Suplemento de glutamina enteral versus parenteral

Los pacientes que cumplieron con los criterios descritos fueron asignados aleatoriamente a los grupos P o E utilizando contenedores numerados secuencialmente para la aleatorización oculta. Los del grupo P recibieron la infusión continua del suplemento de dipéptido de glutamina parenteral (Dipeptiven 100 ml, Fresenius Kabi) y fueron alimentados por vía enteral con una dieta enteral polimérica comercial estándar sin glutamina añadida (Ensure, Abbott Ross). Los pacientes del grupo E recibieron el suplemento de glutamina enteral como administración continua de una dieta enteral comercial estándar suplementada con glutamina (Alitraq, Abbott Ross). La dosis de glutamina enteral, en forma de ácido libre en esta dieta, dependía del volumen de alimentación enteral. Ambos grupos de pacientes fueron tratados con el suplemento de glutamina durante cinco días. Los otros procedimientos terapéuticos no difirieron entre los grupos. Todos los pacientes estaban en alimentación gástrica continua durante 20 horas diarias, comenzando con 20ml/hora. La nutrición enteral se inició a las 24 horas del ingreso. El residuo gástrico se midió tres veces al día, y cuando era menor de 250 ml, el volumen de alimentación se incrementó gradualmente hasta 100 ml/hora. Si era necesario a partir del segundo día, los pacientes de los tres grupos recibieron soluciones parenterales adicionales de aminoácidos y glucosa para alcanzar el objetivo de 20 kcal/kg/día y 0,15 g de nitrógeno/kg/día.

La permeabilidad intestinal (PI) se midió el día 4 utilizando la prueba de lactulosa/manitol (L/M). Para el propósito del estudio, los pacientes estuvieron en ayunas 6 horas antes de la prueba. La prueba se realizó con 5g de manitol (M) y 10g de lactulosa (L) mezclados en 100ml de agua. La mezcla se administró en bolo a través de una sonda nasogástrica. Al mismo tiempo, se añadieron 4ml de clorhexidina al 20% en una bolsa de orina vacía. La orina se recogió en esta bolsa durante seis horas. Luego se tomaron muestras de 5ml de orina de la bolsa y se almacenaron a -20˚C hasta el análisis. Dos horas después de la prueba se inició la alimentación enteral por sonda nasogástrica. La L y M urinaria se determinaron simultáneamente con cromatografía en capa fina14, un nuevo método en nuestro laboratorio para la determinación de lactulosa y manitol. El método permitió la determinación de lactulosa y manitol en la orina en la misma placa de amino HPTLC después de la cuantificación densitométrica de lactulosa mediante el uso del modo de fluorescencia y el manitol mediante el uso del modo de absorción después de la detección con el reactivo AgNO3. El nuevo método dio como resultado un tiempo de análisis más corto, un menor consumo de productos químicos y placas de HPTLC, una mayor sensibilidad (límites de detección más bajos) y menos problemas con los compuestos que interfieren en la determinación de lactulosa que los dos métodos separados utilizados anteriormente para la determinación de ambos analitos.14 La separación y cuantificación mediante este método son altamente reproducibles, arrojando errores estándar de menos del 2,5 % para los tiempos de retención y menos del 3,5 % para la cuantificación.15,16 Los investigadores en el laboratorio estaban cegados para los grupos de estudio. El índice L/M se calculó a partir de las concentraciones urinarias (c) de L y M usando la siguiente fórmula: L/M = c L / (c M x 2). La prueba L/M no se realizó al comienzo del estudio porque también se incluyeron en el estudio pacientes inestables con traumatismos y sépticos, y en estos pacientes, la recolección de orina es difícil de realizar.

Las infecciones nosocomiales se registraron durante toda la estadía en la UCI según lo recomendado por el Centro para el Control de Enfermedades en Atlanta.17,18 Se diagnosticó neumonía nosocomial cuando el Índice de Riesgo de Neumonía Adquirida en el Hospital fue de 6 o más.19 Las infecciones que estaban presentes al ingreso o diagnosticadas dentro de los dos primeros días de tratamiento en la UCI se marcaron como adquiridas antes del ingreso en la UCI. Todas las infecciones diagnosticadas fueron tratadas de acuerdo con los resultados de las pruebas microbiológicas y/o de acuerdo con las guías de control de infecciones. La respuesta inflamatoria aguda se midió con los niveles de proteína C reactiva (PCR). Las muestras de sangre para su determinación se obtuvieron al inicio y al final del estudio.

Se calculó la puntuación de Evaluación de salud crónica y fisiología aguda II (APACHE II) al ingreso. Se registró la duración de la estancia en la UCI y en el hospital de cada paciente (LOS) y la supervivencia a los seis meses.

Todos los participantes estaban cegados a las intervenciones. El personal de la UCI no estaba cegado a la asignación de grupos, pero no participó en la evaluación de resultados y, por otro lado, los evaluadores de resultados y el personal de laboratorio estaban cegados a la asignación de grupos.