- ICH GCP
- Yhdysvaltain kliinisten tutkimusten rekisteri
- Kliininen tutkimus NCT05190016
Multiplex BangasureTM RT-PCR Kitin tehokkuus COVID-19:n havaitsemiseen (COVID-19)
Multiplex BangasureTM RT-PCR -sarjan kehittäminen SARS-Corona Virus-2:n havaitsemiseen
Vakavan akuutin hengitystieoireyhtymän (SARS) koronaviruksen (CoV)-2:n puhkeaminen lisääntyy edelleen maailmanlaajuisesti. Koronavirustaudin 2019 (COVID-19) leviämisen hallitsemiseksi diagnoosi on erittäin tärkeä askel, joka auttaisi karanteeniprosessissa, tartunnan saaneen henkilön eristämisessä ja myös kontaktien jäljittämisessä. Eri tekniikoiden joukossa reaaliaikaista käänteistranskriptiopolymeraasiketjureaktiota (rRT-PCR) käytetään enimmäkseen, ja sitä pidetään kultaisena standardimenetelmänä viruksen nukleiinihappojen havaitsemisessa Maailman terveysjärjestön (WHO) ja Center for Diseases Control (CDC), USA:n mukaan. Mahdolliset vääriä negatiiviset ja vääriä positiiviset tulokset aiheuttavat kuitenkin harhaanjohtavia seurauksia, minkä vuoksi olemassa olevia menetelmiä on parannettava. Siksi tutkijat tarvitsevat vankan ja luotettavan PCR-sarjan SARS-CoV-2-viruksen erilaisten muunnelmien havaitsemiseksi, jotta voidaan vähentää sen tarttuvuutta ja tehdä ennaltaehkäisevä hoitosuunnitelma. Sen lisäksi, että hallitakseen lisääntyvää testausmäärää, tutkijat ovat enimmäkseen riippuvaisia tuodusta testisarjasta, joka näyttää olevan erittäin vaikeaa tässä pandemiatilanteessa ja kallista. Tästä syystä SARS-CoV-2-viruksen virulenssi voi muuttua nopeasti mutaation vuoksi ja maasta tulee hot spot, joten geenien havaitsemis-RT-PCR-pakkaus vaatii aikaa. Tästä näkökulmasta tutkijan tavoitteena on kehittää validoitu multiplex rRT-PCR kvalitatiivinen diagnostinen menetelmä, joka kohdistuu kahteen virusgeeniin E (vaippaproteiini), N (nukleokapsidigeeni, CDC, USA:n ohjeiden mukaan RT-PCR:n kehittämiseksi pakkauksen ja yhden ihmisen RNaasi P -geenin sisäisenä kontrollina samanaikaisesti.
Tämä on tapauskontrollitutkimus, jossa analysoidaan 120 näytettä (60 COVID-19-positiivista ja 60 COVID-19-negatiivista sekä tuoretta että pakastettua) Institute of Epidemiology, Disease Control and Research (IEDCR) -tutkimuksesta. Tämä näyte sokennetaan ennen toimittamista NILMRC/Contact ROL/ Bangladesh Clinical Trail Limited (BCTL), Dhaka, Bangladesh for Bangladesh Reference Institute for Chemical Measurements (BRiCM) RT-PCR Kit -sarjaan. Vaadittu sisäinen validointi suoritetaan myös Kansainvälisen harmonisointineuvoston (ICH) ja FDA:n ohjeiden mukaisesti, ja myös ulkoinen validointi suoritetaan eri pääjohtajan terveyspalveluissa (DGHS), Bangladeshin hyväksymässä COVID-19-diagnostiikkalaboratoriossa. Tiedot analysoidaan tietokoneella Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) -ohjelmistolla ja esitetään taajuustaulukkoon, kaavioon ja kaavioon vaatimusten mukaisesti.
Tutkimuksen yleiskatsaus
Tila
Ehdot
Yksityiskohtainen kuvaus
Esittely:
Koronaviruksen COVID-19 pandemia on aikamme määrittelevä globaali terveyskriisi ja suurin haaste, joka on kohdattu toisen maailmansodan jälkeen. Pandemia on paljon enemmän kuin terveyskriisi; se on myös ennennäkemätön sosioekonominen kriisi. Sen jälkeen kun virus on tunnistettu Wuhanin alueella Kiinassa, virus ei ole vain levinnyt 213 maahan/alueelle 209 miljoonalla tapauksella ja 4,39 miljoonalla maailmanlaajuisesti, vaan se voi myös saada 400 miljoonaa ihmistä työttömäksi Kansainvälisen työjärjestön arvion mukaan.
Taudin leviämisen hillitsemiseksi eri puolilla maailmaa on käynnistetty monialaisia strategioita, joihin kuuluu sosiaalisen etäisyyden toteuttaminen, henkilökohtaisen hygienian ylläpitäminen, kontaktien jäljitys sekä karanteenin, matkustusrajoitusten ja sulkujen toteuttaminen. Laajalti hyväksytty menetelmä on SARS-CoV-2-testaus, jossa käytetään tyypillisesti nenänielun vanupuikkonäytteitä. Positiivisiksi todetut potilaat tarvitsevat asianmukaista kliinistä hoitoa joko tehokkaalla eristyksellä tai karanteenilla kotona lievien oireiden vuoksi tai terveydenhuollon tiloissa keskivaikeiden tai vaikeiden oireiden vuoksi. Lisäksi laajamittaiset testaukset tarjoavat enemmän informatiivista epidemiologista tietoa tautien seurantaa ja valvontaa koskevien toimintatapojen laatimiseen. SARS-CoV-2-viruksen havaitsemiseksi nenänielun nesteistä on ehdotettu monia lähestymistapoja, kuten multipleksinen RT-PCR, CRISPR/Cas12 ja CRISPR-Cas3, lateraalivirtaus-immunomääritys, paperipohjaiset bimolekyylisensorit, SHERLOCK-testaus yhdessä astiassa, DNA-aptameeri , silmukkavälitteinen isoterminen vahvistus (LAMP) jne. Näistä menetelmistä nukleiinihappomonistukseen perustuvat testit ovat yleisimpiä SARS-CoV-2:n diagnosoinnissa.
Lisäksi US CDC ehdottaa protokollaa SARS-CoV-2:n havaitsemiseksi, joka perustuu nukleokapsidigeenin kahden alueen, nimittäin N1:n ja N2:n, ja ihmisen sisäisen kontrolligeenin RNaasi P:n (RP) monistamiseen. Näiden strategioiden lisäksi ponnistelut SARS-CoV-2:n havaitsemismenetelmien kehittämiseksi korkean tehokkuuden ja tarkkuuden sekä pienemmällä reaktioajalla ja vaivalla ovat edelleen käynnissä.
Vaikka testausta pidetäänkin SARS CoV-2 -havainnon kultaisena standardina, testaus on jäänyt jälkeen monissa maissa useiden tekijöiden vuoksi, joista tärkeimpiä ovat toimitusketjuun liittyvät ongelmat, jotka liittyvät reagenssien ja riittävien testisarjojen puutteeseen. Siksi monet potilaat (sekä oireettomat että oireettomat) jäävät testaamatta ja voivat siten edistää viruksen leviämistä yhteisössä.
Jos Bangladesh pystyy valmistamaan omia RT-PCR-pakkauksia, joiden laatu ei ole huonompi herkkyyden, spesifisyyden jne. suhteen, se lieventäisi RT-PCR-sarjan pulaa, koska tutkijat ovat täysin riippuvaisia tuoduista testisarjoista ja säästävät myös ulkomaan valuuttaa. Lisäksi RT-PCR-testisarjat ovat erittäin herkkiä lämpötilalle, ja niiden on säilytettävä kylmäketju sen laadun vuoksi, mitä voidaan lieventää kehittämällä paikallista RT PCR -pakkausta. Lisäksi monia SARS-CoV-2-variantteja on kehitetty mutaation vuoksi, joka on osoittanut enemmän virulenssia ja korkeaa siirtymisnopeutta. Joten uuden RT PCR -sarjan kehittäminen, joka pystyy havaitsemaan uudemman kannan, voi olla erittäin hyödyllistä.
Joten tässä tutkijan tavoitteena on kehittää kolmen geenin tunnistettavissa oleva vankka RT-PCR-sarja, joka on maa ensimmäinen ja antaa luotettavan tuloksen SARS-CoV-2-viruksen erilaisista varianteista sen tarttuvuuden vähentämiseksi ja ennaltaehkäisevän hoitosuunnitelman toteuttamiseksi 2. Tavoitteet tutkimus:
- Yleiset tavoitteet: Ensisijaisina tavoitteina on kehittää multiplex reaaliaikainen käänteistranskriptiopolymeraasiketjureaktio (rRT-PCR) SARS-CoV-2:n havaitsemiseksi.
Toissijaiset tavoitteet: Parhaan RT-PCR-suorituskyvyn saavuttamiseksi E- ja N-geenikohteiden yhdistelmä tulisi optimoida.
3. Menetelmät: 3.1. Tutkimuksen tyyppi ja tarkoitus: Tämä on tapauskontrolli- ja havainnointitutkimus, jossa tunnistetaan ja verrataan kaksi olemassa olevaa jäädytettyä ja tuoretta näytettä.
3.2. Opiskelupaikka:
- Institute Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR)
- NEITI. Clinical Research Organisation Oy 3.3. Näytteiden keräyssivusto(t):
- Institute Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR) tai
- National Institute of Laboratory Medicine & Referral Center (NILMRC), Dhaka, Bangladesh.
3.4. Opintojen kesto: • 3 kuukautta (marraskuusta 2021 tammikuuhun 2022) Bangladeshin lääketieteellisen tutkimusneuvoston eettisen hyväksynnän saamisen jälkeen.
3.5. Tutkimuspopulaatio/näytteen valinta 3.5.1 CRO saa testausnäytteet IEDCR:ltä. IEDCR:llä ja BCTL/CROL:lla CRO:na on yhteisymmärryspöytäkirja (MoU) erilaisista tutkimusyhteistyöstä. Joten NILMRC/BCTL/CROL saa yhteensä 120 näytettä IEDCR:ltä RT-PCR-sarjan tehokkuuden arvioimiseksi. 120 näytteestä 60 säilytetään näytettä (30 tunnettua COVID-19-positiivista ja 30 COVID-19-negatiivista näytettä), joita on säilytetty -80°C:n laboratoriopakastimissa IEDCR:n tiloissa, ja vielä 60 tuoretta näytettä (30 COVID-19-positiivista näytettä). ja 30 COVID-19-negatiivista näytettä), joita testataan IEDCR:ssä. Näytteet, joiden tulokset ovat ristiriitaisia, hylätään ennen testausta BRiCM RT PCR -sarjalla. Toisin sanoen yli 120 tunnistettua näytettä IEDCR:stä saatetaan tarvita analysoitavaksi tuoduilla RT-PCR-sarjoilla ja uuttosarjalla BCTL/CROL:ssa. Näin 120 näytettä valitaan BRiCM RT-PCR -sarjan suorituskyvyn arviointiin.
3.5.2 Puolueettomuuden ja eturistiriitojen välttämiseksi sponsori ja PI/apututkijat sokennetaan näytteiden tunnistetiedot ja näytteiden positiivinen/negatiivinen tila ja potilaiden kliiniset tiedot. Sekä tallennettujen että tuoreiden näytteiden positiivinen/negatiivinen tila tunnistetaan IEDCR:ssä ennen lähettämistä BCTL/CROLiin. Toisin sanoen BCTL/CROL-henkilöstö sokkoutuu näytteen henkilöllisyystodistuksesta (ID) ja positiivisesta negatiivisesta/negatiivinen tilasta ennen analysointia. Lopuksi CRO-johtaja lähettää suorituskyvyn arviointitodistuksen PI:lle tai sponsorille.
3.5.3. Otoskoon tilastollinen peruste:
Kaavat:
Tutkimus suoritetaan 120 osallistujalla (60 tallennettua tunnettua positiivista ja negatiivista ja 60 tuoretta tunnettua positiivista ja negatiivista). Halutun absoluuttisen tarkkuuden (n) saavuttamiseksi RT-PCR:n tehokkuuden arvioinnissa pienin näytekoko on arvioitu noudattamalla diskreettiä Bernoullin todennäköisyysfunktiota seuraavasti:
Alfa = 5 % D = absoluuttinen tarkkuus (%) 95 % varmuudella. Haluttu absoluuttinen tarkkuus n D Alfa=5 % Z=1,96 10 30,99 % n D= (1,96)/(2* neliöjuuri (SQRT) (n)) 20 21,91 % 100 9,80 % 30 17,89 % 9420 8.0. 6,93 % 300 5,66 % 400 4,90 % 1000 3,10 % 10 000 0,98 % 20 000 0,69 % 30 000 0,57 % 100 000 0,3 % 3,6 näytteen valintakriteerit: CVID-arvo ≥ 3,6 näytteen valintakriteerit 1 RT 3-5-3. IEDCR:n geenit valitaan COVID-19-positiivisiksi. Näytteet, joiden RT-PCR-tulokset ovat negatiivisia ja jotka eivät ole monistaneet COVID-19-geenejä IEDCR:ssä, valitaan COVID-19:ksi.
- Sukupuoli: Kaikki
- Ikä: 5-70 vuotta (lapsi, aikuinen, vanhempi aikuinen) 7.8.2. Poissulkemiskriteerit
- Näytteet, joiden RT-PCR-tulokset ovat epäselviä/epäselviä sigmoidikäyrän ja Ct-arvon suhteen, jätetään pois.
Potilaiden suostumusta ei vaadita, koska CRO vastaanottaa näytteet IEDCR:ltä IEDCR:n kanssa tehdyn MOU:n mukaisesti. CRO:n puolelta ei siis vaadita potilaan ilmoittautumista, suostumuksia ja CRF:ää.
3.7 Tiedonkeruumenettely: COVID-19-positiiviset näytteet vahvistetaan viruksen RNA:n positiivisilla RT-PCR-tuloksilla.
3.8 Tietojen analyysi: BRiCM COVID-19 -reaaliaikaisen RT-PCR-sarjan herkkyys, spesifisyys, positiivinen ennustearvo ja negatiivinen ennustearvo määritetään. Khin-neliötesti (kaksipuolinen) suoritetaan kategoristen muuttujien vertailua varten. P-arvoa ≤0,05 pidetään merkittävän assosioinnin tasona. Herkkyyden, spesifisyyden, positiivisen ennustusarvon ja negatiivisen ennustusarvon ohella lasketaan myös Kappa-kerroin, positiivinen todennäköisyyssuhde ja negatiivinen todennäköisyyssuhde.
3.9 Tietokanta on suojattu luvattomalta käytöltä vahvistetuin turvamenetelmin. Tietokannasta ja siihen liittyvistä ohjelmistotiedostoista on säilytettävä asianmukaiset varmuuskopiot. Tietokannan ylläpitäjä varmuuskopioi tietokannat tietokannan päivitysten tai muutosten yhteydessä.
3.10 Tutkijan on asetettava tutkimustiedot monitorin ja valtuutettujen edustajien saataville. Tutkijan tulee toimittaa päätutkijalle kolmen kuukauden välein välitutkimusraportti, jossa on tiedot. Vaatimuksen mukaan tutkimusraportti ja tiedot voidaan toimittaa Bangladeshin lääketieteellisen tutkimuksen neuvostolle (BMRC) ja lääkehallinnon pääosastolle (DGDA). Tutkijan on varmistettava lähdeasiakirjojen luotettavuus ja saatavuus.
3.11 Seurantakäyntejä tekevät päätutkija, apututkija sekä edustajat Good Clinical Practice (GCP) -ohjeiden mukaisesti.
3.12 Aiheen luottamuksellisuuden säilyttämiseksi vain paikan numero, aihenumero ja aiheen nimikirjaimet tunnistavat kaikki tutkittavat kohteet Case Records Forms (CRF) -lomakkeissa ja muissa tutkijalle toimitetuissa asiakirjoissa. Muita aiheen luottamuksellisuutta koskevia kysymyksiä (tarvittaessa) käsitellään kliinisen tutkimuksen sopimuksessa.
3.13 Kaikki tallenteet pidetään salassa PI:lle, yhteistutkijoille ja sponsorille lukuun ottamatta IEDCR:n vastuuhenkilöitä, jotka ovat vastuussa. Näytteet tunnistetaan koodina/ID-numerona ja päivämääränä IEDCR:ssä ennen lähettämistä BCTL/Contact Research Organization Limited (CROL) 4:lle. Tätä tutkimusta varten mainitulla instituutilla IEDCR/Bangladesh Clinical Trail Limited (BTCL)/CRO Ltd. suorittaa kliinisen tutkimuksen selvittääkseen pakkauksen tehokkuuden olemassa olevien resurssiensa avulla. Tämän lisäksi CRO voi hallita kemikaaleja, reagensseja ja teknologiaa, jos niitä tarvitaan tutkimukseen rahoittajien välisen yhteisymmärryspöytäkirjan mukaisesti.
5. Eturistiriita BRiCM on ehdotetun COVID-19 RT-PCR -sarjan rahoittaja, lakisääteinen elin, joka toimii tiede- ja teknologiaministeriön hallinnollisessa valvonnassa. Se on tutkimusorganisaatio ja referenssilaitos kemiallisten mittausten alalla. Se ei ole kaupallinen yritys eikä voittoa tavoitteleva organisaatio. Perustuslaillisen seuraamuksen mukaan BRiCM:n päävastuu on jatkaa tutkimusta, joka johtaa sellaiseen innovaatioon, joka tuo lisäarvoa hallituksen pyrkimyksiin varmistaa ihmisten hyvinvointi.
Opintotyyppi
Ilmoittautuminen (Todellinen)
Yhteystiedot ja paikat
Opiskelupaikat
-
-
-
Dhaka, Bangladesh, 1212
- Institute for Developing Science and Health Initiatives
-
-
Osallistumiskriteerit
Kelpoisuusvaatimukset
Opintokelpoiset iät
Hyväksyy terveitä vapaaehtoisia
Sukupuolet, jotka voivat opiskella
Näytteenottomenetelmä
Tutkimusväestö
Kuvaus
Sisällyttämiskriteerit:
- Näytteet, joissa on positiivisia RT-PCR-tuloksia, joiden Ct-arvo on ≤35 COVID-19-geeneille IEDCR:ssä, valitaan COVID-19-positiivisiksi.
- Näytteet, joiden RT-PCR-tulokset ovat negatiivisia ja jotka eivät ole monistaneet COVID-19-geenejä IEDCR:ssä, valitaan COVID-19:ksi.
Poissulkemiskriteerit:
- Näytteet, joiden RT-PCR-tulokset ovat epäselviä/epäselviä sigmoidikäyrän ja Ct-arvon suhteen, jätetään pois.
Opintosuunnitelma
Miten tutkimus on suunniteltu?
Suunnittelun yksityiskohdat
Kohortit ja interventiot
Ryhmä/Kohortti |
|---|
|
Tapaukset (nykyinen/tuore)
Tapaukset (nykyiset/tuoreet) määritellään näytteiksi, jotka on testattu positiivisiksi RT-PCR:llä IEDCR:ssä tavallisena seulontaohjelmana ja joita ei ole säilytetty pakastimessa.
|
|
Kotelot (varastoitu)
Tapaukset (varastoidut) määritellään näytteiksi, jotka on testattu positiivisiksi RT-PCR:llä IEDCR:ssä tavallisena seulontaohjelmana ja joita on säilytetty -80 °C:n pakastimessa IEDCR:ssä.
|
|
Ohjaus (nykyinen/tuore)
Kontrolli (nykyinen/tuore) määritellään näytteiksi, jotka on testattu negatiivisiksi RT-PCR:llä IEDCR:ssä tavallisena seulontaohjelmana ja joita ei ole säilytetty pakastimessa.
|
|
Ohjaus (tallennettu)
Kontrollit (varastoidut) määritellään näytteiksi, jotka on testattu negatiivisiksi RT-PCR:llä IEDCR:ssä tavallisena seulontaohjelmana ja jotka on säilytetty -80°C:n pakastimessa IEDCR:ssä.
|
Mitä tutkimuksessa mitataan?
Ensisijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
|---|---|---|
|
BRiCM COVID-19 RT-PCR:n suorituskyvyn arviointi
Aikaikkuna: 1 kuukausi
|
Määritä BRiCM COVID-19 RT-PCR:n suorituskyvyn arviointi uutetulla virus-RNA:lla käyttämällä standardia viruksen RNA:n erotussarjaa SARS-CoV-2-viruksen havaitsemiseen nenänielun vanupuikkonäytteistä, jotka on kerätty valtakunnallisessa COVID-19-seulontaohjelmassa.
RNA:n erottaminen tuoreesta nenänielun pyyhkäisynäytteestä COVID-19-potilaiden viruksenkuljetusalustassa (VTM) IEDCR:stä (30 positiivista ja 30 negatiivista) COVID-19 RNA -näytteiden analyysi RT-PCR:llä.
|
1 kuukausi
|
Toissijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
|---|---|---|
|
Alenna hintaa ja tehosta COVID-19:n havaitsemista BRiCM COVID-19 RT-PCR -sarjan avulla
Aikaikkuna: 1 kuukausi
|
Toimita paikallisesti valmistajan COVID-19 käänteistranskriptiopolymeraasiketjureaktio (RT-PCR) -sarja hallitukselle.
ja yksityiset sairaalat COVID-19-potilaiden diagnosoimiseksi.
RNA-uutto jäädytetystä nenänielun vanupuikkonäytteestä COVID-19-potilaiden viruksenkuljetusväliaineessa (VTM) COVID-19-RNA-näytteiden IEDCR-analyysistä (30 positiivista ja 30 negatiivista) käyttämällä käänteistranskriptiopolymeraasiketjureaktiota (RT-PCR).
|
1 kuukausi
|
Yhteistyökumppanit ja tutkijat
Sponsori
Tutkijat
- Päätutkija: MAMUDUL HASAN RAZU, MSc, Scientific Officer
- Opintojen puheenjohtaja: MD MONIRUZZAMAN, BSc, Senior Scientific Officer
- Opintojen puheenjohtaja: PRANAB KARMAKER, Dr, Senior Scientific Officer
- Opintojen puheenjohtaja: ZABED BIN AHMED, MSc, Senior Scientific Officer
- Opintojen puheenjohtaja: MD IQBAL HOSSAIN, MSc, Scientific Officer
- Opintojen puheenjohtaja: MD FAZLE ALAM RABBI, Dr, Lecturer
Julkaisuja ja hyödyllisiä linkkejä
Yleiset julkaisut
- Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977 Mar;33(1):159-74.
- Bedford J, Enria D, Giesecke J, Heymann DL, Ihekweazu C, Kobinger G, Lane HC, Memish Z, Oh MD, Sall AA, Schuchat A, Ungchusak K, Wieler LH; WHO Strategic and Technical Advisory Group for Infectious Hazards. COVID-19: towards controlling of a pandemic. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1015-1018. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30673-5. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Choi S, Ki M. Estimating the reproductive number and the outbreak size of COVID-19 in Korea. Epidemiol Health. 2020;42:e2020011. doi: 10.4178/epih.e2020011. Epub 2020 Mar 12.
- Ulloa S, Bravo C, Parra B, Ramirez E, Acevedo A, Fasce R, Fernandez J. A simple method for SARS-CoV-2 detection by rRT-PCR without the use of a commercial RNA extraction kit. J Virol Methods. 2020 Nov;285:113960. doi: 10.1016/j.jviromet.2020.113960. Epub 2020 Aug 22.
- Kudo E, Israelow B, Vogels CBF, Lu P, Wyllie AL, Tokuyama M, Venkataraman A, Brackney DE, Ott IM, Petrone ME, Earnest R, Lapidus S, Muenker MC, Moore AJ, Casanovas-Massana A; Yale IMPACT Research Team; Omer SB, Dela Cruz CS, Farhadian SF, Ko AI, Grubaugh ND, Iwasaki A. Detection of SARS-CoV-2 RNA by multiplex RT-qPCR. PLoS Biol. 2020 Oct 7;18(10):e3000867. doi: 10.1371/journal.pbio.3000867. eCollection 2020 Oct.
- Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, Miao X, Streithorst JA, Granados A, Sotomayor-Gonzalez A, Zorn K, Gopez A, Hsu E, Gu W, Miller S, Pan CY, Guevara H, Wadford DA, Chen JS, Chiu CY. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020 Jul;38(7):870-874. doi: 10.1038/s41587-020-0513-4. Epub 2020 Apr 16.
- Ali Z, Aman R, Mahas A, Rao GS, Tehseen M, Marsic T, Salunke R, Subudhi AK, Hala SM, Hamdan SM, Pain A, Alofi FS, Alsomali A, Hashem AM, Khogeer A, Almontashiri NAM, Abedalthagafi M, Hassan N, Mahfouz MM. iSCAN: An RT-LAMP-coupled CRISPR-Cas12 module for rapid, sensitive detection of SARS-CoV-2. Virus Res. 2020 Oct 15;288:198129. doi: 10.1016/j.virusres.2020.198129. Epub 2020 Aug 18.
- Chen Z, Zhang Z, Zhai X, Li Y, Lin L, Zhao H, Bian L, Li P, Yu L, Wu Y, Lin G. Rapid and Sensitive Detection of anti-SARS-CoV-2 IgG, Using Lanthanide-Doped Nanoparticles-Based Lateral Flow Immunoassay. Anal Chem. 2020 May 19;92(10):7226-7231. doi: 10.1021/acs.analchem.0c00784. Epub 2020 May 5.
- Joung J, Ladha A, Saito M, Kim NG, Woolley AE, Segel M, Barretto RPJ, Ranu A, Macrae RK, Faure G, Ioannidi EI, Krajeski RN, Bruneau R, Huang MW, Yu XG, Li JZ, Walker BD, Hung DT, Greninger AL, Jerome KR, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Zhang F. Detection of SARS-CoV-2 with SHERLOCK One-Pot Testing. N Engl J Med. 2020 Oct 8;383(15):1492-1494. doi: 10.1056/NEJMc2026172. Epub 2020 Sep 16. No abstract available.
- Chen Z, Wu Q, Chen J, Ni X, Dai J. A DNA Aptamer Based Method for Detection of SARS-CoV-2 Nucleocapsid Protein. Virol Sin. 2020 Jun;35(3):351-354. doi: 10.1007/s12250-020-00236-z. Epub 2020 May 25. No abstract available.
- Zhen W, Berry GJ. Development of a New Multiplex Real-Time RT-PCR Assay for Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Detection. J Mol Diagn. 2020 Dec;22(12):1367-1372. doi: 10.1016/j.jmoldx.2020.09.004. Epub 2020 Sep 19.
- Khan S, Tombuloglu H, Hassanein SE, Rehman S, Bozkurt A, Cevik E, Abdel-Ghany S, Nabi G, Ali A, Sabit H. Coronavirus diseases 2019: Current biological situation and potential therapeutic perspective. Eur J Pharmacol. 2020 Nov 5;886:173447. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173447. Epub 2020 Aug 5.
- Yan C, Cui J, Huang L, Du B, Chen L, Xue G, Li S, Zhang W, Zhao L, Sun Y, Yao H, Li N, Zhao H, Feng Y, Liu S, Zhang Q, Liu D, Yuan J. Rapid and visual detection of 2019 novel coronavirus (SARS-CoV-2) by a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay. Clin Microbiol Infect. 2020 Jun;26(6):773-779. doi: 10.1016/j.cmi.2020.04.001. Epub 2020 Apr 8.
- Moran A, Beavis KG, Matushek SM, Ciaglia C, Francois N, Tesic V, Love N. Detection of SARS-CoV-2 by Use of the Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2 and Roche cobas SARS-CoV-2 Assays. J Clin Microbiol. 2020 Jul 23;58(8):e00772-20. doi: 10.1128/JCM.00772-20. Print 2020 Jul 23. No abstract available.
Opintojen ennätyspäivät
Opi tärkeimmät päivämäärät
Opiskelun aloitus (Todellinen)
Ensisijainen valmistuminen (Todellinen)
Opintojen valmistuminen (Todellinen)
Opintoihin ilmoittautumispäivät
Ensimmäinen lähetetty
Ensimmäinen toimitettu, joka täytti QC-kriteerit
Ensimmäinen Lähetetty (Todellinen)
Tutkimustietojen päivitykset
Viimeisin päivitys julkaistu (Todellinen)
Viimeisin lähetetty päivitys, joka täytti QC-kriteerit
Viimeksi vahvistettu
Lisää tietoa
Tähän tutkimukseen liittyvät termit
Muita asiaankuuluvia MeSH-ehtoja
Muut tutkimustunnusnumerot
- BANGASURE RT-PCR Kit
Yksittäisten osallistujien tietojen suunnitelma (IPD)
Aiotko jakaa yksittäisten osallistujien tietoja (IPD)?
IPD-suunnitelman kuvaus
Lääke- ja laitetiedot, tutkimusasiakirjat
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää lääkevalmistetta
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää laitetuotetta
Nämä tiedot haettiin suoraan verkkosivustolta clinicaltrials.gov ilman muutoksia. Jos sinulla on pyyntöjä muuttaa, poistaa tai päivittää tutkimustietojasi, ota yhteyttä register@clinicaltrials.gov. Heti kun muutos on otettu käyttöön osoitteessa clinicaltrials.gov, se päivitetään automaattisesti myös verkkosivustollemme .