Nanoparticules PLGA piégeant la ciprofloxacine pour traiter les infections E-Fecalis en endodontie

Les procédures cliniques :

1. Première visite Le plan de traitement a été discuté avec les patients et leur acceptation de participer à l'étude a été obtenue par le biais d'un consentement éclairé.

   Les restaurations coronales et toute carie carieuse ont été retirées, les dents correctement restaurées, puis une digue en caoutchouc a été appliquée pour l'isolement. Une cavité d'accès a été préparée à l'aide d'une fraise de taille appropriée (Bur #3, Veterinary dental equipment, UK) et la surface de la dent a été désinfectée avant d'entrer dans les canaux radiculaires à l'aide d'hypochlorite de sodium à 2,5 %, puis son effet a été inhibé à l'aide de thiosulfate de sodium à 5 %. L'ancienne gutta percha a été retirée des deux tiers coronaires du canal radiculaire à l'aide de la fraise n° 3 sans utiliser de solvant. Une solution saline stérile a été utilisée pour l'irrigation. La perméabilité a été obtenue à l'aide de limes k manuelles #15 (et #10, la longueur de la dent a été déterminée à l'aide d'un localisateur d'apex électronique (localisateur d'apex électronique J Morita Root ZX, Morita Corporation, Japon). La gutta percha restante a été retirée à l'aide de limes k manuelles de plus en plus grandes (limes K, Mani, Japon) . Le récurage des parois à l'aide de limes manuelles a été effectué pour imbiber l'irrigant (solution saline stérile) avec des parties du film bactérien sur les parois du canal. Une pointe de papier stérile équivalente à la taille de la plus grande lime atteignant la longueur de travail a été placée pendant une minute dans le canal et située à un millimètre de la longueur de la dent, cela représentait le premier échantillon pour l'évaluation bactériologique (S1) puis la pointe de papier a été placée dans 1 ml milieu stérile. Le nettoyage complet et la mise en forme du canal ont été effectués en utilisant 15 ml d'hypchlorite de sodium à 2,5% comme irrigant avec une aiguille à évent latéral de calibre 27, placée à un millimètre de la longueur de travail et des limes manuelles de type k, la lime apicale principale a été déterminée selon chaque cas, où sa taille a été augmentée 3 fois plus que le fichier initial avec également des éclats de dentine blanche obtenus. Après nettoyage complet et mise en forme, l'action de l'hypochlorite de sodium a été inhibée en utilisant 10 ml de thiosulfate de sodium à 5 %. Le thiosulfate de sodium a été rincé du canal en utilisant 5 ml de solution saline stérile. Une pointe de papier stérile équivalente à la taille de la lime apicale principale a été placée pendant une minute dans le canal, à un millimètre de la longueur de travail pour imbiber le liquide et cela représentait le deuxième échantillon pour l'évaluation bactériologique (S2), ensuite, la pointe de papier est placés dans 1 ml de milieu stérile, puis les patients ont été répartis au hasard en fonction de l'utilisation d'un médicament intracanalaire dans les cinq groupes pendant 7 jours. Enfin, une boulette de coton et un remplissage temporaire (Orafill-G) ont été appliqués dans des conditions d'asepsie complètes

2. Deuxième visite

   • Une évaluation des signes cliniques et des symptômes a été effectuée.

3. Critères cliniques de cicatrisation :

1. Pas de douleur à la percussion 2. Pas de douleur à la palpation 3. Dent asymptomatique et fonctionnelle Si le patient présentait ces signes cliniques, les canaux radiculaires étaient obturés. Si le patient avait tout ou un d'entre eux, les étapes de nettoyage, de mise en forme et de médication étaient répétées et le patient reprogrammé pour une autre visite après 7 jours. Si le patient était asymptomatique et que la dent était fonctionnelle, une obturation temporaire était retirée sous isolement par digue en caoutchouc. Vingt ml de solution saline stérile ont été utilisés pour retirer les médicaments intracanalaires jusqu'à ce qu'ils ressortent clairement du canal, puis une pointe de papier stérile a été placée dans le canal à un millimètre de la longueur de travail pour prélever le dernier échantillon (S3), une pointe de papier a été placée dans 1 ml de milieu stérile, enfin l'ajustement du cône maître et l'obturation ont été effectués.

Ces pointes de papier stériles avec trois échantillons (S1, S2, S3) ont été placées séparément dans des tubes Falcon stériles, étiquetés selon le type de médicament et l'ordre de l'échantillon. Un ml de bouillon de soja trypsique stérile (TSB) additionné de 0,5 % de glucose (TSBG) a été ajouté à chaque tube, puis les tubes ont été transférés au laboratoire de microbiologie dans les 2-3 heures suivant la procédure d'échantillonnage dans une glacière 4. Évaluation microbiologique Tous les tests microbiologiques étapes ont été effectuées à proximité d'une hotte à flux trilaminaire pour éviter la contamination par l'air des échantillons.

5. Pourcentage total de réduction bactérienne : Un total de 100 μl de chaque échantillon contenant (4 mg) de médicament en plus de la pâte de Ca (OH) 2 et (4 mg) de pâte CIP ont été aspirés à l'aide d'une micropipette stérile de chaque tube. Un inoculum stérile a été utilisé pour ajouter des échantillons au milieu cerveau-cœur. Les échantillons ont été étiquetés selon les groupes de médicaments et incubés pendant 24 heures à 37 ºC. Après incubation, le nombre total de dénombrements bactériens a été estimé