- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT02612350
Utilité de l'ADN des tumeurs circulantes plasmatiques (ADNct) chez les sujets asymptomatiques pour la détection des maladies néoplasiques (H1000)
Aperçu de l'étude
Statut
Intervention / Traitement
Description détaillée
Les objectifs de cette étude sont d'obtenir des échantillons de sang humain de sujets asymptomatiques qui n'ont jamais reçu de diagnostic de cancer, mais qui peuvent présenter un risque accru de cancer en raison de l'hérédité, des expositions, de l'âge ou des antécédents familiaux afin d'évaluer la validité du dépistage sain mais patients à risque de cancer via l'analyse de l'ADNct.
Plus précisément, les échantillons de sang seront prélevés sur des personnes qui ont répondu à un questionnaire de santé auto-administré qui dépiste un risque plus élevé de contracter un cancer. Chaque participant sera invité à fournir un échantillon de sang de 30 ml qui sera prélevé par un fournisseur de soins primaires (PCP) ou un phlébotomiste agréé. Les spécimens recueillis au cours de l'étude peuvent également être utilisés dans la recherche et le développement de tests de génétique moléculaire nouveaux ou modifiés. Les résultats de ces études seront utilisés pour approfondir la compréhension de l'utilisation de l'ADNct pour la détection et la surveillance du cancer chez l'homme.
Les échantillons sanguins sont prélevés dans des tubes de prélèvement sanguin (BCT) appelés Cell-Free DNA BCT® fabriqués par Streck et destinés au prélèvement, à la stabilisation et au transport de l'ADN plasmatique acellulaire. Ce dispositif stabilise et préserve également l'ADN génomique cellulaire présent dans les cellules sanguines nucléées et les cellules épithéliales circulantes (cellules tumorales) présentes dans le sang total. Ce produit n'a pas été autorisé par la Food and Drug Administration des États-Unis pour une utilisation diagnostique in vitro et est étiqueté par Streck à des fins de recherche uniquement. En vertu des réglementations CLIA (Clinical Laboratory Improvement Amendments), les laboratoires sont autorisés à valider et à utiliser, dans le cadre d'un test développé en laboratoire (LDT), des dispositifs qui n'ont pas été autorisés ou approuvés par la FDA. Pathway Genomics a validé le système d'analyse moléculaire CancerInterceptTM Detect avec les tubes Streck, conformément à CLIA.
Une fois que l'échantillon a été prélevé et envoyé à Pathway par le médecin ou le phlébotomiste qui prélève les échantillons, tous les autres traitements et tests sont effectués par le personnel de laboratoire de Pathway. L'analyse commence par la séparation du plasma du reste de l'échantillon de sang. cfDNA sera ensuite isolé de chaque échantillon. La quantité de cfDNA est mesurée puis l'échantillon est amplifié par PCR pour le séquençage de nouvelle génération. Les résultats du séquençage seront ensuite analysés pour la présence d'une ou plusieurs des 96 mutations analysées dans ce test. Les données sont ensuite examinées et un rapport sera généré.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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California
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San Diego, California, États-Unis, 92121
- Pathway Genomics
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-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
- fort antécédent familial de cancer
- porteur connu d'un variant pathogène dans un gène indiquant un risque accru de cancer, par exemple, dans les gènes BRCA1 ou TP53.
- exposition à des toxines environnementales, à des agents cancérigènes ou mutagènes, y compris, mais sans s'y limiter, au tabac, aux radiations, à l'amiante, à une exposition chimique industrielle de longue durée
- âge égal ou supérieur à 50 ans
Critère d'exclusion:
- diagnostic antérieur de cancer sauf carcinome basocellulaire
- aucun facteur de risque qui expose la personne à un risque élevé
- moins de 18 ans
- les personnes qui refusent de signer le formulaire de consentement approuvé par la CISR
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Risque accru de développement du cancer
Le groupe doit inclure au moins 1 000 personnes présentant un risque élevé de développer un cancer.
Le risque est évalué en remplissant un questionnaire sur les antécédents cliniques.
Des exemples de tels sujets incluent ceux qui ont des variantes pathogènes connues du syndrome du cancer héréditaire sans diagnostic de cancer, avec des antécédents familiaux importants de cancer du sein, de l'ovaire, du côlon ou du poumon ou de mélanome, ou d'autres antécédents importants de cancer mais sans diagnostic moléculaire préalable, les gros fumeurs ou ceux exposés à des agents cancérigènes et mutagènes.
Les personnes qui répondent aux critères d'inclusion subiront un isolement de l'ADN acellulaire et une analyse de l'ADN de la tumeur circulante (ctDNA) pour la détection des mutations génétiques associées au développement possible d'une tumeur maligne.
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L'ADN acellulaire (cfDNA) est isolé à partir d'un échantillon de plasma sanguin et testé pour la présence de 96 mutations spécifiques bien décrites dans 9 gènes responsables du cancer.
La présence de plus de 2 copies d'une mutation peut indiquer la présence d'une tumeur maligne.
Un suivi avec le médecin du sujet serait nécessaire pour un examen et tout test supplémentaire que le médecin souhaite effectuer pour évaluer plus avant le développement d'un cancer.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Nombre de sujets trouvés avec une ou plusieurs des 96 mutations de l'ADNct
Délai: 1 an
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Une cohorte de 1 000 personnes ou plus présentant un risque élevé de développer un cancer sera testée pour la présence de 96 mutations bien décrites dans 9 gènes moteurs du cancer via l'analyse de l'ADNc.
Le nombre d'individus porteurs d'une ou plusieurs des 96 mutations testées sera évalué.
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1 an
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Nombre de copies d'allèles mutants trouvés chez les sujets positifs
Délai: 1 an
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Parmi la cohorte de sujets inclus dans l'étude chez laquelle une ou plusieurs des 96 mutations de l'ADNct sont détectées, le nombre de copies par échantillon de plasma analysé sera calculé.
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1 an
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Pourcentage de ctDNA trouvé dans la quantité totale d'ADN libre circulant (cfDNA)
Délai: 1 an
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Dans les échantillons contenant une ou plusieurs mutations d'ADNc, le pourcentage d'ADNc dans la quantité totale d'ADNc sera calculé.
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1 an
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Nombre de sujets avec une ou plusieurs des 96 mutations de l'ADNct qui développent un cancer
Délai: 1 à 5 ans
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Les 1000 personnes ou plus dans l'étude seront suivies pendant 1 à 5 ans pour évaluer le développement d'une tumeur maligne.
Une attention particulière sera portée à la cohorte dont les tests initiaux indiquent la présence d'ADNct.
Les sujets peuvent être retestés au fil du temps pour montrer des niveaux changeants d'ADNct.
Leurs propres médecins guideront toutes les études de suivi telles que l'imagerie ou d'autres tests de laboratoire.
Le test est conçu comme un moyen de trouver des cas de cancer chez les personnes présentant un risque élevé de développer un cancer.
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1 à 5 ans
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Glenn Braunstein, MD, Pathway Genomics
- Directeur d'études: Anja Kammesheidt, PhD, Pathway Genomics
Publications et liens utiles
Publications générales
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Freidin MB, Freydina DV, Leung M, Montero Fernandez A, Nicholson AG, Lim E. Circulating tumor DNA outperforms circulating tumor cells for KRAS mutation detection in thoracic malignancies. Clin Chem. 2015 Oct;61(10):1299-304. doi: 10.1373/clinchem.2015.242453. Epub 2015 Aug 13.
- Newman AM, Bratman SV, To J, Wynne JF, Eclov NC, Modlin LA, Liu CL, Neal JW, Wakelee HA, Merritt RE, Shrager JB, Loo BW Jr, Alizadeh AA, Diehn M. An ultrasensitive method for quantitating circulating tumor DNA with broad patient coverage. Nat Med. 2014 May;20(5):548-54. doi: 10.1038/nm.3519. Epub 2014 Apr 6.
- Kidess E, Heirich K, Wiggin M, Vysotskaia V, Visser BC, Marziali A, Wiedenmann B, Norton JA, Lee M, Jeffrey SS, Poultsides GA. Mutation profiling of tumor DNA from plasma and tumor tissue of colorectal cancer patients with a novel, high-sensitivity multiplexed mutation detection platform. Oncotarget. 2015 Feb 10;6(4):2549-61. doi: 10.18632/oncotarget.3041.
- Perrone F, Lampis A, Bertan C, Verderio P, Ciniselli CM, Pizzamiglio S, Frattini M, Nucifora M, Molinari F, Gallino G, Gariboldi M, Meroni E, Leo E, Pierotti MA, Pilotti S. Circulating free DNA in a screening program for early colorectal cancer detection. Tumori. 2014 Mar-Apr;100(2):115-21. doi: 10.1177/030089161410000201.
- Lin PC, Lin JK, Lin CH, Lin HH, Yang SH, Jiang JK, Chen WS, Chou CC, Tsai SF, Chang SC. Clinical Relevance of Plasma DNA Methylation in Colorectal Cancer Patients Identified by Using a Genome-Wide High-Resolution Array. Ann Surg Oncol. 2015 Dec;22 Suppl 3:S1419-27. doi: 10.1245/s10434-014-4277-2. Epub 2014 Dec 4.
- Spindler KL, Appelt AL, Pallisgaard N, Andersen RF, Brandslund I, Jakobsen A. Cell-free DNA in healthy individuals, noncancerous disease and strong prognostic value in colorectal cancer. Int J Cancer. 2014 Dec 15;135(12):2984-91. doi: 10.1002/ijc.28946. Epub 2014 Jun 17.
- Beaver JA, Jelovac D, Balukrishna S, Cochran R, Croessmann S, Zabransky DJ, Wong HY, Toro PV, Cidado J, Blair BG, Chu D, Burns T, Higgins MJ, Stearns V, Jacobs L, Habibi M, Lange J, Hurley PJ, Lauring J, VanDenBerg D, Kessler J, Jeter S, Samuels ML, Maar D, Cope L, Cimino-Mathews A, Argani P, Wolff AC, Park BH. Detection of cancer DNA in plasma of patients with early-stage breast cancer. Clin Cancer Res. 2014 May 15;20(10):2643-2650. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-2933. Epub 2014 Feb 6.
- Oshiro C, Kagara N, Naoi Y, Shimoda M, Shimomura A, Maruyama N, Shimazu K, Kim SJ, Noguchi S. PIK3CA mutations in serum DNA are predictive of recurrence in primary breast cancer patients. Breast Cancer Res Treat. 2015 Apr;150(2):299-307. doi: 10.1007/s10549-015-3322-6. Epub 2015 Mar 4.
- Bianchi DW, Chudova D, Sehnert AJ, Bhatt S, Murray K, Prosen TL, Garber JE, Wilkins-Haug L, Vora NL, Warsof S, Goldberg J, Ziainia T, Halks-Miller M. Noninvasive Prenatal Testing and Incidental Detection of Occult Maternal Malignancies. JAMA. 2015 Jul 14;314(2):162-9. doi: 10.1001/jama.2015.7120.
- Kinugasa H, Nouso K, Miyahara K, Morimoto Y, Dohi C, Tsutsumi K, Kato H, Matsubara T, Okada H, Yamamoto K. Detection of K-ras gene mutation by liquid biopsy in patients with pancreatic cancer. Cancer. 2015 Jul 1;121(13):2271-80. doi: 10.1002/cncr.29364. Epub 2015 Mar 30.
- Sanmamed MF, Fernandez-Landazuri S, Rodriguez C, Zarate R, Lozano MD, Zubiri L, Perez-Gracia JL, Martin-Algarra S, Gonzalez A. Quantitative cell-free circulating BRAFV600E mutation analysis by use of droplet digital PCR in the follow-up of patients with melanoma being treated with BRAF inhibitors. Clin Chem. 2015 Jan;61(1):297-304. doi: 10.1373/clinchem.2014.230235. Epub 2014 Nov 19.
- Hosny G, Farahat N, Tayel H, Hainaut P. Ser-249 TP53 and CTNNB1 mutations in circulating free DNA of Egyptian patients with hepatocellular carcinoma versus chronic liver diseases. Cancer Lett. 2008 Jun 18;264(2):201-8. doi: 10.1016/j.canlet.2008.01.031. Epub 2008 Mar 3.
- Izumchenko E, Chang X, Brait M, Fertig E, Kagohara LT, Bedi A, Marchionni L, Agrawal N, Ravi R, Jones S, Hoque MO, Westra WH, Sidransky D. Targeted sequencing reveals clonal genetic changes in the progression of early lung neoplasms and paired circulating DNA. Nat Commun. 2015 Sep 16;6:8258. doi: 10.1038/ncomms9258.
- Hamakawa T, Kukita Y, Kurokawa Y, Miyazaki Y, Takahashi T, Yamasaki M, Miyata H, Nakajima K, Taniguchi K, Takiguchi S, Mori M, Doki Y, Kato K. Monitoring gastric cancer progression with circulating tumour DNA. Br J Cancer. 2015 Jan 20;112(2):352-6. doi: 10.1038/bjc.2014.609. Epub 2014 Dec 9.
- Wang Y, Springer S, Mulvey CL, Silliman N, Schaefer J, Sausen M, James N, Rettig EM, Guo T, Pickering CR, Bishop JA, Chung CH, Califano JA, Eisele DW, Fakhry C, Gourin CG, Ha PK, Kang H, Kiess A, Koch WM, Myers JN, Quon H, Richmon JD, Sidransky D, Tufano RP, Westra WH, Bettegowda C, Diaz LA Jr, Papadopoulos N, Kinzler KW, Vogelstein B, Agrawal N. Detection of somatic mutations and HPV in the saliva and plasma of patients with head and neck squamous cell carcinomas. Sci Transl Med. 2015 Jun 24;7(293):293ra104. doi: 10.1126/scitranslmed.aaa8507.
- Reinert T, Scholer LV, Thomsen R, Tobiasen H, Vang S, Nordentoft I, Lamy P, Kannerup AS, Mortensen FV, Stribolt K, Hamilton-Dutoit S, Nielsen HJ, Laurberg S, Pallisgaard N, Pedersen JS, Orntoft TF, Andersen CL. Analysis of circulating tumour DNA to monitor disease burden following colorectal cancer surgery. Gut. 2016 Apr;65(4):625-34. doi: 10.1136/gutjnl-2014-308859. Epub 2015 Feb 4.
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