- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05190016
Skuteczność zestawu Multiplex Bangasure RT-PCR do wykrywania COVID-19 (COVID-19)
Opracowanie zestawu Multiplex BangasureTM RT-PCR do wykrywania SARS-Corona Virus-2
Epidemia wirusa koronowego (CoV)-2 zespołu ciężkiej ostrej niewydolności oddechowej (SARS) stale rośnie na całym świecie. Aby kontrolować transmisję choroby koronawirusowej 2019 (COVID-19), diagnoza jest bardzo ważnym krokiem, który pomoże w procesie kwarantanny, izolacji osoby zakażonej, a także w ustalaniu kontaktów. Wśród różnych technik najczęściej stosowana jest reakcja łańcuchowa polimerazy z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym (rRT-PCR), która jest uważana za złoty standard w wykrywaniu wirusowych kwasów nukleinowych zgodnie ze Światową Organizacją Zdrowia (WHO) i Centrum Kontroli Chorób (CDC), USA. Jednak możliwe wyniki fałszywie ujemne i fałszywie dodatnie powodują mylące konsekwencje, co powoduje konieczność ulepszenia istniejących metod. Badacze potrzebują zatem solidnego i niezawodnego zestawu PCR do wykrywania różnych rodzajów wariantów wirusa SARS-CoV-2 w celu ograniczenia jego przenoszenia i przyjęcia planu zarządzania zapobiegawczego. Poza tym, aby poradzić sobie z rosnącą liczbą testów, badacze są w większości uzależnieni od importowanych zestawów testowych, co wydaje się być bardzo trudne w obecnej sytuacji związanej z pandemią i kosztowne. W związku z tym zjadliwość wirusa SARS-CoV-2 może się szybko zmieniać z powodu mutacji, a kraj staje się gorącym punktem, więc zestaw RT-PCR do wykrywania genów wymaga czasu. Z tego punktu widzenia celem badacza jest opracowanie jakościowej metody diagnostycznej rRT-PCR z walidacją multipleksu, ukierunkowanej na dwa geny wirusowe E (białko otoczki), N (gen nukleokapsydu, zgodnie z wytycznymi CDC, USA dotyczącymi opracowywania RT-PCR zestawu i jednego ludzkiego genu RNazy P jednocześnie jako kontrolę wewnętrzną.
Jest to badanie kliniczno-kontrolne, w którym zostanie przeanalizowanych 120 próbek (60 próbek z wynikiem pozytywnym na obecność COVID-19 i 60 z wynikiem pozytywnym na obecność COVID-19, zarówno świeżych, jak i mrożonych) z Instytutu Epidemiologii, Kontroli i Badań Chorób (IEDCR). Ta próbka zostanie zaślepiona przed dostarczeniem do zestawu RT-PCR NILMRC/Contact ROL/ Bangladesh Clinical Trail Limited (BCTL), Dhaka, Bangladesh for Bangladesh Reference Institute for Chemical Measurements (BRiCM). Wymagana walidacja wewnętrzna zostanie również przeprowadzona zgodnie z wytycznymi Międzynarodowej Rady ds. Harmonizacji (ICH) i FDA, a także walidacja zewnętrzna zostanie przeprowadzona w innym laboratorium diagnostycznym COVID-19 Dyrektora Generalnego Służby Zdrowia (DGHS), zatwierdzonym przez Bangladesz. Dane zostaną przeanalizowane komputerowo za pomocą oprogramowania Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) i zostaną przedstawione w tabeli częstości, wykresie i wykresie zgodnie z wymaganiami.
Przegląd badań
Status
Warunki
Szczegółowy opis
Wstęp:
Pandemia wirusa koronowego COVID-19 jest definiującym globalny kryzys zdrowotny naszych czasów i największym wyzwaniem, przed którym stoi od czasów drugiej wojny światowej. Pandemia to znacznie więcej niż kryzys zdrowotny; to także bezprecedensowy kryzys społeczno-gospodarczy. Od czasu jego identyfikacji w regionie Wuhan w Chinach wirus nie tylko rozprzestrzenił się w 213 krajach/terytoriach z 209 milionami przypadków i 4,39 milionami na całym świecie, ale także może pozbawić pracy 400 milionów ludzi, jak szacuje Międzynarodowa Organizacja Pracy.
Aby powstrzymać rozprzestrzenianie się choroby, w różnych regionach świata wdrożono multidyscyplinarne strategie, w tym wdrażanie dystansu społecznego, utrzymywanie higieny osobistej, śledzenie kontaktów oraz wdrażanie kwarantanny, ograniczeń w podróżowaniu i blokad. Powszechnie akceptowaną metodą jest badanie na obecność SARS-CoV-2, zwykle z wykorzystaniem wymazów z jamy nosowo-gardłowej. Pacjenci z pozytywnym wynikiem testu wymagają odpowiedniego postępowania klinicznego poprzez skuteczną izolację lub kwarantannę w domu w przypadku łagodnych objawów lub w placówce opieki zdrowotnej w przypadku objawów o nasileniu umiarkowanym do ciężkiego. Ponadto testy na szeroką skalę dostarczają bardziej pouczających danych epidemiologicznych do opracowywania polityk dotyczących monitorowania i kontroli chorób. Zaproponowano wiele podejść do wykrywania wirusa SARS-CoV-2 w płynach nosowo-gardłowych, takich jak multipleks RT-PCR, CRISPR/Cas12 i CRISPR-Cas3, test immunologiczny przepływu bocznego, czujniki bimolekularne na papierze, testy SHERLOCK w jednym naczyniu, aptamer DNA , amplifikacja izotermiczna za pośrednictwem pętli (LAMP) itp. Spośród tych metod testy oparte na amplifikacji kwasów nukleinowych są najczęściej stosowane w diagnostyce SARS-CoV-2.
Ponadto amerykańskie CDC proponuje protokół wykrywania SARS-CoV-2, oparty na amplifikacji dwóch regionów genu nukleokapsydu, czyli N1 i N2, oraz ludzkiego genu kontroli wewnętrznej RNazy P (RP). Oprócz tych strategii nadal trwają prace nad opracowaniem metod wykrywania SARS-CoV-2 o wysokiej skuteczności i dokładności, przy mniejszym czasie reakcji i mniejszym wysiłku.
Jednak pomimo tego, że uważa się je za złoty standard wykrywania SARS CoV-2, w wielu krajach testy pozostają w tyle z powodu różnych czynników, z których najważniejszymi są problemy z łańcuchem dostaw z brakiem odczynników i odpowiednich zestawów testowych. Dlatego wielu pacjentów (zarówno z objawami, jak i bezobjawowymi) pozostaje nieprzebadanych, a zatem potencjalnie przyczynia się do rozprzestrzeniania się wirusa w społeczności.
Gdyby Bangladesz mógł wyprodukować własne zestawy RT-PCR, których jakość nie byłaby gorsza pod względem czułości, swoistości itp., zmniejszyłoby to niedobór zestawów RT-PCR, ponieważ badacze są całkowicie zależni od importowanych zestawów testowych, a także oszczędzają obcą walutę. Ponadto zestawy testowe RT-PCR są bardzo wrażliwe na temperaturę i wymagają utrzymania łańcucha chłodniczego ze względu na swoją jakość, co można złagodzić, opracowując lokalny zestaw RT PCR. Ponadto wiele wariantów SARS-CoV-2 zostało opracowanych w wyniku mutacji, która wykazała większą zjadliwość i wysoką szybkość transmisji. Tak więc opracowanie nowego zestawu RT PCR, który może wykryć nowszy szczep, może być niezwykle pomocne.
Tak więc celem badacza jest opracowanie solidnego zestawu RT-PCR z trzema wykrywalnymi genami, który będzie pierwszym w kraju i da wiarygodne wyniki dla różnych rodzajów wariantów wirusa SARS-CoV-2 w celu zmniejszenia jego przenoszenia i podjęcia planu zarządzania zapobiegawczego 2. Cele badania:
- Cele ogólne: Główne cele mają na celu opracowanie multipleksowej reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym (rRT-PCR) w celu wykrycia SARS-CoV-2.
Cele drugorzędne: Aby uzyskać najlepszą wydajność RT-PCR, należy zoptymalizować kombinację docelowych genów E i N.
3. Metodologia: 3.1. Rodzaj i cel badania: Jest to badanie kliniczno-kontrolne i obserwacyjne, w którym identyfikuje się i porównuje dwie istniejące grupy zamrożonych i świeżych próbek.
3.2. Miejsce nauki:
- Instytut Epidemiologii Kontroli i Badań Chorób (IEDCR)
- SM. Organizacja Badań Klinicznych Ltd 3.3. Miejsca pobierania próbek:
- Instytut Epidemiologii Kontroli i Badań Chorób (IEDCR) lub
- National Institute of Laboratory Medicine & Referral Center (NILMRC), Dhaka, Bangladesz.
3.4. Czas trwania studiów: • 3 miesiące (listopad 2021 do stycznia 2022) po uzyskaniu zezwolenia etycznego od Bangladesh Medical Research Council.
3.5. Badana populacja/dobór próby 3.5.1 CRO otrzyma próbki do badań z IEDCR. IEDCR i BCTL/CROL jako CRO mają protokół ustaleń (MoU) dotyczący różnych wspólnych prac badawczych. Tak więc NILMRC/BCTL/CROL otrzyma łącznie 120 próbek z IEDCR do oceny wydajności zestawu RT-PCR. Spośród 120 próbek 60 będzie przechowywanych (30 próbek z pozytywnym wynikiem na obecność COVID-19 i 30 z wynikiem ujemnym na obecność COVID-19), które były przechowywane w zamrażarkach laboratoryjnych w temperaturze -80°C w obiektach IEDCR, a kolejne 60 świeżych próbek (30 z pozytywnym wynikiem na obecność COVID-19 i 30 próbek z wynikiem ujemnym w kierunku COVID-19), które są testowane w IEDCR. Próbki z niezgodnymi wynikami zostaną odrzucone przed badaniem za pomocą zestawu BRiCM RT PCR. Oznacza to, że do analizy za pomocą importowanych zestawów RT-PCR i zestawu do ekstrakcji w BCTL/CROL może być potrzebnych ponad 120 zidentyfikowanych próbek z IEDCR. W ten sposób zostanie wybranych 120 próbek do oceny działania zestawu BRiCM RT-PCR.
3.5.2 Aby uniknąć stronniczości i konfliktów interesów, sponsor i PI/współbadacze nie będą znali identyfikatora próbki oraz pozytywnego/negatywnego statusu próbek i dokumentacji klinicznej pacjentów. Pozytywny/negatywny status zarówno przechowywanych, jak i świeżych próbek zostanie zidentyfikowany w IEDCR przed wysłaniem do BCTL/CROL. Oznacza to, że personel BCTL/CROL będzie również zaślepiony na przykładowy dokument tożsamości (ID) i pozytywny negatywny/negatywny status przed analizą. Na koniec szef CRO prześle certyfikat oceny wyników do PI lub Sponsora.
3.5.3. Statystyczna podstawa wielkości próby:
Formuły:
Badanie jest prowadzone na 120 uczestnikach (60 zapisanych znanych pozytywnych i negatywnych oraz 60 świeżych znanych pozytywnych i negatywnych). Aby osiągnąć żądaną bezwzględną dokładność (n) w szacowaniu wydajności RT-PCR, minimalna wielkość próbki oszacowana zgodnie z dyskretną funkcją prawdopodobieństwa Bernoulliego w następujący sposób:
Alfa= 5% D= absolutna Dokładność (%) z 95% pewnością. Żądana Dokładność bezwzględna n D Alfa=5% Z=1,96 10 30,99% n D= (1,96)/(2* Pierwiastek kwadratowy (SQRT) (n)) 20 21,91% 100 9,80% 30 17,89% 120 8,94% 100 9,80% 200 6,93% 300 5,66% 400 4,90% 1000 3,10% 10000 0,98% 20000 0,69% 30000 0,57% 100000 0,3% 3.6 Kryteria wyboru próbki 3.6.1 Kryteria włączenia: Próbki z wynikiem pozytywnym Wyniki RT-PCR z wartością Ct ≤-19 dla COVID35 geny w IEDCR zostaną wybrane jako pozytywne dla COVID-19. Próbki z negatywnymi wynikami RT-PCR bez amplifikacji genów COVID-19 w IEDCR zostaną wybrane jako COVID-19.
- Płeć: Wszyscy
- Wiek: od 5 do 70 lat (Dziecko, Dorosły, Starszy Dorosły) 7.8.2. Kryteria wyłączenia
- Próbki z niejednoznacznymi/niejednoznacznymi wynikami RT-PCR pod względem krzywej sigmoidalnej i wartości Ct zostaną wykluczone.
Zgody pacjentów nie są wymagane, ponieważ CRO otrzyma próbki z IEDCR zgodnie z MOU z IEDCR. Nie ma więc wymogu rejestracji i zgód pacjenta oraz CRF ze strony CRO.
3.7 Procedura zbierania danych: Próbki dodatnie w kierunku COVID-19 zostaną potwierdzone wynikami laboratoryjnymi dodatnich wyników RT-PCR dla wirusowego RNA.
3.8 Analiza danych: Określona zostanie czułość, swoistość, dodatnia i ujemna wartość predykcyjna zestawu BRiCM COVID-19 real time RT-PCR. Test chi-kwadrat (dwustronny) zostanie przeprowadzony w celu porównania zmiennych kategorialnych. Wartość p ≤0,05 zostanie uznana za poziom istotnego związku. Oprócz czułości, specyficzności, dodatniej wartości predykcyjnej i ujemnej wartości predykcyjnej, zostanie również obliczony współczynnik Kappa, dodatni iloraz wiarygodności i ujemny iloraz wiarygodności.
3.9 Baza danych jest zabezpieczona przed nieautoryzowanym dostępem przez ustanowione procedury bezpieczeństwa; należy przechowywać odpowiednie kopie zapasowe bazy danych i związanych z nią plików oprogramowania. Kopie zapasowe baz danych są tworzone przez administratora bazy danych w związku z wszelkimi aktualizacjami lub zmianami w bazie danych.
3.10 Badacz musi udostępnić dane z badania monitorującemu i upoważnionym przedstawicielom. Badacz musi co trzy miesiące dostarczać głównemu badaczowi tymczasowy raport z badania zawierający dane. Zgodnie z wymaganiami raport z badania i dane mogą zostać przekazane Radzie ds. Badań Medycznych Bangladeszu (BMRC) i Dyrekcji Generalnej ds. Administracji Lekami (DGDA). Badacz musi zapewnić rzetelność i dostępność dokumentów źródłowych.
3.11 Wizyty monitorujące będą prowadzone przez głównego badacza, współbadacza oraz przedstawicieli zgodnie z Wytycznymi Dobrej Praktyki Klinicznej (GCP).
3.12 Aby zachować poufność uczestników, tylko numer ośrodka, numer podmiotu i inicjały uczestników będą identyfikować wszystkich uczestników badania w formularzach dokumentacji przypadków (CRF) i innej dokumentacji przedłożonej badaczowi. Dodatkowe kwestie dotyczące poufności przedmiotu (jeśli dotyczy) są ujęte w Umowie dotyczącej badania klinicznego.
3.13 Wszystkie zapisy będą utrzymywane w tajemnicy dla PI, współbadaczy, sponsora, z wyjątkiem odpowiedzialnych osób odpowiedzialnych za IEDCR. Próbki zostaną oznaczone kodem/numerem identyfikacyjnym i datą w IEDCR przed wysłaniem do BCTL/Contact Research Organization Limited (CROL) 4. Na potrzeby tego badania wspomniany instytut IEDCR/Bangladesh Clinical Trail Limited (BTCL)/CRO Ltd. ma możliwość przeprowadzić badanie kliniczne, aby sprawdzić skuteczność zestawu za pośrednictwem swoich istniejących zasobów. Poza tym CRO może zarządzać chemikaliami, odczynnikami i technologią, jeśli są potrzebne do badania, zgodnie z protokołem ustaleń między agencjami finansującymi.
5. Konflikt interesów BRiCM jest agencją finansującą proponowany zestaw COVID-19 RT-PCR, jest organem statutowym funkcjonującym pod kontrolą administracyjną Ministerstwa Nauki i Technologii. Jest organizacją badawczą i instytutem referencyjnym w zakresie pomiarów chemicznych. Nie jest przedsiębiorstwem komercyjnym ani organizacją nastawioną na zysk. Zgodnie z sankcją konstytucyjną głównym obowiązkiem BRiCM jest prowadzenie badań prowadzących do takich innowacji, które wniosą wartość dodaną do wysiłków rządu na rzecz zapewnienia dobrobytu ludności.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
Dhaka, Bangladesz, 1212
- Institute for Developing Science and Health Initiatives
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Próbki z dodatnimi wynikami RT-PCR z wartością Ct ≤35 dla genów COVID-19 w IEDCR zostaną wybrane jako dodatnie pod względem COVID-19.
- Próbki z negatywnymi wynikami RT-PCR bez amplifikacji genów COVID-19 w IEDCR zostaną wybrane jako COVID-19.
Kryteria wyłączenia:
- Próbki z niejednoznacznymi/niejednoznacznymi wynikami RT-PCR pod względem krzywej sigmoidalnej i wartości Ct zostaną wykluczone.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
|---|
|
Sprawy (aktualne/nowe)
Przypadki (aktualne/świeże) definiuje się jako te próbki, które uzyskały pozytywny wynik testu RT-PCR w IEDCR jako regularny program badań przesiewowych i nie były przechowywane w zamrażarce.
|
|
Sprawy (przechowywane)
Przypadki (przechowywane) definiuje się jako te próbki, które uzyskały pozytywny wynik testu RT-PCR w IEDCR jako regularny program badań przesiewowych i były przechowywane w zamrażarce -80°C w IEDCR.
|
|
Kontrola (aktualna/świeża)
Kontrola (aktualna/świeża) to próbki, które uzyskały negatywny wynik testu RT-PCR w IEDCR jako regularny program badań przesiewowych i nie były przechowywane w zamrażarce.
|
|
Sterowanie (przechowywane)
Kontrolę (przechowywaną) definiuje się jako te próbki, które uzyskały negatywny wynik testu RT-PCR w IEDCR jako regularny program badań przesiewowych i były przechowywane w zamrażarce w -80°C w IEDCR
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Ocena wydajności BRiCM COVID-19 RT-PCR
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
Określenie oceny skuteczności BRiCM COVID-19 RT-PCR z ekstrahowanym wirusowym RNA przy użyciu standardowego zestawu do ekstrakcji wirusowego RNA do wykrywania wirusa SARS-CoV-2 w wymazach z nosogardzieli pobranych w ramach ogólnokrajowego programu badań przesiewowych w kierunku COVID-19.
Ekstrakcja RNA ze świeżej próbki wymazu z nosogardzieli w Viral Transport Medium (VTM) pacjentów z COVID-19 z IEDCR (30 pozytywnych i 30 negatywnych) Analiza próbek RNA COVID-19 przy użyciu RT-PCR.
|
1 miesiąc
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Obniż cenę i zwiększ skuteczność wykrywania COVID-19 za pomocą zestawu BRiCM COVID-19 RT-PCR
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
Dostarcz rządowi zestaw do reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją COVID-19 (RT-PCR) od lokalnego producenta.
i prywatnych szpitali do diagnostyki pacjentów z COVID-19.
Ekstrakcja RNA z zamrożonej próbki wymazu z jamy nosowo-gardłowej w wirusowym podłożu transportowym (VTM) pacjentów z COVID-19 z analizy IEDCR (30 pozytywnych i 30 negatywnych) próbek RNA COVID-19 przy użyciu reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją (RT-PCR).
|
1 miesiąc
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: MAMUDUL HASAN RAZU, MSc, Scientific Officer
- Krzesło do nauki: MD MONIRUZZAMAN, BSc, Senior Scientific Officer
- Krzesło do nauki: PRANAB KARMAKER, Dr, Senior Scientific Officer
- Krzesło do nauki: ZABED BIN AHMED, MSc, Senior Scientific Officer
- Krzesło do nauki: MD IQBAL HOSSAIN, MSc, Scientific Officer
- Krzesło do nauki: MD FAZLE ALAM RABBI, Dr, Lecturer
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977 Mar;33(1):159-74.
- Bedford J, Enria D, Giesecke J, Heymann DL, Ihekweazu C, Kobinger G, Lane HC, Memish Z, Oh MD, Sall AA, Schuchat A, Ungchusak K, Wieler LH; WHO Strategic and Technical Advisory Group for Infectious Hazards. COVID-19: towards controlling of a pandemic. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1015-1018. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30673-5. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Choi S, Ki M. Estimating the reproductive number and the outbreak size of COVID-19 in Korea. Epidemiol Health. 2020;42:e2020011. doi: 10.4178/epih.e2020011. Epub 2020 Mar 12.
- Ulloa S, Bravo C, Parra B, Ramirez E, Acevedo A, Fasce R, Fernandez J. A simple method for SARS-CoV-2 detection by rRT-PCR without the use of a commercial RNA extraction kit. J Virol Methods. 2020 Nov;285:113960. doi: 10.1016/j.jviromet.2020.113960. Epub 2020 Aug 22.
- Kudo E, Israelow B, Vogels CBF, Lu P, Wyllie AL, Tokuyama M, Venkataraman A, Brackney DE, Ott IM, Petrone ME, Earnest R, Lapidus S, Muenker MC, Moore AJ, Casanovas-Massana A; Yale IMPACT Research Team; Omer SB, Dela Cruz CS, Farhadian SF, Ko AI, Grubaugh ND, Iwasaki A. Detection of SARS-CoV-2 RNA by multiplex RT-qPCR. PLoS Biol. 2020 Oct 7;18(10):e3000867. doi: 10.1371/journal.pbio.3000867. eCollection 2020 Oct.
- Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, Miao X, Streithorst JA, Granados A, Sotomayor-Gonzalez A, Zorn K, Gopez A, Hsu E, Gu W, Miller S, Pan CY, Guevara H, Wadford DA, Chen JS, Chiu CY. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020 Jul;38(7):870-874. doi: 10.1038/s41587-020-0513-4. Epub 2020 Apr 16.
- Ali Z, Aman R, Mahas A, Rao GS, Tehseen M, Marsic T, Salunke R, Subudhi AK, Hala SM, Hamdan SM, Pain A, Alofi FS, Alsomali A, Hashem AM, Khogeer A, Almontashiri NAM, Abedalthagafi M, Hassan N, Mahfouz MM. iSCAN: An RT-LAMP-coupled CRISPR-Cas12 module for rapid, sensitive detection of SARS-CoV-2. Virus Res. 2020 Oct 15;288:198129. doi: 10.1016/j.virusres.2020.198129. Epub 2020 Aug 18.
- Chen Z, Zhang Z, Zhai X, Li Y, Lin L, Zhao H, Bian L, Li P, Yu L, Wu Y, Lin G. Rapid and Sensitive Detection of anti-SARS-CoV-2 IgG, Using Lanthanide-Doped Nanoparticles-Based Lateral Flow Immunoassay. Anal Chem. 2020 May 19;92(10):7226-7231. doi: 10.1021/acs.analchem.0c00784. Epub 2020 May 5.
- Joung J, Ladha A, Saito M, Kim NG, Woolley AE, Segel M, Barretto RPJ, Ranu A, Macrae RK, Faure G, Ioannidi EI, Krajeski RN, Bruneau R, Huang MW, Yu XG, Li JZ, Walker BD, Hung DT, Greninger AL, Jerome KR, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Zhang F. Detection of SARS-CoV-2 with SHERLOCK One-Pot Testing. N Engl J Med. 2020 Oct 8;383(15):1492-1494. doi: 10.1056/NEJMc2026172. Epub 2020 Sep 16. No abstract available.
- Chen Z, Wu Q, Chen J, Ni X, Dai J. A DNA Aptamer Based Method for Detection of SARS-CoV-2 Nucleocapsid Protein. Virol Sin. 2020 Jun;35(3):351-354. doi: 10.1007/s12250-020-00236-z. Epub 2020 May 25. No abstract available.
- Zhen W, Berry GJ. Development of a New Multiplex Real-Time RT-PCR Assay for Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Detection. J Mol Diagn. 2020 Dec;22(12):1367-1372. doi: 10.1016/j.jmoldx.2020.09.004. Epub 2020 Sep 19.
- Khan S, Tombuloglu H, Hassanein SE, Rehman S, Bozkurt A, Cevik E, Abdel-Ghany S, Nabi G, Ali A, Sabit H. Coronavirus diseases 2019: Current biological situation and potential therapeutic perspective. Eur J Pharmacol. 2020 Nov 5;886:173447. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173447. Epub 2020 Aug 5.
- Yan C, Cui J, Huang L, Du B, Chen L, Xue G, Li S, Zhang W, Zhao L, Sun Y, Yao H, Li N, Zhao H, Feng Y, Liu S, Zhang Q, Liu D, Yuan J. Rapid and visual detection of 2019 novel coronavirus (SARS-CoV-2) by a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay. Clin Microbiol Infect. 2020 Jun;26(6):773-779. doi: 10.1016/j.cmi.2020.04.001. Epub 2020 Apr 8.
- Moran A, Beavis KG, Matushek SM, Ciaglia C, Francois N, Tesic V, Love N. Detection of SARS-CoV-2 by Use of the Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2 and Roche cobas SARS-CoV-2 Assays. J Clin Microbiol. 2020 Jul 23;58(8):e00772-20. doi: 10.1128/JCM.00772-20. Print 2020 Jul 23. No abstract available.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- BANGASURE RT-PCR Kit
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .