Impacto do Banho Diário com Clorexidina no Paciente Crítico

Introdução:

A busca por medida preventiva com banho diário com clorexidina no paciente crítico resultará na redução da colonização do paciente por patógenos multirresistentes. Assim, prevenindo infecções relacionadas à assistência à saúde. O objetivo deste estudo foi determinar o impacto do banho diário com clorexidina na colonização do paciente, ambiente e profissionais de saúde na unidade de terapia intensiva (UTI).

Configuração:

O estudo será realizado no Hospital Universitário "Dr. José Eleuterio González", um hospital universitário com 450 leitos em Monterrey, nordeste do México. O hospital tem uma média de 22 a 23 mil altas anuais com 20 leitos e 15 leitos de UTI para pacientes adultos e pediátricos/neonatais, respectivamente.

Projeto e métodos:

Este é um estudo prospectivo, experimental, randomizado, aberto e duplo-cego comparando clorexidina versus placebo. A randomização ocorrerá 1:1 e os pacientes serão divididos em dois grupos. O grupo clorexidina receberá banhos diários com lenços de clorexidina na concentração de 2% (CLORHEXI-WIPES ONE-STEP, G70 Antisepsis, León, México), além de spray oral com cloridrato de clorexidina a 0,12%. Para a lavagem do couro cabeludo será aplicado xampu de clorexidina na concentração de 0,12%. O grupo placebo receberá lenços umedecidos com os mesmos componentes do braço nº 1, mais uma aplicação de spray oral com os mesmos componentes, exceto clorexidina. Para o couro cabeludo, será usado um xampu padrão. Esses produtos terão os mesmos rótulos e cheiros dos produtos do primeiro braço.

Qualquer paciente com 18 anos ou mais internado na MICU ou com menos de 48 horas de paciente-dia será incluído. Pacientes que apresentam queimaduras com mais de 20% de superfície corporal, gestantes e pacientes com histórico de alergia à clorexidina. Os pacientes incluídos que desenvolverem erupção cutânea ou prurido após banhos de clorexidina serão eliminados do estudo.

Duas semanas antes do início do estudo, o pessoal da MICU receberá treinamento teórico e prático, onde será ensinada a técnica de banho. A presença do pessoal será registrada e as habilidades serão monitoradas durante a intervenção.

Técnica de banho:

Antes do uso, os pacotes de lenços precisam ser aquecidos em micro-ondas convencional por 10 a 12 segundos, sob as instruções do provedor. Com o uso dos globos, toda a superfície da pele será coberta desde a região mandibular até os pés, evitando o contato com mucosas como as anais, nasais ou uretrais. Um movimento circular será implementado durante o banho.

Para a região facial e genital, serão permitidos lenços umedecidos ou curativos úmidos. A região facial e genital serão as primeiras a serem limpas. Serão realizados bochechos com solução oral em spray, procurando impregnar adequadamente as bochechas, palato, faringe e língua, deixando a solução agir por um minuto antes de retirá-la.

Uma toalha será usada para o pescoço e ombros; utilizando um lado do lenço para a região anatômica anterior e outro lado para a região posterior. Será utilizado um lenço para cada membro (4 no total), sendo um lado para a região anterior e o dorso para a região posterior. Uma limpeza será designada para as nádegas e região perianal, evitando a região anal. Será utilizado um lenço para o tronco, um para a região dorsal, um para os pés e um será reservado para sobrar. Para a lavagem do couro cabeludo, a espuma do xampu será aplicada em movimentos circulares, tentando cobrir toda a superfície do couro cabeludo, o excesso será retirado com uma toalha seca.

Amostragem:

As amostras serão obtidas do paciente e do ambiente. Amostras do ambiente (barra da cama, ventilador mecânico, mesa adjacente à cama, etc.) e da região anogenital e faríngea do paciente serão coletadas com a técnica de "swabbing" usando cotonetes e cultivadas de acordo com a Public Health England.

Amostras de pele do paciente serão obtidas da região anorretal, faringe, prega axilar e inguinal coletadas pela técnica de Williamson-Kligman; delimitando uma área de 3 cm2 e posterior aplicação de 1 ml de solução não unificada, em seguida proceder a raspagem suave da área com espátula estéril. Este líquido é então recuperado com uma pipeta e cultivado diretamente em uma placa de ágar sangue. As colônias serão posteriormente selecionadas e devidamente cultivadas de acordo com suas características.

Amostras dos profissionais de saúde também serão obtidas da faringe, pele e mãos. Todas essas amostras serão coletadas no dia da admissão na UTIM, primeiras 72 horas, 10º dia e uma vez por semana até a alta do paciente. No caso dos profissionais de saúde, será recolhido ao final da jornada de trabalho.

Processamento isolado:

As amostras serão cultivadas por métodos convencionais: do prime media, as colônias serão retiradas separadamente e colocadas em caldo Brucella com 15% de glicerol. As amostras serão então congeladas a -80ºC.

No processamento dos isolados serão utilizados métodos convencionais de identificação fenotípica. A partir dos testes de isolados primários, serão selecionados os testes bioquímicos correspondentes para a identificação de cada espécie. Quando os testes fenotípicos não atingirem a identificação do isolado, serão utilizados testes de base molecular e amplificação gênica.

A suscetibilidade antimicrobiana será avaliada pelo método de microdiluição em caldo e de acordo com os protocolos M07-A10 e M100-S25 das diretrizes do Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) e processada por um sistema automatizado (SensititreAris 2X).

Relação clonal do patógeno Para relação clonal, será utilizada a eletroforese em gel de campo pulsado. O padrão da banda será analisado visualmente de acordo com os critérios de Tenover. Os dados obtidos serão analisados ​​com software estatístico. A amplificação do gene da reação em cadeia da polimerase (PCR) será obtida para analisar os padrões de resistência a antibióticos para cada espécie.

Produção de biofilme patogênico:

A produção de biofilme será determinada por coloração com cristal violeta e um índice de biofilme será obtido por espectrofotometria.

Suscetibilidade do patógeno à clorexidina:

Para a determinação da concentração inibitória mínima (MIC) para clorexidina, será aplicado o método de diluição em ágar de acordo com o protocolo M07-A9 y M100-S20 nas diretrizes do CLSI. Isolados com valores de MIC ≥90 serão denotados com suscetibilidade reduzida a tal desinfetante.

Dados clínicos e acompanhamento:

Dados demográficos e clínicos serão coletados desde a admissão, durante toda a internação e alta. Variáveis ​​como internação hospitalar anterior no ano anterior, cirurgias anteriores, história de infecção por patógenos resistentes, dias de internação, instrumentação (uso de cateter de foley, ventilação mecânica ou cateter venoso central) e evolução clínica avaliada pela Fisiologia Aguda e Saúde Crônica Avaliação (APACHE-II) e Escala de Avaliação de Sintomas Positivos (SAPS).

Os swabs de cultura positiva obtidos de profissionais de saúde com patógenos resistentes prosseguirão com o reforço da higiene das mãos e o fortalecimento da proteção universal (luvas, máscara facial, etc.). Se uma cultura positiva de Staphylococcus aureus resistente à meticilina (MRSA) for obtida, o tratamento com mupirocina intranasal será administrado por 5 dias até que uma cultura negativa seja alcançada.

A vigilância e monitoramento de rotina da equipe de Epidemiologia do Hospital continuarão durante todo o período do estudo. A taxa de infecções associadas aos cuidados de saúde será comparada antes, durante e após a intervenção. A vigilância de infecções associadas à assistência médica seguirá as diretrizes do Centro de Controle de Doenças (CDC).