- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04302168
Suplementacja choliny na wzrost płodu w cukrzycy ciążowej
Wpływ suplementacji choliny na wzrost płodu w cukrzycy ciążowej
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
CELE BADANIA Cel szczegółowy 1: Określenie wpływu MCS w czasie ciąży na masę urodzeniową w przypadku GDM.
Cel szczegółowy 2: Określenie wpływu MCS na transport makroskładników odżywczych i modyfikacje epigenetyczne w łożysku i krwi pępowinowej.
HIPOTEZA
Cel 1: Badacze postawili hipotezę, że grupa cholinowa miałaby niższą wagę urodzeniową i mniej noworodków LGA niż grupa bez choliny.
Cel 2: Badacze stawiają hipotezę, że grupa cholinowa zmniejszy transport łożyskowy i zwiększy metylację DNA genów metabolicznych.
PROJEKT BADANIA
Tematy: Przyjęta zostanie dogodna metodologia doboru próby. Badacze będą rekrutować kobiety w ciąży, u których zdiagnozowano GDM w drugim trymestrze ciąży, w sposób ciągły. Randomizacja blokowa będzie prowadzona w oparciu o metody leczenia (tj. insulinoterapię, doustne leki hipoglikemizujące lub samą dietę), aby losowo przypisać uczestników do grup interwencyjnych i kontrolnych. Rekrutacja zostanie przeprowadzona przy użyciu następujących metod: (i) ulotki badawcze zostaną wywieszone w poradni prenatalnej; (ii) badacze zidentyfikują kobiety w ciąży, które potencjalnie kwalifikują się, przeglądając dokumentację medyczną.
Kryteria kwalifikacji: Kryteria włączenia obejmują kobiety w ciąży z GDM przed 28. tygodniem ciąży. GDM diagnozuje się w procesie dwuetapowym: poziom glukozy we krwi wyższy niż wartość odcięcia 140 mg/dl po 50 g nie na czczo przez 1 godzinę i 100 g glukozy we krwi przez 3 godziny doustnie. Kobiety w ciąży kwalifikują się do udziału, jeśli mówią po angielsku lub hiszpańsku, mają ukończone 18 lat, są w ciąży pojedynczej, zamierzają urodzić dziecko w placówce i nie spełniają żadnych warunków wymienionych w kryteriach wykluczenia. Kryteria wykluczenia obejmują istniejącą wcześniej hiperglikemię, cukrzycę, choroby sercowo-naczyniowe i choroby wątroby przed ciążą. Pacjenci mogą zdecydować się na udział w badaniu i nie oddać biopsji łożyska lub pępowiny. Pacjenci, którzy chcą być dawcami lub przechowywać komórki macierzyste, nie będą mogli wykonać biopsji łożyska lub pępowiny. Pacjenci ci nie zostaną wykluczeni z analizy pierwotnej.
Procedury projektowania i gromadzenia danych:
Wszystkie interakcje z uczestnikami będą miały miejsce w szpitalu dostarczającym, podczas gdy analizy próbek będą miały miejsce w Kolegium, w którym znajduje się laboratorium współbadacza. Koordynator badania, zatrudniony przez współbadaczy (Brooklyn College), nie będzie uzyskiwał dostępu do danych ani ich przechowywał zdalnie, a wszelkie gromadzenie i analiza danych będą odbywać się na terenie kampusu szpitalnego.
Badacze uzyskają pisemną świadomą zgodę kobiet w ciąży przed przystąpieniem do badania. Randomizacja zostanie przeprowadzona przez aptekę po podpisaniu przez pacjenta zgody. Będzie to randomizacja blokowa 6 pacjentów. Po randomizacji badacze dostarczą uczestnikowi z grupy interwencyjnej pigułki uzupełniające cholinę zawierające 500 mg dwuwinianu choliny (235 mg choliny, Douglas Lab). Uczestnik będzie spożywał 2 tabletki dziennie, aby uzyskać 470 mg choliny na 8 tygodni. Zalecane spożycie choliny w postaci odpowiedniego spożycia (AI) wynosi 450 mg/d dla kobiet w ciąży, a tolerowany górny poziom spożycia (UL) to 3500 mg/d. Ponieważ mniej niż 10% kobiet w ciąży osiąga AI spożycia choliny, a górny kwartyl spożycia choliny wynosi poniżej 900 mg/d. Dawka podana przez badaczy plus zwykłe spożycie choliny u tych kobiet w ciąży będzie mieścić się między AI a UL, tj. wystarczającą, ale nieprzekraczającą limitu. Uczestnicy z grupy kontrolnej otrzymają placebo. Obie grupy otrzymają również standardowe prenatalne multiwitaminy. Badacze zapewnią uczestnikom zapas suplementów na 5 tygodni, a badacze zweryfikują ich przestrzeganie w tym czasie z codziennymi dziennikami kontrolnymi spożycia suplementów i liczby pozostałych pigułek podczas następnej wizyty.
Uczestnicy przyjdą łącznie na 3 wizyty w ramach rutynowej opieki klinicznej. Pierwsza wizyta odbędzie się między 24 a 28 tygodniem ciąży, kiedy badacze zapiszą uczestników, druga wizyta między 28 a 32 tygodniem ciąży, a trzecia wizyta między 32 a 36 tygodniem. Badacze zbiorą kwestionariusz wyjściowy podczas pierwszej wizyty (około 20 minut), przeprowadzą 3-dniowe wywiady żywieniowe po pierwszej wizycie (każda po około 20 minut) oraz sprawdzą aktualną wagę i pobiorą 20 ml próbek krwi podczas wszystkich wizyt. Podczas porodu badacze pobiorą próbki łożyska i krwi pępowinowej od uczestników.
Kwestionariusz podstawowy: Kwestionariusz zawiera informacje demograficzne i medyczne, takie jak wiek, data porodu, pochodzenie etniczne, liczba par, stan cywilny, poziom wykształcenia, zawód, dochód gospodarstwa domowego, ubezpieczenie medyczne, używanie substancji psychoaktywnych, przyjmowanie leków, suplement diety, historia chorób przewlekłych w rodzinie, i samozgłoszoną wagę przed ciążą.
Ocena diety: Trzy 24-godzinne przypomnienia dietetyczne, 2 w dni powszednie i 1 w weekend, zostaną uzyskane od każdego uczestnika przez wyszkolonego asystenta badawczego (RA) za pośrednictwem rozmów telefonicznych po pierwszych wizytach w celu ilościowego określenia spożycia choliny w diecie. Wykorzystana zostanie metoda wieloprzebiegowa Harnacka i współpracowników. RA będzie rejestrować identyfikację żywności, ilość, specyfikację składników, metodę przygotowania i wprowadzać dane do oprogramowania Nutrition Data System for Research (NDSR) w celu analizy spożycia choliny. RA zapyta również uczestników o ich aktywność fizyczną (PA) w ciągu ostatnich 24 godzin za pomocą przyrządu przypominającego PA.
Pomiary antropometryczne i pobieranie krwi: Podczas wizyt badacze będą mierzyć wagę i wzrost uczestników za pomocą wagi medycznej z mechanicznymi prętami wzrostu. Aby zminimalizować związane z pożywieniem różnice stężeń biomarkerów w osoczu, uczestnicy zostaną poinstruowani, aby nie spożywali pokarmu przez co najmniej 4 godziny przed porannym pobraniem krwi. Jest to standardowe zalecenie dla wizyt prenatalnych i jest uważane za bezpieczne. Podczas wizyt badacza od każdego uczestnika zostanie pobrane około 20 ml krwi żylnej na czczo. Próbki krwi zostaną pobrane do jednej probówki do pobierania krwi EDTA i jednej probówki do oddzielania surowicy i odwirowane w celu uzyskania osocza, kożuszka leukocytarnego i surowicy. Próbki będą przetwarzane i przechowywane w laboratorium w temperaturze -80oC do czasu wykorzystania ich do pomiarów analitycznych.
Zarządzanie glikemią: Badacze uzyskają informacje na temat glukozy na czczo, hemoglobiny A1C, leków i insulinoterapii z kart medycznych uczestników.
Informacje o narodzinach i pobieranie próbek przy porodzie: Uczestnicy powiadomią badaczy telefonicznie o przyjęciu do centrum narodzin. Śledczy będą im również wysyłać przypomnienia, gdy zbliżają się terminy. Ponadto personel medyczny centrum narodzin otrzyma listę nazwisk uczestników, w związku z czym skontaktuje się również z badaczami, jeśli uczestnik zgłosi się, gdy nikogo z personelu badawczego nie ma na miejscu. Po urodzeniu dziecka badacze pobiorą dwie probówki krwi pępowinowej, aby pobrać surowicę, osocze i kożuszek leukocytarny. Badacze zmierzą rozmiar i wagę łożyska i przetworzą łożysko, stosując następującą metodę: biopsje łożyska pełnej grubości zostaną uzyskane za pomocą 6-milimetrowego stempla Keyesa i ustabilizowane w RNAlater® (dla RNA) lub zamrożone w ciekłym azocie (do innych celów). Próbki zostaną przetransportowane do laboratorium współbadacza w celu długoterminowego przechowywania w temperaturze -80°C przed użyciem.
Ocena spożycia: Jak wspomniano powyżej, dane dotyczące spożycia zebrane z 3-dniowych wywiadów żywieniowych zostaną przeanalizowane przez oprogramowanie NDSR. Dzienne spożycie całkowitej choliny zostanie obliczone poprzez pomnożenie częstotliwości spożycia przez sumę pochodnych choliny, w tym wolnej choliny, fosfatydylocholiny (PC), glicerofosfocholiny (GPC), fosfocholiny i sfingomieliny każdego produktu spożywczego. Dzienne spożycie betainy (produkt utleniania choliny) zostanie obliczone poprzez pomnożenie częstotliwości spożycia i zawartości betainy w każdym pożywieniu. Średnie dzienne spożycie zostanie obliczone jako średnie dzienne spożycie całkowitej choliny i betainy w ciągu 3 dni wycofania diety.
Pomiary metabolitów choliny: wolnej choliny, betainy i innych pochodnych choliny [np. PC, GPC, lizofosfatydylocholina, dimetyloglicyna, tlenek trimetyloaminy (TMAO)] będą mierzone w osoczu matki za pomocą chromatografii cieczowej (LC)-spektrometrii masowej (MS)/MS, jak przeprowadzono w poprzednich badaniach. Aby zapewnić dokładność i odtwarzalność danych, podczas ekstrakcji stosowane będą standardy oznaczane stabilnymi izotopami, wszystkie próbki będą oznaczane ilościowo na podstawie 6-punktowej krzywej wzorcowej, a każda próbka będzie analizowana w dwóch powtórzeniach. Próbki o współczynniku zmienności (CV) % wyższym niż 5% w obrębie serii lub 10% pomiędzy seriami zostaną ponownie przebadane.
Cel szczegółowy 2: Określenie wpływu MCS na transport makroskładników odżywczych i modyfikacje epigenetyczne w łożysku i krwi pępowinowej. Aby osiągnąć ten cel, badacze określą ekspresję transporterów tłuszczu i glukozy, a także górne szlaki regulacyjne AKT/mTOR w biopsjach łożyska od uczestników. Badacze zmierzą specyficzną dla miejsca metylację DNA kluczowych genów związanych ze wzrostem i metabolizmem w łożysku i krwi pępowinowej.
Analizy markerów transportu makroskładników odżywczych w biopsjach łożyska: Aby przeanalizować, w jaki sposób metabolizm choliny może być powiązany z transportem tłuszczu łożyskowego i glukozy, badacze wykorzystają PCR w czasie rzeczywistym do ilościowego określenia ilości mRNA genów i transporterów metabolicznych tłuszczu i glukozy, takich jak transportery glukozy GLUT1 i GLUT3, geny związane z metabolizmem kwasów tłuszczowych lipaza lipoproteinowa (LPL), translokaza kwasów tłuszczowych (CD36), FATP i transportery aminokwasów SNAT2 i SNAT4. Obfitość odpowiednich białek, a także fosforylacja AKT i docelowych mTOR 4EBP1 i S6K (wskazujących na aktywację szlaku) będzie również mierzona za pomocą western blotting, który jest rutynowo przeprowadzany w laboratorium współbadacza, który obejmuje SDS-PAGE, transfer membranowy, inkubacja z przeciwciałami i wizualizacja za pomocą systemu obrazowania chemiluminescencyjnego. Cała skuteczność starterów i jakość przeciwciał zostaną przetestowane przed użyciem. Zarówno PCR w czasie rzeczywistym, jak i Western blot będą przeprowadzane w trzech powtórzeniach.
Epigenetyczna regulacja wzrostu i metabolizmu: badacze zbadają specyficzną dla miejsca metylację DNA genów, które zostały opublikowane w poprzednich badaniach jako podatne na ekspozycje prenatalne i pośredniczą w długotrwałym wzroście i programowaniu metabolicznym potomstwa przy użyciu sekwencjonowania wodorosiarczynem, jak to było wcześniej przeprowadzone . W skrócie, genomowy DNA będzie traktowany odczynnikiem wodorosiarczynowym, po czym docelowy region genomowy będzie amplifikowany przez PCR. System MassArray EpiTyper zostanie wykorzystany do ilościowego określenia sekwencji metylowanych. Geny będące przedmiotem zainteresowania obejmują LEP, SREBP1C i PPARG, które pośredniczą w metabolizmie tłuszczów, IGF2, który promuje wzrost, hormon uwalniający kortykotropinę (CRH), który promuje wydzielanie kortyzolu, oraz receptor glukokortykoidowy (GR), który odbiera sygnały kortyzolu.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
New York
-
Brooklyn, New York, Stany Zjednoczone, 11219
- Maimonides Medical Center
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Kobiety w ciąży z GDM przed 28 tygodniem ciąży.
- Mówiący po angielsku lub hiszpańsku, powyżej 18 roku życia
- ciąża pojedyncza
- zamierzają urodzić swoje dzieci w Centrum Medycznym Maimonides
Kryteria wyłączenia:
- istniejąca wcześniej hiperglikemia
- cukrzyca
- choroby sercowo-naczyniowe i choroby wątroby przed ciążą.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Poczwórny
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Aktywny komparator: Grupa suplementów choliny
Suplement choliny 470 mg dwa razy dziennie przez łącznie 8 tygodni.
|
Cholina 470 mg dwa razy dziennie przez 8 tygodni.
|
|
Komparator placebo: Grupa placebo
Pigułka placebo dwa razy dziennie przez łącznie 8 tygodni.
|
Pigułka placebo dwa razy dziennie przez 8 tygodni
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Waga urodzeniowa
Ramy czasowe: W momencie narodzin
|
Masa urodzeniowa noworodka
|
W momencie narodzin
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Ekspresja genów transporterów glukozy
Ramy czasowe: W momencie narodzin
|
Ekspresja genów transportów glukozy (GLUT 1 i GLUT3)
|
W momencie narodzin
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Wang Z, Klipfell E, Bennett BJ, Koeth R, Levison BS, Dugar B, Feldstein AE, Britt EB, Fu X, Chung YM, Wu Y, Schauer P, Smith JD, Allayee H, Tang WH, DiDonato JA, Lusis AJ, Hazen SL. Gut flora metabolism of phosphatidylcholine promotes cardiovascular disease. Nature. 2011 Apr 7;472(7341):57-63. doi: 10.1038/nature09922.
- American Diabetes Association. Standards of medical care in diabetes--2014. Diabetes Care. 2014 Jan;37 Suppl 1:S14-80. doi: 10.2337/dc14-S014. No abstract available.
- Gillman MW, Rifas-Shiman S, Berkey CS, Field AE, Colditz GA. Maternal gestational diabetes, birth weight, and adolescent obesity. Pediatrics. 2003 Mar;111(3):e221-6. doi: 10.1542/peds.111.3.e221.
- Poston L, Bell R, Croker H, Flynn AC, Godfrey KM, Goff L, Hayes L, Khazaezadeh N, Nelson SM, Oteng-Ntim E, Pasupathy D, Patel N, Robson SC, Sandall J, Sanders TA, Sattar N, Seed PT, Wardle J, Whitworth MK, Briley AL; UPBEAT Trial Consortium. Effect of a behavioural intervention in obese pregnant women (the UPBEAT study): a multicentre, randomised controlled trial. Lancet Diabetes Endocrinol. 2015 Oct;3(10):767-77. doi: 10.1016/S2213-8587(15)00227-2. Epub 2015 Jul 9.
- Sagedal LR, Overby NC, Bere E, Torstveit MK, Lohne-Seiler H, Smastuen M, Hillesund ER, Henriksen T, Vistad I. Lifestyle intervention to limit gestational weight gain: the Norwegian Fit for Delivery randomised controlled trial. BJOG. 2017 Jan;124(1):97-109. doi: 10.1111/1471-0528.13862. Epub 2016 Jan 14.
- Sewell MF, Huston-Presley L, Super DM, Catalano P. Increased neonatal fat mass, not lean body mass, is associated with maternal obesity. Am J Obstet Gynecol. 2006 Oct;195(4):1100-3. doi: 10.1016/j.ajog.2006.06.014. Epub 2006 Jul 26.
- Corbin KD, Zeisel SH. Choline metabolism provides novel insights into nonalcoholic fatty liver disease and its progression. Curr Opin Gastroenterol. 2012 Mar;28(2):159-65. doi: 10.1097/MOG.0b013e32834e7b4b.
- Cho CE, Taesuwan S, Malysheva OV, Bender E, Tulchinsky NF, Yan J, Sutter JL, Caudill MA. Trimethylamine-N-oxide (TMAO) response to animal source foods varies among healthy young men and is influenced by their gut microbiota composition: A randomized controlled trial. Mol Nutr Food Res. 2017 Jan;61(1). doi: 10.1002/mnfr.201600324. Epub 2016 Aug 3.
- Ferrara A. Increasing prevalence of gestational diabetes mellitus: a public health perspective. Diabetes Care. 2007 Jul;30 Suppl 2:S141-6. doi: 10.2337/dc07-s206. No abstract available. Erratum In: Diabetes Care. 2007 Dec;30(12):3154.
- Page KA, Romero A, Buchanan TA, Xiang AH. Gestational diabetes mellitus, maternal obesity, and adiposity in offspring. J Pediatr. 2014 Apr;164(4):807-10. doi: 10.1016/j.jpeds.2013.11.063. Epub 2013 Dec 31.
- Vohr BR, McGarvey ST, Tucker R. Effects of maternal gestational diabetes on offspring adiposity at 4-7 years of age. Diabetes Care. 1999 Aug;22(8):1284-91. doi: 10.2337/diacare.22.8.1284.
- Franks PW, Looker HC, Kobes S, Touger L, Tataranni PA, Hanson RL, Knowler WC. Gestational glucose tolerance and risk of type 2 diabetes in young Pima Indian offspring. Diabetes. 2006 Feb;55(2):460-5. doi: 10.2337/diabetes.55.02.06.db05-0823.
- Garcia-Vargas L, Addison SS, Nistala R, Kurukulasuriya D, Sowers JR. Gestational Diabetes and the Offspring: Implications in the Development of the Cardiorenal Metabolic Syndrome in Offspring. Cardiorenal Med. 2012 May;2(2):134-142. doi: 10.1159/000337734. Epub 2012 Apr 12.
- Lowe WL Jr, Karban J. Genetics, genomics and metabolomics: new insights into maternal metabolism during pregnancy. Diabet Med. 2014 Mar;31(3):254-62. doi: 10.1111/dme.12352.
- Han S, Crowther CA, Middleton P, Heatley E. Different types of dietary advice for women with gestational diabetes mellitus. Cochrane Database Syst Rev. 2013 Mar 28;(3):CD009275. doi: 10.1002/14651858.CD009275.pub2.
- Bain E, Crane M, Tieu J, Han S, Crowther CA, Middleton P. Diet and exercise interventions for preventing gestational diabetes mellitus. Cochrane Database Syst Rev. 2015 Apr 12;(4):CD010443. doi: 10.1002/14651858.CD010443.pub2.
- Catalano PM, Shankar K. Obesity and pregnancy: mechanisms of short term and long term adverse consequences for mother and child. BMJ. 2017 Feb 8;356:j1. doi: 10.1136/bmj.j1.
- Caudill MA. Pre- and postnatal health: evidence of increased choline needs. J Am Diet Assoc. 2010 Aug;110(8):1198-206. doi: 10.1016/j.jada.2010.05.009.
- Jiang X, West AA, Caudill MA. Maternal choline supplementation: a nutritional approach for improving offspring health? Trends Endocrinol Metab. 2014 May;25(5):263-73. doi: 10.1016/j.tem.2014.02.001. Epub 2014 Mar 26.
- Zeisel SH. Metabolic crosstalk between choline/1-carbon metabolism and energy homeostasis. Clin Chem Lab Med. 2013 Mar 1;51(3):467-75. doi: 10.1515/cclm-2012-0518.
- Geraghty AA, Lindsay KL, Alberdi G, McAuliffe FM, Gibney ER. Nutrition During Pregnancy Impacts Offspring's Epigenetic Status-Evidence from Human and Animal Studies. Nutr Metab Insights. 2016 Feb 16;8(Suppl 1):41-7. doi: 10.4137/NMI.S29527. eCollection 2015.
- Nam J, Greenwald E, Jack-Roberts C, Ajeeb TT, Malysheva OV, Caudill MA, Axen K, Saxena A, Semernina E, Nanobashvili K, Jiang X. Choline prevents fetal overgrowth and normalizes placental fatty acid and glucose metabolism in a mouse model of maternal obesity. J Nutr Biochem. 2017 Nov;49:80-88. doi: 10.1016/j.jnutbio.2017.08.004. Epub 2017 Aug 12.
- Jack-Roberts C, Joselit Y, Nanobashvili K, Bretter R, Malysheva OV, Caudill MA, Saxena A, Axen K, Gomaa A, Jiang X. Choline Supplementation Normalizes Fetal Adiposity and Reduces Lipogenic Gene Expression in a Mouse Model of Maternal Obesity. Nutrients. 2017 Aug 18;9(8):899. doi: 10.3390/nu9080899.
- Dabelea D. The predisposition to obesity and diabetes in offspring of diabetic mothers. Diabetes Care. 2007 Jul;30 Suppl 2:S169-74. doi: 10.2337/dc07-s211. No abstract available. Erratum In: Diabetes Care. 2007 Dec;30(12):3154.
- Ferrara A, Kahn HS, Quesenberry CP, Riley C, Hedderson MM. An increase in the incidence of gestational diabetes mellitus: Northern California, 1991-2000. Obstet Gynecol. 2004 Mar;103(3):526-33. doi: 10.1097/01.AOG.0000113623.18286.20. Erratum In: Obstet Gynecol. 2004 Apr;103(4):799.
- Chen Y, Quick WW, Yang W, Zhang Y, Baldwin A, Moran J, Moore V, Sahai N, Dall TM. Cost of gestational diabetes mellitus in the United States in 2007. Popul Health Manag. 2009 Jun;12(3):165-74. doi: 10.1089/pop.2009.12303.
- Kolu P, Raitanen J, Rissanen P, Luoto R. Health care costs associated with gestational diabetes mellitus among high-risk women--results from a randomised trial. BMC Pregnancy Childbirth. 2012 Jul 24;12:71. doi: 10.1186/1471-2393-12-71.
- Deputy NP, Sharma AJ, Kim SY, Hinkle SN. Prevalence and characteristics associated with gestational weight gain adequacy. Obstet Gynecol. 2015 Apr;125(4):773-781. doi: 10.1097/AOG.0000000000000739.
- Langer O. Management of gestational diabetes: pharmacologic treatment options and glycemic control. Endocrinol Metab Clin North Am. 2006 Mar;35(1):53-78, vi. doi: 10.1016/j.ecl.2005.09.007. No abstract available.
- Rosario FJ, Powell TL, Jansson T. Activation of placental insulin and mTOR signaling in a mouse model of maternal obesity associated with fetal overgrowth. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2016 Jan 1;310(1):R87-93. doi: 10.1152/ajpregu.00356.2015. Epub 2015 Oct 21.
- Jones HN, Woollett LA, Barbour N, Prasad PD, Powell TL, Jansson T. High-fat diet before and during pregnancy causes marked up-regulation of placental nutrient transport and fetal overgrowth in C57/BL6 mice. FASEB J. 2009 Jan;23(1):271-8. doi: 10.1096/fj.08-116889. Epub 2008 Sep 30.
- Brett KE, Ferraro ZM, Yockell-Lelievre J, Gruslin A, Adamo KB. Maternal-fetal nutrient transport in pregnancy pathologies: the role of the placenta. Int J Mol Sci. 2014 Sep 12;15(9):16153-85. doi: 10.3390/ijms150916153.
- Hull HR, Thornton JC, Ji Y, Paley C, Rosenn B, Mathews P, Navder K, Yu A, Dorsey K, Gallagher D. Higher infant body fat with excessive gestational weight gain in overweight women. Am J Obstet Gynecol. 2011 Sep;205(3):211.e1-7. doi: 10.1016/j.ajog.2011.04.004. Epub 2011 Apr 14.
- Qiao L, Guo Z, Bosco C, Guidotti S, Wang Y, Wang M, Parast M, Schaack J, Hay WW Jr, Moore TR, Shao J. Maternal High-Fat Feeding Increases Placental Lipoprotein Lipase Activity by Reducing SIRT1 Expression in Mice. Diabetes. 2015 Sep;64(9):3111-20. doi: 10.2337/db14-1627. Epub 2015 May 6.
- Zeisel SH, Da Costa KA, Franklin PD, Alexander EA, Lamont JT, Sheard NF, Beiser A. Choline, an essential nutrient for humans. FASEB J. 1991 Apr;5(7):2093-8.
- Hebbard L, George J. Animal models of nonalcoholic fatty liver disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2011 Jan;8(1):35-44. doi: 10.1038/nrgastro.2010.191. Epub 2010 Nov 30.
- Fischer LM, da Costa KA, Kwock L, Galanko J, Zeisel SH. Dietary choline requirements of women: effects of estrogen and genetic variation. Am J Clin Nutr. 2010 Nov;92(5):1113-9. doi: 10.3945/ajcn.2010.30064. Epub 2010 Sep 22.
- Raubenheimer PJ, Nyirenda MJ, Walker BR. A choline-deficient diet exacerbates fatty liver but attenuates insulin resistance and glucose intolerance in mice fed a high-fat diet. Diabetes. 2006 Jul;55(7):2015-20. doi: 10.2337/db06-0097.
- Fujiki K, Kano F, Shiota K, Murata M. Expression of the peroxisome proliferator activated receptor gamma gene is repressed by DNA methylation in visceral adipose tissue of mouse models of diabetes. BMC Biol. 2009 Jul 10;7:38. doi: 10.1186/1741-7007-7-38.
- Cai D, Jia Y, Lu J, Yuan M, Sui S, Song H, Zhao R. Maternal dietary betaine supplementation modifies hepatic expression of cholesterol metabolic genes via epigenetic mechanisms in newborn piglets. Br J Nutr. 2014 Nov 14;112(9):1459-68. doi: 10.1017/S0007114514002402. Epub 2014 Sep 12.
- Dimasuay KG, Boeuf P, Powell TL, Jansson T. Placental Responses to Changes in the Maternal Environment Determine Fetal Growth. Front Physiol. 2016 Jan 29;7:12. doi: 10.3389/fphys.2016.00012. eCollection 2016.
- Kavitha JV, Rosario FJ, Nijland MJ, McDonald TJ, Wu G, Kanai Y, Powell TL, Nathanielsz PW, Jansson T. Down-regulation of placental mTOR, insulin/IGF-I signaling, and nutrient transporters in response to maternal nutrient restriction in the baboon. FASEB J. 2014 Mar;28(3):1294-305. doi: 10.1096/fj.13-242271. Epub 2013 Dec 13.
- Rosario FJ, Kanai Y, Powell TL, Jansson T. Increased placental nutrient transport in a novel mouse model of maternal obesity with fetal overgrowth. Obesity (Silver Spring). 2015 Aug;23(8):1663-70. doi: 10.1002/oby.21165.
- Nanobashvili K, Jack-Roberts C, Bretter R, Jones N, Axen K, Saxena A, Blain K, Jiang X. Maternal Choline and Betaine Supplementation Modifies the Placental Response to Hyperglycemia in Mice and Human Trophoblasts. Nutrients. 2018 Oct 15;10(10):1507. doi: 10.3390/nu10101507.
- Dhasarathy A, Roemmich JN, Claycombe KJ. Influence of maternal obesity, diet and exercise on epigenetic regulation of adipocytes. Mol Aspects Med. 2017 Apr;54:37-49. doi: 10.1016/j.mam.2016.10.003. Epub 2016 Nov 4. No abstract available.
- Heerwagen MJ, Miller MR, Barbour LA, Friedman JE. Maternal obesity and fetal metabolic programming: a fertile epigenetic soil. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2010 Sep;299(3):R711-22. doi: 10.1152/ajpregu.00310.2010. Epub 2010 Jul 14.
- Kovacheva VP, Mellott TJ, Davison JM, Wagner N, Lopez-Coviella I, Schnitzler AC, Blusztajn JK. Gestational choline deficiency causes global and Igf2 gene DNA hypermethylation by up-regulation of Dnmt1 expression. J Biol Chem. 2007 Oct 26;282(43):31777-88. doi: 10.1074/jbc.M705539200. Epub 2007 Aug 27.
- Jiang X, Yan J, West AA, Perry CA, Malysheva OV, Devapatla S, Pressman E, Vermeylen F, Caudill MA. Maternal choline intake alters the epigenetic state of fetal cortisol-regulating genes in humans. FASEB J. 2012 Aug;26(8):3563-74. doi: 10.1096/fj.12-207894. Epub 2012 May 1.
- Wallace TC, Fulgoni VL. Usual Choline Intakes Are Associated with Egg and Protein Food Consumption in the United States. Nutrients. 2017 Aug 5;9(8):839. doi: 10.3390/nu9080839.
- Harnack L, Stevens M, Van Heel N, Schakel S, Dwyer JT, Himes J. A computer-based approach for assessing dietary supplement use in conjunction with dietary recalls. J Food Compost Anal. 2008 Feb;21(Suppliment 1):S78-S82. doi: 10.1016/j.jfca.2007.05.004.
- Arab L, Tseng CH, Ang A, Jardack P. Validity of a multipass, web-based, 24-hour self-administered recall for assessment of total energy intake in blacks and whites. Am J Epidemiol. 2011 Dec 1;174(11):1256-65. doi: 10.1093/aje/kwr224. Epub 2011 Oct 20.
- Timperio A, Salmon J, Crawford D. Validity and reliability of a physical activity recall instrument among overweight and non-overweight men and women. J Sci Med Sport. 2003 Dec;6(4):477-91. doi: 10.1016/s1440-2440(03)80273-6.
- Garrison A. Screening, diagnosis, and management of gestational diabetes mellitus. Am Fam Physician. 2015 Apr 1;91(7):460-7.
- American Diabetes Association. 13. Management of Diabetes in Pregnancy: Standards of Medical Care in Diabetes-2018. Diabetes Care. 2018 Jan;41(Suppl 1):S137-S143. doi: 10.2337/dc18-S013.
- Wirfalt AK, Jeffery RW, Elmer PJ. Comparison of food frequency questionnaires: the reduced Block and Willett questionnaires differ in ranking on nutrient intakes. Am J Epidemiol. 1998 Dec 15;148(12):1148-56. doi: 10.1093/oxfordjournals.aje.a009599.
- Feskanich D, Sielaff BH, Chong K, Buzzard IM. Computerized collection and analysis of dietary intake information. Comput Methods Programs Biomed. 1989 Sep;30(1):47-57. doi: 10.1016/0169-2607(89)90122-3.
- Cho E, Holmes MD, Hankinson SE, Willett WC. Choline and betaine intake and risk of breast cancer among post-menopausal women. Br J Cancer. 2010 Feb 2;102(3):489-94. doi: 10.1038/sj.bjc.6605510. Epub 2010 Jan 5.
- Yan J, Jiang X, West AA, Perry CA, Malysheva OV, Brenna JT, Stabler SP, Allen RH, Gregory JF 3rd, Caudill MA. Pregnancy alters choline dynamics: results of a randomized trial using stable isotope methodology in pregnant and nonpregnant women. Am J Clin Nutr. 2013 Dec;98(6):1459-67. doi: 10.3945/ajcn.113.066092. Epub 2013 Oct 16.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby układu moczowo-płciowego
- Choroby układu hormonalnego
- Choroby układu moczowo-płciowego kobiet i powikłania ciąży
- Choroby metaboliczne
- Powikłania ciąży
- Zaburzenia metabolizmu glukozy
- Cukrzyca, Ciąża
- Cukrzyca
- Molekularne mechanizmy działania farmakologicznego
- Środki żołądkowo-jelitowe
- Antymetabolity
- Środki nootropowe
- Środki hipolipemiczne
- Środki regulujące lipidy
- Środki lipotropowe
- Cholina
Inne numery identyfikacyjne badania
- 2019-07-06
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .