- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06298266
Zur Bewertung der Sicherheit, Verträglichkeit und Wirksamkeit von Anti-GPRC5D-CD19-CAR-T bei rezidiviertem/refraktärem multiplem Myelom
Klinische Studie zur Bewertung der Sicherheit, Verträglichkeit und anfänglichen Wirksamkeit von Anti-GPRC5D-CD19-CAR-T bei Patienten mit rezidiviertem/refraktärem multiplem Myelom
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Frühphase 1
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Qing Zhang
- Telefonnummer: +86 20 8916 8162
- E-Mail: zhqing@vip.163.com
Studienorte
-
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Guangdong
-
Guangzhou, Guangdong, China, 510317
- Guangdong Second Provincial General Hospital
-
Kontakt:
- Qing Zhang
- Telefonnummer: +862089169186
- E-Mail: zhqing@vip.163.com
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
1. Der Patient oder sein Erziehungsberechtigter versteht die Einverständniserklärung und unterschreibt sie freiwillig. Von ihm wird erwartet, dass er die Nachuntersuchungen und Behandlungen durchführt.
2. Alter zwischen 18 und 75 Jahren, unabhängig vom Geschlecht. 3. Diagnose eines multiplen Myeloms gemäß den IMWG-Diagnosekriterien und GPRC5D-Expression im Knochenmark ist positiv (>10 %).
4. Hat die Behandlung mit mindestens drei verschiedenen Arzneimittelmechanismen (einschließlich Chemotherapie, Proteasom-Inhibitoren, Immunmodulatoren usw.) fehlgeschlagen oder innerhalb von 6 Monaten nach der letzten Behandlung ein Fortschreiten der Krankheit oder ein Rückfall aufgetreten.
5. Messbare Läsionen liegen basierend auf einem der folgenden Kriterien während des Screenings vor: (1) monoklonaler Immunglobulinspiegel (M-Protein) im Serum ≥ 1,0 g/dl; (2) M-Protein-Spiegel im Urin ≥200 mg/24 Stunden; (3) Diagnose: Multiples Myelom der leichten Kette ohne messbare Läsionen im Serum oder Urin: freie leichte Kette im Serum ≥ 10 mg/dl und abnormales κ/γ-Verhältnis der freien leichten Kette im Serum.
6. Der Patient hat sich von den mit der vorherigen Behandlung verbundenen Toxizitäten erholt, d. h. CTCAE-Toxizitätsgrad <2 (es sei denn, die Anomalie steht im Zusammenhang mit dem Tumor oder ist stabil, ohne wesentliche Auswirkungen auf die Sicherheit oder Wirksamkeit, wie vom Prüfer festgestellt).
7. ECOG-Leistungsstatus von 0-2 und eine erwartete Überlebenszeit von mehr als 3 Monaten.
8. Angemessene Organfunktion:
- Alanintransaminase (ALT) ≤ 3-fache Obergrenze des Normalwerts (ULN);
- Aspartattransaminase (AST) ≤3-fache ULN;
- Gesamtbilirubin ≤1,5-fache ULN;
- Serumkreatinin ≤ 1,5-faches ULN oder Kreatinin-Clearance ≥ 60 ml/min;
- Sauerstoffsättigung in Innenräumen ≥92 %;
- Linksventrikuläre Ejektionsfraktion (LVEF) ≥ 45 %, bestätigt durch Echokardiographie ohne klinisch signifikanten Perikarderguss oder klinisch signifikante Elektrokardiogramm-Befunde;
- Kein klinisch signifikanter Pleuraerguss. 9. Kann den erforderlichen venösen Zugang für die Probenentnahme herstellen, ohne dass Kontraindikationen für die Entnahme weißer Blutkörperchen vorliegen.
