Egzogenna ketoza i synteza białek mięśniowych podczas regeneracji po wysiłku
Wpływ spożycia monoestru ketonowego na poposiłkową syntezę białek miofibrylarnych u młodych dorosłych podczas regeneracji po ostrym ataku ćwiczeń oporowych
Ostry atak ćwiczeń oporowych stymuluje syntezę białek mięśniowych (MPS) do 24-48 godzin, wspierając wzrost i naprawę mięśni. Aby zoptymalizować efekty anaboliczne ćwiczeń oporowych, niezbędne jest dostarczanie w diecie aminokwasów (tj. białek). Spożycie białka w diecie dostarcza organizmowi niezbędnych i nieistotnych aminokwasów, które stanowią budulec białek mięśniowych, nasilając anaboliczny wzrost mięśni. Powszechnie wiadomo, że spożycie białka w diecie, takiego jak białko serwatkowe, stymuluje wzrost tempa syntezy białek w mięśniach szkieletowych po ćwiczeniach oporowych. Badania wykazały zależny od dawki związek między spożyciem białka a szybkością MPS, przy czym 25 gramów to optymalna dawka, która maksymalnie stymuluje tempo MPS u młodszych dorosłych, których nadmiar białka jest utleniony jako źródło paliwa.
Nie zbadano jeszcze, czy tę maksymalnie stymulowaną odpowiedź MPS można dodatkowo zwiększyć podczas regeneracji powysiłkowej przy użyciu niebiałkowych czynników dietetycznych. Niedawno wykazano, że nowe, przyjmowane doustnie suplementy diety zawierające ketony mogą stymulować częstość występowania MPS u młodszych dorosłych w stanie spoczynku.
Ciała ketonowe (β-OHB) to cząsteczki pochodzące z lipidów, zwykle wytwarzane w warunkach niedoboru glukozy (tj. na czczo/głodzie lub na diecie „ketogenicznej” o niskiej zawartości węglowodanów). Jednakże te doustnie przyjmowane suplementy ketonowe szybko zwiększają poziom ciał ketonowych we krwi bez potrzeby ograniczania diety6. Badania in vitro wykazały, że połączenie leucyny i ciał ketonowych stymulowało 2-krotny wzrost MPS w porównaniu z samą grupą leucyny, co wskazuje na synergistyczny wpływ ciał białkowych i ketonowych na MPS. Jednakże wpływ suplementacji ketonami, z jednoczesnym spożyciem białka w diecie lub bez, na wskaźnik MPS podczas regeneracji powysiłkowej nie został jeszcze zbadany. Jeśli ciała ketonowe mogą wzmocnić reakcję anaboliczną na białko w diecie, mogą zapewnić nowe podejście do maksymalizacji adaptacji mięśni podczas regeneracji po wysiłku.
Dlatego celem tego badania jest ocena wpływu spożycia monoestru ketonu na poposiłkową syntezę białek mięśniowych, gdy jest on spożywany samodzielnie lub w połączeniu z optymalną dawką (25 g) białka serwatkowego podczas regeneracji po ćwiczeniach oporowych w porównaniu z 1) optymalną dawkę białka serwatkowego (25 g) oraz 2) kontrolną wodę smakową. Przypuszcza się, że synteza białek mięśniowych będzie stymulowana po spożyciu napoju ketonowego. Co więcej, tempo syntezy białek mięśniowych ulegnie dalszemu zwiększeniu, gdy napój zawierający ketony zostanie przyjęty razem z optymalną dawką.
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
W tym randomizowanym badaniu z podwójnie ślepą próbą i grupą kontrolną placebo przeprowadzonym z udziałem zdrowych dorosłych osób zostanie zastosowany układ grup równoległych w celu zbadania wpływu monoestru ketonu na szybkość syntezy białek miofibrylarnych podczas regeneracji po wysiłku. W tym badaniu biorą udział 4 grupy, w tym jedna grupa ketonowa (0,36 g/kg masy ciała) (KET), jedna grupa białkowa (25 g białka serwatkowego) (PRO), kombinacja ketonu i białka (KET+PRO) oraz grupa placebo (woda smakowa) (CON). W badaniu weźmie udział ogółem 48 uczestników (n=12 na grupę).
Badanie obejmie wizytę przesiewową (wizyta 1), badanie maksymalnej liczby powtórzeń (10-RM) (wizyta 2), podczas której zostanie określone 10-RM uczestników dla protokołu ćwiczeń, oraz próbę eksperymentalną (wizyta 3).
Podczas badań eksperymentalnych uczestnicy przybywają do laboratorium na czczo, gdzie zostanie podana główna dawka L-[ring-2H5]-fenyloalaniny, a następnie ciągły wlew z szybkością 0,05 µmol/kg masy ciała/ min. Następnie uczestnicy wykonają jednostronne ćwiczenie oporowe dolnej części ciała, składające się z 8 serii po 10 powtórzeń jednostronnego wyprostu nogi na poziomie 90% ich 10-RM z 90 sekundową przerwą pomiędzy seriami. Po wysiłku fizycznym zostanie zastosowane leczenie żywieniowe.
Arterializowana krew będzie pobierana na początku badania i w 13 punktach czasowych po posiłku przez 9 godzin w celu oznaczenia ilości aminokwasów, glukozy i insuliny w osoczu.
Ponadto podczas całego badania oceniane będą zmiany w stężeniu β-HB we krwi włośniczkowej, pobierając próbki krwi włośniczkowej na początku badania i 10 punktów czasowych po posiłku. Na koniec, przed spożyciem napoju oraz po 5 godzinach poposiłkowego okresu po regeneracji zostaną pobrane próbki biopsji mięśni zarówno z nogi ćwiczonej, jak i nogi wypoczętej, aby ocenić szybkość syntezy białek miofibrylarnych.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Quebec
-
Montreal, Quebec, Kanada, H2W 1S4
- McGill University
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dorosły
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria włączenia:
- Zdrowe dorosłe kobiety lub mężczyźni w wieku 18–40 lat (włącznie) z BMI >18,5 i <30,0 kg/m2
- Umiarkowanie aktywny (tj. ≥ 1 sesja podnoszenia ciężarów dolnych partii ciała/tydzień w ciągu ostatnich 2 miesięcy).
- Utrzymywał stabilne stosowanie leków i suplementów (które nie są ograniczone kryteriami wykluczenia), stabilne nawyki żywieniowe i styl życia oraz stabilną masę ciała przez ostatnie 3 miesiące przed badaniem przesiewowym i wyraża zgodę na ich utrzymanie przez cały okres badania.
- Bądź gotowy całkowicie zrezygnować ze spożycia alkoholu na 48 godzin przed dniem badania eksperymentalnego.
- Chęć i możliwość wyrażenia zgody na wymagania i ograniczenia tego badania, chęć wyrażenia dobrowolnej zgody, zrozumienie i przeczytanie kwestionariuszy oraz przeprowadzenie wszystkich procedur związanych z badaniem.
Kryteria wykluczenia:
- Kobiety w okresie laktacji lub w ciąży
- Kobiety stosujące doustne środki antykoncepcyjne trzeciej generacji (w tym: Desogen®, Ortho-Cept, Ortho-Cyclen, Ortho Tri-Cyclen), ponieważ wiadomo, że wpływają one na metabolizm białek u kobiet.
- Osoby z zaburzeniami metabolicznymi, w tym: cukrzycą typu I lub typu II
- Osoby z historią zakrzepicy/choroby układu krążenia
- Osoby stosujące leki przeciwzakrzepowe
- Osoby ze schorzeniami układu mięśniowo-szkieletowego/ortopedycznymi
- Osoby z urazami kolana (tj. urazami ACL).
- Osoby, które używały wyrobów tytoniowych w ciągu ostatnich 6 miesięcy
- Osoby z historią problemów nerwowo-mięśniowych
- Przewlekłe stosowanie leków modulujących metabolizm mięśni szkieletowych (tj. kortykosteroidy, hormonalna terapia zastępcza (HTZ) i dostępne bez recepty suplementy, w tym monohydrat kreatyny) w ciągu ostatnich 6 miesięcy.
- Osoby z alergią na białka mleka (serwatka lub kazeina).
- Osoby z nietolerancją laktozy
- Osoby chore na fenyloketonurię (PKU)
- Wcześniejszy udział w badaniach znaczników aminokwasów.
- Przestrzeganie diety wegetariańskiej lub wegańskiej
- Bieżące stosowanie suplementów ketonowych lub przestrzeganie diety ketogennej
- Osoby, które trenują więcej niż 5 sesji podnoszenia ciężarów dolnych partii ciała tygodniowo w ciągu ostatnich 4 miesięcy
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Podstawowa nauka
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Monoester ketonowy (KET)
Suplement monoestru ketonu (R)-3-hydroksybutylu (R)-3-hydroksymaślanu w przeliczeniu na masę ciała uczestników (0,36 g/kg masy ciała).
|
- Dodatek monoestru ketonu (R)-3-hydroksybutylu (R)-3-hydroksymaślanu w przeliczeniu na masę ciała uczestników (0,36 g/kg masy ciała).
Nazwa marki ketonów: delta G Oxford Ketone Ester
- 8 serii po 10 powtórzeń w 90% z maksymalnie 10 powtórzeń (10-RM) jednostronnego wyprostu nogi z 90 sekundową przerwą pomiędzy seriami.
|
|
Eksperymentalny: Monoester Ketonowy + Białko Serwatkowe (KET+PRO)
Suplement monoestru ketonowego (R)-3-hydroksybutylu (R)-3-hydroksymaślanu w przeliczeniu na masę ciała uczestników (0,36 g/kg masy ciała) i 25 g białka serwatkowego.
|
- 8 serii po 10 powtórzeń w 90% z maksymalnie 10 powtórzeń (10-RM) jednostronnego wyprostu nogi z 90 sekundową przerwą pomiędzy seriami.
|
|
Eksperymentalny: Białko Serwatkowe (PRO)
25 g białka serwatkowego.
|
- 8 serii po 10 powtórzeń w 90% z maksymalnie 10 powtórzeń (10-RM) jednostronnego wyprostu nogi z 90 sekundową przerwą pomiędzy seriami.
|
|
Komparator placebo: Napój placebo (CON)
Woda smakowa.
|
- 8 serii po 10 powtórzeń w 90% z maksymalnie 10 powtórzeń (10-RM) jednostronnego wyprostu nogi z 90 sekundową przerwą pomiędzy seriami.
- Woda smakowa (bezkaloryczna gorzka + aromaty cytrusowe)
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Szybkość syntezy frakcyjnej miofibryli
Ramy czasowe: 0 - 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Kwantyfikacja zmian w podstawowej, frakcyjnej szybkości syntezy miofibrylarnej (%/godzinę) w wypoczętych i wytrenowanych kończynach.
|
0 - 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Dane dotyczące przebiegu czasowego wzbogacenia osocza (w procentach molowych nadmiaru) L-[pierścień-2H5]-fenyloalaniny
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany we wzbogaceniu wolnej od osocza L-[ring-2H5]-fenyloalaniny mierzone w 14 punktach czasowych (t = -180, -120, -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą całkowitego stężenia aminokwasów
Ramy czasowe: 3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Przyrostowe pole pod krzywą (iAUC) dla stężenia w osoczu aminokwasów ogółem (μmol/L), w tym: wolna leucyna, izoleucyna, walina, histydyna, lizyna, metionina, fenyloalanina, treonina, tryptofan, arginina, glutamina, glicyna, alanina, seryna , kwas glutaminowy, kwas asparaginowy, asparagina, tyrozyna, cysteina, prolina (łącznie), mierzona na początku badania oraz w ciągu 3 godzin przedposiłkowych i 5 godzin poposiłkowych.
|
3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane przebiegu czasowego dla całkowitego stężenia aminokwasów
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany w stężeniu całkowitego stężenia aminokwasów w osoczu (μmol/L), w tym: wolnej leucyny, izoleucyny, waliny, histydyny, lizyny, metioniny, fenyloalaniny, treoniny, tryptofanu, argininy, glutaminy, glicyny, alaniny, seryny, kwasu glutaminowego, kwasu asparaginowego , asparagina, tyrozyna, cysteina, prolina (łącznie), mierzona w 14 punktów czasowych (t = -180, -120, -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą dla stężenia niezbędnych aminokwasów
Ramy czasowe: 3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Przyrostowe pole pod krzywą (iAUC) stężenia niezbędnych aminokwasów w osoczu (μmol/l), w tym wolnej leucyny, izoleucyny, waliny, histydyny, lizyny, metioniny, fenyloalaniny, treoniny, tryptofanu (łącznie), mierzone na początku i w całym okresie 3- godzinny okres przedposiłkowy i 5-godzinny okres poposiłkowy.
|
3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane dotyczące przebiegu w czasie dotyczące stężenia niezbędnych aminokwasów
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany w stężeniu w osoczu niezbędnych aminokwasów (μmol/l), w tym: wolnej leucyny, izoleucyny, waliny, histydyny, lizyny, metioniny, fenyloalaniny, treoniny, tryptofanu (łącznie), mierzone w 14 punktach czasowych (t = -180, -120 , -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą dla stężenia leucyny
Ramy czasowe: 3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Przyrostowe pole pod krzywą (iAUC) dla stężenia leucyny w osoczu (μmol/l) mierzone na początku badania oraz w ciągu 3 godzin przedposiłkowych i 5 godzin poposiłkowych.
|
3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane dotyczące przebiegu czasowego dla stężenia leucyny
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany stężenia leucyny w osoczu (μmol/L) mierzone w 14 punktach czasowych (t = -180, -120, -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut ).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą stężenia glukozy
Ramy czasowe: 3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Stężenie glukozy w osoczu (mmol/l) i odpowiadające mu przyrostowe pole pod krzywą (iAUC), mierzone na początku badania oraz w ciągu 3 godzin przed posiłkiem i 5 godzin po posiłku.
|
3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane dotyczące przebiegu czasowego stężenia glukozy
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany stężenia glukozy w osoczu (mmol/l) mierzone w 14 punktach czasowych (t = -180, -120, -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut ).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą stężenia insuliny
Ramy czasowe: 3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Przyrostowe pole pod krzywą (iAUC) dla stężenia insuliny w osoczu (pmol/l), mierzone na początku badania oraz w 3-godzinnym okresie przedposiłkowym i 5-godzinnym okresie poposiłkowym.
|
3 godziny przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane dotyczące przebiegu czasowego stężenia insuliny
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
Zmiany stężenia insuliny w osoczu (pmol/l) mierzone w 14 punktach czasowych (t = -180, -120, -60, 0, 15, 30, 45, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut ).
|
Wartość wyjściowa, 3 godziny przed posiłkiem i 5 godzin w okresie poposiłkowym.
|
|
Przyrostowe pole pod krzywą dla stężeń β-HB
Ramy czasowe: 1 godzina przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
Stężenie β-OHB we krwi włośniczkowej (mmol/l) i odpowiadające mu przyrostowe pole pod krzywą (iAUC) mierzone w okresie przedposiłkowym i poposiłkowym.
|
1 godzina przed posiłkiem do 5 godzin po posiłku
|
|
Dane dotyczące przebiegu w czasie dla stężeń β-HB
Ramy czasowe: 1 godzina przed posiłkiem do 5 godzin w okresie poposiłkowym
|
Zmiany stężenia β-OHB we krwi włośniczkowej (mmol/L) mierzone w 10 punktach czasowych (t = -60, 0, 30, 60, 90, 120, 150, 180, 240, 300 minut).
|
1 godzina przed posiłkiem do 5 godzin w okresie poposiłkowym
|
|
Zmiany w stanie fosforylacji cząsteczek sygnalizacyjnych anabolicznych
Ramy czasowe: 0 i 5 godzin okresu poposiłkowego.
|
Analiza Western blot zostanie wykorzystana do pomiaru zmian w podstawowym stanie fosforylacji cząsteczek sygnalizacyjnych anabolicznych, w tym p-mTORC1 (Ser2448), p-p70S6K (Thr389), p-Akt (Ser473), p-4E-BP1 (Thr37/ 46) i p-rpS6 (Ser240/244), p-ERK1(Thr202/Tyr204) i p-ERK2 (Thr185/Tyr187) w kończynach ćwiczonych i wypoczętych.
|
0 i 5 godzin okresu poposiłkowego.
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Tyler Churchward-Venne, PhD, Department of Kinesiology and Physical Education, McGill University
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby metaboliczne
- Brak równowagi kwasowo-zasadowej
- Kwasica
- Choroby żywieniowe i metaboliczne
- Ketoza
- Aminokwasy, peptydy i białka
- Białka
- Aktywność motoryczna
- Ruch
- Physiologiczne zjawiska mięśniowo -szkieletowe
- Zjawiska fizjologiczne mięśniowo -szkieletowe i nerwowe
- Lecznictwo
- Fizjoterapia
- Żywność
- Dieta, żywność i odżywianie
- Zjawiska fizjologiczne
- Jedzenie i napoje
- Opieka nad pacjentem
- Terapia ćwiczeń
- Rehabilitacja
- Opieka postpenitencjarna
- Ciągłość opieki nad pacjentem
- Produkty mleczne
- Kondycjonowanie fizyczne, człowiek
- Ćwiczenia
- Mleko
- Białka dietetyczne
- Białka mleczne
- Białka zwierzęce, dieta
- Serwatka
- Trening oporu
- Białka serwatki
Inne numery identyfikacyjne badania
- A00-M15-24A
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .