Techniques d'aspiration humide modifiées par rapport aux techniques capillaires pour l'aspiration à l'aiguille fine guidée par l'EUS et la biopsie de lésions solides

Tous les patients adultes qui subissent une EUS pour des lésions solides au laboratoire de gastro-entérologie de Loma Linda University Health. Ces patients seront recrutés au moment précédant leur endoscopie au laboratoire de gastro-entérologie. On leur expliquera les objectifs, la randomisation et les interventions de l'étude. Les informations collectées sur les patients, ainsi que les étapes de sauvegarde des informations, seront expliquées.

Les patients seront assignés au hasard aux bras des techniques d'aspiration capillaire ou humide selon le programme de randomisation informatisé qui a déjà été généré.

Tous les patients subiront une EUS de routine sous possible sédation modérée ou anesthésie générale, avec FNA/FNB. Une aiguille Cook Pro-core de calibre 22 sera utilisée pour toutes les procédures. Pour chaque lésion subissant une procédure FNA/FNB, un total de 4 passages seront effectués en utilisant la technique choisie.

L'aspect recherche différencie la méthode d'acquisition tissulaire : technique d'aspiration humide modifiée versus la technique capillaire "slow pull".

Pour la technique d'aspiration humide modifiée :

1. Le stylet sera retiré au début de la procédure. Il ne sera pas utilisé sauf s'il est nécessaire de déboucher l'aiguille. Chaque décolmatage, si nécessaire, sera noté.
2. Une seringue d'aspiration de 10 ml remplie de solution saline sera d'abord utilisée pour amorcer l'aiguille jusqu'à ce qu'il reste environ 5 ml de solution saline dans la seringue
3. Ensuite, le piston sera retiré contre le robinet à trois voies verrouillé pour établir le vide. Après cette étape initiale, la seringue contenant une solution saline ne sera pas retirée pendant toute la procédure, à moins que des problèmes techniques ne surviennent, par ex. débouchage.
4. Une fois l'aiguille introduite dans la lésion d'intérêt, l'aspiration sera rétablie en ouvrant le robinet à trois voies.
5. 10 à 20 mouvements d'aiguille de va-et-vient seront effectués, en insistant sur les bords de la lésion avec un éventail.
6. À la fin de chaque passage, le robinet à trois voies sera fermé avant le retrait de l'aiguille de la lésion, pour empêcher l'aspiration de l'échantillon dans la seringue elle-même.
7. Avant les étapes de collecte de l'échantillon, le vide sera relâché, et après quoi le robinet à trois voies sera tourné en position ouverte.
8. Ensuite, le piston de la seringue sera ensuite poussé pour recueillir la première goutte de l'échantillon sur la lame de verre pour le frottis (faisant ainsi deux frottis de verre pour chaque passage, qui seront ensuite conservés dans l'alcool), puis le reste sera expurgé sur le formol pour bloc cellulaire.
9. Ensuite, le vide sera rétabli comme indiqué à l'étape 3, prêt pour d'autres passages d'aiguille.
10. Pour les trois premiers passages, la collecte du frottis et du bloc cellulaire sera effectuée. Pour le dernier passage, tous les spécimens seront collectés dans le même bloc cellulaire. Ainsi, 6 lames au total (qui seront numérotées ou lettrées consécutivement pour l'identification) et 1 bocal de formol pour bloc cellulaire seront fabriqués pour chaque patient/lésion.
11. Encore une fois, à moins que des problèmes techniques ne surviennent, la seringue ne sera pas retirée une fois l'amorçage initial effectué et le vide établi. Tout problème technique sera noté dans le rapport de procédure.

Pour la technique capillaire « slow pull » :

1. Avec le stylet légèrement tiré vers l'arrière, l'aiguille sera introduite dans la lésion d'intérêt, moment auquel le stylet sera enfoncé pour éliminer tout matériau contaminant.
2. Le stylet sera lentement retiré par un assistant jusqu'à ce qu'il soit complètement retiré.
3. 10 à 20 mouvements d'aiguille de va-et-vient seront effectués, en insistant sur les bords de la lésion avec un éventail.
4. Après avoir retiré l'aiguille de la lésion, le stylet sera réinséré. La première goutte sera collectée pour le frottis tissulaire, tandis que le reste sera d'abord expurgé par un stylet, une solution saline, puis de l'air dans un bocal de formol pour le bloc cellulaire.
5. Le stylet sera alors réintroduit, prêt pour d'autres passages.
6. Pour les trois premiers passages, la collecte du frottis et du bloc cellulaire sera effectuée. Pour le dernier passage, tous les spécimens seront collectés dans le même bloc cellulaire. Ainsi, 6 lames au total (qui seront numérotées ou lettrées consécutivement pour l'identification) et 1 bocal de formol pour bloc cellulaire seront fabriqués pour chaque patient/lésion.

Manipulation des échantillons :

Les frottis de tissus subiront une coloration de Papanicolaou et les tissus conservés dans une solution de formol à 10 % seront traités pour le bloc cellulaire.

Les sujets feront un suivi auprès de la clinique de gastroentérologie et/ou de leur médecin référent. Le patient peut être appelé ou recevoir une lettre concernant les résultats de sa pathologie et pour un suivi supplémentaire au besoin, par routine