Ausschlusskriterien:
1. Bei anderen invasiven bösartigen Tumoren als dem multiplen Myelom wurden Diagnosen gestellt oder solche behandelt.
2. Zuvor erhaltene Antitumorbehandlungen, einschließlich gezielter Therapie, epigenetischer Therapie, experimenteller medikamentöser Therapie oder invasiver experimenteller medizinischer Geräte innerhalb von 14 Tagen oder mindestens 5 Halbwertszeiten (je nachdem, welcher Zeitraum kürzer ist) vor der Sammlung und Vorbereitung von CAR-T-Zellen. Außerdem erhielten sie innerhalb von 21 Tagen eine monoklonale Antikörpertherapie gegen rezidiviertes/refraktäres multiples Myelom, erhielten innerhalb von 14 Tagen eine zytotoxische Therapie, erhielten innerhalb von 14 Tagen eine Proteasom-Inhibitor-Therapie, erhielten innerhalb von 7 Tagen eine Therapie mit immunmodulatorischen Wirkstoffen oder erhielten innerhalb von 14 Tagen eine Strahlentherapie (außer bei Knochen). Markreserven mit Feldbedeckung ≤5 %.
3. Verdacht auf Beteiligung eines multiplen Myeloms im Zentralnervensystem oder in den Hirnhäuten, bestätigt durch MRT oder CT, oder Vorliegen anderer aktiver Erkrankungen des Zentralnervensystems.
4. Zu den Screening-Kriterien gehören Plasmazellleukämie (gemäß Standardklassifizierung Plasmazellen >2,0×109/l), Waldenström-Makroglobulinämie, POEMS-Syndrom (Polyneuropathie, Organomegalie, Endokrinopathie, monoklonales Protein und Hautveränderungen) oder sekundäre AL-Amyloidose.
5. Positiv für Hepatitis-B-Oberflächenantigen (HBsAg) und positiv für HBV-DNA; positiv für Antikörper gegen das Hepatitis-C-Virus (HCV); positiv für Antikörper gegen das humane Immundefizienzvirus (HIV); Cytomegalovirus (CMV) DNA-Testergebnis ≥500 Kopien/ml; positiv auf Syphilistest.
6. Positiv für Hepatitis-C-Virus (HCV)-Antikörper; positiv für Antikörper gegen das humane Immundefizienzvirus (HIV); Cytomegalovirus (CMV) DNA-Testergebnis ≥500 Kopien/ml; positiv auf Syphilistest.
7. Schwere Allergien in der Vorgeschichte, definiert als Reaktionen vom Grad II oder höher, mit klinischen Manifestationen einschließlich Atemwegsobstruktion (laufende Nase, Husten, Keuchen, Atembeschwerden), Tachykardie, Hypotonie, Arrhythmie, gastrointestinale Symptome (Übelkeit, Erbrechen), Harn- oder Stuhlinkontinenz , Kehlkopfödem, Bronchospasmus, Zyanose, Schock, Atem- oder Herzstillstand oder bekannte Allergie gegen einen der in dieser Studie enthaltenen Wirkstoffe, Hilfsstoffe, murinen Produkte oder xenogenen Proteine (einschließlich des CleenRx-Regimes).
8. Schwere Herzerkrankungen, einschließlich, aber nicht beschränkt auf schwere Arrhythmien, instabile Angina pectoris, ausgedehnter Myokardinfarkt, Herzinsuffizienz der Klasse III oder IV der New York Heart Association, Myokardinfarkt innerhalb von 6 Monaten vor Screening oder Koronararterien-Bypass-Transplantation (CABG), ungeklärte Vorgeschichte von Synkopen, die nicht mit vasovagaler Wirkung oder Dehydrierung, schwerer nicht-ischämischer Kardiomyopathie oder unkontrollierter Hypertonie zusammenhängen (definiert als Nichterreichen der Blutdruckziele trotz der Einnahme von ≥3 blutdrucksenkenden Arzneimitteln, einschließlich Diuretika, für ≥1 Monat oder einer wirksamen Blutdruckkontrolle, die ≥4 blutdrucksenkende Arzneimittel erfordert ).
9. Instabile systemische Erkrankungen, einschließlich, aber nicht beschränkt auf schwere Leber-, Nieren- oder Stoffwechselerkrankungen, die Medikamente erfordern.
10. Akute/chronische Graft-versus-Host-Krankheit (GVHD) innerhalb von 6 Monaten vor dem Screening oder bei Patienten, die eine immunsuppressive Therapie gegen GVHD benötigen.
11. Aktive Autoimmunerkrankungen oder entzündliche Erkrankungen des Nervensystems (z. B. Guillain-Barré-Syndrom (GBS), amyotrophe Lateralsklerose (ALS)) und klinisch signifikante aktive zerebrovaskuläre Erkrankungen (z. B. Hirnödem, posteriores reversibles Enzephalopathiesyndrom (PRES)).
12. Vorliegen von Tumornotfällen (z. B. Rückenmarkskompression, Darmverschluss, Leukostase, Tumorlysesyndrom), die während des Screenings oder vor der Zellinfusion eine dringende Behandlung erfordern.
13. Unkontrollierte bakterielle, Pilz-, Virus- oder andere Infektionen, die eine Antibiotikabehandlung erfordern.
14. Hat sich innerhalb von 4 Wochen vor CleenRx einer größeren Operation (ausgenommen diagnostische Operation und Biopsien) unterzogen oder hat während der Studie eine größere Operation geplant oder eine unvollständige Heilung von Operationswunden vor der Einschreibung.
15. Erhaltene (abgeschwächte) Lebendvirusimpfstoffe innerhalb von 4 Wochen vor dem Screening. 16. Vorliegen schwerer psychischer Störungen. 17. Vorgeschichte von Alkohol- oder Drogenmissbrauch. 18. Schwangere oder stillende Frauen sowie weibliche oder männliche Probanden mit Partnern, die innerhalb von 2 Jahren nach der Zellinfusion eine Schwangerschaft planen, und Probanden, die innerhalb von 2 Jahren nach der Zellinfusion schwanger werden möchten. Darüber hinaus können nach Einschätzung des Prüfarztes und/oder nach klinischen Kriterien Patienten mit Kontraindikationen für Studienverfahren oder anderen medizinischen Bedingungen, die sie möglicherweise inakzeptablen Risiken aussetzen, berücksichtigt werden.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: N / A
- Interventionsmodell: Einzelgruppenzuweisung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Experimental: Infusion von GPRC5D-CD19 CAR T-Injektion
Infusion von GPRC5D-CD19-CAR-T-Zellen, Injektion in einer Dosis von 1,0×10^6/kg ±20 % CAR-T,3,0×10^6/kg±20 %,6,0×10^6
/kg±20%.
Verabreichungsmethode: intravenöse Infusion.
Die Probanden werden vor der Zellinfusion mit Fludarabin und Cyclophosphamid behandelt.
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Infusion von GPRC5D-CD19-CAR-T-Zellen, Injektion in einer Dosis von 1,0×10^6/kg ±20 % CAR-T,3,0×10^6/kg±20 %,6,0×10^6
/kg±20%.
Verabreichungsmethode: intravenöse Infusion.
Die Probanden werden vor der Zellinfusion mit Fludarabin und Cyclophosphamid behandelt.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Objektive Rücklaufquote
Zeitfenster: Tag 0, Monat 1,5, Monat 2, Monat 3, Monat 4, Monat 5, Monat 6, Monat 9, Monat 12, Monat 18, Monat 24
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Die Wirksamkeit der Probanden wurde gemäß den IMWG Efficacy Assessment Criteria (Revision 2016) beurteilt.
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Tag 0, Monat 1,5, Monat 2, Monat 3, Monat 4, Monat 5, Monat 6, Monat 9, Monat 12, Monat 18, Monat 24
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Mitarbeiter und Ermittler
Ermittler
- Hauptermittler: Qing Zhang, Doctoral, Guangdong Second Provincial General Hospital
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Dotti G, Gottschalk S, Savoldo B, Brenner MK. Design and development of therapies using chimeric antigen receptor-expressing T cells. Immunol Rev. 2014 Jan;257(1):107-26. doi: 10.1111/imr.12131.
- Munshi NC, Anderson LD Jr, Shah N, Madduri D, Berdeja J, Lonial S, Raje N, Lin Y, Siegel D, Oriol A, Moreau P, Yakoub-Agha I, Delforge M, Cavo M, Einsele H, Goldschmidt H, Weisel K, Rambaldi A, Reece D, Petrocca F, Massaro M, Connarn JN, Kaiser S, Patel P, Huang L, Campbell TB, Hege K, San-Miguel J. Idecabtagene Vicleucel in Relapsed and Refractory Multiple Myeloma. N Engl J Med. 2021 Feb 25;384(8):705-716. doi: 10.1056/NEJMoa2024850.
- Schuster SJ, Bishop MR, Tam CS, Waller EK, Borchmann P, McGuirk JP, Jager U, Jaglowski S, Andreadis C, Westin JR, Fleury I, Bachanova V, Foley SR, Ho PJ, Mielke S, Magenau JM, Holte H, Pantano S, Pacaud LB, Awasthi R, Chu J, Anak O, Salles G, Maziarz RT; JULIET Investigators. Tisagenlecleucel in Adult Relapsed or Refractory Diffuse Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2019 Jan 3;380(1):45-56. doi: 10.1056/NEJMoa1804980. Epub 2018 Dec 1.
- Maude SL, Laetsch TW, Buechner J, Rives S, Boyer M, Bittencourt H, Bader P, Verneris MR, Stefanski HE, Myers GD, Qayed M, De Moerloose B, Hiramatsu H, Schlis K, Davis KL, Martin PL, Nemecek ER, Yanik GA, Peters C, Baruchel A, Boissel N, Mechinaud F, Balduzzi A, Krueger J, June CH, Levine BL, Wood P, Taran T, Leung M, Mueller KT, Zhang Y, Sen K, Lebwohl D, Pulsipher MA, Grupp SA. Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with B-Cell Lymphoblastic Leukemia. N Engl J Med. 2018 Feb 1;378(5):439-448. doi: 10.1056/NEJMoa1709866.
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- Benmebarek MR, Karches CH, Cadilha BL, Lesch S, Endres S, Kobold S. Killing Mechanisms of Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cells. Int J Mol Sci. 2019 Mar 14;20(6):1283. doi: 10.3390/ijms20061283.
- Harris DT, Kranz DM. Adoptive T Cell Therapies: A Comparison of T Cell Receptors and Chimeric Antigen Receptors. Trends Pharmacol Sci. 2016 Mar;37(3):220-230. doi: 10.1016/j.tips.2015.11.004. Epub 2015 Dec 17.
- Srivastava S, Riddell SR. Engineering CAR-T cells: Design concepts. Trends Immunol. 2015 Aug;36(8):494-502. doi: 10.1016/j.it.2015.06.004. Epub 2015 Jul 11.
- Neelapu SS, Locke FL, Bartlett NL, Lekakis LJ, Miklos DB, Jacobson CA, Braunschweig I, Oluwole OO, Siddiqi T, Lin Y, Timmerman JM, Stiff PJ, Friedberg JW, Flinn IW, Goy A, Hill BT, Smith MR, Deol A, Farooq U, McSweeney P, Munoz J, Avivi I, Castro JE, Westin JR, Chavez JC, Ghobadi A, Komanduri KV, Levy R, Jacobsen ED, Witzig TE, Reagan P, Bot A, Rossi J, Navale L, Jiang Y, Aycock J, Elias M, Chang D, Wiezorek J, Go WY. Axicabtagene Ciloleucel CAR T-Cell Therapy in Refractory Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2017 Dec 28;377(26):2531-2544. doi: 10.1056/NEJMoa1707447. Epub 2017 Dec 10.
- Rodriguez-Lobato LG, Ganzetti M, Fernandez de Larrea C, Hudecek M, Einsele H, Danhof S. CAR T-Cells in Multiple Myeloma: State of the Art and Future Directions. Front Oncol. 2020 Jul 28;10:1243. doi: 10.3389/fonc.2020.01243. eCollection 2020.
- Rabinowich H, Pricop L, Herberman RB, Whiteside TL. Expression and function of CD7 molecule on human natural killer cells. J Immunol. 1994 Jan 15;152(2):517-26.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Geschätzt)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
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Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
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- Hämorrhagische Störungen
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- Bluteiweißstörungen
- Multiples Myelom
- Neubildungen, Plasmazelle
Andere Studien-ID-Nummern
- GD2H-XYK-001
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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