Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Zmiany mikrobiomu po dezynfekcji laserem i chlorheksydyną podczas usuwania próchnicy

3 stycznia 2025 zaktualizowane przez: Ayse Tugba Erturk Avunduk, Mersin University

Zmiany mikrobiomu po laserowej i chlorheksydynowej dezynfekcji jamy ustnej różnymi metodami usuwania próchnicy

Celem pracy było zbadanie wpływu dezynfekcji ubytków laserem i chlorheksydyną na mikrobiom ubytków przygotowanych różnymi metodami usuwania próchnicy.

Przegląd badań

Szczegółowy opis

Profilaktyka i leczenie próchnicy zębów, jednej z najczęstszych i najstarszych chorób, jest ściśle związane ze zdrowiem człowieka. Twarda tkanka zęba podlega cyklicznym procesom remineralizacji i demineralizacji. Próchnica pojawia się, gdy równowaga ta zostaje zakłócona na korzyść demineralizacji. Próchnica zębów to utrata minerałów spowodowana kwasem wytwarzanym przez mikroorganizmy.

W przypadku konwencjonalnego usuwania próchnicy, w celu dotarcia do zmiany chorobowej stosuje się zazwyczaj narzędzia ręczne obracające się z dużą prędkością. Natomiast wolnoobrotowe instrumenty ręczne (wiertła z węglika wolframu) usuwają próchnicę. Metoda ta polega na szybkim i skutecznym usunięciu próchnicy, ale może skutkować usunięciem zdrowej tkanki lub uszkodzonej zębiny zdolnej do remineralizacji. Podczas zabiegów małoinwazyjnych w stomatologii operacyjnej powszechnie stosuje się bardziej oszczędne i selektywne metody usuwania próchnicy, będące alternatywą dla metody konwencjonalnej. Jedną z takich metod są wiertła polimerowe produkowane jako alternatywa dla konwencjonalnych wierteł z węglika wolframu. Wykonane są z miękkiego materiału polimerowego. Usuwa jedynie zakażoną zębinę. Wiertła polimerowe są twardsze niż zębina próchnicowa i bardziej miękkie niż zdrowa zębina. Dlatego przy usuwaniu tkanki próchnicowej wiertłem polimerowym wiertło pozostaje nienaruszone, natomiast w przypadku zdrowej tkanki wiertło ulega zużyciu. Przeznaczony jest do usuwania wyłącznie zębiny próchnicowej poprzez selektywne utrzymywanie wydajności cięcia do momentu natrafienia na zębinę dotkniętą próchnicą. W poprzednim badaniu, zmniejszenie liczby bakterii mikrobiologicznych Streptococcus mutans przed i po usunięciu próchnicy okluzyjnej było statystycznie istotne w przypadku wierteł polimerowych w porównaniu z wiertłami z węglika wolframu.

W stomatologii odtwórczej całkowite usunięcie zainfekowanej tkanki próchnicowej przed procesem odbudowy odgrywa kluczową rolę w powodzeniu leczenia. Ze względu na ryzyko usunięcia zdrowej tkanki zębiny podczas usuwania zakażonej tkanki próchnicowej, opracowano techniki ochronnego opracowania ubytku. Kryteria takie jak kolor i twardość, które brane są pod uwagę przy podejmowaniu decyzji o usunięciu próchnicy z tkanek zęba, są subiektywne i zależą od zmysłów wzroku i dotyku. Choć naukowcy zalecają stosowanie wskaźników próchnicy w oparciu o obiektywne dane, badania wykazały, że wskaźniki te jedynie w 15–40% skutecznie wykrywają obecność mikroorganizmów. Pomimo usunięcia przebarwionych tkanek, w okolicy miazgi, zwłaszcza w kanalikach zębinowych, stwierdzono obecność drobnoustrojów. Te mikroorganizmy pozostające w tkankach mogą powodować powstawanie próchnicy wtórnej, nadwrażliwość pozabiegową i zapalenie miazgi. Badania wykazały, że właściwości okluzyjne i uszczelniające materiału do odbudowy nie zapobiegają przedostawaniu się bakterii resztkowych w warstwie mazistej i kanałach zębinowych do tkanki miazgi i powodowaniu infekcji. Dlatego na pierwszy plan wysunęło się stosowanie antybakteryjnych środków do dezynfekcji jamy ustnej. Obecnie jako środki dezynfekujące jamy ustnej stosuje się diglukonian chlorheksydyny (CHX), chlorek benzalkoniowy, podchloryn sodu, nadtlenek wodoru, roztwory jodu, kwas fosforowy, fluor, propolis, ozon, systemy dezynfekcji aktywowanej światłem i systemy laserowe.

Mikrobiologia próchnicy zębów to temat badany od wielu lat. W poprzednich badaniach wykorzystywano tradycyjne metody oparte na hodowlach do identyfikacji bakterii związanych z próchnicą zębów. Metoda oparta na kulturach pozwoliła na podstawowe zrozumienie składu mikroflory płytki nazębnej w próchnicy. Mikroorganizmy wyizolowano ze zmian próchnicowych lub próbek płytki nazębnej pobranych w badaniu przekrojowym lub podłużnym przy użyciu technik opartych na hodowli. Jednak badania nad mikrobiomem jamy ustnej są nadal niekompletne, ponieważ sztuczne podłoża nie są w stanie w pełni naśladować środowiska naturalnego, w którym występują bakterie jamy ustnej, ponieważ około połowy mikrobiomu jamy ustnej nie można hodować. Dlatego w badaniach metodą hodowli nie jest możliwe wykrycie wszystkich bakterii w próbce. Molekularne techniki genetyczne mogą wykryć i zidentyfikować mikrobiom bez kultury, wykorzystując analizę 16s rRNA występującego u wszystkich tych prokariotów. Gen 16s rRNA stosuje się jako standard do klasyfikacji i identyfikacji mikrobiomu, ponieważ sekwencje genu 16s rRNA zawierają regiony hiperzmienne, które mogą zapewnić sekwencje specyficzne gatunkowo do identyfikacji bakterii. Chociaż początkowo stosowano je do identyfikacji bakterii, sekwencjonowanie 16s rRNA zostało później wykorzystane do przeklasyfikowania bakterii na nowe gatunki lub rodzaje. Wykorzystano ją również do identyfikacji nowych gatunków, które nie zostały jeszcze pomyślnie wyhodowane. Niedawno wysokowydajne pirosekwencjonowanie ujawniło nieoczekiwanie dużą różnorodność ludzkiego mikrobiomu jamy ustnej. Do wykrywania i identyfikacji mikroorganizmów w zębach stałych, martwiczej miazdze i zmianach okołowierzchołkowych oraz w próbkach klinicznych bez bezpośredniej hodowli zastosowano molekularne techniki genetyczne.

Zrozumienie mikrobiologii próchnicy zostało znacznie wzbogacone w ostatnich latach dzięki rozwojowi technologii opartej na sekwencjonowaniu i analizie bioinformatycznej. W literaturze nie ma jednak badań oceniających analizę mikrobiomu w połączeniu z różnymi technikami usuwania próchnicy i metodami dezynfekcji jamy ustnej. Celem niniejszej pracy jest zatem przegląd klasycznych koncepcji mikrobiologicznych aspektów próchnicy zębów oraz zbadanie wpływu dezynfekcji jamy ustnej laserem i chlorheksydyną na mikrobiom ubytków przygotowanych różnymi metodami usuwania próchnicy.

Typ studiów

Interwencyjne

Zapisy (Szacowany)

78

Faza

  • Nie dotyczy

Kontakty i lokalizacje

Ta sekcja zawiera dane kontaktowe osób prowadzących badanie oraz informacje o tym, gdzie badanie jest przeprowadzane.

Kontakt w sprawie studiów

  • Nazwa: Ozcan Karatas, Associate Profesor
  • Numer telefonu: +90 554 268 2981
  • E-mail: ozcnkrts@gmail.com

Kopia zapasowa kontaktu do badania

  • Nazwa: Ebru Delikan, Associate Profesor
  • Numer telefonu: + 90 506 381 74 54
  • E-mail: e.delikan@gmail.com

Lokalizacje studiów

    • Yenisehir
      • Mersin, Yenisehir, Indyk, 33343
        • Mersin University, Faculty of Dentistry, Department of Restorative Dentistry

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

  • Dorosły
  • Starszy dorosły

Akceptuje zdrowych ochotników

Tak

Opis

Kryteria włączenia:

  • Stałe zęby trzonowe/przedtrzonowe, w których zmiana próchnicowa znajduje się na powierzchni żującej i sięga maksymalnie do środkowej jednej trzeciej zębiny
  • Osoby dbające o higienę jamy ustnej
  • Brak objawów klinicznych patologii okołowierzchołkowej
  • Zęby w okluzji z zębem przeciwległym
  • Osoby urodzone w roku 2007 i wcześniej (>18 lat)
  • Osoby, które podpisały Formularz świadomej dobrowolnej zgody/Formularz pisemnej zgody

Kryteria wykluczenia:

  • Nieregularne wizyty kontrolne u dentysty
  • Ciężka choroba ogólnoustrojowa, alergia i zaburzenia wydzielania śliny
  • Zła higiena jamy ustnej
  • Zaawansowana choroba przyzębia
  • Obecność klinicznie wykrytej patologii miazgi/okołowierzchołka
  • Dewitalizacja zębów
  • Osoba urodzona po 2007 r. (<18 lat)
  • Osoby, które nie podpiszą formularza świadomej dobrowolnej zgody/formularza pisemnej zgody

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Główny cel: Podstawowa nauka
  • Przydział: Randomizowane
  • Model interwencyjny: Przydział równoległy
  • Maskowanie: Pojedynczy

Broń i interwencje

Grupa uczestników / Arm
Interwencja / Leczenie
Aktywny komparator: Grupa 1: Nieselektywne usuwanie próchnicy wiertłem z węglika wolframu + Brak dezynfekcji ubytku

Dostęp do zmiany chorobowej można uzyskać za pomocą szybkoobrotowej końcówki ze sterylnym wiertłem szybkoobrotowym (wiertło nr 245 Meisinger GmbH, Niemcy). Strategia usuwania próchnicy w kierunku zębiny miękkiej będzie realizowana zgodnie z wytycznymi opublikowanymi przez International Caries Consensus Collaboration. Próchnica zostanie całkowicie usunięta z otaczających ścian ubytku wiertłem z węglika wolframu, pozostawiając co najmniej 2 mm nienaruszonej struktury zęba na obwodzie, aby zapewnić dobrą adaptację i uszczelnienie uzupełnienia. Powierzchowne fragmenty nekrotycznej próchnicy, które pod wpływem wciśnięcia instrumentu odkształcają się i można je łatwo usunąć przy użyciu niewielkiej siły, zostaną usunięte z dna miazgi za pomocą ostrej, sterylnej koparki, natomiast miękką zębinę pozostawi się na dnie ubytku, aby uniknąć odsłonięcia miazgi .

Po usunięciu próchnicy ząb zostanie odbudowany bez konieczności dezynfekcji ubytku.

Tkanka próchnicowa zostanie całkowicie usunięta z otaczających ścian ubytku za pomocą wiertła z węglika wolframu, pozostawiając co najmniej 2 mm nienaruszonej struktury zęba na obwodzie, aby zapewnić dobrą adaptację i uszczelnienie uzupełnienia.
Aktywny komparator: Grupa 2: Nieselektywne usuwanie próchnicy wiertłem z węglika wolframu + dezynfekcja 2% chlorheksydyną
Zgodnie z protokołem usuwania próchnicy stosowanym w Grupie 1, do ubytku na 20 sekund zostanie nałożony 2% chlorheksydyna (Consepsis®, Ultradent). Następnie ubytek zostanie wysuszony na powietrzu przez 10 sekund, a ząb zostanie odbudowany.
Tkanka próchnicowa zostanie całkowicie usunięta z otaczających ścian ubytku za pomocą wiertła z węglika wolframu, pozostawiając co najmniej 2 mm nienaruszonej struktury zęba na obwodzie, aby zapewnić dobrą adaptację i uszczelnienie uzupełnienia.
Każde ubytek CHX zostanie potraktowany środkiem dezynfekującym za pomocą jednorazowej końcówki mikroszczoteczki i pozostawiony w spokoju przez 20 sekund. Następnie zostaną wysuszone na powietrzu przez 10 sekund i odbudują ząb.
Aktywny komparator: Grupa 3: Nieselektywne usuwanie próchnicy wiertłem z węglika wolframu + Er,Cr: dezynfekcja laserem YSGG
Zgodnie z protokołem usuwania próchnicy stosowanym w Grupie 1, ubytek zostanie zdezynfekowany laserem Er,Cr:YSGG (EPIC X™, BIOLASE, USA) o długości fali 940 nm i mocy wyjściowej 0,1 W. Następnie ząb zostanie odbudowany.
Tkanka próchnicowa zostanie całkowicie usunięta z otaczających ścian ubytku za pomocą wiertła z węglika wolframu, pozostawiając co najmniej 2 mm nienaruszonej struktury zęba na obwodzie, aby zapewnić dobrą adaptację i uszczelnienie uzupełnienia.
Po zabiegu usunięcia próchnicy, ubytek zostanie zdezynfekowany laserem Er,Cr:YSGG (EPIC X™, BIOLASE, USA) o długości fali 940 nm i mocy 0,1 W. Końcówka lasera będzie końcówką o średnicy 400 µm i gęstości energii 138,12 J/cm w trybie bezdotykowym (odległość 2 mm), przy ruchu omiatającym 5 s/mm2.
Aktywny komparator: Grupa 4: Selektywne usuwanie próchnicy wiertłem polimerowym + Brak dezynfekcji ubytku

Dostęp do zmiany chorobowej można uzyskać za pomocą szybkoobrotowej końcówki ze sterylnym wiertłem szybkoobrotowym (wiertło nr 245 Meisinger GmbH, Niemcy). Wiertła SS White Smartburs II® będą używane z rękojeścią o niskiej prędkości obrotowej przy 5 000–10 000 obr./min do usuwania zębiny próchnicowej o rozmiarach RA4, RA6 i RA8, w zależności od wielkości zmiany próchnicowej. Instrument będzie używany z okrężną, lekką siłą, zaczynając od środka zmiany próchnicowej w kierunku obwodu, zgodnie z zaleceniami producenta. Usuwanie próchnicy zostanie zatrzymane, gdy narzędzie będzie makroskopowo zużyte i stępione i nie będzie już w stanie usunąć tkanki. Eksplorator zostanie użyty do sprawdzenia, czy u podstawy ubytku pozostała próchnica. W razie potrzeby do usunięcia pozostałości próchnicy zostanie użyte nowe wiertło polimerowe SmartbursII®.

Po selektywnym usunięciu próchnicy ząb zostanie odbudowany bez konieczności dezynfekcji ubytku.

Dostęp do zmiany chorobowej można uzyskać za pomocą końcówki szybkoobrotowej wyposażonej w sterylne wiertło szybkoobrotowe. Wiertło polimerowe będzie używane z rękojeścią o niskiej prędkości obrotowej 5 000–10 000 obr./min do usuwania zębiny próchnicowej w rozmiarach RA4, RA6 i RA8, w zależności od wielkości zmiany próchnicowej. Instrument będzie używany z okrężną, lekką siłą, zaczynając od środka zmiany próchnicowej w kierunku obwodu, zgodnie z zaleceniami producenta. Usuwanie próchnicy zostanie zatrzymane, gdy narzędzie będzie makroskopowo zużyte i stępione i nie będzie już w stanie usunąć tkanki. Za pomocą koparki sprawdzimy, czy u podstawy ubytku nie pozostała próchnica. W razie potrzeby zostanie użyte nowe wiertło polimerowe w celu usunięcia pozostałego próchnicy.
Aktywny komparator: Grupa 5: Selektywne usuwanie próchnicy wiertłem polimerowym + dezynfekcja 2% chlorheksydyną
Zgodnie z protokołem selektywnego usuwania próchnicy stosowanym w Grupie 4, do ubytku na 20 sekund zostanie nałożony 2% chlorheksydyna (Consepsis®, Ultradent). Następnie ubytek zostanie wysuszony na powietrzu przez 10 sekund, a ząb zostanie odbudowany.
Każde ubytek CHX zostanie potraktowany środkiem dezynfekującym za pomocą jednorazowej końcówki mikroszczoteczki i pozostawiony w spokoju przez 20 sekund. Następnie zostaną wysuszone na powietrzu przez 10 sekund i odbudują ząb.
Dostęp do zmiany chorobowej można uzyskać za pomocą końcówki szybkoobrotowej wyposażonej w sterylne wiertło szybkoobrotowe. Wiertło polimerowe będzie używane z rękojeścią o niskiej prędkości obrotowej 5 000–10 000 obr./min do usuwania zębiny próchnicowej w rozmiarach RA4, RA6 i RA8, w zależności od wielkości zmiany próchnicowej. Instrument będzie używany z okrężną, lekką siłą, zaczynając od środka zmiany próchnicowej w kierunku obwodu, zgodnie z zaleceniami producenta. Usuwanie próchnicy zostanie zatrzymane, gdy narzędzie będzie makroskopowo zużyte i stępione i nie będzie już w stanie usunąć tkanki. Za pomocą koparki sprawdzimy, czy u podstawy ubytku nie pozostała próchnica. W razie potrzeby zostanie użyte nowe wiertło polimerowe w celu usunięcia pozostałego próchnicy.
Aktywny komparator: Grupa 6: Selektywne usuwanie próchnicy wiertłem polimerowym + Er,Cr: Dezynfekcja laserowa YSGG
Zgodnie z protokołem selektywnego usuwania próchnicy stosowanym w Grupie 4, ubytek zostanie zdezynfekowany przy użyciu lasera Er, Cr: YSGG (EPIC X™, BIOLASE, USA) o długości fali 940 nm i mocy wyjściowej 0,1 W. Następnie ząb zostanie odbudowany.
Po zabiegu usunięcia próchnicy, ubytek zostanie zdezynfekowany laserem Er,Cr:YSGG (EPIC X™, BIOLASE, USA) o długości fali 940 nm i mocy 0,1 W. Końcówka lasera będzie końcówką o średnicy 400 µm i gęstości energii 138,12 J/cm w trybie bezdotykowym (odległość 2 mm), przy ruchu omiatającym 5 s/mm2.
Dostęp do zmiany chorobowej można uzyskać za pomocą końcówki szybkoobrotowej wyposażonej w sterylne wiertło szybkoobrotowe. Wiertło polimerowe będzie używane z rękojeścią o niskiej prędkości obrotowej 5 000–10 000 obr./min do usuwania zębiny próchnicowej w rozmiarach RA4, RA6 i RA8, w zależności od wielkości zmiany próchnicowej. Instrument będzie używany z okrężną, lekką siłą, zaczynając od środka zmiany próchnicowej w kierunku obwodu, zgodnie z zaleceniami producenta. Usuwanie próchnicy zostanie zatrzymane, gdy narzędzie będzie makroskopowo zużyte i stępione i nie będzie już w stanie usunąć tkanki. Za pomocą koparki sprawdzimy, czy u podstawy ubytku nie pozostała próchnica. W razie potrzeby zostanie użyte nowe wiertło polimerowe w celu usunięcia pozostałego próchnicy.

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Zmiany mikrobiomu
Ramy czasowe: 3 miesiące
We wszystkich grupach próbki zębiny zostaną pobrane z chorej zębiny u podstawy ubytku w wyniku trzech różnych procedur dezynfekcji podgrup, zastosowanych po usunięciu próchnicy, przy użyciu 2 sterylnych, okrągłych, sterylnych wierteł stalowych numer 6, zwilżonych solą fizjologiczną do analizy mikrobiologicznej . Wiertła zostaną umieszczone w sterylnych fiolkach o pojemności 5 ml i przechowywane w temperaturze -80 0C do czasu przeprowadzenia analiz. Przygotowane ubytki zostaną uzupełnione rutynowymi i standardowymi protokołami leczenia. Po zabiegach wykańczania i polerowania zostanie sprawdzona zgryz. Próbki pobrane w trakcie badań zostaną dostarczone do Centrum Oceny Chorób Genetycznych A&D (Ankara, Turcja), gdzie we współpracy z biologami molekularnymi zostanie przeprowadzona izolacja DNA i analiza sekwencji. W tej metodzie, po ekstrakcji całkowitego genomowego DNA z próbek klinicznych, zostanie przeprowadzony szerokozakresowy PCR 16S rRNA, a do analizy sekwencji zostanie wykorzystany zestaw MicroSeq 500 16S rRNA Sequencing.
3 miesiące

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Śledczy

  • Główny śledczy: Ayse Tugba Erturk Avunduk, Associate Profesor, Mersin University

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów (Szacowany)

5 maja 2025

Zakończenie podstawowe (Szacowany)

29 sierpnia 2025

Ukończenie studiów (Szacowany)

15 września 2025

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

3 stycznia 2025

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

3 stycznia 2025

Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)

25 marca 2025

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)

25 marca 2025

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

3 stycznia 2025

Ostatnia weryfikacja

1 stycznia 2025

Więcej informacji

Terminy związane z tym badaniem

Inne numery identyfikacyjne badania

  • MersinU-DHF-ATEA-01

Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)

Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?

NIE

Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze

Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA

Nie

Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA

Nie

produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA

Nie

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

Subskrybuj