Impacto del baño diario con clorhexidina en el paciente crítico

Introducción:

La búsqueda de medidas preventivas con baños diarios con clorhexidina en el paciente crítico se traducirá en una reducción de la colonización del paciente con patógenos multirresistentes. Previniendo así las infecciones asociadas a la asistencia sanitaria. El objetivo de este estudio fue determinar el impacto del baño diario con clorhexidina en la colonización de pacientes, medio ambiente y trabajadores de la salud en la unidad de cuidados intensivos médicos (UCI).

Entorno:

El estudio se realizará en el Hospital Universitario “Dr. José Eleuterio González", un hospital universitario de 450 camas en Monterrey, noreste de México. El hospital tiene un promedio de 22 a 23 mil egresos anuales con una UTI de 20 camas y 15 camas para adultos y pacientes pediátricos/neonatales, respectivamente.

Diseño y métodos:

Este es un estudio prospectivo, experimental, aleatorizado, abierto y doble ciego que compara clorhexidina versus placebo. La aleatorización ocurrirá 1:1 y los pacientes serán divididos en dos grupos. El grupo de clorhexidina recibirá baños diarios con toallitas de clorhexidina al 2% de concentración (CLORHEXI-WIPES ONE-STEP, G70 Antisepsis, León, México), más spray bucal con clorhidrato de clorhexidina al 0.12%. Para el lavado del cuero cabelludo se aplicará un champú de clorhexidina al 0,12% de concentración. El grupo de placebo recibirá toallitas húmedas con los mismos componentes que el brazo n.° 1 más una aplicación de aerosol oral con los mismos componentes excepto la clorhexidina. Para el cuero cabelludo se utilizará un champú estándar. Estos productos tendrán las mismas etiquetas y el mismo olor que los productos del primer brazo.

Se incluirá cualquier paciente de 18 años o más ingresado en la UCIM o con menos de 48 horas de paciente-día. Pacientes que presenten quemaduras con más del 20% de superficie corporal, pacientes embarazadas y pacientes con antecedentes de alergia a la clorhexidina. Los pacientes incluidos que desarrollen erupción cutánea o prurito después de los baños de clorhexidina, serán eliminados del estudio.

Dos semanas antes del inicio del estudio, el personal de la UCIM recibirá capacitación teórica y práctica, donde se le enseñará la técnica del baño. Se registrará la asistencia del personal y se vigilarán las habilidades durante la intervención.

Técnica de baño:

Antes de usar, los paquetes de toallitas deberán calentarse en un microondas convencional durante 10 a 12 segundos, según las instrucciones del proveedor. Con el uso de globos se cubrirá toda la superficie de la piel desde la región mandibular hasta los pies, evitando el contacto con mucosas como la anal, nasal o uretral. Se implementará un movimiento circular durante el baño.

Para la región facial y genital se permitirán toallitas o apósitos húmedos. La región facial y genital será la primera en limpiar. Se realizarán enjuagues bucales con solución oral en spray, procurando impregnar adecuadamente mejillas, paladar, faringe y lengua, dejando reposar la solución durante un minuto antes de retirarla.

Se utilizará una toallita para el cuello y los hombros; utilizando un lado de la toallita para la región anatómica anterior y el otro lado para la región posterior. Se utilizará una toallita para cada miembro (4 en total), utilizando un lado para la región anterior y el lado posterior para la región posterior. Se destinará una toallita a los glúteos y región perianal, evitando la región anal. Se utilizará una toallita para el torso, una para la región dorsal, una para los pies y se reservará una de repuesto. Para el lavado del cuero cabelludo se aplicará espuma de champú con movimientos circulares, tratando de cubrir toda la superficie del cuero cabelludo, se retirará el exceso con una toalla seca.

Muestreo:

Se obtendrán muestras del paciente y del entorno. Se tomarán muestras del entorno (barandilla de la cama, ventilador mecánico, mesa adyacente a la cama, etc.) y de la región anogenital y faríngea del paciente con la técnica de "swabbing" con hisopos de algodón y se cultivarán de acuerdo con Public Health England.

