- ICH GCP
- USA klinikai vizsgálatok nyilvántartása
- Klinikai vizsgálat NCT05190016
A Multiplex BangasureTM RT-PCR készlet hatékonysága a COVID-19 kimutatására (COVID-19)
Multiplex BangasureTM RT-PCR készlet fejlesztése a SARS-Corona Virus-2 kimutatására
A súlyos akut légúti szindróma (SARS) koronavírus-2 (CoV)-2 járvány világszerte folyamatosan növekszik. A 2019-es koronavírus-betegség (COVID-19) terjedésének visszaszorításában nagyon fontos lépés a diagnózis, amely segíti a karantén folyamatát, a fertőzött izolálását és az érintkezés nyomon követését is. A különféle technikák közül a valós idejű reverz transzkripciós polimeráz láncreakciót (rRT-PCR) leginkább használják, és az Egészségügyi Világszervezet (WHO) és a Center for Diseases Control (CDC, USA) szerint arany standard módszernek tekintik a vírusos nukleinsav kimutatására. Az esetleges álnegatív és álpozitív eredmények azonban félrevezető következményekkel járnak, és szükségessé teszik a meglévő módszerek fejlesztését. Tehát a nyomozóknak robusztus és megbízható PCR-készletre van szükségük a SARS-CoV-2 vírus különféle változatainak kimutatásához, hogy csökkentsék annak átvitelét, és megelőző kezelési tervet készítsenek. Ezen túlmenően a növekvő számú tesztelés lebonyolítása érdekében a vizsgálók többnyire importált tesztkészletre támaszkodnak, ami ebben a járványhelyzetben nagyon nehéznek és költségesnek tűnik. Emiatt a SARS-CoV-2 vírus virulenciája a mutáció miatt gyorsan megváltozhat, és az ország hot spottá válhat, ezért a géndetektáló RT-PCR készlet időigényes. Ebből a szempontból a vizsgáló célja egy olyan validált multiplex rRT-PCR kvalitatív diagnosztikai módszer kidolgozása, amely két vírusgént céloz meg: E (burokfehérje), N (nukleokapszid gén, a CDC, USA RT-PCR fejlesztési irányelvei szerint). kit és egy humán RNáz P gén belső kontrollként egyidejűleg.
Ez egy esetkontroll-tanulmány, amelyben 120 mintát (60 COVID-19 pozitív és 60 COVID-19 negatív frissen és fagyasztva egyaránt) elemzünk az Epidemiológiai, Betegségellenőrzési és Kutatóintézetből (IEDCR). Ezt a mintát megvakítják, mielőtt átadnák a NILMRC/Contact ROL/ Bangladesh Clinical Trail Limited (BCTL), Dhaka, Bangladesh for Bangladesh Reference Institute for Chemical Measurements (BRiCM) RT-PCR készletéhez. A szükséges házon belüli validálást a Nemzetközi Harmonizációs Tanács (ICH) és az FDA irányelvei szerint is lefolytatják, valamint a külső validálást a bangladesi jóváhagyott COVID-19 diagnosztikai laboratórium különböző Egészségügyi Főigazgatósága (DGHS) végzi. Az adatok számítógépes elemzése a Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) szoftver segítségével történik, és a követelményeknek megfelelően gyakorisági táblázatban, grafikonon és diagramon jelennek meg.
A tanulmány áttekintése
Állapot
Körülmények
Részletes leírás
Bevezetés:
A koronavírus COVID-19 világjárvány korunk meghatározó globális egészségügyi válsága és a második világháború óta a legnagyobb kihívás. A világjárvány sokkal több, mint egészségügyi válság; ez egyben példátlan társadalmi-gazdasági válság is. A kínai Wuhan régióban történt azonosítása óta a vírus nemcsak 213 országban/területen terjedt el 209 millió megbetegedéssel és 4,39 millióval világszerte, hanem a Nemzetközi Munkaügyi Szervezet becslései szerint 400 millió embert is kiszoríthat az állásából.
A betegségek terjedésének megfékezése érdekében a világ különböző régióiban multidiszciplináris stratégiákat indítottak el, beleértve a társadalmi távolságtartás megvalósítását, a személyes higiénia betartását, az érintkezések nyomon követését, valamint karantén, utazási korlátozások és elzárások bevezetését. Széles körben elfogadott módszer a SARS-CoV-2 vizsgálata, jellemzően nasopharyngealis tamponminták felhasználásával. A pozitív eredményt mutató betegek megfelelő klinikai kezelést igényelnek, hatékony elkülönítéssel vagy otthoni karanténnal enyhe tünetek esetén, vagy egészségügyi intézményekben közepesen súlyos vagy súlyos tünetek esetén. Ezen túlmenően a széleskörű tesztelés informatívabb epidemiológiai adatokat biztosít a betegségek megfigyelésére és ellenőrzésére vonatkozó irányelvek kidolgozásához. Számos megközelítést javasoltak a SARS-CoV-2 vírus nasopharyngealis folyadékokban történő kimutatására, például multiplex RT-PCR, CRISPR/Cas12 és CRISPR-Cas3, laterális áramlási immunoassay, papíralapú bimolekuláris érzékelők, SHERLOCK-teszt egy edényben, DNS-aptamer , hurok közvetített izoterm amplifikáció (LAMP) stb. Ezen módszerek közül a nukleinsav-amplifikáción alapuló tesztek a leggyakoribbak a SARS-CoV-2 diagnosztizálására.
Ezenkívül az US CDC a nukleokapszid gén két régiójának, nevezetesen az N1-nek és az N2-nek, valamint az RNáz P (RP) humán belső kontrollgénnek az amplifikációján alapuló protokollt javasol a SARS-CoV-2 kimutatására. Ezeken a stratégiákon túlmenően továbbra is folynak a SARS-CoV-2 nagy hatékonyságú és pontosságú, kevesebb reakcióidőt és erőfeszítést igénylő kimutatási módszerek kifejlesztésére irányuló erőfeszítések.
Mindazonáltal annak ellenére, hogy a SARS CoV-2 kimutatásának aranystandardjának tekintik, a tesztelés számos országban lemaradt különböző tényezők miatt, amelyek közül a legfontosabbak az ellátási lánc problémái a reagensek és a megfelelő tesztkészletek hiányával. Ezért sok beteg (mind tünetmentes, mind tünetmentes) marad teszteletlen, és így potenciálisan hozzájárul a vírus közösségi terjedéséhez.
Ha Banglades saját RT-PCR készleteket tud gyártani, amelyek minősége nem alacsonyabb érzékenység, specifitás stb. tekintetében, az mérsékelné az RT-PCR készlet hiányát, mivel a vizsgálók teljes mértékben az importált tesztkészletektől függenek, és devizát takarítanak meg. Ezenkívül az RT-PCR tesztkészletek nagyon érzékenyek a hőmérsékletre, és meg kell őrizniük a hideglánc minőségét, ami csökkenthető a helyi RT PCR készlet fejlesztésével. Ezenkívül a SARS-CoV-2 számos változatát fejlesztették ki a mutáció miatt, amely nagyobb virulenciát és magas átviteli sebességet mutatott. Tehát rendkívül hasznos lehet egy új RT PCR készlet kifejlesztése, amely képes az újabb törzsek kimutatására.
Tehát itt a vizsgáló célja a három génben kimutatható robusztus RT-PCR készlet kifejlesztése, amely országelső lesz, és megbízható eredményt ad a SARS-CoV-2 vírus különböző változatairól annak átvitelének csökkentése és a megelőző kezelési terv végrehajtása érdekében 2. a tanulmány:
- Általános célok: Az elsődleges célkitűzések multiplex valós idejű reverz transzkripciós polimeráz láncreakció (rRT-PCR) kifejlesztése a SARS-CoV-2 kimutatására.
Másodlagos célok: A legjobb RT-PCR teljesítmény érdekében az E és N gén célpontjainak kombinációját optimalizálni kell.
3. Módszertan: 3.1. A vizsgálat típusa és célja: Ez egy esetkontroll és megfigyeléses vizsgálat, amelyben két meglévő csoport fagyasztott és friss mintákat azonosítanak és hasonlítanak össze.
3.2. Tanulás helye:
- Institute Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR)
- KISASSZONY. Klinikai Kutatási Szervezet Zrt. 3.3. Mintagyűjtő hely(ek):
- Institute Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR) ill
- National Institute of Laboratory Medicine & Referral Center (NILMRC), Dhaka, Banglades.
3.4. A tanulmány időtartama: • 3 hónap (2021. novembertől 2022. januárig) a Bangladeshi Orvosi Kutatási Tanács etikai engedélyének megszerzése után.
3.5. Vizsgálat Populáció/minta kiválasztása 3.5.1 A CRO vizsgálati mintákat kap az IEDCR-től. Az IEDCR és a BCTL/CROL mint CRO egyetértési nyilatkozattal (MoU) rendelkezik a különböző együttműködési kutatási munkákról. Tehát a NILMRC/BCTL/CROL összesen 120 mintát kap az IEDCR-től az RT-PCR kit hatékonyságának értékelésére. A 120 mintából 60 tárolt minta lesz (30 COVID-19 ismert pozitív és 30 COVID-19 negatív minta), amelyeket -80°C-os laboratóriumi fagyasztószekrényekben tároltak az IEDCR létesítményekben, és további 60 friss minta (30 COVID-19 pozitív). és 30 COVID-19 negatív minta), amelyeket az IEDCR tesztel. Az eltérő eredményekkel rendelkező mintákat a BRiCM RT PCR készlettel történő tesztelés előtt elutasítjuk. Ez azt jelenti, hogy az IEDCR-ből több mint 120 azonosított mintára lehet szükség a BCTL/CROL által importált RT-PCR készletekkel és extrakciós készlettel történő elemzéshez. Így 120 mintát választanak ki a BRiCM RT-PCR kit teljesítményértékeléséhez.
3.5.2 Az elfogultság és az összeférhetetlenség elkerülése érdekében a szponzort és a PI-t/társ-kutatókat nem látják a mintaazonosítók, valamint a minták pozitív/negatív státusza és a betegek klinikai feljegyzései tekintetében. Mind a tárolt, mind a friss minták pozitív/negatív állapotát az IEDCR azonosítja, mielőtt elküldené a BCTL/CROL-nak. Ez azt jelenti, hogy a BCTL/CROL személyzetet a személyazonosító okmány (ID) mintájára és a pozitív negatív/negatív státuszra is elvakítják az elemzés előtt. Végül a CRO vezetője elküldi a teljesítményértékelési tanúsítványt a PI-nek vagy a szponzornak.
3.5.3. A mintanagyság statisztikai alapja:
Képletek:
A vizsgálatot 120 résztvevővel végezték (60 tárolt ismert pozitív és negatív és 60 frissen ismert pozitív és negatív). A kívánt abszolút pontosság (n) elérése érdekében az RT-PCR hatékonyságának becslésében a minimális mintaméretet a diszkrét Bernoulli valószínűségi függvény alapján becsüljük meg, az alábbiak szerint:
Alfa= 5% D= abszolút pontosság (%) 95%-os biztonsággal. Kívánt abszolút pontosság n D Alfa=5% Z=1,96 10 30,99% n D= (1,96)/(2* négyzetgyök (SQRT) (n)) 20 21,91% 100 9,80% 30 17,89% 120 120 17,89% 120 8.0. A Az IEDCR génjeit COVID-19 pozitívnak választják ki. Azokat a mintákat, amelyek negatív RT-PCR-eredményt kaptak, és nem amplifikálták a COVID-19 géneket az IEDCR-en, COVID-19-ként választják ki.
- Nem: Mind
- Életkor: 5-70 év (gyermek, felnőtt, idősebb felnőtt) 7.8.2. Kizárási kritériumok
- A szigmoid görbe és a Ct érték tekintetében kétértelmű/kétértelmű RT-PCR eredményeket mutató minták kizárásra kerülnek.
A betegek beleegyezésére nincs szükség, mert a CRO megkapja a mintákat az IEDCR-től az IEDCR-rel kötött egyetértési megállapodás szerint. Így a CRO oldaláról nincs szükség a páciens beiratkozására, beleegyezésére és CRF-re.
3.7 Adatgyűjtési eljárás: A COVID-19 pozitív mintákat a vírus RNS-ére vonatkozó pozitív RT-PCR eredmények laboratóriumi leletei igazolják.
3.8 Adatelemzés: Meg kell határozni a BRiCM COVID-19 valós idejű RT-PCR készlet érzékenységét, specificitását, pozitív prediktív értékét és negatív prediktív értékét. A khi-négyzet tesztet (kétoldalas) a kategorikus változók összehasonlítására kell elvégezni. A ≤0,05 p értéket a szignifikáns asszociáció szintjének tekintjük. Az érzékenység, a specificitás, a pozitív prediktív érték és a negatív prediktív érték mellett a Kappa együttható, a pozitív valószínűségi arány és a negatív valószínűségi arány is kiszámításra kerül.
3.9 Az adatbázist meghatározott biztonsági eljárások védik a jogosulatlan hozzáférés ellen; megfelelő biztonsági másolatot kell készíteni az adatbázisról és a kapcsolódó szoftverfájlokról. Az adatbázisokról az adatbázis-adminisztrátor biztonsági másolatot készít az adatbázis frissítéseivel vagy módosításaival együtt.
3.10 A vizsgálónak a vizsgálati adatokat hozzáférhetővé kell tennie a monitor és a meghatalmazott képviselői számára. A vizsgálónak háromhavonta át kell adnia az adatokat tartalmazó időközi vizsgálati jelentést a fő vizsgálónak. A követelményeknek megfelelően a vizsgálati jelentés és az adatok átadhatók a Banglades Orvosi Kutatási Tanácsnak (BMRC) és a Gyógyszerigazgatási Főigazgatóságnak (DGDA). A nyomozónak gondoskodnia kell a forrásdokumentumok megbízhatóságáról és elérhetőségéről.
3.11 A megfigyelő látogatásokat az alapvizsgáló, a társvizsgáló, valamint a képviselők végzik a helyes klinikai gyakorlatra vonatkozó irányelvek (GCP) szerint.
3.12 A tantárgy titkosságának megőrzése érdekében csak a helyszínszám, a tárgyszám és a tárgy kezdőbetűi azonosítják az összes vizsgálati alanyt az esetnyilvántartási űrlapokon (CRF) és a vizsgálónak benyújtott egyéb dokumentumokon. A további tantárgyi titoktartási kérdéseket (ha vannak) a Klinikai tanulmányi megállapodás szabályozza.
3.13 Minden nyilvántartást titokban kell tartani a PI, a társkutatók és a szponzor előtt, kivéve az IEDCR felelős személyeket, akik felelősek. A mintákat kód/azonosító számként és dátumként azonosítja az IEDCR, mielőtt elküldené a BCTL/Contact Research Organization Limited (CROL) részére 4. Ehhez a vizsgálathoz az említett intézet IEDCR/Bangladesh Clinical Trail Limited (BTCL)/CRO Ltd. képes végezzék el a klinikai vizsgálatot, hogy megtudják a készlet hatékonyságát a meglévő erőforrásaik révén. Emellett a CRO kezelheti a vegyszert, a reagenst és a technológiát, ha szükséges a tanulmányhoz, a finanszírozó ügynökségek közötti egyetértési megállapodás szerint.
5. Összeférhetetlenség A BRiCM a javasolt COVID-19 RT-PCR készlet finanszírozója, a Tudományos és Technológiai Minisztérium adminisztratív felügyelete alatt működő törvényes testület. Kutatószervezet és referenciaintézet a kémiai mérések területén. Ez sem nem kereskedelmi vállalkozás, sem nem profitorientált szervezet. Az alkotmányos szankció szerint a BRiCM fő felelőssége, hogy olyan innovációhoz vezető kutatásokat folytasson, amelyek hozzáadott értéket képviselnek az emberek jólétét biztosító kormányzati erőfeszítésekhez.
Tanulmány típusa
Beiratkozás (Tényleges)
Kapcsolatok és helyek
Tanulmányi helyek
-
-
-
Dhaka, Banglades, 1212
- Institute for Developing Science and Health Initiatives
-
-
Részvételi kritériumok
Jogosultsági kritériumok
Tanulmányozható életkorok
Egészséges önkénteseket fogad
Tanulmányozható nemek
Mintavételi módszer
Tanulmányi populáció
Leírás
Bevételi kritériumok:
- Azok a minták, amelyek pozitív RT-PCR-eredményekkel rendelkeznek, és amelyek Ct-értéke <35 a COVID-19 génekre az IEDCR-en, COVID-19-pozitívnak minősülnek.
- Azokat a mintákat, amelyek negatív RT-PCR-eredményt kaptak, és nem amplifikálták a COVID-19 géneket az IEDCR-en, COVID-19-ként választják ki.
Kizárási kritériumok:
- A szigmoid görbe és a Ct érték tekintetében kétértelmű/kétértelmű RT-PCR eredményeket mutató minták kizárásra kerülnek.
Tanulási terv
Hogyan készül a tanulmány?
Tervezési részletek
Kohorszok és beavatkozások
Csoport / Kohorsz |
|---|
|
Esetek (aktuális/friss)
Az esetek (aktuális/friss) azok a minták, amelyek RT-PCR-rel pozitívnak bizonyultak az IEDCR-ben, mint szokásos szűrési programban, és amelyeket nem tároltak fagyasztóban.
|
|
Tokok (tárolt)
A (tárolt) esetek azok a minták, amelyek RT-PCR-rel pozitívnak bizonyultak az IEDCR-ben, mint szokásos szűrési programban, és amelyeket az IEDCR -80 °C-os fagyasztóban tároltak.
|
|
Vezérlés (aktuális/friss)
A kontroll (aktuális/friss) azok a minták, amelyek RT-PCR-rel negatívnak bizonyultak az IEDCR-ben, mint szokásos szűrési programban, és amelyeket nem tároltak fagyasztóban.
|
|
Vezérlés (tárolt)
A kontroll (tárolt) azok a minták, amelyek RT-PCR-rel negatívnak bizonyultak az IEDCR-ben, mint szokásos szűrési programban, és amelyeket az IEDCR -80 °C-os fagyasztóban tároltak.
|
Mit mér a tanulmány?
Elsődleges eredményintézkedések
Eredménymérő |
Intézkedés leírása |
Időkeret |
|---|---|---|
|
A BRiCM COVID-19 RT-PCR teljesítményértékelése
Időkeret: 1 hónap
|
Határozza meg a BRiCM COVID-19 RT-PCR teljesítményértékelését extrahált vírus-RNS-sel a SARS-CoV-2 vírus kimutatására szolgáló szabványos vírus-RNS extrakciós készlettel az országos COVID-19 szűrőprogramban gyűjtött orrgarat-tamponmintákból.
RNS-kivonás friss orrgarat-tamponmintából COVID-19 betegek vírusszállító tápközegében (VTM) IEDCR-ből (30 pozitív és 30 negatív) COVID-19 RNS-minták elemzése RT-PCR segítségével.
|
1 hónap
|
Másodlagos eredményintézkedések
Eredménymérő |
Intézkedés leírása |
Időkeret |
|---|---|---|
|
Csökkentse az árat és növelje a COVID-19 észlelésének hatékonyságát a BRiCM COVID-19 RT-PCR készlettel
Időkeret: 1 hónap
|
Állítsa be a helyi gyártó COVID-19 reverz transzkripciós polimeráz láncreakciós (RT-PCR) készletét a kormánynak.
és magánkórházak a COVID-19 betegek diagnosztizálására.
RNS-kivonás COVID-19-betegek vírusszállító közegében (VTM) lévő fagyasztott orrgarat-tamponmintából a COVID-19 RNS-minták IEDCR (30 pozitív és 30 negatív) elemzéséből fordított transzkripciós polimeráz láncreakcióval (RT-PCR).
|
1 hónap
|
Együttműködők és nyomozók
Szponzor
Nyomozók
- Kutatásvezető: MAMUDUL HASAN RAZU, MSc, Scientific Officer
- Tanulmányi szék: MD MONIRUZZAMAN, BSc, Senior Scientific Officer
- Tanulmányi szék: PRANAB KARMAKER, Dr, Senior Scientific Officer
- Tanulmányi szék: ZABED BIN AHMED, MSc, Senior Scientific Officer
- Tanulmányi szék: MD IQBAL HOSSAIN, MSc, Scientific Officer
- Tanulmányi szék: MD FAZLE ALAM RABBI, Dr, Lecturer
Publikációk és hasznos linkek
Általános kiadványok
- Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977 Mar;33(1):159-74.
- Bedford J, Enria D, Giesecke J, Heymann DL, Ihekweazu C, Kobinger G, Lane HC, Memish Z, Oh MD, Sall AA, Schuchat A, Ungchusak K, Wieler LH; WHO Strategic and Technical Advisory Group for Infectious Hazards. COVID-19: towards controlling of a pandemic. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1015-1018. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30673-5. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Choi S, Ki M. Estimating the reproductive number and the outbreak size of COVID-19 in Korea. Epidemiol Health. 2020;42:e2020011. doi: 10.4178/epih.e2020011. Epub 2020 Mar 12.
- Ulloa S, Bravo C, Parra B, Ramirez E, Acevedo A, Fasce R, Fernandez J. A simple method for SARS-CoV-2 detection by rRT-PCR without the use of a commercial RNA extraction kit. J Virol Methods. 2020 Nov;285:113960. doi: 10.1016/j.jviromet.2020.113960. Epub 2020 Aug 22.
- Kudo E, Israelow B, Vogels CBF, Lu P, Wyllie AL, Tokuyama M, Venkataraman A, Brackney DE, Ott IM, Petrone ME, Earnest R, Lapidus S, Muenker MC, Moore AJ, Casanovas-Massana A; Yale IMPACT Research Team; Omer SB, Dela Cruz CS, Farhadian SF, Ko AI, Grubaugh ND, Iwasaki A. Detection of SARS-CoV-2 RNA by multiplex RT-qPCR. PLoS Biol. 2020 Oct 7;18(10):e3000867. doi: 10.1371/journal.pbio.3000867. eCollection 2020 Oct.
- Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, Miao X, Streithorst JA, Granados A, Sotomayor-Gonzalez A, Zorn K, Gopez A, Hsu E, Gu W, Miller S, Pan CY, Guevara H, Wadford DA, Chen JS, Chiu CY. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020 Jul;38(7):870-874. doi: 10.1038/s41587-020-0513-4. Epub 2020 Apr 16.
- Ali Z, Aman R, Mahas A, Rao GS, Tehseen M, Marsic T, Salunke R, Subudhi AK, Hala SM, Hamdan SM, Pain A, Alofi FS, Alsomali A, Hashem AM, Khogeer A, Almontashiri NAM, Abedalthagafi M, Hassan N, Mahfouz MM. iSCAN: An RT-LAMP-coupled CRISPR-Cas12 module for rapid, sensitive detection of SARS-CoV-2. Virus Res. 2020 Oct 15;288:198129. doi: 10.1016/j.virusres.2020.198129. Epub 2020 Aug 18.
- Chen Z, Zhang Z, Zhai X, Li Y, Lin L, Zhao H, Bian L, Li P, Yu L, Wu Y, Lin G. Rapid and Sensitive Detection of anti-SARS-CoV-2 IgG, Using Lanthanide-Doped Nanoparticles-Based Lateral Flow Immunoassay. Anal Chem. 2020 May 19;92(10):7226-7231. doi: 10.1021/acs.analchem.0c00784. Epub 2020 May 5.
- Joung J, Ladha A, Saito M, Kim NG, Woolley AE, Segel M, Barretto RPJ, Ranu A, Macrae RK, Faure G, Ioannidi EI, Krajeski RN, Bruneau R, Huang MW, Yu XG, Li JZ, Walker BD, Hung DT, Greninger AL, Jerome KR, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Zhang F. Detection of SARS-CoV-2 with SHERLOCK One-Pot Testing. N Engl J Med. 2020 Oct 8;383(15):1492-1494. doi: 10.1056/NEJMc2026172. Epub 2020 Sep 16. No abstract available.
- Chen Z, Wu Q, Chen J, Ni X, Dai J. A DNA Aptamer Based Method for Detection of SARS-CoV-2 Nucleocapsid Protein. Virol Sin. 2020 Jun;35(3):351-354. doi: 10.1007/s12250-020-00236-z. Epub 2020 May 25. No abstract available.
- Zhen W, Berry GJ. Development of a New Multiplex Real-Time RT-PCR Assay for Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Detection. J Mol Diagn. 2020 Dec;22(12):1367-1372. doi: 10.1016/j.jmoldx.2020.09.004. Epub 2020 Sep 19.
- Khan S, Tombuloglu H, Hassanein SE, Rehman S, Bozkurt A, Cevik E, Abdel-Ghany S, Nabi G, Ali A, Sabit H. Coronavirus diseases 2019: Current biological situation and potential therapeutic perspective. Eur J Pharmacol. 2020 Nov 5;886:173447. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173447. Epub 2020 Aug 5.
- Yan C, Cui J, Huang L, Du B, Chen L, Xue G, Li S, Zhang W, Zhao L, Sun Y, Yao H, Li N, Zhao H, Feng Y, Liu S, Zhang Q, Liu D, Yuan J. Rapid and visual detection of 2019 novel coronavirus (SARS-CoV-2) by a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay. Clin Microbiol Infect. 2020 Jun;26(6):773-779. doi: 10.1016/j.cmi.2020.04.001. Epub 2020 Apr 8.
- Moran A, Beavis KG, Matushek SM, Ciaglia C, Francois N, Tesic V, Love N. Detection of SARS-CoV-2 by Use of the Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2 and Roche cobas SARS-CoV-2 Assays. J Clin Microbiol. 2020 Jul 23;58(8):e00772-20. doi: 10.1128/JCM.00772-20. Print 2020 Jul 23. No abstract available.
Tanulmányi rekorddátumok
Tanulmány főbb dátumok
Tanulmány kezdete (Tényleges)
Elsődleges befejezés (Tényleges)
A tanulmány befejezése (Tényleges)
Tanulmányi regisztráció dátumai
Először benyújtva
Először nyújtották be, amely megfelel a minőségbiztosítási kritériumoknak
Első közzététel (Tényleges)
Tanulmányi rekordok frissítései
Utolsó frissítés közzétéve (Tényleges)
Az utolsó frissítés elküldve, amely megfelel a minőségbiztosítási kritériumoknak
Utolsó ellenőrzés
Több információ
A tanulmányhoz kapcsolódó kifejezések
További vonatkozó MeSH feltételek
Egyéb vizsgálati azonosító számok
- BANGASURE RT-PCR Kit
Terv az egyéni résztvevői adatokhoz (IPD)
Tervezi megosztani az egyéni résztvevői adatokat (IPD)?
IPD terv leírása
Gyógyszer- és eszközinformációk, tanulmányi dokumentumok
Egy amerikai FDA által szabályozott gyógyszerkészítményt tanulmányoz
Egy amerikai FDA által szabályozott eszközterméket tanulmányoz
Ezt az információt közvetlenül a clinicaltrials.gov webhelyről szereztük be, változtatás nélkül. Ha bármilyen kérése van vizsgálati adatainak módosítására, eltávolítására vagy frissítésére, kérjük, írjon a következő címre: register@clinicaltrials.gov. Amint a változás bevezetésre kerül a clinicaltrials.gov oldalon, ez a webhelyünkön is automatikusan frissül. .