- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04255004
Autologiczne komórki jednojądrzaste krwi obwodowej u pacjentów ze stopą cukrzycową z krytycznym niedokrwieniem kończyny bez opcji leczenia
Autologiczne komórki jednojądrzaste krwi obwodowej do ratowania kończyn u pacjentów ze stopą cukrzycową z krytycznym niedokrwieniem kończyny bez możliwości wyboru
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Jest to badanie interwencyjne z historyczną grupą kontrolną przeprowadzone w celu oceny głównych amputacji jako głównego wyniku, ogólnej śmiertelności, liczby wyleczonych pacjentów w grupie pacjentów, którzy otrzymali powtarzalny implant domięśniowy PBMNC (3 razy; odstęp 4 tygodni) w porównaniu do historycznej grupy kontroli wewnętrznej ze stosunkiem przypadków do kontroli 1:1. Wyniki drugorzędne to TCPO2, czas gojenia i ból spoczynkowy.
Krytyczne niedokrwienie kończyny bez możliwości wyboru definiuje się jako brak spływu naczyń stopy, niepowodzenie po kilku interwencjach przezskórnych i brak możliwości ponownej interwencji, niepowodzenie po wszczepieniu pomostów podkolanowych, brak możliwości chodzenia z ciężkimi chorobami współistniejącymi, niezdolnymi do leczenia chirurgicznego lub procedury wewnątrznaczyniowe.
Kryteriami włączenia są: a) owrzodzenia z niedostateczną perfuzją, na co wskazuje wartość przezskórnego ciśnienia tlenu (TcpO2) <30 mmHg; b) owrzodzenia stopnia I lub II lub III oraz stadium C zgodnie z Systemem Klasyfikacji Uniwersytetu Teksaskiego lub W1,2,3 - I 3 - FI 0,1 zgodnie z Systemem Klasyfikacji WiFI c) niekwalifikujące się do angioplastyki lub plastyki naczyń operacja lub po nieudanej rewaskularyzacji; d) możliwość zaoszczędzenia podparcia stopy.
Kryteria wykluczenia to: a) miejsce zmiany powyżej stawu piszczelowo-stępowego; b) umiarkowana lub ciężka infekcja według systemu klasyfikacji WiFI; c) IV klasa NYHA; d) niedokrwistość (Hb<8g/dl); e) zaburzenia krzepnięcia/małopłytkowość (PLT < 50 000 na mikrolitr); f) czynna choroba nowotworowa/białaczka lub chłoniak hematologiczny.
Standard opieki w obu grupach obejmuje: maksymalizację kontroli cukrzycy przez diabetologa, kompleksową ocenę stopy przez pielęgniarkę wraz z diabetologiem, w tym określenie progu odczuwania drgań, test monofilamentu 10 g i pomiar TcpO2, opatrunki, odciążenie i terapię ogólnoustrojową zgodnie z wytycznymi IWGDF.
Świadoma zgoda na udział w badaniu w trakcie trwania badania klinicznego jest uzyskiwana od wszystkich osób.
Stężenie autologicznej terapii komórkowej PB-MNC jest wytwarzane przez filtracyjne urządzenie przyłóżkowe przeznaczone do stosowania śródoperacyjnego ze 120 ml antykoagulowanej krwi. Wszystkie zabiegi wykonywane są w sali operacyjnej ze wsparciem anestezjologicznym (propofol i/lub blokada obwodowa). Krew (120 ml) pobiera się przez obwodowy dostęp żylny, następnie obciąża i dopuszcza się filtrację grawitacyjną w ciągu około 10 minut. Podczas filtracji MNC są wychwytywane przez filtr, podczas gdy osocze, płytki krwi (PLT) i krwinki czerwone (RBC) nie są zatrzymywane. Po odpowiednim chirurgicznym oczyszczeniu łożyska rany, wzdłuż odpowiedniej osi poniżej kolana, w odstępach 1-2 cm i na średnią głębokość 1,5- 2 cm, używając igły 21G. Procedurę tę powtarza się u każdego pacjenta trzykrotnie, w odstępach 30-45 dni od siebie.
Operację oszczędzającą stopę, polegającą na usunięciu wszystkich nieżywotnych tkanek i odbudowie stopy w celu umożliwienia funkcjonalnego chodzenia, przeprowadza się w tym samym czasie co ostatni implant u pacjentów z podwyższoną wartością TcpO2 powyżej 30 mmHg. Pomiędzy implantami diabetolodzy wraz z pielęgniarkami oceniali zmiany w zakresie bólu, objawów infekcji, wielkości rany, rozgraniczenia martwicy, formowania się ziarniny, trofizmu tkanek okołowierzchołkowych oraz wartości TcpO2 w celu optymalizacji standardu opieki. Po pierwszym zabiegu rejestruje się dwuletnią obserwację z oceną 1-3-6-12-18-24 miesięcy.
Przeprowadza się ocenę wyjściową w celu oszacowania wszelkich różnic między przypadkami i kontrolami przed leczeniem. Ocena statystyczna obejmuje testy nieparametryczne (test U Manna-Whitneya dla prób niezależnych dla zmiennych ciągłych i test chi-kwadrat Cochrane'a dla zmiennych dyskretnych), ocenę ryzyka względnego (RR), bezwzględną redukcję ryzyka (ARR), redukcję ryzyka względnego (RRR) ) i liczbę potrzebną do leczenia (NNT), wielowymiarową analizę przeżycia (model analizy przeżycia Kaplana-Meiera).
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- owrzodzenia z niedostateczną perfuzją, na co wskazuje przezskórna wartość ciśnienia tlenu (TcpO2) <30 mmHg;
- owrzodzenia o stopniu I lub II lub III i stopniu C zgodnie z definicją Texas University Classification System lub W1,2,3 - I 3 - FI 0,1 zgodnie z definicją WiFI Classification System
- niekwalifikujący się do angioplastyki lub chirurgii naczyniowej lub po nieudanej rewaskularyzacji;
- możliwość zaoszczędzenia podparcia stopy.
Kryteria wyłączenia:
- miejsce zmiany powyżej stawu piszczelowo-stępowego;
- umiarkowana lub ciężka infekcja według systemu klasyfikacji WiFI;
- klasa IV wg NYHA; d) niedokrwistość (Hb<8g/dl);
- zaburzenia krzepnięcia/małopłytkowość (PLT < 50 000 na mikrolitr);
- czynna choroba nowotworowa/białaczka lub chłoniak hematologiczny.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nielosowe
- Model interwencyjny: Zadanie sekwencyjne
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Aktywny komparator: Terapia A-PBMNC
Pacjenci w terapii A-PBMNC są leczeni za pomocą wielokrotnych iniekcji wokół rany i domięśniowo zawiesiny komórek PBMNC (0,2-0,3 cm3 w bolusach).
Procedurę tę powtarza się u każdego pacjenta trzykrotnie, w odstępach 30-45 dni od siebie.
|
Stężenie autologicznej terapii komórkowej PB-MNC zostało wytworzone za pomocą urządzenia punktowego opartego na filtracji.
Wszystkie zabiegi wykonano w sali operacyjnej ze wsparciem anestezjologicznym (propofol i/lub blokada obwodowa).
Pobierano krew (120 ml) przez obwodowy dostęp żylny.
Załadowano krew i pozwolono na kontynuację filtracji grawitacyjnej, aż górna strona filtra nie zawierała pozostałej krwi; filtracja trwa około 10 minut.
Podczas filtracji MNC zostały wychwycone przez filtr, podczas gdy osocze, płytki krwi (PLT) i krwinki czerwone (RBC) nie zostały zatrzymane.
Roztwór koncentratu wstrzykuje się natychmiast w okolicę okołonapięciową i domięśniowo w stopę i nogę (0,2-0,3 cm3 w bolusach) poniżej kolana, w odstępach 1-2 cm i na średnią głębokość 1,5-2 cm, stosując 21G igła.
Procedurę tę powtarza się u każdego pacjenta trzykrotnie, w odstępach 30-45 dni od siebie.
|
|
Brak interwencji: Brak terapii A-PBMNC
Pacjenci w terapii No A-PBMNC otrzymują jedynie leczenie wspomagające obejmujące pielęgnację rany i lek przeciwbólowy.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Przeżycie bez amputacji po 1 miesiącu
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
odsetek kończyn bez amputacji 1 miesiąc po zabiegu
|
1 miesiąc
|
|
Przeżycie bez amputacji po 3 miesiącach
Ramy czasowe: 3 miesiące
|
odsetek kończyn bez amputacji 3 miesiące po zabiegu
|
3 miesiące
|
|
Przeżycie bez amputacji po 6 miesiącach
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
odsetek kończyn bez amputacji po 6 miesiącach od zabiegu
|
6 miesięcy
|
|
Przeżycie bez amputacji po 12 miesiącach
Ramy czasowe: 12 miesięcy
|
odsetek kończyn bez amputacji 12 miesięcy po zabiegu
|
12 miesięcy
|
|
Przeżycie bez amputacji po 18 miesiącach
Ramy czasowe: 18 miesięcy
|
odsetek kończyn bez amputacji 18 miesięcy po interwencji
|
18 miesięcy
|
|
Przeżycie bez amputacji po 24 miesiącach
Ramy czasowe: 24 miesiące
|
odsetek kończyn bez amputacji 24 miesiące po interwencji
|
24 miesiące
|
|
ryzyko śmierci po 1 miesiącu
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
odsetek zmarłych 1 miesiąc po interwencji
|
1 miesiąc
|
|
ryzyko śmierci w wieku 3 miesięcy
Ramy czasowe: 3 miesiące
|
odsetek zmarłych po 3 miesiącach od interwencji
|
3 miesiące
|
|
ryzyko śmierci w wieku 6 miesięcy
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
odsetek zmarłych po 6 miesiącach od interwencji
|
6 miesięcy
|
|
ryzyko śmierci w wieku 12 miesięcy
Ramy czasowe: 12 miesięcy
|
odsetek zmarłych po 12 miesiącach od interwencji
|
12 miesięcy
|
|
ryzyko śmierci w wieku 18 miesięcy
Ramy czasowe: 18 miesięcy
|
odsetek zmarłych 18 miesięcy po interwencji
|
18 miesięcy
|
|
ryzyko śmierci w wieku 24 miesięcy
Ramy czasowe: 24 miesiące
|
odsetek zmarłych po 24 miesiącach od interwencji
|
24 miesiące
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 1 miesiącu
Ramy czasowe: 1 miesiąc
|
odsetek wyleczonych osób po 1 miesiącu od interwencji
|
1 miesiąc
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 3 miesiącach
Ramy czasowe: 3 miesiące
|
odsetek wyleczonych osób po 3 miesiącach od interwencji
|
3 miesiące
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 6 miesiącach
Ramy czasowe: 6 miesięcy
|
odsetek wyleczonych osób po 6 miesiącach od interwencji
|
6 miesięcy
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 12 miesiącach
Ramy czasowe: 12 miesięcy
|
odsetek wyleczonych osób po 12 miesiącach od interwencji
|
12 miesięcy
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 18 miesiącach
Ramy czasowe: 18 miesięcy
|
odsetek wyleczonych osób po 18 miesiącach od interwencji
|
18 miesięcy
|
|
prawdopodobieństwo wyleczenia po 24 miesiącach
Ramy czasowe: 24 miesiące
|
odsetek wyleczonych osób po 24 miesiącach od interwencji
|
24 miesiące
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
zmienność przezskórnego pomiaru tlenu (TcPO2).
Ramy czasowe: 0-3 miesiące
|
porównanie TcPO2 podczas drugiej wizyty kontrolnej (3 miesiące po interwencji) z pomiarem wyjściowym
|
0-3 miesiące
|
|
Czas leczenia
Ramy czasowe: w ciągu 24 miesięcy
|
czas na osiągnięcie pełnej epitelializacji
|
w ciągu 24 miesięcy
|
|
ból spoczynkowy
Ramy czasowe: 0-1-3 miesiące
|
porównanie bólu spoczynkowego mierzonego numeryczną skalą ocen (NRS) min 0 - max 10, gdzie 10 to najgorszy ból, jaki pacjent odczuwał
|
0-1-3 miesiące
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Krzesło do nauki: Leonardo Ercolini, MD, Vascular Surgery Unit San Donato Hospital Arezzo
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Breivik H, Borchgrevink PC, Allen SM, Rosseland LA, Romundstad L, Hals EK, Kvarstein G, Stubhaug A. Assessment of pain. Br J Anaesth. 2008 Jul;101(1):17-24. doi: 10.1093/bja/aen103. Epub 2008 May 16.
- Abu Dabrh AM, Steffen MW, Undavalli C, Asi N, Wang Z, Elamin MB, Conte MS, Murad MH. The natural history of untreated severe or critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2015 Dec;62(6):1642-51.e3. doi: 10.1016/j.jvs.2015.07.065. Epub 2015 Sep 26.
- Golomb BA, Dang TT, Criqui MH. Peripheral arterial disease: morbidity and mortality implications. Circulation. 2006 Aug 15;114(7):688-99. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.105.593442. No abstract available.
- Rigato M, Monami M, Fadini GP. Autologous Cell Therapy for Peripheral Arterial Disease: Systematic Review and Meta-Analysis of Randomized, Nonrandomized, and Noncontrolled Studies. Circ Res. 2017 Apr 14;120(8):1326-1340. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.116.309045. Epub 2017 Jan 17.
- Fantin A, Vieira JM, Gestri G, Denti L, Schwarz Q, Prykhozhij S, Peri F, Wilson SW, Ruhrberg C. Tissue macrophages act as cellular chaperones for vascular anastomosis downstream of VEGF-mediated endothelial tip cell induction. Blood. 2010 Aug 5;116(5):829-40. doi: 10.1182/blood-2009-12-257832. Epub 2010 Apr 19.
- Baer C, Squadrito ML, Iruela-Arispe ML, De Palma M. Reciprocal interactions between endothelial cells and macrophages in angiogenic vascular niches. Exp Cell Res. 2013 Jul 1;319(11):1626-34. doi: 10.1016/j.yexcr.2013.03.026. Epub 2013 Mar 28.
- Wynn TA, Vannella KM. Macrophages in Tissue Repair, Regeneration, and Fibrosis. Immunity. 2016 Mar 15;44(3):450-462. doi: 10.1016/j.immuni.2016.02.015.
- Krzyszczyk P, Schloss R, Palmer A, Berthiaume F. The Role of Macrophages in Acute and Chronic Wound Healing and Interventions to Promote Pro-wound Healing Phenotypes. Front Physiol. 2018 May 1;9:419. doi: 10.3389/fphys.2018.00419. eCollection 2018.
- Awad O, Dedkov EI, Jiao C, Bloomer S, Tomanek RJ, Schatteman GC. Differential healing activities of CD34+ and CD14+ endothelial cell progenitors. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006 Apr;26(4):758-64. doi: 10.1161/01.ATV.0000203513.29227.6f. Epub 2006 Jan 12.
- Jarajapu YP, Hazra S, Segal M, Li Calzi S, Jadhao C, Qian K, Mitter SK, Raizada MK, Boulton ME, Grant MB. Vasoreparative dysfunction of CD34+ cells in diabetic individuals involves hypoxic desensitization and impaired autocrine/paracrine mechanisms. PLoS One. 2014 Apr 8;9(4):e93965. doi: 10.1371/journal.pone.0093965. eCollection 2014. Erratum In: PLoS One. 2014;9(7):e103913. LiCalzi, Sergio [corrected to Li Calzi, Sergio]; Jhadao, Chandra [corrected to Jadhao, Chandra].
- Spaltro G, Straino S, Gambini E, Bassetti B, Persico L, Zoli S, Zanobini M, Capogrossi MC, Spirito R, Quarti C, Pompilio G. Characterization of the Pall Celeris system as a point-of-care device for therapeutic angiogenesis. Cytotherapy. 2015 Sep;17(9):1302-13. doi: 10.1016/j.jcyt.2015.04.006. Epub 2015 May 30.
- Moriya J, Minamino T, Tateno K, Shimizu N, Kuwabara Y, Sato Y, Saito Y, Komuro I. Long-term outcome of therapeutic neovascularization using peripheral blood mononuclear cells for limb ischemia. Circ Cardiovasc Interv. 2009 Jun;2(3):245-54. doi: 10.1161/CIRCINTERVENTIONS.108.799361. Epub 2009 Mar 30.
- Persiani F, Paolini A, Camilli D, Mascellari L, Platone A, Magenta A, Furgiuele S. Peripheral Blood Mononuclear Cells Therapy for Treatment of Lower Limb Ischemia in Diabetic Patients: A Single-Center Experience. Ann Vasc Surg. 2018 Nov;53:190-196. doi: 10.1016/j.avsg.2018.05.036. Epub 2018 Jul 25.
- Armstrong DG, Lavery LA, Harkless LB. Validation of a diabetic wound classification system. The contribution of depth, infection, and ischemia to risk of amputation. Diabetes Care. 1998 May;21(5):855-9. doi: 10.2337/diacare.21.5.855.
- Wagner FW Jr. The dysvascular foot: a system for diagnosis and treatment. Foot Ankle. 1981 Sep;2(2):64-122. doi: 10.1177/107110078100200202. No abstract available.
- Lipsky BA, Aragon-Sanchez J, Diggle M, Embil J, Kono S, Lavery L, Senneville E, Urbancic-Rovan V, Van Asten S; International Working Group on the Diabetic Foot, Peters EJ. IWGDF guidance on the diagnosis and management of foot infections in persons with diabetes. Diabetes Metab Res Rev. 2016 Jan;32 Suppl 1:45-74. doi: 10.1002/dmrr.2699. No abstract available.
- Meloni M, Giurato L, Izzo V, Stefanini M, Pampana E, Gandini R, Uccioli L. Long term outcomes of diabetic haemodialysis patients with critical limb ischemia and foot ulcer. Diabetes Res Clin Pract. 2016 Jun;116:117-22. doi: 10.1016/j.diabres.2016.04.030. Epub 2016 Apr 26.
- Dubsky M, Jirkovska A, Bem R, Fejfarova V, Pagacova L, Nemcova A, Sixta B, Chlupac J, Peregrin JH, Sykova E, Jude EB. Comparison of the effect of stem cell therapy and percutaneous transluminal angioplasty on diabetic foot disease in patients with critical limb ischemia. Cytotherapy. 2014 Dec;16(12):1733-8. doi: 10.1016/j.jcyt.2014.08.010. Epub 2014 Oct 7.
- Mustapha JA, Katzen BT, Neville RF, Lookstein RA, Zeller T, Miller LE, Jaff MR. Disease Burden and Clinical Outcomes Following Initial Diagnosis of Critical Limb Ischemia in the Medicare Population. JACC Cardiovasc Interv. 2018 May 28;11(10):1011-1012. doi: 10.1016/j.jcin.2017.12.012. No abstract available.
- Klaphake S, de Leur K, Mulder PG, Ho GH, de Groot HG, Veen EJ, Verhagen HJ, van der Laan L. Mortality after major amputation in elderly patients with critical limb ischemia. Clin Interv Aging. 2017 Nov 22;12:1985-1992. doi: 10.2147/CIA.S137570. eCollection 2017.
- Martini R, Andreozzi GM, Deri A, Cordova R, Zulian P, Scarpazza O, Nalin F. Amputation rate and mortality in elderly patients with critical limb ischemia not suitable for revascularization. Aging Clin Exp Res. 2012 Jun;24(3 Suppl):24-7.
- Pannell M, Labuz D, Celik MO, Keye J, Batra A, Siegmund B, Machelska H. Adoptive transfer of M2 macrophages reduces neuropathic pain via opioid peptides. J Neuroinflammation. 2016 Oct 7;13(1):262. doi: 10.1186/s12974-016-0735-z.
- Hasegawa T, Kosaki A, Shimizu K, Matsubara H, Mori Y, Masaki H, Toyoda N, Inoue-Shibata M, Nishikawa M, Iwasaka T. Amelioration of diabetic peripheral neuropathy by implantation of hematopoietic mononuclear cells in streptozotocin-induced diabetic rats. Exp Neurol. 2006 Jun;199(2):274-80. doi: 10.1016/j.expneurol.2005.11.001. Epub 2005 Dec 6.
- Molavi B, Zafarghandi MR, Aminizadeh E, Hosseini SE, Mirzayi H, Arab L, Baharvand H, Aghdami N. Safety and Efficacy of Repeated Bone Marrow Mononuclear Cell Therapy in Patients with Critical Limb Ischemia in a Pilot Randomized Controlled Trial. Arch Iran Med. 2016 Jun;19(6):388-96.
- Kang WC, Oh PC, Lee K, Ahn T, Byun K. Increasing injection frequency enhances the survival of injected bone marrow derived mesenchymal stem cells in a critical limb ischemia animal model. Korean J Physiol Pharmacol. 2016 Nov;20(6):657-667. doi: 10.4196/kjpp.2016.20.6.657. Epub 2016 Oct 28.
- Fadini GP, Albiero M, Bonora BM, Avogaro A. Angiogenic Abnormalities in Diabetes Mellitus: Mechanistic and Clinical Aspects. J Clin Endocrinol Metab. 2019 Nov 1;104(11):5431-5444. doi: 10.1210/jc.2019-00980.
- Cianfarani F, Toietta G, Di Rocco G, Cesareo E, Zambruno G, Odorisio T. Diabetes impairs adipose tissue-derived stem cell function and efficiency in promoting wound healing. Wound Repair Regen. 2013 Jul-Aug;21(4):545-53. doi: 10.1111/wrr.12051. Epub 2013 Apr 29.
- Rennert RC, Sorkin M, Januszyk M, Duscher D, Kosaraju R, Chung MT, Lennon J, Radiya-Dixit A, Raghvendra S, Maan ZN, Hu MS, Rajadas J, Rodrigues M, Gurtner GC. Diabetes impairs the angiogenic potential of adipose-derived stem cells by selectively depleting cellular subpopulations. Stem Cell Res Ther. 2014 Jun 18;5(3):79. doi: 10.1186/scrt468.
- Navarro A, Marin S, Riol N, Carbonell-Uberos F, Minana MD. Human adipose tissue-resident monocytes exhibit an endothelial-like phenotype and display angiogenic properties. Stem Cell Res Ther. 2014 Apr 14;5(2):50. doi: 10.1186/scrt438.
- Kornicka K, Houston J, Marycz K. Dysfunction of Mesenchymal Stem Cells Isolated from Metabolic Syndrome and Type 2 Diabetic Patients as Result of Oxidative Stress and Autophagy may Limit Their Potential Therapeutic Use. Stem Cell Rev Rep. 2018 Jun;14(3):337-345. doi: 10.1007/s12015-018-9809-x.
- Inoue O, Usui S, Takashima SI, Nomura A, Yamaguchi K, Takeda Y, Goten C, Hamaoka T, Ootsuji H, Murai H, Kaneko S, Takamura M. Diabetes impairs the angiogenic capacity of human adipose-derived stem cells by reducing the CD271+ subpopulation in adipose tissue. Biochem Biophys Res Commun. 2019 Sep 17;517(2):369-375. doi: 10.1016/j.bbrc.2019.07.081. Epub 2019 Jul 27.
- Wang SK, Green LA, Motaganahalli RL, Wilson MG, Fajardo A, Murphy MP. Rationale and design of the MarrowStim PAD Kit for the Treatment of Critical Limb Ischemia in Subjects with Severe Peripheral Arterial Disease (MOBILE) trial investigating autologous bone marrow cell therapy for critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2017 Jun;65(6):1850-1857.e2. doi: 10.1016/j.jvs.2017.01.054. Epub 2017 Apr 5.
- Hao C, Shintani S, Shimizu Y, Kondo K, Ishii M, Wu H, Murohara T. Therapeutic angiogenesis by autologous adipose-derived regenerative cells: comparison with bone marrow mononuclear cells. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2014 Sep 15;307(6):H869-79. doi: 10.1152/ajpheart.00310.2014. Epub 2014 Jul 25.
- Kondo K, Shintani S, Shibata R, Murakami H, Murakami R, Imaizumi M, Kitagawa Y, Murohara T. Implantation of adipose-derived regenerative cells enhances ischemia-induced angiogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009 Jan;29(1):61-6. doi: 10.1161/ATVBAHA.108.166496. Epub 2008 Oct 30.
- Bora P, Majumdar AS. Adipose tissue-derived stromal vascular fraction in regenerative medicine: a brief review on biology and translation. Stem Cell Res Ther. 2017 Jun 15;8(1):145. doi: 10.1186/s13287-017-0598-y.
- Zollino I, Campioni D, Sibilla MG, Tessari M, Malagoni AM, Zamboni P. A phase II randomized clinical trial for the treatment of recalcitrant chronic leg ulcers using centrifuged adipose tissue containing progenitor cells. Cytotherapy. 2019 Feb;21(2):200-211. doi: 10.1016/j.jcyt.2018.10.012. Epub 2018 Dec 22.
- Huang P, Li S, Han M, Xiao Z, Yang R, Han ZC. Autologous transplantation of granulocyte colony-stimulating factor-mobilized peripheral blood mononuclear cells improves critical limb ischemia in diabetes. Diabetes Care. 2005 Sep;28(9):2155-60. doi: 10.2337/diacare.28.9.2155.
- Fadini GP, Albiero M, Vigili de Kreutzenberg S, Boscaro E, Cappellari R, Marescotti M, Poncina N, Agostini C, Avogaro A. Diabetes impairs stem cell and proangiogenic cell mobilization in humans. Diabetes Care. 2013 Apr;36(4):943-9. doi: 10.2337/dc12-1084. Epub 2012 Oct 30.
- Dong Z, Pan T, Fang Y, Wei Z, Gu S, Fang G, Liu Y, Luo Y, Liu H, Zhang T, Hu M, Guo D, Xu X, Chen B, Jiang J, Yang J, Shi Z, Zhu T, Shi Y, Liu P, Fu W. Purified CD34+ cells versus peripheral blood mononuclear cells in the treatment of angiitis-induced no-option critical limb ischaemia: 12-Month results of a prospective randomised single-blinded non-inferiority trial. EBioMedicine. 2018 Sep;35:46-57. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.08.038. Epub 2018 Aug 29.
- Fowkes FG, Rudan D, Rudan I, Aboyans V, Denenberg JO, McDermott MM, Norman PE, Sampson UK, Williams LJ, Mensah GA, Criqui MH. Comparison of global estimates of prevalence and risk factors for peripheral artery disease in 2000 and 2010: a systematic review and analysis. Lancet. 2013 Oct 19;382(9901):1329-40. doi: 10.1016/S0140-6736(13)61249-0. Epub 2013 Aug 1.
- Reinecke H, Unrath M, Freisinger E, Bunzemeier H, Meyborg M, Luders F, Gebauer K, Roeder N, Berger K, Malyar NM. Peripheral arterial disease and critical limb ischaemia: still poor outcomes and lack of guideline adherence. Eur Heart J. 2015 Apr 14;36(15):932-8. doi: 10.1093/eurheartj/ehv006. Epub 2015 Feb 2.
- Vas PRJ, Edmonds M, Kavarthapu V, Rashid H, Ahluwalia R, Pankhurst C, Papanas N. The Diabetic Foot Attack: "'Tis Too Late to Retreat!". Int J Low Extrem Wounds. 2018 Mar;17(1):7-13. doi: 10.1177/1534734618755582. Epub 2018 Feb 12.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- MONODIAB-19-01
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .