- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT02042248
Badanie I fazy w celu oceny odpowiedzi immunologicznej i wpływu wirusologicznego AGS-004
IGHID 1309 — badanie I fazy mające na celu ocenę kinetyki odpowiedzi immunologicznej i wpływu wirusologicznego AGS-004 u osób zakażonych wirusem HIV, u których zastosowano terapię przeciwretrowirusową rozpoczętą podczas ostrej i przewlekłej infekcji wirusem HIV
Celem tego badania jest:
- poznać intensywność i czas trwania odpowiedzi immunologicznej po wielokrotnych wstrzyknięciach badanego produktu AGS-004 wykonanego z własnych komórek dendrytycznych i własnego szczepu HIV;
- zrozumieć zmiany w DNA HIV w organizmie i RNA HIV-1 w obwodowych i spoczynkowych komórkach CD4+ przed i po podaniu AGS-004.
- dowiedzieć się, czy niski poziom wirusa HIV, niewykrywalny standardowymi testami HIV RNA, zmniejszy się po podaniu AGS-004.
- dowiedzieć się, czy podawanie osobom zakażonym wirusem HIV wielokrotnych zastrzyków AGS-004 wykonanych z własnych komórek dendrytycznych i ich własnego szczepu HIV jest bezpieczne.
- dowiedzieć się, czy podawanie AGS-004 zmniejsza ilość utajonego zakażenia wirusem HIV w spoczynkowych komórkach CD4
Przegląd badań
Szczegółowy opis
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
North Carolina
-
Chapel Hill, North Carolina, Stany Zjednoczone, 27599
- University of North Carolina
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Potwierdzenie zakażenia HIV-1:
- Przewlekłe zakażenie wirusem HIV (CHI) definiuje się jako udokumentowanie pozytywnego wyniku testu na obecność wirusa HIV przy użyciu dowolnego licencjonowanego zestawu testowego ELISA i potwierdzonego testem Western blot lub Multispot HIV-1/HIV-2 przed badaniem przesiewowym. Hodowla HIV, antygen HIV, HIV RNA w osoczu lub drugi test na przeciwciała metodą inną niż ELISA jest dopuszczalny jako alternatywny test potwierdzający.
- Ostre zakażenie wirusem HIV (AHI) definiuje się jako ujemny lub nieokreślony wynik testu immunoenzymatycznego (EIA) lub ujemnego testu HIV RNA w ciągu 45 dni od powtarzalnie wykrywalnego RNA HIV w osoczu metodami amplifikacji.
- Uczestnicy ramienia AHI tego badania musieli rozpocząć ART w ciągu 45 dni od rozpoznania AHI
- Wiek od ≥ 18 do < 65 lat
- Stabilny schemat ART przez ≥ 6 miesięcy przed badaniem przesiewowym (Wizyta 1) UWAGA: Schemat ART jest określony przez aktualne wytyczne dotyczące leczenia. Uczestnicy mogli mieć jedną lub więcej zmian w swoim schemacie ART ze względu na tolerancję, zmianę wytycznych lub uproszczenie dawkowania.
- Podczas silnej terapii przeciwretrowirusowej, zdefiniowanej jako co najmniej 2 nukleozydowe/nukleotydowe inhibitory odwrotnej transkryptazy plus nienukleozydowy inhibitor odwrotnej transkryptazy, inhibitor integrazy lub inhibitor proteazy. Inne silne, w pełni supresyjne kombinacje leków przeciwretrowirusowych będą rozpatrywane indywidualnie dla każdego przypadku. Dozwolone są wcześniejsze zmiany lub eliminacja leków w celu ułatwienia schematu dawkowania, nietolerancji lub toksyczności.
- Wszyscy uczestnicy muszą kontynuować cART przez całe badanie.
- RNA HIV-1 w osoczu poniżej granicy wykrywalności w konwencjonalnych testach (granica wykrywalności określona przez zastosowany test: 75, 50, 40 lub 20 kopii/ml) przez ≥ 1 rok
- Pojedynczy niepotwierdzony HIV RNA w osoczu > granica wykrywalności, ale < 1000 c/mL dozwolony, jeśli kolejny test był poniżej granicy wykrywalności; ale żadnego w ciągu 6 miesięcy poprzedzających wizytę przesiewową w ramach badania.
- HIV-1 RNA w osoczu < 50 kopii/ml podczas badania przesiewowego (wizyta 1)
- Liczba komórek CD4 ≥ 350 komórek/mm3 podczas badania przesiewowego (wizyta 1)
- Dostępność odpowiedniej próbki zamrożonego osocza (mogło być rozmrożone i ponownie zamrożone tylko raz) pobranej nie więcej niż 90 dni (a najlepiej w ciągu 30 dni) przed rozpoczęciem ART LUB odpowiedniej zamrożonej próbki supernatantu hodowli z dodatnim wynikiem antygenu p24 wirusa HIV uzyskany z hodowli spoczynkowych limfocytów T CD4+.
Uwaga: VL udokumentowana z próbki osocza HIV przed ART musi wynosić ≥ 8000 kopii/ml przed rozpoczęciem schematu ART (wyciągnięte z dokumentacji medycznej). Jeśli nie ma pomiaru miana wirusa związanego z próbką osocza HIV pre-ART, można użyć innego pomiaru VL pre-ART wynoszącego 8000 kopii/ml, aby zaakceptować próbkę do produkcji AGS-004.
- Brak historii chorób autoimmunologicznych lub objawów autoimmunologicznych
- Brak aktywnego zakażenia HCV (mierzalne RNA HCV) w ciągu 90 dni od wizyty kwalifikacyjnej (wizyta 3).
- Brak aktywnego zakażenia HBV (mierzalny HBV DNA lub HBVsAg+) w ciągu 90 dni od wizyty kwalifikacyjnej (wizyta 3).
- Zdolność i gotowość uczestnika do wyrażenia pisemnej świadomej zgody
- Zdolny i chętny do dostarczenia odpowiednich informacji o lokalizacji
- Zdolność i chęć skutecznego komunikowania się z personelem badawczym; uważane za wiarygodne, chętne i chętne do współpracy w zakresie zgodności z wymaganiami Protokołu
- Odpowiedni dostęp naczyniowy do leukaferezy
- Zdolny i chętny do bezproblemowego przyjmowania zastrzyków śródskórnych (ID).
Wszystkie uczestniczki badania, które mogą zajść w ciążę, muszą wyrazić zgodę na nieuczestniczenie w procesie poczęcia, a jeśli uczestniczą w czynnościach seksualnych, które mogą prowadzić do ciąży, uczestniczki i ich partnerzy muszą wyrazić zgodę na stosowanie co najmniej dwóch niezawodnych form antykoncepcji przez co najmniej 21 dni przed włączeniem do badania i przez 12 tygodni po przyjęciu ostatniej dawki badanego produktu leczniczego:
o Dopuszczalne formy antykoncepcji obejmują:
- Prezerwatywy (męskie lub damskie) ze środkiem plemnikobójczym lub bez
- Diafragma lub kapturek naszyjkowy ze środkiem plemnikobójczym
- Urządzenie wewnątrzmaciczne (IUD)
- Hormonalne leki antykoncepcyjne podawane w pigułkach, zastrzykach lub umieszczane na lub pod skórą
- Podwiązanie jajowodów
- NuvaRing
- Potencjalny uczestnik musi mieć odpowiednią funkcję narządów, na co wskazują następujące wartości laboratoryjne:
Wartość systemowa/laboratoryjna:
Hematologiczne:
Bezwzględna liczba neutrofilów (ANC): ≥1500/ml Płytki krwi: ≥125 000/ml Hemoglobina: ≥12g/dl
Koagulacja:
Czas protrombinowy lub INR: ≤1,5x górna granica normy (GGN)
Chemia:
Stężenie K+: w granicach normy Stężenie Mg++: ≥1,2 mEq/l ale <1,5 x GGN Glukoza: badanie przesiewowe glukozy w surowicy (na czczo lub nie na czczo) <120 mg/dl Albumina: ≥3,3 g/dl
Nerkowy:
Stężenie kreatyniny w surowicy lub obliczony klirens kreatyniny: ≤1,5 x górna granica normy (GGN) LUB ≥ 60 ml/min dla potencjalnych uczestników ze stężeniem kreatyniny > 1,3 x ULN w placówce
Wątrobiany:
Bilirubina całkowita w surowicy: Bilirubina całkowita <1,8-krotność górnej granicy normy, chyba że choroba Gilberta występowała w wywiadzie lub uznano ją za związaną z leczeniem atazanawirem. Jeśli bilirubina całkowita jest podwyższona, bilirubina bezpośrednia musi być <2-krotność zakresu GGN.
AspAT (SGOT) i ALT (SGPT): ≤ 2,5 X GGN Fosfataza zasadowa: ≤ 2,5 X GGN UWAGA: Klirens kreatyniny należy obliczyć zgodnie z normą obowiązującą w placówce.
Kryteria wyłączenia
- Obecność przeciwciał przeciwko HIV-2 przy braku pozytywnego testu Western Blot HIV-1, jak zmierzono podczas wizyty przesiewowej (wizyta 1).
- Nieleczona infekcja kiłą (zdefiniowana jako dodatni wynik RPR bez jasnej dokumentacji leczenia).
- Otrzymał jakikolwiek produkt krwiopochodny, immunoglobulinę lub hematopoetyczne czynniki wzrostu w ciągu 90 dni przed włączeniem do badania.
- Historia napromieniania lub rozwarstwienia węzłów chłonnych.
- Stosowanie któregokolwiek z następujących czynników w ciągu 90 dni przed wjazdem: czynniki immunomodulujące, cytokiny lub czynniki stymulujące wzrost, takie jak ogólnoustrojowe kortykosteroidy, cyklosporyna, metotreksat, azatiopryna, przeciwciała anty-CD25, IFN, interleukiny, interleukina-2 (IL-2), hydroksymocznik, talidomid, sargramostim (czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów [GM-CSF]), dinitrochlorobenzen (DNCB), tymozyna alfa, tymopentyna, inozypleks, polirybonukleotyd lub ditiokarb sodu, kumadyna, warfaryna lub inne leki przeciwzakrzepowe będące pochodnymi kumadyny.
