Bakterienreduktion des rotierenden versus manuellen Ablagesystems unter Verwendung verschiedener Spülmittel in primären Molaren

Die berechnete Stichprobengröße der Studie beträgt 22 Teilnehmer für jede Gruppe bei einem Signifikanzniveau von 5 % und einer Trennschärfe von 80 %. 30 Teilnehmer für jede Gruppe (10 für die Stichprobe). Die Stichprobengröße wird erhöht, um unvollständige Daten auszugleichen und die Studie für jede Untergruppe zu vergrößern. antreiben

Gruppierung:

30 Kinder werden aus der Kinderklinik der Fakultät für Zahnmedizin der Mansoura-Universität ausgewählt Das Kind sollte über zwei kontralaterale Milchmolaren verfügen, die für eine Pulpektomie indiziert sind. Die Kinder werden je nach Art der bei der Wurzelkanalaufbereitung verwendeten Feile nach dem Zufallsprinzip in zwei Hauptgruppen eingeteilt: Gruppe I mit manueller Feile. Gruppe II mit Rotationsfeile.

Dann werden die Kinder nach dem Zufallsprinzip nach dem verwendeten Bewässerungsmittel in Untergruppen eingeteilt:

Gruppe IA und Gruppe II A mit normaler Kochsalzlösung. Gruppe IB und Gruppe II B mit Neem. Gruppe IC und Gruppe II C mit NaOCl. Klinische Verfahren:

1. Psychologische Betreuung des Kindes
2. Röntgenaufnahme zur Feststellung der Einschlusskriterien
3. Der Eingriffszahn wird betäubt und mit Kofferdam isoliert. Der Zahn und der angrenzende Kofferdam werden mit einer Tinktur aus Jodlösung desinfiziert
4. . Das gesamte kariöse Gewebe wird mit einem sterilisierten Rundbohrer entfernt und der Zugang zum Wurzelkanal erfolgt
5. Nach Erhalt des Zugangs werden der distale Kanal der Unterkiefer-Primärmolaren und der Gaumenkanal der Oberkiefer-Primärmolaren für die Probenahme ausgewählt.
6. Eine sterile Raspel wird eingeführt, um den Inhalt des Wurzelkanals zu erhalten, dann wird eine sterile Papierspitze in den Wurzelkanal eingeführt und 1 Minute lang belassen. 19 Die Papierspitze wird mit einer sterilisierten Pinzette entfernt, die sofort in ein Röhrchen mit Transportmedium (Eppendrof mit 200) überführt wird μl Nährbouillon-Medium).
7. In Gruppe 1 wird mit manuellen Dateien die Spülung mit Kochsalzlösung in IA, mit Neem in IB und die Spülung mit NaOCl in IC vorbereitet.
8. In Gruppe II wird mit Rotationsfeilen die Spülung mit Kochsalzlösung in IIA, mit Neem in IIB und mit NaOCl in IIC vorbereitet
9. Die sterile Papierspitze wird in den Wurzelkanal eingeführt und dort 1 Minute lang belassen. Die Papierspitze wird mit einer sterilisierten Pinzette entfernt und dann in ein Röhrchen mit Transportmedium 19 überführt.
10. Die Nachbewässerungsprobe und die Vorbereitungsprobe werden an das mikrobiologische Labor übertragen.
11. Die Kanäle werden mit Obturationsmaterial (Metapex) gefeilt, dann wird die Krone mit Glas-Inomar und einer Edelstahlkrone wiederhergestellt

Laborverfahren:

1. Alle Proben werden auf Blutagar aerob und anaerob bei 37 °C für 48–72 Stunden inkubiert und die Platten 19,20 aspektisch ausgestrichen.
2. Identifizierung von Bakterien anhand von Kulturmerkmalen, mikroskopischer Untersuchung und biochemischer Reaktion 21.
3. Die Anzahl der koloniebildenden Einheiten wird gezählt (KBE/ml).