La muestra de piel del paciente se obtendrá de la región anorrectal, faringe, axila y pliegue inguinal recolectados con la técnica de Williamson-Kligman; delimitando un área de 3 cm2 y posterior aplicación de 1 ml de solución ionizada, luego se procede a raspar suavemente el área con una espátula estéril. Luego, este líquido se recupera con una pipeta y se cultiva directamente en una placa de agar sangre. Las colonias serán luego seleccionadas y cultivadas apropiadamente de acuerdo a sus características.

También se obtendrán muestras del personal sanitario de faringe, piel y manos. Todas estas muestras se recogerán el día de ingreso en la UCIM, las primeras 72 horas, el día 10 y una vez por semana hasta el alta del paciente. En el caso de trabajadores sanitarios, se recogerá al finalizar su jornada laboral.

Procesamiento de aislamiento:

Las muestras se cultivarán utilizando métodos convencionales: de medios primarios, se tomarán colonias por separado y se colocarán en un caldo de Brucella con 15% de glicerol. A continuación, las muestras se congelarán a -80ºC.

Al procesar aislados, se utilizarán métodos convencionales de identificación fenotípica. A partir de las pruebas de aislamiento primario, se seleccionarán las pruebas bioquímicas correspondientes para la identificación de cada especie. Cuando las pruebas fenotípicas no alcancen la identificación del aislado, se utilizarán pruebas de base molecular y amplificación génica.

La susceptibilidad a los antimicrobianos se evaluará mediante el método de microdilución en caldo y de acuerdo con los protocolos M07-A10 y M100-S25 de las pautas del Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) y se procesará mediante un sistema automatizado (SensititreAris 2X).

Relación clonal del patógeno Para la relación clonal, se utilizará la electroforesis en gel de campo pulsado. El patrón de bandas se analizará visualmente de acuerdo con los criterios de Tenover. Los datos obtenidos serán analizados con software estadístico. Se obtendrá la amplificación del gen de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para analizar los patrones de resistencia a los antibióticos para cada especie.

Producción de biopelículas de patógenos:

La producción de biopelícula se determinará mediante tinción con cristal violeta y se obtendrá un índice de biopelícula mediante espectrofotometría.

Susceptibilidad del patógeno a la clorhexidina:

Para la determinación de la concentración inhibitoria mínima (CMI) a clorhexidina se aplicará el método de dilución en agar según protocolo M07-A9 y M100-S20 de las guías del CLSI. Los aislamientos con valores de MIC de ≥90 se denotarán con susceptibilidad reducida a dicho desinfectante.

Datos clínicos y seguimiento:

Los datos demográficos y clínicos se recopilarán desde el ingreso, durante la hospitalización y el alta. Variables como ingreso hospitalario previo en el último año, cirugías previas, antecedente de infección por patógenos resistentes, días de estancia hospitalaria, instrumentación (uso de sonda de foley, ventilación mecánica o catéter venoso central) y evolución clínica evaluada por Fisiología Aguda y Salud Crónica Evaluación (APACHE-II) y Escala de Evaluación de Síntomas Positivos (SAPS).

Los hisopos de cultivos positivos obtenidos de trabajadores de la salud con patógenos resistentes se procederá con el refuerzo de la higiene de manos y el refuerzo en la protección universal (guantes, mascarilla, etc.). Si se obtiene un cultivo positivo de Staphylococcus aureus resistente a la meticilina (MRSA), se administrará tratamiento con mupirocina intranasal durante 5 días hasta que se logre un cultivo negativo.

La vigilancia y el seguimiento de rutina del equipo de Epidemiología del hospital continuarán durante todo el período de estudio. La tasa de infecciones asociadas a la atención médica se comparará antes, durante y después de la intervención. La vigilancia de las infecciones asociadas a la atención médica seguirá las pautas del Centro para el Control de Enfermedades (CDC).