- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT02976714
Identificazione di biomarcatori epigenetici predittivi della gravità della malattia polmonare nella fibrosi cistica (MethylBiomark)
Panoramica dello studio
Descrizione dettagliata
La fibrosi cistica (CF) è una malattia autosomica recessiva derivante da mutazioni nel gene CFTR. CFTR codifica per un canale del cloruro, espresso principalmente sulla membrana apicale delle cellule epiteliali. La disfunzione del CFTR induce l'ispessimento del muco, causando molteplici disturbi nei tratti respiratorio, digestivo e riproduttivo. Nei pazienti CF, la malattia polmonare è la principale causa di morbilità e mortalità, e la sua gravità è variabile tra i pazienti CF, anche tra quelli con lo stesso genotipo. Questa variabilità clinica dipende da due fattori: genetici (alleli complessi del gene CFTR e geni modificatori) e ambientali. I fattori genetici sono stati ampiamente esplorati e sono stati identificati diversi geni modificatori. Al contrario, i fattori ambientali sono ancora poco conosciuti. È ben noto che i fattori ambientali modificano il fenotipo agendo sui segni epigenetici (es. metilazione del DNA, modificazione dell'istone) presenti nel genoma. Le modificazioni epigenetiche regolano e modulano l'espressione genica.
In un precedente abbiamo profilato la metilazione del DNA in tutto il genoma in campioni di cellule epiteliali nasali da 32 pazienti CF e 24 controlli sani. I pazienti CF omozigoti per la mutazione p.Phe508del e di età > 18 anni sono stati stratificati in base alla gravità della malattia polmonare. Attraverso questo studio, abbiamo identificato 187 regioni genomiche (dinucleotidi CpG) differenzialmente metilate tra pazienti CF con malattia polmonare lieve e pazienti CF con malattia polmonare grave. Il presente progetto mira a identificare biomarcatori epigenetici predittivi della gravità della malattia polmonare, tra queste 187 regioni. Mentre lo studio precedente è stato condotto su DNA genomico estratto da cellule epiteliali nasali, nel presente progetto utilizzeremo un modello non invasivo: l'espettorato spontaneo.
Ipotesi: alcune regioni genomiche differenzialmente metilate tra pazienti CF lievi e gravi possono essere utilizzate come biomarcatori epigenetici predittivi della gravità della malattia polmonare nella fibrosi cistica.
Obiettivi: (i) identificare biomarcatori epigenetici predittivi della gravità della malattia polmonare tra le regioni genomiche differenzialmente metilate tra pazienti CF lievi e gravi, (ii) caratterizzare un modello cellulare non invasivo, espettorato spontaneo, per l'analisi di biomarcatori epigenetici del polmone gravità della malattia nella FC, (iii) analizzare le variazioni nella metilazione del DNA per uno stesso paziente nel tempo (al momento dell'inclusione, 6 mesi, 12 mesi e 18 mesi)
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
-
-
-
Montpellier, Francia, 34295
- Uhmontpellier
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- consenso libero e informato ottenuto e consenso firmato
- soggetto coperto da regime assicurativo statale
- donne e uomini dai 12 ai 30 anni
- soggetto affetto da fibrosi cistica, portatore di due gravi mutazioni in trans (nello stesso allele) nel gene CFTR
- soggetto in grado di realizzare una spirometria prima e durante lo studio
Criteri di esclusione:
- soggetto in un periodo di esclusione di uno studio precedente
- soggetto posto sotto tutela giurisdizionale, tutela o vigilanza
- impossibilità di dare informazioni informate al soggetto
- soggetto che non legge correntemente il francese
- gravidanza
- allattamento al seno
- soggetto trapiantato
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Prevenzione
- Assegnazione: N / A
- Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
Altro: Pazienti con FC
I pazienti CF portano un espettorato spontaneo che viene prodotto nel contesto delle sessioni di drenaggio bronchiale condotte come parte delle cure abituali.
|
I pazienti CF portano un espettorato spontaneo che viene prodotto nel contesto delle sessioni di drenaggio bronchiale condotte come parte delle cure abituali (inclusione, 6 mesi, 12 mesi, 18 mesi). La raccolta dell'espettorato spontaneo viene effettuata all'interno delle sedute di drenaggio bronchiale, che vengono effettuate di routine ad ogni visita. L'espettorato spontaneo viene raccolto in un contenitore sterile. Per non contaminare l'espettorato con le cellule epiteliali buccali verrà chiesto ai pazienti di sciacquarsi la bocca prima dell'espettorato. |
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Metilazione del DNA
Lasso di tempo: al momento dell'inserimento
|
Espettorazione spontanea al basale
|
al momento dell'inserimento
|
|
Metilazione del DNA
Lasso di tempo: 6 mesi
|
Espettorazione spontanea a 6 mesi
|
6 mesi
|
|
Metilazione del DNA
Lasso di tempo: 12 mesi
|
Espettorazione spontanea a 12 mesi
|
12 mesi
|
|
Metilazione del DNA
Lasso di tempo: 18 mesi
|
Espettorazione spontanea a 18 mesi
|
18 mesi
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Davide CAIMMI, University Hospital, Montpellier
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Efthimiadis A, Spanevello A, Hamid Q, Kelly MM, Linden M, Louis R, Pizzichini MM, Pizzichini E, Ronchi C, Van Overvel F, Djukanovic R. Methods of sputum processing for cell counts, immunocytochemistry and in situ hybridisation. Eur Respir J Suppl. 2002 Sep;37:19s-23s. doi: 10.1183/09031936.02.00001902. No abstract available.
- Audrezet MP, Munck A, Scotet V, Claustres M, Roussey M, Delmas D, Ferec C, Desgeorges M. Comprehensive CFTR gene analysis of the French cystic fibrosis screened newborn cohort: implications for diagnosis, genetic counseling, and mutation-specific therapy. Genet Med. 2015 Feb;17(2):108-16. doi: 10.1038/gim.2014.113. Epub 2014 Aug 14.
- Bergougnoux A, Rivals I, Liquori A, Raynal C, Varilh J, Magalhaes M, Perez MJ, Bigi N, Des Georges M, Chiron R, Squalli-Houssaini AS, Claustres M, De Sario A. A balance between activating and repressive histone modifications regulates cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) expression in vivo. Epigenetics. 2014 Jul;9(7):1007-17. doi: 10.4161/epi.28967. Epub 2014 Apr 29.
- Bergougnoux A, Claustres M, De Sario A. Nasal epithelial cells: a tool to study DNA methylation in airway diseases. Epigenomics. 2015;7(1):119-26. doi: 10.2217/epi.14.65.
- Besaratinia A, Maas LM, Brouwer EM, Kleinjans JC, Van Schooten FJ. Comparison between smoking-related DNA adduct analysis in induced sputum and peripheral blood lymphocytes. Carcinogenesis. 2000 Jul;21(7):1335-40. doi: 10.1093/carcin/21.7.1335.
- Brennan ML, Schrijver I. Cystic Fibrosis: A Review of Associated Phenotypes, Use of Molecular Diagnostic Approaches, Genetic Characteristics, Progress, and Dilemmas. J Mol Diagn. 2016 Jan;18(1):3-14. doi: 10.1016/j.jmoldx.2015.06.010. Epub 2015 Nov 26.
- Clarke LA, Sousa L, Barreto C, Amaral MD. Changes in transcriptome of native nasal epithelium expressing F508del-CFTR and intersecting data from comparable studies. Respir Res. 2013 Mar 28;14(1):38. doi: 10.1186/1465-9921-14-38.
- Collaco JM, Blackman SM, McGready J, Naughton KM, Cutting GR. Quantification of the relative contribution of environmental and genetic factors to variation in cystic fibrosis lung function. J Pediatr. 2010 Nov;157(5):802-7.e1-3. doi: 10.1016/j.jpeds.2010.05.018. Epub 2010 Jun 30.
- Corvol H, Thompson KE, Tabary O, le Rouzic P, Guillot L. Translating the genetics of cystic fibrosis to personalized medicine. Transl Res. 2016 Feb;168:40-49. doi: 10.1016/j.trsl.2015.04.008. Epub 2015 Apr 15.
- Cutting GR. Modifier genes in Mendelian disorders: the example of cystic fibrosis. Ann N Y Acad Sci. 2010 Dec;1214:57-69. doi: 10.1111/j.1749-6632.2010.05879.x.
- Eckrich J, Zissler UM, Serve F, Leutz P, Smaczny C, Schmitt-Grohe S, Fussbroich D, Schubert R, Zielen S, Eickmeier O. Airway inflammation in mild cystic fibrosis. J Cyst Fibros. 2017 Jan;16(1):107-115. doi: 10.1016/j.jcf.2016.05.016. Epub 2016 Jun 11.
- Gu Y, Harley IT, Henderson LB, Aronow BJ, Vietor I, Huber LA, Harley JB, Kilpatrick JR, Langefeld CD, Williams AH, Jegga AG, Chen J, Wills-Karp M, Arshad SH, Ewart SL, Thio CL, Flick LM, Filippi MD, Grimes HL, Drumm ML, Cutting GR, Knowles MR, Karp CL. Identification of IFRD1 as a modifier gene for cystic fibrosis lung disease. Nature. 2009 Apr 23;458(7241):1039-42. doi: 10.1038/nature07811. Epub 2009 Feb 25.
- Guzman L, Depix MS, Salinas AM, Roldan R, Aguayo F, Silva A, Vinet R. Analysis of aberrant methylation on promoter sequences of tumor suppressor genes and total DNA in sputum samples: a promising tool for early detection of COPD and lung cancer in smokers. Diagn Pathol. 2012 Jul 20;7:87. doi: 10.1186/1746-1596-7-87.
- Hanrahan JW, Sampson HM, Thomas DY. Novel pharmacological strategies to treat cystic fibrosis. Trends Pharmacol Sci. 2013 Feb;34(2):119-25. doi: 10.1016/j.tips.2012.11.006.
- Magalhaes M, Rivals I, Claustres M, Varilh J, Thomasset M, Bergougnoux A, Mely L, Leroy S, Corvol H, Guillot L, Murris M, Beyne E, Caimmi D, Vachier I, Chiron R, De Sario A. DNA methylation at modifier genes of lung disease severity is altered in cystic fibrosis. Clin Epigenetics. 2017 Feb 14;9:19. doi: 10.1186/s13148-016-0300-8. eCollection 2017.
- Magalhaes M, Tost J, Pineau F, Rivals I, Busato F, Alary N, Mely L, Leroy S, Murris M, Caimmi D, Claustres M, Chiron R, De Sario A. Dynamic changes of DNA methylation and lung disease in cystic fibrosis: lessons from a monogenic disease. Epigenomics. 2018 Aug;10(8):1131-1145. doi: 10.2217/epi-2018-0005. Epub 2018 Jul 27.
- McCarthy C, Dimitrov BD, Meurling IJ, Gunaratnam C, McElvaney NG. The CF-ABLE score: a novel clinical prediction rule for prognosis in patients with cystic fibrosis. Chest. 2013 May;143(5):1358-1364. doi: 10.1378/chest.12-2022.
- Ogilvie V, Passmore M, Hyndman L, Jones L, Stevenson B, Wilson A, Davidson H, Kitchen RR, Gray RD, Shah P, Alton EW, Davies JC, Porteous DJ, Boyd AC. Differential global gene expression in cystic fibrosis nasal and bronchial epithelium. Genomics. 2011 Nov;98(5):327-36. doi: 10.1016/j.ygeno.2011.06.008. Epub 2011 Jul 2.
- Oreo KM, Gibson PG, Simpson JL, Wood LG, McDonald VM, Baines KJ. Sputum ADAM8 expression is increased in severe asthma and COPD. Clin Exp Allergy. 2014 Mar;44(3):342-52. doi: 10.1111/cea.12223.
- Pineau F, Caimmi D, Magalhaes M, Fremy E, Mohamed A, Mely L, Leroy S, Murris M, Claustres M, Chiron R, De Sario A. Blood co-expression modules identify potential modifier genes of diabetes and lung function in cystic fibrosis. PLoS One. 2020 Apr 17;15(4):e0231285. doi: 10.1371/journal.pone.0231285. eCollection 2020.
- Schluchter MD, Konstan MW, Drumm ML, Yankaskas JR, Knowles MR. Classifying severity of cystic fibrosis lung disease using longitudinal pulmonary function data. Am J Respir Crit Care Med. 2006 Oct 1;174(7):780-6. doi: 10.1164/rccm.200512-1919OC. Epub 2006 Jul 20.
- Sood A, Petersen H, Blanchette CM, Meek P, Picchi MA, Belinsky SA, Tesfaigzi Y. Methylated Genes in Sputum Among Older Smokers With Asthma. Chest. 2012 Aug;142(2):425-431. doi: 10.1378/chest.11-2519.
- van Eijk KR, de Jong S, Boks MP, Langeveld T, Colas F, Veldink JH, de Kovel CG, Janson E, Strengman E, Langfelder P, Kahn RS, van den Berg LH, Horvath S, Ophoff RA. Genetic analysis of DNA methylation and gene expression levels in whole blood of healthy human subjects. BMC Genomics. 2012 Nov 17;13:636. doi: 10.1186/1471-2164-13-636.
- Wright JM, Merlo CA, Reynolds JB, Zeitlin PL, Garcia JG, Guggino WB, Boyle MP. Respiratory epithelial gene expression in patients with mild and severe cystic fibrosis lung disease. Am J Respir Cell Mol Biol. 2006 Sep;35(3):327-36. doi: 10.1165/rcmb.2005-0359OC. Epub 2006 Apr 13.
- Pineau F, Caimmi D, Taviaux S, Reveil M, Brosseau L, Rivals I, Drevait M, Vachier I, Claustres M, Chiron R, De Sario A. DNA Methylation at ATP11A cg11702988 Is a Biomarker of Lung Disease Severity in Cystic Fibrosis: A Longitudinal Study. Genes (Basel). 2021 Mar 19;12(3):441. doi: 10.3390/genes12030441.
- Tost J, Caimmi D, Pastore M, Reynes C, Busato F, Pineau F, Claustres M, Vachier I, Chiron R, De Sario A. DNA methylation predicts lung function and pulmonary exacerbation in sputum samples from patients with cystic fibrosis. Clin Epigenetics. 2025 Dec 5;18(1):10. doi: 10.1186/s13148-025-02032-6.
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Effettivo)
Completamento dello studio (Effettivo)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Stimato)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- RECHMPL16_0256
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .