559. doi: 10.1136/bmjopen-2014-005559.
- Bluestone JA, Buckner JH, Fitch M, Gitelman SE, Gupta S, Hellerstein MK, Herold KC, Lares A, Lee MR, Li K, Liu W, Long SA, Masiello LM, Nguyen V, Putnam AL, Rieck M, Sayre PH, Tang Q. Type 1 diabetes immunotherapy using polyclonal regulatory T cells. Sci Transl Med. 2015 Nov 25;7(315):315ra189. doi: 10.1126/scitranslmed.aad4134.
- Dong S, Hiam-Galvez KJ, Mowery CT, Herold KC, Gitelman SE, Esensten JH, Liu W, Lares AP, Leinbach AS, Lee M, Nguyen V, Tamaki SJ, Tamaki W, Tamaki CM, Mehdizadeh M, Putnam AL, Spitzer MH, Ye CJ, Tang Q, Bluestone JA. The effect of low-dose IL-2 and Treg adoptive cell therapy in patients with type 1 diabetes. JCI Insight. 2021 Sep 22;6(18). pii: e147474. doi: 10.1172/jci.insight.147474.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Schätzen)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- 16-19632
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .