Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Genuttrykk av suppressor av cytokiner i i kutane vorter

19. juli 2024 oppdatert av: Reham Helal Aboelhamd, Sohag University

Vurdering av genuttrykk av suppressor av cytokin 3, interferoner alfa og beta i kutane vorter

Vorter er vanlige epidermale vekster forårsaket av ulike stammer av humant papillomavirus (HPV). Virale vorter er vanlige med en prevalensrate på 7-12 %.

Humant papillomavirus er små ikke-innkapslede virus som inneholder et dobbelttrådet DNA-genom. Det er rapportert om mer enn 200 HPV-genotyper, men høyrisikotypene, inkludert HPV-genotype-16 (HPV16), 18, 31 og 45, er årsakene til 80 % av livmorhalskreftene.

Studieoversikt

Detaljert beskrivelse

Kutane vorter er godartede lesjoner forårsaket av lavrisiko-HPV. Hvorav de mest utbredte genotypene er HPV1/2/3/4/10/27/57, og fra disse forårsaker genotypene 1, 2, 4, 27, 57 vanlige vorter. Palmoplantar vorter kan være forårsaket av genotype 1 og 2. Condyloma acuminata (anogenitale vorter) er vanlige seksuelt overførbare infeksjoner forårsaket hovedsakelig av HPV-6 og HPV-11 (i 90 % av tilfellene) og noen ganger av HPV-16 og HPV-18.

Omtrent 90 % av HPV-infeksjoner elimineres innen to år på grunn av en effektiv immunrespons. I form av korrekt aktivering av elementene i den medfødte immunresponsen, som makrofager, polymorfonukleære celler, naturlige dreperceller (NK), som frigjør immunmodulerende molekyler som bidrar til å kontrollere infeksjonen. I tillegg kan HPV-infiserte keratinocytter fungere som ikke-profesjonelle antigenpresenterende celler for å fremme fjerning av infiserte celler gjennom sekresjon av antivirale og pro-inflammatoriske mediatorer.

Interferon (IFN) tilhører en familie av induserbare cytokiner som fremmer en "antiviral tilstand" i infiserte celler og naboceller gjennom aktivering av interferon-stimulerte gener (ISG). Tre IFN-typer er identifisert (type I, II og III), hvorav I og III er involvert i den medfødte immunresponsen. Type I IFN inkluderer IFN-α, IFN-β, IFN-ɛ, IFN-κ og IFN-ω.

De fleste type I IFN-er induseres gjennom binding av virale produkter til mønstergjenkjenningsreseptorer, noe som fører til aktivering av interferonresponsfaktorer for å drive syntesen av IFN-molekyler. Etter sekresjon binder type I IFN seg til reseptoren, som induserer fosforylering av signaltransduser og aktivator av transkripsjon 1 (STAT1) og STAT2, som deretter translokerer til kjernen for å indusere transkripsjon av (ISG).

De antivirale effektene av IFN-I formidles ved å indusere flere (ISG-er) som svekker viral replikasjon gjennom hemming av proteintranslasjon og nedbrytning av viralt RNA. ISG-er aktiverer også overlevelsen av medfødte og adaptive immunceller, inkludert dendrittiske celler, makrofager, NK-celler og T-celler. Så IFN-I hjelper til med å kontrollere infeksjonene.

Under virusinfeksjonsprosessen utløser cytokiner og håndterer betennelse. Imidlertid kan overdreven produksjon av cytokiner forårsake en cytokinstorm, og overdreven verts medfødt immunrespons kan også skade kroppen. Derfor forhindrer suppressoren av cytokinsignaleringsproteiner med negativ tilbakekoblingsreguleringsevne at overdreven sekresjon av cytokiner skader vertscellen. Disse intracellulære proteinfamiliene består av suppressor av cytokinsignaleringsproteiner 1-7, som er potente endogene hemmere av Janus kinase (JAK/STAT) signal.

SOCS 3 er hovedsakelig involvert i negativ tilbakemeldingsregulering av tyrosin-proteinkinase/STAT-signalering. Den kritiske rollen til SOCS3 manifesteres av dens binding til både JAK og tyrosinkinasereseptoren, som ytterligere hemmer STAT3-fosforylering. JAK/STAT-banen transduserer ekstracellulære signaler til kjernen. Aktiveringen stimulerer celleproliferasjon, differensiering, migrasjon og immunforsvar. JAK/STAT-signalveien spiller en viktig rolle ved virusinfeksjon.

SOCS-familien induseres av ulike virusinfeksjoner, inkludert humant immunsviktvirus-1, hepatitt B- og C-virus, herpes simplex-virus type 1, respiratorisk syncytialvirus, ebolavirus, influensa A og coxsackie-virus. Influensa A-virus hemmer type I IFN-signalering gjennom induksjon av SOCS3-ekspresjon. Newcastle disease virus (NDV)-infeksjon aktiverer uttrykket av SOCS3 på mRNA- og proteinnivå, noe som bidrar til virusreplikasjonen.

Studietype

Observasjonsmessig

Registrering (Faktiske)

100

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiesteder

      • Sohag, Egypt, 523456
        • Sohag university hospital

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

18 år til 50 år (Voksen)

Tar imot friske frivillige

N/A

Prøvetakingsmetode

Ikke-sannsynlighetsprøve

Studiepopulasjon

A-pasienter: - Studien vil inkludere 35 pasienter med kutane vorter i alderen 18-50 år og 15 aldersmatchede kontroller (blodgivere).

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

  • Studien vil omfatte pasienter med hudvorter av ulike typer i alderen 18-50 år.

Ekskluderingskriterier:

  • 1. Graviditet 2. Amming 3. Pasient på betennelsesdempende og antioksidantmedisin 4. Hudinfeksjoner, andre enn vorter 5. Hudsykdommer 6. Systemisk infeksjon. 7. Maligniteter

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

Kohorter og intervensjoner

Gruppe / Kohort
Intervensjon / Behandling
pasienter med hudvorter

Under fullstendig sterile forholdsregler vil det bli tatt hudbiopsi fra pasienter med vortelesjon.

Prøven vil bli satt i sterilt plan rør som inneholder saltvann og vil umiddelbart bli overført til det sentrale forskningslaboratoriet for å bli behandlet

Deteksjon av uttrykk for SOCS3, i hver prøve ved bruk av sanntids PCR
Deteksjon av ekspresjon av IFN-α-genet i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
Deteksjon av ekspresjon av IFN-β-gen i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
friske frivillige

Under fullstendig sterile forholdsregler vil hudbiopsi bli tatt fra friske frivillige i kontrollgruppen via 2 mm engangsstanser.

Prøven vil bli satt i sterilt plan rør som inneholder saltvann og vil umiddelbart bli overført til det sentrale forskningslaboratoriet for å bli behandlet

Deteksjon av uttrykk for SOCS3, i hver prøve ved bruk av sanntids PCR
Deteksjon av ekspresjon av IFN-α-genet i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
Deteksjon av ekspresjon av IFN-β-gen i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Denne studien tar sikte på å vurdere uttrykket av gener av SOCS3 i kutane vorter.
Tidsramme: fra april 2023 til desember 2023

Under fullstendig sterile forholdsregler vil hudbiopsi bli tatt fra friske frivillige i kontrollgruppen via 2 mm engangsslag og fra pasienter med vortelesjon.

Prøven legges i et sterilt planrør som inneholder saltvann og vil umiddelbart bli overført til det sentrale forskningslaboratoriet for å bli behandlet som følger:

  1. Vevsmaling i mindre biter vil deretter bli utsatt for RNA-ekstraksjon av automatiserte sett i henhold til produksjonsinstruksjonene.
  2. Konvertering av RNA til dobbelttrådet DNA ved bruk av RT (revers transkriptase konverteringssett) i henhold til produksjonsinstruksjonen ved bruk av konvensjonell PCR.
  3. Påvisning av ekspresjon av SOCS3-gen i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
fra april 2023 til desember 2023
Denne studien tar sikte på å vurdere uttrykket av gener av IFN-α i kutane vorter.
Tidsramme: fra april 2023 til desember 2023

Under fullstendig sterile forholdsregler vil hudbiopsi bli tatt fra friske frivillige i kontrollgruppen via 2 mm engangsslag og fra pasienter med vortelesjon.

Prøven legges i et sterilt planrør som inneholder saltvann og vil umiddelbart bli overført til det sentrale forskningslaboratoriet for å bli behandlet som følger:

  1. Vevsmaling i mindre biter vil deretter bli utsatt for RNA-ekstraksjon av automatiserte sett i henhold til produksjonsinstruksjonene.
  2. Konvertering av RNA til dobbelttrådet DNA ved bruk av RT (revers transkriptase konverteringssett) i henhold til produksjonsinstruksjonen ved bruk av konvensjonell PCR.
  3. Deteksjon av ekspresjon av IFN-α-genet i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
fra april 2023 til desember 2023
Denne studien tar sikte på å vurdere uttrykket av gener av IFN-β i kutane vorter.
Tidsramme: fra april 2023 til desember 2023

Under fullstendig sterile forholdsregler vil hudbiopsi bli tatt fra friske frivillige i kontrollgruppen via 2 mm engangsslag og fra pasienter med vortelesjon.

Prøven legges i et sterilt planrør som inneholder saltvann og vil umiddelbart bli overført til det sentrale forskningslaboratoriet for å bli behandlet som følger:

  1. Vevsmaling i mindre biter vil deretter bli utsatt for RNA-ekstraksjon av automatiserte sett i henhold til produksjonsinstruksjonene.
  2. Konvertering av RNA til dobbelttrådet DNA ved bruk av RT (revers transkriptase konverteringssett) i henhold til produksjonsinstruksjonen ved bruk av konvensjonell PCR.
  3. Deteksjon av ekspresjon av IFN-β-gen i hver prøve ved bruk av sanntids-PCR
fra april 2023 til desember 2023

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Etterforskere

  • Studiestol: Hanan A Assaf, professor, Sohag University
  • Studiestol: Zeinab A Goda, lecturer, Sohag University

Publikasjoner og nyttige lenker

Den som er ansvarlig for å legge inn informasjon om studien leverer frivillig disse publikasjonene. Disse kan handle om alt relatert til studiet.

Hjelpsomme linker

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

15. april 2023

Primær fullføring (Faktiske)

30. september 2023

Studiet fullført (Faktiske)

30. desember 2023

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

12. mars 2023

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

12. mars 2023

Først lagt ut (Faktiske)

23. mars 2023

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)

23. juli 2024

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

19. juli 2024

Sist bekreftet

1. juli 2024

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Plan for individuelle deltakerdata (IPD)

Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?

NEI

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Abonnere