肠内与肠外谷氨酰胺补充剂

符合所述标准的患者被随机分配到 P 组或 E 组，使用顺序编号的容器进行隐蔽随机化。 P 组接受肠外谷氨酰胺二肽补充剂（Dipeptiven 100ml，Fresenius Kabi）的持续输注，并使用不添加谷氨酰胺的标准商业肠内聚合物饮食（Ensure，Abbott Ross）进行肠内喂养。 E 组患者接受肠内谷氨酰胺补充剂作为补充谷氨酰胺的标准商业肠内饮食（Alitraq，Abbott Ross）的持续给药。 在这种饮食中以游离酸形式存在的肠内谷氨酰胺的剂量取决于肠内食物的体积。 两组患者都接受了为期五天的谷氨酰胺补充剂治疗。 其他治疗程序在各组之间没有差异。 所有患者每天连续胃饲 20 小时，从 20 毫升/小时开始。 入院后24小时开始肠内营养。 胃残留量每日3次，小于250ml时，逐渐增加进食量，直至100ml/小时。 如果需要，从第二天开始，所有三组患者都接受额外的胃肠外氨基酸和葡萄糖溶液，以达到 20kcal/kg/天和 0.15g 氮/kg/天的目标。

使用乳果糖/甘露糖醇 (L/M) 测试在第 4 天测量肠道通透性 (IP)。 为了研究目的，患者在测试前 6 小时禁食。 将 5g 甘露醇 (M) 和 10g 乳果糖 (L) 混合在 100ml 水中进行测试。 混合物通过鼻胃管作为推注给药。 同时，将4ml 20%洗必泰加入空尿袋中。 尿液在这个袋子里收集了六个小时。 然后从袋子中取出 5ml 尿液并储存在 -20°C 直至分析。 开始通过鼻胃管进行肠内喂养试验两小时后。 尿液 L 和 M 用薄层色谱同时测定，这是我们实验室测定乳果糖和甘露醇的新方法。 该方法能够在同一氨基 HPTLC 板上使用荧光模式对乳果糖进行光密度定量后测定尿液中的乳果糖和甘露醇，并在使用 AgNO3 试剂检测后使用吸收模式对甘露醇进行测定。 与之前用于测定两种分析物的两种单独方法相比，新方法可缩短分析时间、减少化学品和 HPTLC 板的消耗、提高灵敏度（检测限下限），并且在测定乳果糖时干扰化合物的问题更少。 14 使用此方法进行的分离和定量具有高度可重复性，保留时间的标准误差小于 2.5%，定量的标准误差小于 3.5%。 15,16 实验室的研究人员对研究组不知情。 L/M 指数根据 L 和 M 的尿浓度 (c) 使用以下公式计算：L/M = c L / (c M x 2)。 研究开始时未进行 L/M 测试，因为研究中还包括不稳定的创伤和败血症患者，并且在这些患者中，尿液收集难以进行。

按照亚特兰大疾病控制中心的建议，在整个 ICU 住院期间记录院内感染。 17,18 当医院获得性肺炎风险指数为 6 或更高时，可诊断为院内肺炎。 19 入院时出现或在 ICU 治疗的前两天内诊断出的感染在 ICU 入院前被标记为获得性感染。 根据微生物测试的结果和/或根据感染控制指南对所有诊断出的感染进行治疗。 用 C 反应蛋白 (CRP) 水平测量急性炎症反应。 用于测定的血样是在基线和研究结束时获得的。

入院时计算急性生理学和慢性健康评估 II (APACHE II) 评分。 记录每位患者的 ICU 和住院时间 (LOS) 以及六个月的生存期。

所有参与者都对干预措施视而不见。 ICU 工作人员对分组不知情，但他们不参与结果评估，另一方面，结果评估人员和实验室人员对分组不知情。