再発または難治性の CD123+ 血液悪性腫瘍における CART123 T 細胞: 用量漸増第 I 相試験 (UHKT-CAR123-01)
再発/難治性 CD123+ 血液悪性腫瘍患者における抗 CD123 キメラ抗原受容体修飾自己 T 細胞 (CART123) の安全性と有効性: 用量漸増、非盲検、第 I 相試験
調査の概要
状態
介入・治療
詳細な説明
これは、難治性または再発性のCD123+ AML、MDS、ALL、またはBPDCNを有する最大18名の成人被験者を対象とした非盲検単群研究です。 リンパ球除去コンディショニングレジメンの後、被験者はスポンサーの製造施設から供給される自己CAR123 Tリンパ球を単回投与されます。
CART123 用量は、さらなる研究に推奨される CART123 用量を確立するために、加速ベイジアン最適間隔 (BOIN) 設計を使用して、事前に定義された 3 つのステップで増加します。これは、最大耐量 (MTD) または最大実現可能用量 (MFD) のいずれかになります。最初に到達した。
IMP 製造中の CART123 の拡張が不十分であるために用量制限がある場合には、代替の投与スケジュールが採用されます。
CART123 の長期にわたるまたは不可逆的な血液毒性の可能性が懸念されるため、研究で募集されたすべての患者は造血幹細胞移植 (HSCT) の資格があり、移植センターによって特定され許可された同種造血幹細胞のドナーが必要です。 HSCT を実行するかどうかはケースバイケースで決定されます。
研究の種類
入学 (推定)
段階
- 初期フェーズ 1
連絡先と場所
研究場所
-
-
-
Prague、チェコ、12800
- Ustav hematologie a krevni transfuze / Institute of Hematology and Blood Transfusion
-
-
参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 大人
- 高齢者
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
CD123抗原陽性のAML、MDS-IB2、BPDCNまたはALLを有し、以下の疾患特有の基準のいずれかを満たしている患者:
a) AML 患者は、以下の基準のいずれかを満たしている場合に適格となります。
i) 少なくとも2サイクルの導入化学療法または1サイクルの高用量サルベージレジメンまたは4サイクルのアザシチジン併用ベネトクラクス投与後にCRまたはCRiに達しないと定義される難治性AML患者。または
ii) 2回目以降のAML再発または再発
iii) 同種HSCT後の再発。
b) ALL 患者は、以下の基準のいずれかを満たしている場合に適格となります。
i) CAR-19細胞療法に対して難治性または再発した疾患、または
ii) CD19 陰性再発は、TKI 阻害剤およびイノツズマブ オゾガマイシンによる治療の対象外。
c) BPDCN 患者は、以下の基準を満たす場合に適格となります。
i) 同種幹細胞移植の有無にかかわらず、化学療法後に難治性または再発した。
d) MDS-IB2 患者は、以下の基準のいずれかを満たしている場合に適格となります。
i) 少なくとも4サイクルのアザシチジンに難治性の疾患、またはアザシチジンベースの治療で進行中、または
ii) 導入化学療法に難治性の疾患、または
iii) 造血幹細胞移植後の再発。
- 悪性細胞上の CD123 発現はフローサイトメトリーまたは免疫組織化学によって確認されます。
- 年齢は18歳から70歳まで。
- 患者には同種造血幹細胞移植に適したドナーがいる。 ドナーの精密検査とクリアランスは、IMP 投与前に完了する必要があります。
- 患者はインフォームドコンセントを理解し、署名することができます。
- 妊娠の可能性のある女性: 登録時 (PSV) および訪問 1 時の妊娠検査が陰性。
- 利用可能な標準治療が存在しない、またはそのような治療の選択肢が枯渇した患者。
除外基準:
- IMPのいずれかの成分に対する既知の過敏症。
- -IMP投与前3か月以内の同種HSCT。
- 重度の制御不能な活動性感染症。
- 平均余命は8週間未満。
- 呼吸不全(酸素療法の必要性)。
- 重大な肝障害:ビリルビン > 50 µmol/L、AST または ALT > 正常上限の 4 倍。
- 血清クレアチニン > 180 µmol/L、乏尿、または急性透析の必要性を伴う急性腎損傷。
- 心エコー検査によるLVEF < 50%の心不全。
- 活動性グレード3~4の急性GvHDまたは重度の慢性GvHDの存在。
- 重篤な制御不能な神経学的併存疾患。
- IMP投与の4週間前およびIMP投与後90日以内に生ウイルスワクチンを接種している。
- 女性:妊娠中または授乳中。
永続的な性的禁欲がライフスタイルの選択でない限り、妊娠しやすい年齢の被験者:
- 妊娠の可能性がある女性患者が研究中に非常に効果的な避妊方法を使用することに消極的である、
- 性的パートナーが妊娠の可能性のある女性であり、研究中に非常に効果的な避妊方法を使用する意思がない男性患者。
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:処理
- 割り当て:なし
- 介入モデル:単一グループの割り当て
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
|---|---|
|
実験的:治療アーム
実験: 自己 CAR123 T リンパ球
|
抗 CD123 キメラ抗原受容体 (CAR) T 細胞 (CART123)
他の名前:
|
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
自己 CART123 細胞の安全性と忍容性
時間枠:28日、24ヶ月
|
サイトカイン放出症候群 (CRS) および免疫エフェクター細胞関連神経毒性症候群 (ICANS) については ASTCT コンセンサス等級付け基準、およびその他については有害事象共通用語基準 (CTCAE) v 5.0 によって等級付けされた IMP 関連有害事象 (AE) の累積発生率AE
|
28日、24ヶ月
|
|
血液学的回復率
時間枠:14日、28日、1年、12ヶ月目、24ヶ月目
|
血液学的回復率。輸血支援なしの絶対好中球数 (ANC) > 1x 10^9/L および血小板数 > 20x10^9/L として定義されます。
HSCT 前後の血液学的回復は個別に評価されます。
|
14日、28日、1年、12ヶ月目、24ヶ月目
|
|
さらなる研究のための CART123 細胞の投与量
時間枠:14日、28日、1年、12ヶ月目、24ヶ月目
|
IMP 投与後の用量制限毒性 (DLT) の発生率およびその他の安全性データ。
|
14日、28日、1年、12ヶ月目、24ヶ月目
|
二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
形態学的白血病のない状態(MLFS)。
時間枠:IMP投与後14日目と28日目。
|
難治性または再発性のAML、MDS、BPDCNおよびALL患者におけるIMP投与の有効性を、形態学的白血病のない状態(MLFS)の割合によって評価した。
|
IMP投与後14日目と28日目。
|
|
完全寛解(CR)率
時間枠:IMP 投与後 28 日以降、HSCT の前後の任意の時点。
|
難治性または再発性のAML、MDS、BPDCNおよびALL患者におけるIMP投与の有効性を完全寛解(CR)率によって評価した。
|
IMP 投与後 28 日以降、HSCT の前後の任意の時点。
|
|
全生存期間中央値と全生存期間
時間枠:IMP投与から1年後。
|
全生存期間(OS)で評価した難治性または再発性のAML、MDS、BPDCNおよびALL患者におけるIMP投与の有効性
|
IMP投与から1年後。
|
|
IMP投与後の同種造血細胞移植の実現可能性と必要性
時間枠:IMP投与後28日以内
|
IMP投与後28日以内に血球数が回復しなかった患者の割合、同種造血幹細胞移植を受けた患者、および移植後に生着した患者の割合。
|
IMP投与後28日以内
|
その他の成果指標
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
末梢血および骨髄における CART123 細胞の持続性と表現型の決定。
時間枠:1、3、5、7、14、28、49、70、100日目。6、12、24か月目。
|
末梢血および骨髄中の CART123 細胞の数 (T リンパ球の絶対値およびパーセンテージ)。
|
1、3、5、7、14、28、49、70、100日目。6、12、24か月目。
|
協力者と研究者
捜査官
- 主任研究者:Jan Vydra, MD, PhD、Institute of Hematology and Blood Transfusion, Prague, Czech Republic
- スタディディレクター:Petr Lesný, MD, PhD、Institute of Hematology and Blood Transfusion, Prague, Czech Republic
出版物と役立つリンク
便利なリンク
- Beckermann TM, Luo W, Wilson CM, Veach RA, Wilson MH. Cognate restriction of transposition by piggyBac-like proteins. Nucleic Acids Res. 2021 Aug 20;49(14):8135-8144. doi: 10.1093/nar/gkab578. PMID: 34232995; PMCID: PMC8373079.
- Bire S, Ley D, Casteret S, Mermod N, Bigot Y, Rouleux-Bonnin F. Optimization of the piggyBac transposon using mRNA and insulators: toward a more reliable gene delivery system. PLoS One. 2013 Dec 3;8(12):e82559. doi: 10.1371/journal.pone.0082559. PMID: 24
- Bôle-Richard, E., Fredon, M., Biichlé, S. et al. CD28/4-1BB CD123 CAR T cells in blastic plasmacytoid dendritic cell neoplasm. Leukemia 34, 3228-3241 (2020). https://doi.org/10.1038/s41375-020-0777-1
- Di Stasi A, Tey SK, Dotti G, Fujita Y, Kennedy-Nasser A, Martinez C, Straathof K, Liu E, Durett AG, Grilley B, Liu H, Cruz CR, Savoldo B, Gee AP, Schindler J, Krance RA, Heslop HE, Spencer DM, Rooney CM, Brenner MK. Inducible apoptosis as a safety switch
- Gill S, Tasian SK, Ruella M, Shestova O, Li Y, Porter DL, Carroll M, Danet-Desnoyers G, Scholler J, Grupp SA, June CH, Kalos M. Preclinical targeting of human acute myeloid leukemia and myeloablation using chimeric antigen receptor-modified T cells. Bloo
- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration M
- Hofmann S, Schubert ML, Wang L, He B, Neuber B, Dreger P, Müller-Tidow C, Schmitt M. Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cell Therapy in Acute Myeloid Leukemia (AML). J Clin Med. 2019 Feb 6;8(2):200. doi: 10.3390/jcm8020200. PMID: 30736352; PMCID: PMC64068
- Kaštánková I, Štach M, Žižková H, Ptáčková P, Šmilauerová K, Mucha M, Šroller V, Otáhal P. Enzymatically produced piggyBac transposon vectors for efficient non-viral manufacturing of CD19-specific CAR T cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2021 Aug 26;23:11
- KRÖGER, Nicolaus; GRIBBEN, John; CHABANNON, Christian; YAKOUB-AGHA, Ibrahim a EINSELE, Hermann (ed.). The EBMT/EHA CAR-T Cell Handbook. Online. Cham: Springer, 2022. ISBN 978-3-030-94353-0 (eBook). https://doi.org/10.1007/978-3-030-94353-0.
- Li X, Burnight ER, Cooney AL, Malani N, Brady T, Sander JD, Staber J, Wheelan SJ, Joung JK, McCray PB Jr, Bushman FD, Sinn PL, Craig NL. piggyBac transposase tools for genome engineering. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013 Jun 18;110(25):E2279-87. doi: 10.10
- Maloney DG, Liles TM, Czerwinski DK, Waldichuk C, Rosenberg J, Grillo-Lopez A, Levy R. Phase I clinical trial using escalating single-dose infusion of chimeric anti-CD20 monoclonal antibody (IDEC-C2B8) in patients with recurrent B-cell lymphoma. Blood. 1
- Mardiana S, Gill S. CAR T Cells for Acute Myeloid Leukemia: State of the Art and Future Directions. Front Oncol. 2020 May 6;10:697. doi: 10.3389/fonc.2020.00697. PMID: 32435621; PMCID: PMC7218049.
- Micklethwaite KP, Gowrishankar K, Gloss BS, Li Z, Street JA, Moezzi L, Mach MA, Sutrave G, Clancy LE, Bishop DC, Louie RHY, Cai C, Foox J, MacKay M, Sedlazeck FJ, Blombery P, Mason CE, Luciani F, Gottlieb DJ, Blyth E. Investigation of product-derived lym
- Mueller KT, Waldron E, Grupp SA, Levine JE, Laetsch TW, Pulsipher MA, Boyer MW, August KJ, Hamilton J, Awasthi R, Stein AM, Sickert D, Chakraborty A, Levine BL, June CH, Tomassian L, Shah SS, Leung M, Taran T, Wood PA, Maude SL. Clinical Pharmacology of
- Prommersberger S, Reiser M, Beckmann J, Danhof S, Amberger M, Quade-Lyssy P, Einsele H, Hudecek M, Bonig H, Ivics Z. CARAMBA: a first-in-human clinical trial with SLAMF7 CAR-T cells prepared by virus-free Sleeping Beauty gene transfer to treat multiple m
- Mardiros A, Dos Santos C, McDonald T, Brown CE, Wang X, Budde LE, Hoffman L, Aguilar B, Chang WC, Bretzlaff W, Chang B, Jonnalagadda M, Starr R, Ostberg JR, Jensen MC, Bhatia R, Forman SJ. T cells expressing CD123-specific chimeric antigen receptors exhi
- Riberdy JM, Zhou S, Zheng F, Kim YI, Moore J, Vaidya A, Throm RE, Sykes A, Sahr N, Bonifant CL, Ryu B, Gottschalk S, Velasquez MP. The Art and Science of Selecting a CD123-Specific Chimeric Antigen Receptor for Clinical Testing. Mol Ther Methods Clin Dev
- Ruella M, Barrett DM, Kenderian SS, Shestova O, Hofmann TJ, Perazzelli J, Klichinsky M, Aikawa V, Nazimuddin F, Kozlowski M, Scholler J, Lacey SF, Melenhorst JJ, Morrissette JJ, Christian DA, Hunter CA, Kalos M, Porter DL, June CH, Grupp SA, Gill S. Dual
- Bire S, Ley D, Casteret S, Mermod N, Bigot Y, Rouleux-Bonnin F. Optimization of the piggyBac transposon using mRNA and insulators: toward a more reliable gene delivery system. PLoS One. 2013 Dec 3;8(12):e82559. doi: 10.1371/journal.pone.0082559. PMID: 24
- Stevens BM, Zhang W, Pollyea DA, Winters A, Gutman J, Smith C, Budde E, Forman SJ, Jordan CT, Purev E. CD123 CAR T cells for the treatment of myelodysplastic syndrome. Exp Hematol. 2019 Jun;74:52-63.e3. doi: 10.1016/j.exphem.2019.05.002. Epub 2019 May 25
- Tashiro H, Sauer T, Shum T, Parikh K, Mamonkin M, Omer B, Rouce RH, Lulla P, Rooney CM, Gottschalk S, Brenner MK. Treatment of Acute Myeloid Leukemia with T Cells Expressing Chimeric Antigen Receptors Directed to C-type Lectin-like Molecule 1. Mol Ther.
- Tasian SK, Kenderian SS, Shen F, Ruella M, Shestova O, Kozlowski M, Li Y, Schrank-Hacker A, Morrissette JJD, Carroll M, June CH, Grupp SA, Gill S. Optimized depletion of chimeric antigen receptor T cells in murine xenograft models of human acute myeloid
- Tipanee J, VandenDriessche T, Chuah MK. Transposons: Moving Forward from Preclinical Studies to Clinical Trials. Hum Gene Ther. 2017 Nov;28(11):1087-1104. doi: 10.1089/hum.2017.128. Epub 2017 Aug 22. PMID: 28920716.
- Wang Y, Xu Y, Li S, Liu J, Xing Y, Xing H, Tian Z, Tang K, Rao Q, Wang M, Wang J. Targeting FLT3 in acute myeloid leukemia using ligand-based chimeric antigen receptor-engineered T cells. J Hematol Oncol. 2018 May 2;11(1):60. doi: 10.1186/s13045-018-0603
- Wermke M, Kraus S, Ehninger A, Bargou RC, Goebeler ME, Middeke JM, Kreissig C, von Bonin M, Koedam J, Pehl M, Bornhäuser M, Einsele H, Ehninger G, Cartellieri M. Proof of concept for a rapidly switchable universal CAR-T platform with UniCAR-T-CD123 in re
- Bishop DC, Clancy LE, Simms R, Burgess J, Mathew G, Moezzi L, Street JA, Sutrave G, Atkins E, McGuire HM, Gloss BS, Lee K, Jiang W, Maddock K, McCaughan G, Avdic S, Antonenas V, O'Brien TA, Shaw PJ, Irving DO, Gottlieb DJ, Blyth E, Micklethwaite KP. Deve
- Tang TCY, Xu N, Nordon R, Haber M, Micklethwaite K, Dolnikov A. Donor T cells for CAR T cell therapy. Biomark Res. 2022 Apr 1;10(1):14. doi: 10.1186/s40364-022-00359-3. PMID: 35365224; PMCID: PMC8973942.
- Yusa K, Zhou L, Li MA, Bradley A, Craig NL. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Jan 25;108(4):1531-6. doi: 10.1073/pnas.1008322108. Epub 2011 Jan 4. PMID: 21205896; PMCID: PMC3029773.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (推定)
研究の完了 (推定)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
本研究に関する用語
キーワード
追加の関連 MeSH 用語
その他の研究ID番号
- UHKT-CAR123-01
- 2022-503165-30-00 (Ctis)
個々の参加者データ (IPD) の計画
個々の参加者データ (IPD) を共有する予定はありますか?
医薬品およびデバイス情報、研究文書
米国FDA規制医薬品の研究
米国FDA規制機器製品の研究
米国で製造され、米国から輸出された製品。
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。