- Stosowanie jakiejkolwiek wcześniejszej szczepionki przeciw HIV (profilaktycznej i/lub terapeutycznej) w ciągu jednego roku przed badaniem przesiewowym (Wizyta 1).
- Wcześniejszy udział w badaniu klinicznym AGS-004.
- Przerwa w leczeniu ART na > 1 miesiąc od rozpoczęcia ART, z którego pobrano próbkę osocza przed ART
- W przypadku każdej poważnej choroby wymagającej leczenia ogólnoustrojowego lub hospitalizacji uczestnik musi albo ukończyć terapię, albo być stabilny klinicznie w trakcie terapii, w opinii badacza ośrodka, przez co najmniej 90 dni przed wjazdem.
- Ciąża lub karmienie piersią
- Każdy aktywny nowotwór złośliwy, który może wymagać chemioterapii lub radioterapii.
- Dowody dekompensacji czynności wątroby u uczestników z marskością wątroby: historia wodobrzusza, encefalopatii wątrobowej lub krwawienia z żylaków przełyku.
- Historia lub inne objawy kliniczne istotnej lub niestabilnej choroby serca (np. dławica piersiowa, zastoinowa niewydolność serca, niedawno przebyty zawał mięśnia sercowego, istotna arytmia) lub klinicznie istotne nieprawidłowości w elektrokardiogramie (EKG). Każda historia zaburzeń rytmu serca wymagająca leczenia farmakologicznego lub chirurgicznego.
- Każde zaburzenie czynności nerek uznane przez badacza za istotne klinicznie.
- Historia lub inne dowody ciężkiej choroby, nowotworu złośliwego, niedoboru odporności innego niż HIV lub jakiegokolwiek innego stanu, który w opinii badacza sprawia, że uczestnik nie nadaje się do badania.
- Zatrzymany przymusowo (niedobrowolnie uwięziony) w celu leczenia choroby psychicznej lub fizycznej, np. Choroby zakaźnej. Rekrutacja i udział więźniów są niedozwolone.
- Znana alergia lub nadwrażliwość na składniki badanej immunoterapii.
- Stosowanie ogólnoustrojowych kortykosteroidów oraz miejscowe stosowanie kortykosteroidów na łącznej powierzchni przekraczającej 15 cm2 w ciągu 30 dni poprzedzających badanie przesiewowe lub przewidywana potrzeba okresowego stosowania kortykosteroidów podczas badania.
UWAGA: W przypadku uczestników otrzymujących rytonawir (jako dawkę przypominającą lub inhibitor proteazy (PI) w ramach schematu ART zabronione jest jednoczesne stosowanie doustnych/ogólnoustrojowych/miejscowych/wziewnych/donosowych kortykosteroidów.
- Jakakolwiek historia ostrego lub przewlekłego zapalenia trzustki.
- Jeśli opiekun lub badacz zajmujący się HIV nie jest w stanie, zgodnie z oceną PI badania lub zespołu ds. protokołu, skonstruować w pełni aktywnego alternatywnego schematu ART w oparciu o wcześniejsze testy oporności i/lub historię leczenia.
- Znane zaburzenia psychiczne lub zaburzenia związane z nadużywaniem substancji, które mogłyby zakłócać zdolność osoby do pełnej współpracy z wymaganiami badania.
- Wszelkie badane leki przeciwretrowirusowe lub stosowanie inhibitora CCR5 podczas badań przesiewowych.
- Aktywna choroba lub stan autoimmunologiczny, w tym między innymi:
- Reumatoidalne zapalenie stawów (zapalenie stawów z dodatnim wynikiem RF z obecnym lub niedawnym zaostrzeniem);
- Zapalna choroba jelit;
- toczeń rumieniowaty układowy (dowody kliniczne potwierdzone przez ANA >1:80);
- Zesztywniające zapalenie stawów kręgosłupa; choroba Hashimoto; twardzina skóry; Stwardnienie rozsiane; niedokrwistość autoimmunohemolityczna (AHA); immunologiczna plamica małopłytkowa; oraz cukrzyca typu I (insulinoterapia cukrzycy typu II jest dozwolona).
- Uczestnictwo w innym eksperymentalnym badaniu klinicznym (z wyjątkiem badania leczenia przeciwretrowirusowego, w którym stosuje się środki przeciwretrowirusowe zatwierdzone przez FDA) lub stosowanie badanych leków w ciągu 30 dni przed badaniem przesiewowym.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nielosowe
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Ramię A: ART zainicjowana podczas AHI
Ramię A obejmie około 6 uczestników, którzy rozpoczęli ART podczas AHI (ostre zakażenie wirusem HIV).
Dawka docelowa AGS-004 jest dostarczana w trzech iniekcjach ID (śródskórnych) po 0,2 ml AGS-004 (całkowita objętość 0,6 ml) dla całkowitej liczby 1,2 x 107 żywych komórek.
AGS-004 podaje się co 4 tygodnie w tygodniach 0, 4, 8 i 12, łącznie 4 dawki.
|
Wszyscy uczestnicy w obu ramionach otrzymają takie samo leczenie i dawki AGS-004 w kroku 2 w tygodniach 0, 4, 8 i 12.
|
|
Eksperymentalny: Ramię B: ART zainicjowana podczas CHI
Ramię B obejmie około 6 uczestników, którzy rozpoczęli ART podczas CHI (przewlekłe zakażenie wirusem HIV).
Dawka docelowa AGS-004 jest dostarczana w trzech iniekcjach ID (śródskórnych) po 0,2 ml AGS-004 (całkowita objętość 0,6 ml) dla całkowitej liczby 1,2 x 107 żywych komórek.
AGS-004 podaje się co 4 tygodnie w tygodniach 0, 4, 8 i 12, łącznie 4 dawki.
|
Wszyscy uczestnicy w obu ramionach otrzymają takie samo leczenie i dawki AGS-004 w kroku 2 w tygodniach 0, 4, 8 i 12.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Odpowiedzi limfocytów T CD8
Ramy czasowe: 32 tygodnie
|
Zmierzyć czas trwania odpowiedzi limfocytów T CD8 specyficznych dla HIV za pomocą testu cytometrii przepływowej do 32 tygodnia
|
32 tygodnie
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Zmiana niskiego poziomu RNA HIV-1 w osoczu w teście pojedynczej kopii (SCA)
Ramy czasowe: Tygodnie 0, 14 i 32
|
Zmiana niskiego poziomu HIV-1 RNA mierzona w teście pojedynczej kopii po podaniu AGS-004
|
Tygodnie 0, 14 i 32
|
|
Zmiana częstości infekcji HIV-1 spoczynkowych limfocytów T CD4+ przy użyciu testu wzrostu wirusa
Ramy czasowe: Tygodnie 0, 14 i 32
|
Zmiana częstości zakażenia HIV-1 spoczynkowych limfocytów T CD4+ przy użyciu testu wzrostu wirusa po podaniu AGS-004
|
Tygodnie 0, 14 i 32
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: David Margolis, MD, University of North Carolina
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Palmer S, Wiegand AP, Maldarelli F, Bazmi H, Mican JM, Polis M, Dewar RL, Planta A, Liu S, Metcalf JA, Mellors JW, Coffin JM. New real-time reverse transcriptase-initiated PCR assay with single-copy sensitivity for human immunodeficiency virus type 1 RNA in plasma. J Clin Microbiol. 2003 Oct;41(10):4531-6. doi: 10.1128/JCM.41.10.4531-4536.2003.
- Maldarelli F, Palmer S, King MS, Wiegand A, Polis MA, Mican J, Kovacs JA, Davey RT, Rock-Kress D, Dewar R, Liu S, Metcalf JA, Rehm C, Brun SC, Hanna GJ, Kempf DJ, Coffin JM, Mellors JW. ART suppresses plasma HIV-1 RNA to a stable set point predicted by pretherapy viremia. PLoS Pathog. 2007 Apr;3(4):e46. doi: 10.1371/journal.ppat.0030046.
- Chun TW, Stuyver L, Mizell SB, Ehler LA, Mican JA, Baseler M, Lloyd AL, Nowak MA, Fauci AS. Presence of an inducible HIV-1 latent reservoir during highly active antiretroviral therapy. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997 Nov 25;94(24):13193-7. doi: 10.1073/pnas.94.24.13193.
- Finzi D, Hermankova M, Pierson T, Carruth LM, Buck C, Chaisson RE, Quinn TC, Chadwick K, Margolick J, Brookmeyer R, Gallant J, Markowitz M, Ho DD, Richman DD, Siliciano RF. Identification of a reservoir for HIV-1 in patients on highly active antiretroviral therapy. Science. 1997 Nov 14;278(5341):1295-300. doi: 10.1126/science.278.5341.1295.
- Pilcher CD, Eron JJ Jr, Galvin S, Gay C, Cohen MS. Acute HIV revisited: new opportunities for treatment and prevention. J Clin Invest. 2004 Apr;113(7):937-45. doi: 10.1172/JCI21540. Erratum In: J Clin Invest. 2006 Dec;116(12):3292.
- Lu W, Arraes LC, Ferreira WT, Andrieu JM. Therapeutic dendritic-cell vaccine for chronic HIV-1 infection. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1359-65. doi: 10.1038/nm1147. Epub 2004 Nov 28.
- Rosenberg ES, Billingsley JM, Caliendo AM, Boswell SL, Sax PE, Kalams SA, Walker BD. Vigorous HIV-1-specific CD4+ T cell responses associated with control of viremia. Science. 1997 Nov 21;278(5342):1447-50. doi: 10.1126/science.278.5342.1447.
- Finzi D, Blankson J, Siliciano JD, Margolick JB, Chadwick K, Pierson T, Smith K, Lisziewicz J, Lori F, Flexner C, Quinn TC, Chaisson RE, Rosenberg E, Walker B, Gange S, Gallant J, Siliciano RF. Latent infection of CD4+ T cells provides a mechanism for lifelong persistence of HIV-1, even in patients on effective combination therapy. Nat Med. 1999 May;5(5):512-7. doi: 10.1038/8394.
- Ortiz GM, Nixon DF, Trkola A, Binley J, Jin X, Bonhoeffer S, Kuebler PJ, Donahoe SM, Demoitie MA, Kakimoto WM, Ketas T, Clas B, Heymann JJ, Zhang L, Cao Y, Hurley A, Moore JP, Ho DD, Markowitz M. HIV-1-specific immune responses in subjects who temporarily contain virus replication after discontinuation of highly active antiretroviral therapy. J Clin Invest. 1999 Sep;104(6):R13-8. doi: 10.1172/JCI7371.
- Pires A, Hardy G, Gazzard B, Gotch F, Imami N. Initiation of antiretroviral therapy during recent HIV-1 infection results in lower residual viral reservoirs. J Acquir Immune Defic Syndr. 2004 Jul 1;36(3):783-90. doi: 10.1097/00126334-200407010-00004.
- Ramratnam B, Ribeiro R, He T, Chung C, Simon V, Vanderhoeven J, Hurley A, Zhang L, Perelson AS, Ho DD, Markowitz M. Intensification of antiretroviral therapy accelerates the decay of the HIV-1 latent reservoir and decreases, but does not eliminate, ongoing virus replication. J Acquir Immune Defic Syndr. 2004 Jan 1;35(1):33-7. doi: 10.1097/00126334-200401010-00004.
- Chamberland A, Sylla M, Boulassel MR, Baril JG, Cote P, Thomas R, Trottier B, Rouleau D, Routy JP, Tremblay C; Investigators of the Primary HIV-Infection Cohort of Montreal. Effect of antiretroviral therapy on HIV-1 genetic evolution during acute infection. Int J STD AIDS. 2011 Mar;22(3):146-50. doi: 10.1258/ijsa.2010.010292.
- Archin NM, Eron JJ, Palmer S, Hartmann-Duff A, Martinson JA, Wiegand A, Bandarenko N, Schmitz JL, Bosch RJ, Landay AL, Coffin JM, Margolis DM. Valproic acid without intensified antiviral therapy has limited impact on persistent HIV infection of resting CD4+ T cells. AIDS. 2008 Jun 19;22(10):1131-5. doi: 10.1097/QAD.0b013e3282fd6df4.
- Archin NM, Liberty AL, Kashuba AD, Choudhary SK, Kuruc JD, Crooks AM, Parker DC, Anderson EM, Kearney MF, Strain MC, Richman DD, Hudgens MG, Bosch RJ, Coffin JM, Eron JJ, Hazuda DJ, Margolis DM. Administration of vorinostat disrupts HIV-1 latency in patients on antiretroviral therapy. Nature. 2012 Jul 25;487(7408):482-5. doi: 10.1038/nature11286. Erratum In: Nature. 2012 Sep 20;489(7416):460.
- Shan L, Deng K, Shroff NS, Durand CM, Rabi SA, Yang HC, Zhang H, Margolick JB, Blankson JN, Siliciano RF. Stimulation of HIV-1-specific cytolytic T lymphocytes facilitates elimination of latent viral reservoir after virus reactivation. Immunity. 2012 Mar 23;36(3):491-501. doi: 10.1016/j.immuni.2012.01.014. Epub 2012 Mar 8.
- DeBenedette MA, Calderhead DM, Ketteringham H, Gamble AH, Horvatinovich JM, Tcherepanova IY, Nicolette CA, Healey DG. Priming of a novel subset of CD28+ rapidly expanding high-avidity effector memory CTL by post maturation electroporation-CD40L dendritic cells is IL-12 dependent. J Immunol. 2008 Oct 15;181(8):5296-305. doi: 10.4049/jimmunol.181.8.5296.
- Calderhead DM, DeBenedette MA, Ketteringham H, Gamble AH, Horvatinovich JM, Tcherepanova IY, Nicolette CA, Healey DG. Cytokine maturation followed by CD40L mRNA electroporation results in a clinically relevant dendritic cell product capable of inducing a potent proinflammatory CTL response. J Immunother. 2008 Oct;31(8):731-41. doi: 10.1097/CJI.0b013e318183db02.
- Tcherepanova I, Harris J, Starr A, Cleveland J, Ketteringham H, Calderhead D, Horvatinovich J, Healey D, Nicolette CA. Multiplex RT-PCR amplification of HIV genes to create a completely autologous DC-based immunotherapy for the treatment of HIV infection. PLoS One. 2008 Jan 30;3(1):e1489. doi: 10.1371/journal.pone.0001489.
- Addo MM, Yu XG, Rosenberg ES, Walker BD, Altfeld M. Cytotoxic T-lymphocyte (CTL) responses directed against regulatory and accessory proteins in HIV-1 infection. DNA Cell Biol. 2002 Sep;21(9):671-8. doi: 10.1089/104454902760330219.
- Van Gulck ER, Ponsaerts P, Heyndrickx L, Vereecken K, Moerman F, De Roo A, Colebunders R, Van den Bosch G, Van Bockstaele DR, Van Tendeloo VF, Allard S, Verrier B, Maranon C, Hoeffel G, Hosmalin A, Berneman ZN, Vanham G. Efficient stimulation of HIV-1-specific T cells using dendritic cells electroporated with mRNA encoding autologous HIV-1 Gag and Env proteins. Blood. 2006 Mar 1;107(5):1818-27. doi: 10.1182/blood-2005-01-0339. Epub 2005 Nov 1.
- Altfeld M, Addo MM, Eldridge RL, Yu XG, Thomas S, Khatri A, Strick D, Phillips MN, Cohen GB, Islam SA, Kalams SA, Brander C, Goulder PJ, Rosenberg ES, Walker BD; HIV Study Collaboration. Vpr is preferentially targeted by CTL during HIV-1 infection. J Immunol. 2001 Sep 1;167(5):2743-52. doi: 10.4049/jimmunol.167.5.2743.
- Novitsky V, Cao H, Rybak N, Gilbert P, McLane MF, Gaolekwe S, Peter T, Thior I, Ndung'u T, Marlink R, Lee TH, Essex M. Magnitude and frequency of cytotoxic T-lymphocyte responses: identification of immunodominant regions of human immunodeficiency virus type 1 subtype C. J Virol. 2002 Oct;76(20):10155-68. doi: 10.1128/jvi.76.20.10155-10168.2002.
- Quaranta MG, Mattioli B, Giordani L, Viora M. The immunoregulatory effects of HIV-1 Nef on dendritic cells and the pathogenesis of AIDS. FASEB J. 2006 Nov;20(13):2198-208. doi: 10.1096/fj.06-6260rev.
- Majumder B, Janket ML, Schafer EA, Schaubert K, Huang XL, Kan-Mitchell J, Rinaldo CR Jr, Ayyavoo V. Human immunodeficiency virus type 1 Vpr impairs dendritic cell maturation and T-cell activation: implications for viral immune escape. J Virol. 2005 Jul;79(13):7990-8003. doi: 10.1128/JVI.79.13.7990-8003.2005.
- Tcherepanova I, Starr A, Lackford B, Adams MD, Routy JP, Boulassel MR, Calderhead D, Healey D, Nicolette C. The immunosuppressive properties of the HIV Vpr protein are linked to a single highly conserved residue, R90. PLoS One. 2009 Jun 10;4(6):e5853. doi: 10.1371/journal.pone.0005853.
- Routy JP, Boulassel MR, Yassine-Diab B, Nicolette C, Healey D, Jain R, Landry C, Yegorov O, Tcherepanova I, Monesmith T, Finke L, Sekaly RP. Immunologic activity and safety of autologous HIV RNA-electroporated dendritic cells in HIV-1 infected patients receiving antiretroviral therapy. Clin Immunol. 2010 Feb;134(2):140-7. doi: 10.1016/j.clim.2009.09.009. Epub 2009 Nov 4.
- Gandhi RT, Zheng L, Bosch RJ, Chan ES, Margolis DM, Read S, Kallungal B, Palmer S, Medvik K, Lederman MM, Alatrakchi N, Jacobson JM, Wiegand A, Kearney M, Coffin JM, Mellors JW, Eron JJ; AIDS Clinical Trials Group A5244 team. The effect of raltegravir intensification on low-level residual viremia in HIV-infected patients on antiretroviral therapy: a randomized controlled trial. PLoS Med. 2010 Aug 10;7(8):e1000321. doi: 10.1371/journal.pmed.1000321.
- Azzoni L, Foulkes AS, Papasavvas E, Mexas AM, Lynn KM, Mounzer K, Tebas P, Jacobson JM, Frank I, Busch MP, Deeks SG, Carrington M, O'Doherty U, Kostman J, Montaner LJ. Pegylated Interferon alfa-2a monotherapy results in suppression of HIV type 1 replication and decreased cell-associated HIV DNA integration. J Infect Dis. 2013 Jan 15;207(2):213-22. doi: 10.1093/infdis/jis663. Epub 2012 Oct 26.
- Goulder PJ, Watkins DI. HIV and SIV CTL escape: implications for vaccine design. Nat Rev Immunol. 2004 Aug;4(8):630-40. doi: 10.1038/nri1417. No abstract available.
- Palmer S, Maldarelli F, Wiegand A, Bernstein B, Hanna GJ, Brun SC, Kempf DJ, Mellors JW, Coffin JM, King MS. Low-level viremia persists for at least 7 years in patients on suppressive antiretroviral therapy. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Mar 11;105(10):3879-84. doi: 10.1073/pnas.0800050105. Epub 2008 Mar 10.
- Steinman RM, Banchereau J. Taking dendritic cells into medicine. Nature. 2007 Sep 27;449(7161):419-26. doi: 10.1038/nature06175.
- Rosenberg ES, Altfeld M, Poon SH, Phillips MN, Wilkes BM, Eldridge RL, Robbins GK, D'Aquila RT, Goulder PJ, Walker BD. Immune control of HIV-1 after early treatment of acute infection. Nature. 2000 Sep 28;407(6803):523-6. doi: 10.1038/35035103.
- Volberding P, Demeter L, Bosch RJ, Aga E, Pettinelli C, Hirsch M, Vogler M, Martinez A, Little S, Connick E; ACTG 371 Team. Antiretroviral therapy in acute and recent HIV infection: a prospective multicenter stratified trial of intentionally interrupted treatment. AIDS. 2009 Sep 24;23(15):1987-95. doi: 10.1097/QAD.0b013e32832eb285.
- Hecht FM, Wang L, Collier A, Little S, Markowitz M, Margolick J, Kilby JM, Daar E, Conway B, Holte S; AIEDRP Network. A multicenter observational study of the potential benefits of initiating combination antiretroviral therapy during acute HIV infection. J Infect Dis. 2006 Sep 15;194(6):725-33. doi: 10.1086/506616. Epub 2006 Aug 15.
- Bongiovanni M, Casana M, Tincati C, d'Arminio Monforte A. Treatment interruptions in HIV-infected subjects. J Antimicrob Chemother. 2006 Sep;58(3):502-5. doi: 10.1093/jac/dkl268. Epub 2006 Jul 1.
- Rosenberg ZF, Fauci AS. Immunopathogenic mechanisms of HIV infection: cytokine induction of HIV expression. Immunol Today. 1990 May;11(5):176-80. doi: 10.1016/0167-5699(90)90070-p.
- Keedy KS, Archin NM, Gates AT, Espeseth A, Hazuda DJ, Margolis DM. A limited group of class I histone deacetylases acts to repress human immunodeficiency virus type 1 expression. J Virol. 2009 May;83(10):4749-56. doi: 10.1128/JVI.02585-08. Epub 2009 Mar 11.
- Schmitz JE, Kuroda MJ, Santra S, Sasseville VG, Simon MA, Lifton MA, Racz P, Tenner-Racz K, Dalesandro M, Scallon BJ, Ghrayeb J, Forman MA, Montefiori DC, Rieber EP, Letvin NL, Reimann KA. Control of viremia in simian immunodeficiency virus infection by CD8+ lymphocytes. Science. 1999 Feb 5;283(5403):857-60. doi: 10.1126/science.283.5403.857.
- Addo MM, Draenert R, Rathod A, Verrill CL, Davis BT, Gandhi RT, Robbins GK, Basgoz NO, Stone DR, Cohen DE, Johnston MN, Flynn T, Wurcel AG, Rosenberg ES, Altfeld M, Walker BD. Fully differentiated HIV-1 specific CD8+ T effector cells are more frequently detectable in controlled than in progressive HIV-1 infection. PLoS One. 2007 Mar 28;2(3):e321. doi: 10.1371/journal.pone.0000321.
- Barouch DH, Kunstman J, Kuroda MJ, Schmitz JE, Santra S, Peyerl FW, Krivulka GR, Beaudry K, Lifton MA, Gorgone DA, Montefiori DC, Lewis MG, Wolinsky SM, Letvin NL. Eventual AIDS vaccine failure in a rhesus monkey by viral escape from cytotoxic T lymphocytes. Nature. 2002 Jan 17;415(6869):335-9. doi: 10.1038/415335a.
- Vaccari M, Mattapallil J, Song K, Tsai WP, Hryniewicz A, Venzon D, Zanetti M, Reimann KA, Roederer M, Franchini G. Reduced protection from simian immunodeficiency virus SIVmac251 infection afforded by memory CD8+ T cells induced by vaccination during CD4+ T-cell deficiency. J Virol. 2008 Oct;82(19):9629-38. doi: 10.1128/JVI.00893-08. Epub 2008 Jul 30.
- McNeil AC, Shupert WL, Iyasere CA, Hallahan CW, Mican JA, Davey RT Jr, Connors M. High-level HIV-1 viremia suppresses viral antigen-specific CD4(+) T cell proliferation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001 Nov 20;98(24):13878-83. doi: 10.1073/pnas.251539598.
- Younes SA, Yassine-Diab B, Dumont AR, Boulassel MR, Grossman Z, Routy JP, Sekaly RP. HIV-1 viremia prevents the establishment of interleukin 2-producing HIV-specific memory CD4+ T cells endowed with proliferative capacity. J Exp Med. 2003 Dec 15;198(12):1909-22. doi: 10.1084/jem.20031598.
- Lichterfeld M, Yu XG, Mui SK, Williams KL, Trocha A, Brockman MA, Allgaier RL, Waring MT, Koibuchi T, Johnston MN, Cohen D, Allen TM, Rosenberg ES, Walker BD, Altfeld M. Selective depletion of high-avidity human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1)-specific CD8+ T cells after early HIV-1 infection. J Virol. 2007 Apr;81(8):4199-214. doi: 10.1128/JVI.01388-06. Epub 2007 Feb 7.
- Zanussi S, Simonelli C, D'Andrea M, Caffau C, Clerici M, Tirelli U, DePaoli P. CD8+ lymphocyte phenotype and cytokine production in long-term non-progressor and in progressor patients with HIV-1 infection. Clin Exp Immunol. 1996 Aug;105(2):220-4. doi: 10.1046/j.1365-2249.1996.d01-746.x.
- Trautmann L, Janbazian L, Chomont N, Said EA, Gimmig S, Bessette B, Boulassel MR, Delwart E, Sepulveda H, Balderas RS, Routy JP, Haddad EK, Sekaly RP. Upregulation of PD-1 expression on HIV-specific CD8+ T cells leads to reversible immune dysfunction. Nat Med. 2006 Oct;12(10):1198-202. doi: 10.1038/nm1482. Epub 2006 Aug 20. Erratum In: Nat Med. 2006 Nov;12(11):1329.
- Nicolette CA, Healey D, Tcherepanova I, Whelton P, Monesmith T, Coombs L, Finke LH, Whiteside T, Miesowicz F. Dendritic cells for active immunotherapy: optimizing design and manufacture in order to develop commercially and clinically viable products. Vaccine. 2007 Sep 27;25 Suppl 2:B47-60. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.06.006. Epub 2007 Jun 21.
- Osada T, Clay TM, Woo CY, Morse MA, Lyerly HK. Dendritic cell-based immunotherapy. Int Rev Immunol. 2006 Sep-Dec;25(5-6):377-413. doi: 10.1080/08830180600992456.
- Connolly NC, Whiteside TL, Wilson C, Kondragunta V, Rinaldo CR, Riddler SA. Therapeutic immunization with human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) peptide-loaded dendritic cells is safe and induces immunogenicity in HIV-1-infected individuals. Clin Vaccine Immunol. 2008 Feb;15(2):284-92. doi: 10.1128/CVI.00221-07. Epub 2007 Oct 17.
- Garcia F, Lejeune M, Climent N, Gil C, Alcami J, Morente V, Alos L, Ruiz A, Setoain J, Fumero E, Castro P, Lopez A, Cruceta A, Piera C, Florence E, Pereira A, Libois A, Gonzalez N, Guila M, Caballero M, Lomena F, Joseph J, Miro JM, Pumarola T, Plana M, Gatell JM, Gallart T. Therapeutic immunization with dendritic cells loaded with heat-inactivated autologous HIV-1 in patients with chronic HIV-1 infection. J Infect Dis. 2005 May 15;191(10):1680-5. doi: 10.1086/429340. Epub 2005 Apr 11.
- Whiteside TL, Piazza P, Reiter A, Stanson J, Connolly NC, Rinaldo CR Jr, Riddler SA. Production of a dendritic cell-based vaccine containing inactivated autologous virus for therapy of patients with chronic human immunodeficiency virus type 1 infection. Clin Vaccine Immunol. 2009 Feb;16(2):233-40. doi: 10.1128/CVI.00066-08. Epub 2008 Nov 26.
- Ide F, Nakamura T, Tomizawa M, Kawana-Tachikawa A, Odawara T, Hosoya N, Iwamoto A. Peptide-loaded dendritic-cell vaccination followed by treatment interruption for chronic HIV-1 infection: a phase 1 trial. J Med Virol. 2006 Jun;78(6):711-8. doi: 10.1002/jmv.20612.
- Morse MA, Coleman RE, Akabani G, Niehaus N, Coleman D, Lyerly HK. Migration of human dendritic cells after injection in patients with metastatic malignancies. Cancer Res. 1999 Jan 1;59(1):56-8.
- Serody JS, Collins EJ, Tisch RM, Kuhns JJ, Frelinger JA. T cell activity after dendritic cell vaccination is dependent on both the type of antigen and the mode of delivery. J Immunol. 2000 May 1;164(9):4961-7. doi: 10.4049/jimmunol.164.9.4961.
- Yukl SA, Boritz E, Busch M, Bentsen C, Chun TW, Douek D, Eisele E, Haase A, Ho YC, Hutter G, Justement JS, Keating S, Lee TH, Li P, Murray D, Palmer S, Pilcher C, Pillai S, Price RW, Rothenberger M, Schacker T, Siliciano J, Siliciano R, Sinclair E, Strain M, Wong J, Richman D, Deeks SG. Challenges in detecting HIV persistence during potentially curative interventions: a study of the Berlin patient. PLoS Pathog. 2013;9(5):e1003347. doi: 10.1371/journal.ppat.1003347. Epub 2013 May 9.
- Liszewski MK, Yu JJ, O'Doherty U. Detecting HIV-1 integration by repetitive-sampling Alu-gag PCR. Methods. 2009 Apr;47(4):254-60. doi: 10.1016/j.ymeth.2009.01.002. Epub 2009 Feb 3.
- Tcherepanova, I, Harri, J, Horvatinovich, J, et al. Autologous dendritic cell based therapy modulates proviral DNA levels in chronically HIV-infected subjects. AIDS Vaccine 2013 7 - 10 October in Barcelona, Spain.
- Wolf J, Bogner C, Hoffmann V, Avettand-Fenoel K, Schewe R, Pauli J, et al. 5-drug HAART during primary HIV infection leads to a reduction of proviral DNA levels in comparison to levels achievable during chronic infection. In: 7th IAS Conference on HIV Pathogenesis. Kuala Lumpur, Malaysia; 2013.
Przydatne linki
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Zakażenia wirusem RNA
- Choroby wirusowe
- Infekcje
- Infekcje przenoszone przez krew
- Choroby zakaźne
- Choroby przenoszone drogą płciową, wirusowe
- Choroby przenoszone drogą płciową
- Infekcje lentiwirusowe
- Zakażenia Retroviridae
- Zespoły niedoboru odporności
- Choroby układu odpornościowego
- Zakażenia wirusem HIV
Inne numery identyfikacyjne badania
- 13-3613 (Inny identyfikator: Hennepin County Medical Center)
- DAIDS-ES 11970 (Inny identyfikator: NIH Division of AIDS (DAIDS))
- 5U19AI096113-03 (Grant/umowa NIH USA)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .